Инструкция для ассистента ветеринарного врача

1
Оглавление: (со ссылками!)

П/к инъекции

В/м инъекции

В/в инъекции

Установка в/в катетера

Венесекция

Взятие крови

Фиксация собак

Фиксация кошек

Фиксация экзотических животных

Дача таблеток или жидкого лекарства

Катетеризация мочевого пузыря

Взятие анализов мочи

Цистоцентез

Бритье животных для операций, УЗИ живота, ЭХО

Установка капельницы

Скорость инфузии

Уход за тяжелобольным пациентом: туалет ротовой полости, уход за трахеостомой,
эзофагостомой, профилактика пролежней, профилактика ангиогенных инфекций (уход за
ЦВК, в/в катетером), уход при ИВЛ

Вскрытие абсцесса подкожной клетчатки

Определение ВСК (время свертываемости крови)

Расчет ООИТ, скорости инфузии растворов, перерасчет весовых единиц в объемные

Инфильтаративная анестезия

Кислородотерапия, работа с кислородным баллоном

Оказание первой помощи владельцам (обмороки, укусы и пр)
1
2

Техника безопасности при проведении химиотерепии, профилактика осложнений при
химиотерапии

Правила работы в регистратуре. Работа с компьютерной программой. Правила и
регламент общения с владельцами лично и по телефону. Работа с картотекой. Сбор
первичной информации, оформление амбулаторной карты. Поддержание порядка. Правила
поведения в кабинетах 1 и 2.
Правила работы в кабинете инфузионной терапии.
Правила работы в УЗИ-кабинете.
Правила работы в рентген-кабинете.
Правила поведения в ординаторской и раздевалке клиники


Правила ухода из стационара по личным нуждам. Телефонный звонок в отсутствие
врача, фиксация информации о проведенных процедурах.
Правила асептики и антисептики. Уход за машинкой. Работа в медиалоге.

Санация перианальных синусов

Десмургия

Общие правила работы с анализами

Эндокринология (работа с глюкометром, способы получения крови для определения
концентрации глюкозы в крови, правила забора, обработки, хранения и оформления
крови для определения концентрации гормонов, способы купирования гипогликемии)

Постановка лекарственной/очистительной клизмы.

Измерение ЧСС, ЧДД, температуры, СНК, оценка АД по пульсу

Интубация

Кюретаж фолликулов третьего века и препуция

Пироплазмоз

Аускультация и перкутирование грудной клетки, сердца, брюшной полости

Основы пальпации животных – поверхностные лимфоузлы, брюхо, кожа

Основы осмотра животного

Установка центрального венозного катетера

Санация зубов и ротовой полости

Кастрация котов

Овариогистерэктомия у кошек и сук

Кастрация кобелей
2
3

Лапароцентез и лаваж брюшной полости

Торакоцентез при гидротораксе и пневмотораксе

Цереброспинальная пункция

Правила подключения к кардиомонитору. Выставляемые параметры.

Выписывание и получене расходных материалов, правила кормления и выгула.

Закрытие лапоратомной раны

Обработка и снятие кожных швов.

Глубокий и поверхностный соскоб

Цитология (скотч, нсп, аспирационная)

Трихоскопия, исследование с помощью лампы Вуда, санация НСП

Взятие материала для исследования дерматофитиии, отодектоза

Подготовка соскобов к микроскопии, Исследование соскобов и трихоскопия,
Исследование цитологии

Проведение МДП, проба с лишением жидкости
3
4
ОПРОСНИК
П/к инъекции
Краткое описание, цель:
Введение лекарственных препаратов посредством шприца в подкожный жировой слой. Практически
безболезненна, можно вводить достаточно большие объемы жидкости, терапевтический эффект
проявляется только через 30-45 мин, но действуют лекарственные вещества более длительно.
Для инъекций используются задняя и боковые части шеи, позади плеча или область паховой складки.
Необходимое оборудование:
Шприц с лекарством
Этапы проведения:
1. Зафиксировать животное.
2. Взять шприц в руку, которой будет производиться инъекция, убедиться, что игла крепко надета.
3. Собрать другой рукой кожу в складку треугольной формы, основанием вниз.
4. Ввести иглу под углом 45˚ в основание кожной складки на глубину 2/3 длины иглы.
5. Аккуратно помассировать место инъекции для лучшего распределения лекарства.
Наиболее частые ошибки:
Протыкание кожной складки насквозь – нужно особенно внимательно следить при малых объемах
вводимой жидкости или длинношерстных животных – в этих ситуациях данная ошибка наиболее часта.
Особенно внимательными нужно быть при вакцинации и введение инсулина.
Возможные осложнения:
1. Подкожный инфильтрат
2. Поломка иглы
3. Некроз тканей при ошибочном введении гипертонических р-ров или иных лекарственных средств, не
предназначенных для подкожного введения.
4. Анафилактический шок
5. При введении внутрикожно, возможно образование абсцессов
Нюансы:
Байтрил 5% не следует вводить подкожно, возможно образование абсцессов.
В/м инъекции
Краткое описание, цель:
Введение лекарственных препаратов посредством шприца в толщу мышцы. Быстрое всасывание
(эффект через 20-30 мин) малых объемов жидкостей.
Для инъекций используется квадрицепс на передней стороне бедра, а также мышцы плеча позади
лопатки и поясничная мышца, заднебедренную группу мышц, избегать попадания в седалищный нерв.
Необходимое оборудование:
Лоток:
 Шприц с лекарством
Этапы проведения:
1. Зафиксировать животное.
2. Взять шприц в руку (как кинжал).
3. Если инъекция производится в квадрицепс, то вторую руку стоит расположить изнутри ноги,
чтобы зафиксировать мускул.
4. Ввести иглу под углом 90˚ в толщу мышцы. Глубину вкола следует ограничивать мизинцем.
5. Затем быстро ввести раствор и вынуть шприц.
6. Слегка помассировать место инъекции для лучшего распределения препарата.
Нюансы:
 Следует избегать инъекций в ягодичную область или заднебедренную группу мышц, т.к.
существует опасность повреждения костей или седалищного нерва, который проходит в
4
5

этой области. Делать инъекцию в заднебедренную группу мышц следует при точном
определении местонахождения седалищного нерва и возможности зафиксировать его
рукой.
Если препарат хранился в холодильнике или разведен холодным растворителем, то перед
введением следует согреть шприц в руке, либо оставить его на несколько минут при
комнатной температуре. Не вводите холодные препараты, это чревато активной реакцией
животного на инъекцию и развитием местной реакции в месте введения в последующем.
Наиболее частые ошибки:
Введение иглы на всю длину (полностью) – игла ломается только в месте соединения с муфтой, т.о. в
случае ее поломки, игла полностью уйдет в толщу ткани, для извлечения потребуется операция.
Не плотное соединение шприца и канюли иглы, приводящее к разбрызгиванию лекарства.
Возможные осложнения:
1. Постинъекционный абсцесс
2. Поломка иглы
3. Некроз тканей при ошибочном введении гипертонических р-ров или иных лекарственных средств, не
предназначенных для внутримышечного введения.
4. Анафилактический шок
5. Повреждения нерва и надкостницы
6. Медикаментозная эмболия (при попадании масляных р-ров в кровяное русло)
Примечание:
ВАЖНО: максимальный объем в/м инъекций 5 мл крупной собаке и 0,5 мл (max 1 мл!) кошке!!!
Перерасчет доз из весовых единиц в объем инъекционного раствора:
1г – 1000мг (103)-1000000 мкг (106)-1000000000 нг (109).
Необходимо легко оперировать данными понятиями, в различных комбинациях, четко понимая,
что в мг 1000 мкг, 1 нг – 10-9 г и т. п.
В 1 мл жидкости – 20 капель
 Для того, чтобы рассчитать, объем раствора, который надо ввести, исходя из весовых единиц,
нужно знать концентрацию (разведение) раствора.
Например, необходимо ввести 0,2г Клафорана. Во флаконе 1г сухого вещества. Если планируется
в/м инъекция, то разводим флакон 4 мл физ. раствора, соответственно объем инъекционного
раствора равен (1г – 4 мл, 0,2 г – х 0,2*4÷1=0,8 мл) ) 0,8 мл.
Если раствор для в/в введения, то степень разведения можно увеличить, например до 1:10.
 Для в/м инъекций нужно меньшее разведение, чем для в/в инъекций. При введении в/м препарат
вводится в более концентрированном виде, соответственно в меньшем объеме.
 Разведенные флаконы хранить в холодильнике сутки, если не указано иное. При разведении
нового флакона с препаратами обязательно: написать на флаконе кличку животного, дату и время
разведения и в скольких мл разведен флакон (если разведен в 10 мл, то писать 1:10, если в 4 мл,
то 1:4 и т.д). Обнаруженные в холодильнике флаконы без даты разведения или указания мл
выбрасывать без сомнения. Аналогично поступать с флаконами, разведенными более суток
назад.
Правила разведения актрапида, протофана (и иных препаратов, употребляемых в похожих дозировках)
Актрапид хранится в холодильнике во флаконе, содержащем 1000 Ед инсулина. Содержимое
флакона разводят 10 мл физ р- р-ра. Соответственно каждый мл получивщегося р-ра содержит 100 Ед
препарата. Часто, дозировка на животное находится в пределах 2-10 Ед, что составляет 0,02-0,1мл
Причем, если 0,1 мл можно набрать инсулиновым шприцем с приемлемой точностью, то 0,02 набрать
таким способом без разведений невозможно. Данный препарат требует максимальной точности в
соблюдении дозировки. Для того, чтобы набрать необходимую дозировку в пределах 1-10 ед применяют
следующий прием. В инсулиновый шприц набирают 0,1 мл р-ра, содержащий, соответственно, 10Ед
препарата. После чего в этот же шприц добирают физ. р-ра до 1 мл. Таким образом у нас есть шприц с 1
мл р-ра, в котором содержится все те же 10 Ед препарата. Тщательно перемешиваем. После чего
5
6
сливаем не нужный нам объем раствора таким образом, чтобы оставшаяся в шприце часть содержала
необходимое на кол-во единиц. Ни в коем случае не наоборот!
В/в инъекции
Краткое описание, цель:
Введение лекарственных препаратов непосредственно в кровяное русло. Быстрый эффект (уже через 1-2
мин), возможность вводить большие объемы растворов. Следует помнить, что постановка
внутривенного катетера в большинстве случаев предпочтительнее внутривенной инъекции.
Для инъекций наиболее часто используются подкожная вена предплечья, бедренная вена, яремная вена,
подъязычная вена
Необходимое оборудование:
 Машинка для бритья шерсти
 Жгут
Лоток:
 Спиртовые тампоны
 Шприц с лекарством
 Салфетка, смоченная 3% р-ом перекиси водорода (для быстрого и бесследного удаления следов
крови)
Этапы проведения:
1. Зафиксировать животное.
2. Пережать вену рукой и, ориентируясь по контурам вены, выбрать наиболее подходящее место для
инъекции.
3. Выбрить участок, убрать шерсть (!) и машинку. Протереть место инъекции спиртовым тампоном.
4. Наложить жгут на конечность.
5. Взять шприц в руку.
6. Зафиксировать другой рукой вену и держа иглу практически параллельно вене, проколоть кожу.
Осторожно ввести иглу срезом вверх, слегка изменив направление, пунктировать вену.
7. Потянув поршень на себя, подтвердить попадание иглы в вену (в шприце должна появиться кровь).
8. Ослабить жгут.
9. Медленно ввести лекарственное средство, прижать к месту инъекции спиртовой тампон
(профилактика гематомы) и вынуть шприц.
10. Прижать к месту инъекции спиртовой тампон на 3-5 мин (профилактика кровотечения).
11. В случае необходимости, протереть лапу салфеткой с перекисью.
Нюансы:
Нельзя вводить в/в масляные р-ры (за некоторым исключением, например, пофол)
Наиболее частые ошибки:
Попытка пунктировать вену, предварительно точно не убедившись в ее местоположении.
Принятие за вену мышечных структур конечностей
Возможные осложнения:
1. Тромбофлебит
2. Гематома
3. Воспаление подкожной клетчатки, отек, некроз тканей
4. Анафилактический шок
Примечания:
При невозможности пунктирования наиболее часто используемых вен, пунктируются любые доступные
вены. При невозможности определения контура сосуда - не пунктировать.
6
7
Установка в/в катетера
Краткое описание, цель:
Внутривенный катетер позволяет вводить лекарственные препараты прямо в кровоток без повторных
прокалываний вены.
Для установки наиболее часто используются подкожная вена предплечья и латеральная, или малая, вена
Сафена на латеральной стороне дистальной части голени.
Необходимое оборудование:
 Машинка для бритья шерсти
 Жгут
Лоток:
 Лейкопластырь
 Спиртовые тампоны
 Катетер (использовать максимально большого диаметра, как правило собакам – зеленый,
кошкам – розовый, котятам – синий)
 Шприц с гепарином
 Марлевые салфетки, смоченные 3% перекисью водорода

Этапы проведения:
1. Зафиксировать животное.
2. Пережать вену рукой и, ориентируясь по контурам вены, выбрать наиболее подходящее место для
установки катетера.
3. Выбрить участок, на длину катетера, ниже предполагаемого места пункции не менее, чем на 5 см..
Укоротить машинкой шерсть по окружности лапы для облегчения снятия катетера в дальнейшем
4. Убрать шерсть и машинку со стола.
5. Протереть кожу спиртовым тампоном.
6. Приготовить лейкопластырь: отмерить необходимые куски и прикрепить кончиком к столу (?).
7. Наложить жгут на конечность.
8. Достать катетер, взять его в правую руку, сдвинуть относительно иглы, убедиться, что он не залипает.
Для удобства установки можно согнуть катетер (используя ватку с спиртом, не руками!) под углом 3045 º, крышечку от катетера положить в лоток открытой частью вверх.
9. Зафиксировать левой рукой вену (натянув кожу для лучшей фиксации вены) и держа катетер так,
чтобы игла была параллельно вене, а игла срезом вверх, проколоть кожу и вену, одним движением, не
меньше чем на 5-7 мм. Свидетельством того, что Вы попали в вену является появление крови в канюле
иглы.
10. Удерживая канюлю иглы продвинуть катетер в вену.
11. Снять жгут.
12. Салфеткой, смоченной в перекиси водорода удалить кровь с зоны постановки катетера.
13. Зафиксировать катетер, используя отмеренные заранее отрезки лейкопластыря.
Пластырь должен закрывать место входа катетера.
14. С помощью шприца ввести гепарин и надеть крышечку на катетер.
Гепариновый замок: 0,05 мл гепарина довести до 5 мл в шприце, либо физ. р-м, вводить по 0,2-0,3 мл в
катетер после установки и после каждой инфузии
Наиболее частые ошибки:
Попытка установить катетер в спавшуюся вену приводит к выведению "из строя" удобной вены.
Введение большей части катетера под кожу (3/4 длины), а лишь потом пунктирование вены концом
катетера, менее чем 1-0,5 см длиной приводит к выходу катетра из строя в течение короткого времени.
Нельзя класть катетер на стол, в лоток и т.д!.
Несоблюдение санитарных и эстетических требований при выполнении процедуры.
7
8
Подкладывание толстого слоя пластыря под порт катетера ведет к его заламыванию и выходу из строя.
Неправильная фиксация катетера (перетягивание конечности, либо необеспечение достаточной
фиксации катетера)
Нюансы:
Лучше ставить катетер в дистальную часть вены конечности, нежели в проксимальную.
Если вена плохо контурирует или у животного толстая кожа перед пункцией сделать надрез кожи 2 мм.
Если с первого раза не получилось поставить катетер, но он при этом не вышел из строя (не согнулся, не
появились зазубрины на кончике) его можно ставить еще раз, предварительно продув шприцом иглу, на
случай образования тромбов в просвете иглы.
При проколе противоположной, от начальной точки введения, стенки вены достаточно чуть-чуть
вытянуть катетер на себя и оказаться в просвете вены (при химиотерапии такая манипуляция
недопустима!)
Если с первого раза не получилось поставить катетер, но он при этом не вышел из строя (не согнулся, не
появились зазубрины на кончике) его можно ставить еще раз, предварительно продув шприцом иглу, на
случай образования тромбов в просвете иглы.
ЕСЛИ ВТОРОЙ РАЗ У ВАС ТОЖЕ НЕ ПОЛУЧИЛОСЬ ПРЕКРАТИТЕ ПОПЫТКИ И
ПОЗОВИТЕ ВРАЧА.
Возможные осложнения:
1. Тромбофлебит
2. Гематома
3. Воспаление подкожной клетчатки, отек, некроз тканей
4. Анафилактический шок
5. Если Вы видите развитие отека в области установки катетера при инфузии, остановите инфузию и
переставьте катетер.
Венесекция
Краткое описание, цель:
Венесекция позволяет проводить такие манипуляции как взятие крови и установка катетера на
спавшихся венах.
Необходимое оборудование:
 Машинка для бритья шерсти
 Жгут
Лоток:
 Спиртовые тампоны
 Стерильный хирургический набор (скальпель, пинцет, зажимы, нитки)
 Новокаин 0,5 % в шприце
 Салфетка, смоченная 3% перекисью водорода
Подготовка животного:
Зафиксировать животное в удобном для работы положении.
Этапы проведения:
1. Основываясь на знаниях анатомии, выбрить участок, где проходит вена, убрать шерсть и машинку.
Протереть кожу спиртовым тампоном.
2. С помощью новокаина обезболить участок.
3. Скальпелем разрезать кожу и подкожную клетчатку, визуализировать вену.
4. На инструменте или на лигатурных держалках участок вены вывести в просвет операционного
доступа.
5. Далее при установке катетера, например, дистальная часть может быть лигирована. Тогда вену можно
спокойно вскрыть выше места лигатуры, кровотечения не будет. Установить максимально толстый
катетер, для введения растворов с большой скоростью.
8
9
Возможные осложнения:
1. Тромбофлебит
2. Гематома
3. Воспаление подкожной клетчатки, отек, некроз тканей
4. Анафилактический шок
Взятие крови
Краткое описание, цель:
Диагностический забор крови необходим для уточнения предварительного диагноза и/или более точной
оценки состояния больного.
Для взятия крови наиболее часто используются подкожная вена предплечья и латеральная, или малая,
вена сафена на латеральной стороне дистальной части голени.
Необходимое оборудование:
 Машинка для бритья шерсти (особенно в случае затруднения с визуализацией вены)
 Жгут
 Штатив для пробирок.
Лоток:
 Спиртовые тампоны
 Салфетка, смоченная 3% р-ом перекиси водорода
 Инъекционная игла (обычно зеленая, для крупных животных можно использовать розовую)
 Пробирки необходимого типа, в зависимости от целей взятия крови
Этапы проведения:
1. Зафиксировать животное.
2. Пережать вену рукой и, ориентируясь по контурам вены, выбрать наиболее подходящее место для
пункции инъекции.
3. Протереть выбранный участок кожи спиртом.
4. Наложить жгут на конечность
5. Зафиксировать одной рукой вену и держа иглу практически параллельно вене, проколоть кожу.
Осторожно ввести иглу срезом вверх, слегка изменив направление, пунктировать вену.
6. Когда из канюли иглы пошла кровь нужно не фиксировать пальцем положение иглы, а наоборот
отпустить иглу (для предотвращения выскакивания или глубокого проникания иглы при возможных
движениях животного) и подставить под нее пробирку.
7. После сбора необходимого объема крови ослабить жгут, зажать место вкола иглы спиртовым
тампоном (профилактика гематомы).
8. Вынуть иглу.
9. Держать прижатой ватку со спиртов в течение 3-5 мин (профилактика гематомы и кровотечения)
10. Закрыть пробирки, перемешать содержимое пробирки с клиническим анализом крови осторожным
переворачиванием пробирки 3 раза.
11. Тщательно удалить следы крови салфеткой с перекисью водорода.
Наиболее частые ошибки
Попытка пунктировать вену, предварительно точно не убедившись в ее местоположении.
Несоблюдение санитарных и эстетических требований при выполнении процедуры.
Нюансы:
У маленьких животных удобно отламывать канюлю иглы, что бы там не сворачивалась медленно
набирающаяся кровь.
Если планируется многократные взятия крови (как при контроле сахара), то необходимо выбрать
длинный участок вены, сбрить шерсть на всем его протяжении, и пунктировать вену, начиная с
дистального участка до проксимального, в противном случае, первый же тромбоз «выведет вену из
строя ».
9
10
Для взятия крови у донора необходимо ставить катетеры: собакам - не меньше серого, кошке – не
меньше зеленого и лучше в яремную вену.
Иногда, возможна установка катетера в бедренную артерию, но направлять его нужно в обратную
сторону, то есть от сердца.
Возможные осложнения
1. Тромбофлебит
2. Гематома
3. Кровотечение
Фиксация собак
Процедуры с беспокойными и агрессивными животными необходимо проводить в отсутствие
владельцев.
В случае значительного беспокойства животного при фиксации необходимо применять седацию,
чтобы не нанести вред здоровью животного.
Необходимое оборудование:
Намордник или бинт
Помощник
Подготовка животного:
Надеть намордник или завязать морду бинтом:
1. Завязать петлю узлом сверху на переносице
2. Затем узлом внизу под нижней челюстью
3. Завязать концы бинта за ушами.
4*. Для брахиоцефалов: завязать доп. ленту, один конец которой пропустить под узлом на переносице,
второй конец пропустить под узлом за ушами и связать вместе (чтобы избежать давления на хрящи
переносицы, их повреждения, механического перекрытия дыхательных путей и асфиксии).
На стол для обследования небольшую собаку обычно поднимают, захватив одной рукой за шкуру на
холке, а второй под живот (маленьких под грудину).
Средних собак можно поднимать, одной рукой обхватив за грудь, а второй под задние ноги.
Больших собак лучше поднимать вдвоем: один подхватывает собаку за передние ноги, второй под
задние ноги.
Безболезненное укладывание животного на бок выполняется в следующей последовательности:
владелец придерживает собаку за голову, ассистент подходит со стороны на которую хотят уложит
собаку, обеими руками из-под живота захватывает конечности противоположной стороны и тянет их на
себя, заваливая собаку. Затем ассистент придавливает шею и живот локтями рук и так удерживает
животное.
Средних собак можно поднять, присев рядом с животным, взяв в свои руки "внешние" лапы собаки под
локтем и над скакательным суставом, поднять в таком положении и положить на стол – собака сразу
укладывается в зафиксированном положении, нужно лишь чтобы ассистент, стоящий с другой стороны,
перехватил лапы и придавил шею и живот локтями рук.
Для того, чтобы зафиксировать голову собаки можно крепко ухватить ее с двух сторон за кожные
складки на шее сразу за ушами.
Нюансы:
При невозможности выполнения каких-либо манипуляций из-за чрезмерной подвижности животного
или при необходимости выполнить сложную болезненную процедуру целесообразней сначала ввести
собаке седативное средство.
Наиболее частые ошибки:
Нельзя поднимать собак за передние лапы, т.к. при этом возможно растяжение мышц плеча.
10
11
Возможные осложнения:
Фиксация агрессивных собак:
На шею одевают веревочную петлю-удавку, с помощью которой притягивают к решетке клетки, в это
время ассистент берет собаку за хвост и тянет в противоположную натяжению веревки сторону. Теперь
голова и задняя часть тела собаки зафиксированы и можно спокойно одеть стягивающую петлю на
морду.
Также возможна фиксация с помощью специальной петли-удавки на жесткой палке. Нужно накинуть
петлю на голову животного и, затянув петлю, прижать всем весом палку к полу. В это время другой
человек может завязать морду собаке.
Фиксация кошек
Процедуры с беспокойными и агрессивными животными проводить в отсутствие владельцев.
Необходимое оборудование:
намордник или воротник для кошки
Подготовка животного:
Наиболее удобный способ фиксации неагрессивных кошек заключается в том, чтобы правой рукой
схватить ее за загривок, крепко и уверенно собрав кожу как можно ближе к затылку между ушами.
Левой ладонью захватить обе передние лапы в "замок" (указательный палец просунуть между
передними лапами в области между запястьем и локтевым суставом). Левым же локтем прижать тело
кошки к себе (или столу).
Еще один способ заключается в том, чтобы одной рукой взять кошку за загривок, а второй за задние
ноги (в "замок"), растягивая кошку между руками так, чтобы у нее не было возможности ударить вас
передними лапами. Такой способ фиксации возможен и в воздухе и на столе. Если кошка зафиксирована
на столе, то можно позволить кошке ухватиться передними лапами за край стола – так она
дополнительно себя зафиксирует.
На агрессивных кошек нужно одеть намордник.
Агрессивных кошек лучше фиксировать вдвоем. Один человек плотно держит кошку за шкуру возле
затылка и переднее лапы, прижимая животное к столу. Второй (это может быть предварительно
проинструктированный владелец) одной рукой держит задние лапы, другой плотно прижимает таз
кошки к столу. Животное располагается на боку.
Лучший способ фиксации агрессивных кошек – фиксация в специальной сумке. Животное сажается в
сумку, горловина сумки застегивается липучкой вокруг шеи (не допускать механической асфиксии!),
молния сверху максимально ограничивает подвижность животного. Для проведения манипуляций
доступны: голова, холка, задние и передние конечности ( схема, фото).
Нюансы:
 Прежде чем достать кошку из переноски, необходимо убедиться в том, что все двери и форточки
закрыты!
 При невозможности выполнения каких-либо манипуляций из-за чрезмерной агрессивности
животного или при необходимости выполнить сложную болезненную процедуру целесообразней
сначала ввести кошке седативное средство.
 При фиксации задних лап кошек следует соблюдать осторожность и не сдавливать лапы,
особенно задние, выше скакательных суставов, чрезмерно, т.к в этом случае возможно
11
12
нарушение малоберцового нерва, что приводит к постоянному стопохождению (животное
опирается на всю стопу задней конечности, а не на пальцы).
Дача таблеток или жидкого лекарства.
Необходимое оборудование:
шприц с лекарством
таблетка
пинцет или болюсодаватель
Этапы проведения:
1. Зафиксировать животное в сидячем положении.
2. Одной рукой приоткрыть рот, надавив на брылю, второй положить таблетку на корень языка. Если
животное агрессивное, то можно использовать болюсодаватель.
3. Закрыть пасть и, придерживая ее в положении "морда вверх", погладить по горлу для того, чтобы
спровоцировать глотательный рефлекс. Можно влить в ротовую полость немного воды из шприца без
иглы, чтобы спровоцировать глотательный рефлекс.
4. Отпустить животное, проверить, что после обретения свободы таблетка не была выплюнута.
4*. Если необходимо дать жидкое лекарство, то шприц без иглы вставляется в угол рта и потихоньку
задается раствор. Морду придерживать, не давая опустить голову, выпаивать медленно, давая время
спокойно сглотнуть.
Кошке: жидкое лекарство можно выпаивать, взяв за шкуру на загривке (как можно ближе к ушам) и,
запрокинув ей голову назад (так, чтобы открылся рот), потихоньку лить раствор ей на верхнее небо,
следя за тем, чтобы животное успевало сглатывать.
Нюансы:
Техника выпаивания котят/щенят:
Зафиксировать в удобном положении, но не на спине (большая опасность аспирации), выпаивать смесь
медленно, внимательно следя за тем, чтобы смесь не поступала быстрее, чем котенок/щенок может
проглотить. Также важный момент – комфортная температура смеси – она не должна быть слишком
горячей или холодной!
Способы дозирования таблетированных и капсулированных препаратов.
Если животному необходимо дать дозу препарата, составляющую менее 1/8 таблетки, то можно
прибегнуть к следующим способам.
-Растолочь таблетку в порошок, разместить порошок на ровной поверхности, возможно ровным слоем.
Лезвием скальпеля поделить на части, соответствующие дозе. Дать животному растворив в воде или
спрятав в еду. Оставшиеся дозы порошка упаковать в бумажные конвертики и подробно подписать
название препарата, дозу и дату. Помните: нельзя давать животному в пасть сухой порошковый
препарат! Это может привести к механической асфиксии.
-растворить препарат в воде, отмерить объем раствора, содержащий необходимую дозу препарата. Дать
животному. Разведенный препарат не хранится.
Наиболее частые ошибки:
Выпаивать лекарство, сидя перед животным: нет возможности адекватно контролировать животное и
его положение головы.
Недостаточно глубокое закладывание таблетки на корень языка.
Возможные осложнения:
Возможна механическая асфиксия
Примечания:
Ни в коем случае не давать подобным способом порошки, например растолченные таблетки.
12
13
Катетеризация мочевого пузыря
Краткое описание, цель:
Введение катетера в мочевой пузырь. Производится для выведения из пузыря мочи в диагностических
или лечебных целях, промывания мочевого пузыря или введения в него лекарственных препаратов.
КОБЕЛЮ:
Необходимое оборудование:
Лоток:
 мочевой катетер (или стерильная капельная система)
 перчатки
 мазь Левомеколь
 Лидокаин-спрей
 р-р Хлоргексидина 0,05% 20 мл в шприце без иглы
 емкость для мочи
 зажигалка
 ножницы, если животное длинношерстное
Подготовка животного:
Зафиксировать животное в боковом лежачем положении животом к себе.
Этапы проведения:
1. Надеть перчатки.
2. Подготовить мочевой катетер: вскрыть упаковку.
Или извлечь капельную систему из упаковки, отрезать "резервуар" по косой линии, слегка оплавить
края (для их скругления – чтобы не травмировать мочевыводяшие пути) зажигалкой.
3. Отмерить длину от уретры до мочевого пузыря – для того, чтобы не ввести катетер глубже
необходимого (чтобы он сворачивался в мочевом пузыре).
4. Отодвинуть препуций к основанию члена (если животное длинношерстное, то подстричь волосы в
области 3-5 см вокруг).
5. Обмыть член раствором Хлоргексидина, предварительно подставив емкость для сбора мочи.
6. Нанести лидокаин-спрей на область уретры, а левомеколь на катетер.
7. Фиксируя половой член одной рукой, второй рукой ввести мочевой катетер в уретру и продвинуть до
мочевого пузыря. Моча, вытекающая из катетера, подтверждает правильное размещение.
8. Слить мочу, расправить препуций.
9. Вылить мочу из лотка, сполоснуть его и снова подставить под катетер.
СУКЕ:
Возможно два способа: первый – под контролем пальца, второй – визуальный при помощи
зеркала.
Необходимое оборудование:
Лоток:
 мочевой катетер
 перчатки
 мазь Левомеколь
 Р-р Лидокаина (не более 4 мг/кг) в шприце без иглы
 р-р Хлоргексидина 0,05% 20 мл в шприце без иглы
 влагалищное зеркало или риноскоп, и осветитель,
 шприц с физ. р-ром, если катетер Фолея
13
14
 емкость для мочи
Подготовка животного:
Зафиксировать животное в боковом лежачем положении животом. Также можно использовать
фиксацию в лежачем положении на животе, с тазовыми конечностями на краю стола.
Этапы проведения:
1. Надеть перчатки.
2. Подготовить мочевой катетер: вскрыть упаковку.
3. Отмерить длину от уретры до мочевого пузыря – для того, чтобы не ввести катетер глубже
необходимого (чтобы он не сворачивался в мочевом пузыре).
4. Если животное длинношерстное, то подстричь волосы в области 3-5 см вокруг петли.
5. Обмыть вульву раствором Хлоргексидина, предварительно подставив емкость для сбора мочи.
6. Смазать шприц с лидокаином левомеколем, ввести во влагалище и оросить преддверие р-ром
Лидокаина.
7. Ввести палец во влагалище (предварительно смазав палец мазью) и, на вентральной стенке, нащупать
отверстие уретры.
8. Контролируя пальцем путь катетера, ввести его в мочевой пузырь. Моча, вытекающая из катетера,
подтверждает правильное размещение.
8. Слить мочу, вылить мочу из лотка, сполоснуть его и снова подставить под катетер.
9*. Если животное небольшое, то для визуализации отверстия уретры можно использовать влагалищное
зеркало и осветитель.
10*. Влагалищное зеркало подогретое до температуры тела и смазанное вазелином или мазью
«Левовеколь» в сомкнутом положении вводится во влагалище на всю глубину дорсо-краниально, далее
влагалищное зеркало опускается параллельно позвоночнику, открывается и плавно сдвигается наружу
до визуализации входа в уретру.
КОТУ:
Необходимое оборудование:
Лоток:
 мочевой катетер
 перчатки
 мазь Левомеколь
 Лидокаин-спрей
 р-р Хлоргексидина 0,05% 10 мл в шприце без иглы
емкость для мочи
ножницы, если животное длинношерстное
Подготовка животного:
Зафиксировать животное в боковом лежачем положении животом к себе.
Этапы проведения:
1. Надеть перчатки.
2. Подготовить мочевой катетер: вскрыть упаковку.
3. Отмерить длину от уретры до мочевого пузыря – для того, чтобы не ввести катетер глубже
необходимого (чтобы он не сворачивался в мочевом пузыре).
4. Надавив пальцем на препуций каудодорсально оголить половой член (если животное
длинношерстное, то подстричь волосы в области 3-5 см вокруг).
5. Обмыть член раствором Хлоргексидина, предварительно подставив емкость для сбора мочи.
6. Половой член следует направить каудально для выпрямления S-образного изгиба уретры. А тазовые
конечности животного привести к животу.
7. Нанести лидокаин-спрей на область уретры, а левомеколь на катетер.
8. Фиксируя половой член одной рукой, второй рукой ввести мочевой катетер в уретру и продвинуть до
мочевого пузыря. Моча, вытекающая из катетера, подтверждает правильное размещение. 9. Слить мочу,
расправить препуций.
10. Вылить мочу из лотка, сполоснуть его и снова подставить под катетер.
14
15
11. Если требуется оставить катетер в мочевом пузыре на некоторое время, то катетер необходимо
подшить двумя стежками, предварительно седировав кота (или сделав местную анестезию).
КОШКЕ:
Катетеризация возможна под контролем зеркала.
Необходимое оборудование:
Лоток:
 мочевой катетер
 перчатки
 мазь Левомеколь
 Р-р Лидокаина (не более 4 мг/кг) в шприце без иглы
 р-р Хлоргексидина 0,05% 10 мл в шприце без иглы
 влагалищное зеркало или риноскоп и осветитель
 шприц с физ. р-ром, если катетер Фолея
 емкость для мочи
 ножницы, если животное длинношерстное
Подготовка животного:
Зафиксировать животное в боковом лежачем положении животом. Также можно использовать
фиксацию в лежачем положении на животе, с тазовыми конечностями на краю стола.
Этапы проведения:
1. Надеть перчатки.
2. Подготовить мочевой катетер: вскрыть упаковку.
3. Отмерить длину от уретры до мочевого пузыря – для того, чтобы не ввести катетер глубже
необходимого (чтобы он не сворачивался в мочевом пузыре).
4. Если животное длинношерстное, то подстричь волосы в области 3-5 см вокруг петли.
5. Обмыть петлю раствором Хлоргексидина, предварительно подставив емкость для сбора мочи.
6. Смазать шприц с лидокаином Левомеколью, ввести во влагалище и оросить преддверие р-ром
Лидокаина.
7. Влагалищное зеркало подогретое до температуры тела и смазанное вазелином или мазью
«Левовеколь» в сомкнутом положении вводится во влагалище на всю глубину дорсо-краниально, далее
влагалищное зеркало опускается параллельно позвоночнику, открывается и плавно сдвигается наружу
до визуализации входа в уретру.
8. Ввести катетер в мочевой пузырь.
9. Слить мочу, вылить мочу из лотка, сполоснуть его и снова подставить под катетер.
Нюансы:
При введении необходимо следить, чтобы свободная на данный момент, часть катетера не
контактировала с шерстью животного, со столом и пр.
Перед установкой катетера необходимо оценить длину и диаметр мочевыводящего канала.
В случае необходимости сколько-либо долгого нахождения катетера в уретре необходимо пометить
катетер пластырем сразу же как только появилась моча, чтобы избежать чрезмерного введения катетера.
Если при постановке катетера кошке или суке, по ходу введения катетера встречается какое-либо
сопротивление, то необходимо извлечь катетер в преддверие, и, нащупав отверстие уретры, повторить
введение.
Перед постановкой катетера Фолея следует проверить его герметичность.
Для облегчения введения катетра, особенно котам, возможно введение через катетер вазелинового масла
по ходу продвижения катетера.
15
16
Наиболее частые ошибки:
Введение чрезмерно длинного катетера может спровоцировать его сворачивание (вплоть до завязывания
в узел) в мочевом пузыре.
Возможные осложнения:
1. Цистит, уретрит
2. Повреждения уретры при грубом введении
Примечания:
При введении катетера ни в коем случае нельзя использовать силу для его проталкивания. Если не идет
– значит вынуть и начать сначала. Не давить!
Взятие анализов мочи
Краткое описание, цель:
Диагностический забор мочи необходим для уточнения предварительного диагноза и/или более точной
оценки состояния больного.
Наиболее информативен анализ мочи полученный по средствам цистоцентеза.
Необходимое оборудование:
Лоток для мочи (лучше, если это будет сразу резервуар, в котором моча будет сдаваться на анализ)
Перчатки
Этапы проведения (почему так и почему именно в таком порядке):
1. Надеть перчатки
2.
 Собаки: выйти на прогулку с собакой и, дождавшись, когда она начнет писать, собрать порцию
мочи (предпочтительнее в середине акта мочеиспускания)
 Кошки: Если мочевой пузырь полный, то мочу можно взять зафиксировав животное и надавив
пальцами через брюшную стенку на мочевой пузырь.
Нюансы.
1. Для анализа необходимо не менее 5-10 мл мочи, но лучше 20 -100 мл, так как в небольшое количество
мочи могут не попасть диагностически важные клеточные элементы.
2. Лучшее время для сбора мочи – утро. Это исключает суточные колебания показателей и более
объективно характеризует исследуемые параметры.
3. Мочу необходимо доставить в лабораторию сразу после взятия. Если это невозможно – необходимо
поместить мочу в холодильник, но не дольше, чем на 4 часа. При длительном хранении мочи на свету и
в тепле происходит разрушение клеточных элементов, что приводит к получению ложноотрицательных
результатов.
Наиболее частые ошибки:
1. Нельзя брать мочу на анализ из катетера, который стоит дольше суток
2. Длительное хранение мочи
3. Сбор мочи в ненадлежащую емкость
Возможные осложнения:
При излишке сильном давлении рукой на мочевой пузырь, последний может лопнуть.
Примечания:
Моча должна быть собрана в пластиковый одноразовый контейнер для мочи с герметично
завинчивающейся крышкой. Лучше всего, чтобы контейнер был стерильный. Пробы мочи в случайно
приспособленной и плохо закрытой таре в процессе хранения могут подвергаться загрязнению, что
приводит к изменению физико-химических свойств мочи.
Цистоцентез
16
17
Краткое описание, цель:
Цистоцентез – забор мочи через брюшную стенку с помощью шприца. Необходим в случаях, когда
другие способы забора мочи нельзя использовать, а также когда нужно собрать мочу на бак. посев.
Необходимое оборудование:
Перчатки
Машинка для бритья
Спиртовой тампон
Стерильный шприц
Подготовка животного:
Как правило, анестезия не требуется, но не нужно пытаться провести данную манипуляцию без
анестезии с животными, склонными к сопротивлению.
Во время манипуляции животное может быть зафиксировано на спине или на боку.
Этапы проведения:
1. Надеть перчатки
2. Побрить кожу и убрать шерсть.
3. Протереть кожу спиртовым тампоном. Зафиксировать мочевой пузырь (но не сжимать) пальцами
сквозь брюшную стенку.
4. Иголкой 22 диаметра с прикрепленным шприцом войти через брюшную стенку под углом 45˚ в
мочевой пузырь. Вкол иглы проводится по белой линии в области лонного сращения в краниальном
направлении или со стороны промежности в краниальное направлении.
5. Набрать шприцом мочу и вынуть шприц.
6. Обработать место инъекции спиртовым тампоном.
Нюансы:
В случае если не удается пропальпировать мочевой пузырь выполнение данной процедуры возможно
только под контролем УЗИ.
Мочевой пузырь должен быть относительно наполнен для совершения данной манипуляции.
Наиболее частые ошибки:
Неправильный выбор места инъекции (схема!)
Возможные осложнения:
1. Местное воспаление
2. При излишке сильном давлении рукой на мочевой пузырь, последний может лопнуть.
Бритье животных для операций, УЗИ живота, ЭХО
Необходимое оборудование:
Машинка для бритья
Тазик для шерсти
Подготовка животного:
Специальной подготовки не требуется, зафиксировать животное в любом удобном положении и убрать
пеленку (если она есть).
Этапы проведения:
1. Включить машинку и побрить необходимые участки. Бритье следует проводить против шерсти.
Сбритую шерсть, по-возможности, прямо в процессе бритья, смахивать в приготовленный для этих
целей таз.
2. При повреждении кожи обработать ранку спиртовым тампоном
3. Сразу же убрать шерсть, почистить лезвие машинки щеткой и смазать, поместить машину на
отведенное ей место (не класть на стол, во избежание ее падения и выхода из стоя). Если шерсть
животного очень грязная, в крови или др. биологических загрязнениях, лезвие машинки необходимо
перед смазыванием промыть в промывочной жидкости.
17
18
Нюансы:
Кошка на стерилизацию: 1 см выше пупка- до лонного сращения, 1 см шире сосков
Кобель кастрация: мошонка, 6 см краниальнее мошонки.
ОМЖ: 10-15 см в сторону от удаляемой гряды в зависимости от размеров животного
5 см от оставляемой гряды, вокруг локтя и подмышкой, 10 см краниальнее 1 го соска, с каудальной
стороны всю вульву
Все остальные операции не менее 6 см от линии предполагаемого разреза.
УЗИ живота, ЭХО:
Не знаешь, как брить, брей шире. 
Наиболее частые ошибки:
Слишком маленький выбритый участок.
Повреждения кожи при неосторожном проведении манипуляции
При бритье на пеленке вся шерсть прилепает к пеленке
Несоблюдение санитарных и эстетических требований при выполнении процедуры. (стол и пол в
шерсти)
Повреждение машинки, несвоевременная чистка и смазывание лезвий машинки
Неровные края выбритого поля
Возможные осложнения:
Местное воспаление
Установка капельницы
Необходимое оборудование:
Стерильная капельная система
Раствор для инфузии
Марлевая салфетка
Раствор гепарина в шприце
Бинт
Подготовка животного:
Придать животному физиологическое положение, по возможности, успокоить. Проследить за тем,
чтобы лапа, в которой стоит катетер была не поджата (не пережата вена).
Этапы проведения:
1. Рассчитать необходимую скорость инфузии.
2. Подготовить капельницу:
 открыть упаковку
 извлечь систему, установить фиксатор в удобное положение
 воткнуть приемник системы в крышку раствора для инъекций, нажать несколько раз на него,
чтобы заполнить его раствором. Слить небольшое количество жидкости, чтобы в системе не
осталось пузырьков, и закрутить стопор
3. Подложить салфетку под катетер, открутить крышечку катетера
4. Снять иглу с капельной системы и присоединить капельницу к катетеру.
5. С помощью колесика выставить желаемую скорость инфузии (скорость инфузии надо регулярно
проверять, т.к. она очень зависит от положения тела животного).
6. Прокапав нужное количество раствора, перекрыть капельницу.
18
19
Если капается только часть флакона необходимо сразу отметить маркером до какого уровня
необходимо прокапать.
7. Вынуть капельницу и ввести гепарин в катетер.
8. Закрыть крышечку катетера, достать салфетку и забинтовать катетер, чтобы предотвратить его
повреждение.
Нюансы:
Нельзя капать холодные растворы.
Если при присоединении капельной системы, с соблюдением всех условий, раствор не поступает в вену,
то следует пережать (перегнуть) систему недалеко от катетера и несколько раз интенсивно нажать на
резиновый переходник, соединяющий наконечник системы с катетером, или следует присоединить к
катетеру шприц с физиологическим р-ром и, приложив усилие, протолкнуть образовавшуюся в катетере
фибриновую пробку в кровоток. Если во время выполнения данной манипуляции животное проявляет
сильное беспокойство или на лапе возле катетера появляется отек, следует прекратить инфузию,
проверить катетер шприцем с физ. р-ром еще раз и, убедившись, что он не исправен, переставить его в
другую вену.
Наиболее частые ошибки:
Неправильный расчет скорости инфузии
Невнимание к пациенту и, вследствие этого слишком быстрая/медленная скорость инфузии.
Примечания :
При перерасчете доз и скорости инфузии внимательно оцените результат расчетов, при сомнениях
перепроверьте результат или проконсультируйтесь у вашего куратора или врача. Помните,
незначительная, на первый взгляд, ошибка в расчетах может стоить жизни животному!
Скорость инфузии:
В 1 мл жидкости – 20 капель (значение используется только для приблизительных расчетов!)
 Следует помнить что, при в/в введении многие препараты требуют разведения их в шприце
физиологическим раствором/ раствором Рингера, для некоторых препаратов такое разведение
является обязательным и страхует от побочных эффектов. Никогда не вводите препараты в/в
быстро, кроме конкретных случаев, специально оговариваемых врачом! Шприц с препаратом
объемом 10 мл должен вводится не быстрее 3-5 минут. Перед началом манипуляций с
препаратами оцените шприц, в который вы взяли, достаточного ли он объема для разведения
препарата.
Правила замены шприцов в инфузоматах.
Поднять дужку, держащую поршень шприца, отодвинуть держатель. Поднять дужку, прижимающую
шприц. Вынуть шприц из инфузомата. Зажать систему или удлинитель, идущий к шприцу, зажимом или
перегнуть его и прочно зафиксировать пальцами. Это необходимо для того, чтобы избежать попадания
воздуха в систему и в дальнейшем – в кровоток животного. Заменить шприцы, следя, чтобы в систему
не попадал воздух, избегая контакта пальцев и др. предметов с местом соединения шприца и системы.
Положить шприц в инфузомат. Выставить необходимую скорость.
Выставление скорости капельной инфузии с помощью барабанчика на системе.
Основным принципом расчета скорости инфузии при использовании системы с барабанчиком является
визуальная оценка скорости падения капель в системе относительно времени в секундах. Оценка этой
скорости носит субъективный характер, требует опыта и знания способов расчета скорости инфузии (см
ниже). На системе располагается барабанчик, прокручивание которого вверх увеличивает скорость
инфузии, вниз- уменьшает.
19
20
во
разбавлят
способ
флаконе
разведение ь перед
введения
/ампуле
введением
препарат
тип действия
цефазолин
антибиотик
1г
в/м, в/в
в 5 мл(в/м)
в 10 мл (в/в)
обязатель вводить медленно,
но в 5-10 возможна рвота при
раз
быстром введении
цефтриаксон
антибиотик
1г
в/м, в/в
в 5 мл(в/м)
в 10 мл (в/в)
обязатель вводить медленно,
но в 5-10 возможна рвота при
раз
быстром введении
кефотекс
(цефотаксим)
антибиотик
1г
в/м, в/в
в 5 мл(в/м)
в 10 мл (в/в)
обязатель вводить медленно,
но в 5-10 возможна рвота при
раз
быстром введении
квамател (фамотидин)
гастропротектор
20мг
в/в
в 4 мл
в 2-4 раза
контрикал (апротинин)
ингибитор протеаз
10000
АТпЕд
в/в
в 2 мл
в 2-4 раза
метипред
(метилпреднизолон)
глюкокортикостероид,
250 мг
в/в
в 5 мл
цианокобаламин
витамин В12
250мг,
500мг
в/в, п/к
аскорбиновая кислота
витамин С
5%, 10%
в/в
но-шпа
спазмолитик
2мл
в/м, в/в
дицинон
гемостатический
2мл
в/в, в/м
этамзилат
гемостатический
2мл
в/в
Актрапид, протофан
инсулин
1000 Ед
в/в, п/к
примечания
капать медленно,
обязатель
добавив в 80-200 мл
но
физ. р-ра
обязатель
но в 5-10
раз
в 2-4 раза
в/в под
наблюдением
врача, очень
медленно, в
большом
разведении
нельзя смешивать в
шприце с др.
препаратами
в 10 мл
тщательно отмерять
дозировку!
Примеры типовых расчетов, которые ассистент должен легко уметь делать при первой
необходимости.
 Задача: сделать животному 2 Ед актрапида п/к. Алгоритм действий.
Решение: набрать из флакона 0,1 мл р-ра, довести в шприце физ. р-м до 1 мл. Слить 0,8 мл. Сделать
оставшиеся 0,2 мл животному.

Задача: животное весит 7 кг, нужно сделать цефазолин в/в в дозировке 16 мг/кг. Алгоритм
действий.
Решение: на данное животное нужно 7*16=112мг, во флаконе 1г (1000мг) сухого препарата. Добавить
во флакон 10 мл физ. р-ра, тщательно перемешать. Взять из флакона 1,1 мл раствора, в этот же шприц
набрать физ. р-ра до 10 мл. Медленно ввести.
 Задача: сделать в/в 5 мг кваматела. Алгоритм действий.
Решение: во флаконе 20 мг сухого препарата. во флакон с препаратом ввести 4 мл физ. р-ра, тщательно
перемешать. Набрать из флакона 1 мл р-ра, в этот же шприц набрать 4 мл физ. р-ра. Перемешать.
Медленно ввести.

Задача: требуется прокапать 360 мл р-ра за 1,5 часа. Сколько капель в секунду требуется
поставить?
Решение: в 1 мл р-ра 20 кап, в 360 мл р-ра 360*20=7200кап, в 1,5 часах 1,5*60=90мин 90*60=5400сек,
в 1 сек 7200/5400= 1,3 кап, отмерить 1,3 капли в сек на глаз точно невозможно, следует оринтироваться
на скорость 1 кап/сек, либо чуть быстрее, но при этом медленнее, чем 2 кап/сек
20
21

Задача(обратная предыдущей): Рассчитать время инфузии, с точностью до 10 минут, 500мл
раствора, при скорости 2 капли в секунду.
Решение: в 1 мл раствора 20 капель, в 500 мл р-ра – 20*500=10000капель.
При скорости 2 капли с секунду время составит 10000/2=5000сек или 5000/60=83,3мин или ок 1 час 20
мин.
 Задача: требуется приготовить 200мл 20% р-ра глюкозы, из 5% и 40% р-ов глюкозы.
Решение: данная задача решается методом конверта Пирсона («правило креста») терзают меня смутные
сомнения, что все выпускники ветвузов в совершенстве владеют данным методом. Можно расширить
описание самого метода, но надо ли…
40%
15 (частей)
20
5%
200мл- 35 частей ,
? мл - 15 частей
20 (частей)
15 частей=(15*200)/35=85,7мл
20 частей= 200мл-85,7мл=114,3мл
Итого: 40% глюкозы - 85,7 мл, 5% глюкозы - 114,3 мл
 Задача: сколько мг в 3 мл 5%-го раствора?
Решение: в 100мл р-ра 5 г вещества, 5г-5000мг, т.е в 100мл р-ра 5000мг в-ва, в 1 мл – 5000/100=50мг вва, в 3мл – 50*3=150мг в-ва. Задачи этого типа встречаются очень часто, для упрощения работы можно
запомнить, что количество мг в 1 мл Х%-го р-ра = Х*10. Т.е в 1 мл 3%го р-ра – 30мг, в 1 мл 10%го р-ра
100мг и т.д.

Задача: Масса животного 9 кг. Какой объем 4% р-ра допамина должно содержаться в шприце с
физ. р-м, объемом 20 мл, чтобы при скорости инфузии 10мл/час животное получало 10
мкг/кг/мин допамина.
Решение: В 1 мл 4%го р-ра допамина содержится 40мг или 40000мкг допамина, в минуту на данное
животное требуется 90 мкг, т.е 0,0225 мл. В час на данное животное требуется 60*0,0225=1,35мл.
Скорость инфузии 10 мл/час, соответственно в 10 мл физ. р-ра должно содержаться 1,35мл допамина.
Итого: набрать в шприц 2,7 мл допамина, довести физ. р-м до 20 мл, поставить в инцузомат со
скоростью 10мл/час.
Подкожная инфузия
Краткое описание, цель:
Введение животному растворов подкожно. Лекарственные вещества и растворы всасываются
медленнее, чем при в/в введении. Назначаются при в качестве поддерживающей терапии при
удовлетворительном состоянии животного или при невозможности провести в/в инфузию.
Необходимое оборудование:
Стерильная капельная система
Раствор для инфузии
Этапы проведения:
1. Зафиксировать животное в удобном положении.
2. Подготовить капельницу:
 открыть упаковку;
 извлечь систему, установить фиксатор в удобное положение;
21

22
воткнуть приемник системы в крышку раствора для инъекций, слить небольшое
количество жидкости, чтобы в системе не осталось пузырьков, и закрутить стопор;
 убедиться, что игла плотно надета на систему.
3. Собрать рукой шкуру животного в районе холки в складку треугольной формы.
4. Снять иглу с капельной системы и ввести в основание треугольной складки шкуры.
5. С помощью колесика выставить желаемую скорость инфузии (при подкожной инфузии
допустима максимальная скорость введения, т.к раствор всасывается медленно, а животное при
проведении манипуляции может беспокоиться).
6. Прокапав нужное количество раствора, перекрыть капельницу.
7. Вынуть иглу, прижав место вкола пальцами, чтобы избежать вытекания раствора.
Нюансы:
Нельзя капать холодные растворы.
Вводить растворы лучше всего в область холки, коленной складки.
Если раствор поступает медленно или не поступает совсем, следует придерживать собранную складку
на холке над местом введения в течение всего времени инфузии.
Большие объемы раствора необходимо вводить в несколько мест на теле животного.
Наиболее частые ошибки:
Введение иглы внутрикожно, раствор не поступает.
Прокол иглой кожной складки насквозь, раствор поступает во внешнюю среду. Такая ошибка
встречается при работе с маленькими тонкокожими животными или с очень пушистыми животными.
Возможные осложнения:
Абсцесс в месте введения, обламывание иглы
Проведение подкожных инфузий пациентам, находящимся в глубоком шоке, нецелесообразно,
всасывания растворов практически не происходит.
Уход за тяжелобольным пациентом: туалет ротовой полости, уход за трахеостомой,
эзофагостомой, профилактика пролежней, профилактика ангиогенных инфекций (уход за ЦВК,
в/в катетером), уход при ИВЛ
Туалет ротовой полости: тяжелобольным животным необходимо 2 раза в день протирать ротовую
полость при помощи салфетки, смоченной теплым физиологическим раствором.
Уход за трахеостомой: Трахеостома - это искусственно сформированный свищ трахеи, выведенный в
наружную область шеи, для дыхания, минуя носоглотку. Чтобы избежать раздражения кожи на шее,
вокруг трубки на кожу накладывают стерильные салфетки, разрезанные до середины Y-образным
разрезом.
Этапы ухода за трахеостомой:
 извлечение трахеостомической канюли из трахеостомы - для этого развязывают фиксирующие
завязки, сдувают шприцем манжетку и извлекают канюлю;
 очищение внутреннего прохода канюли от слизи и корок с помощью марлевого тампона и
кипяченой воды. Такую манипуляцию повторяют 1 раз в сутки после извлечения трубки из
трахеи;
 введение канюли в трахеостому после того, как канюля была очищена, фиксация канюли на шее
животного при помощи бинта или пластыря
Данную процедуру необходимо повторять не менее раза в сутки, а иногда, если животное плохо дышит,
и несколько раз в день. Следует помнить, что несоблюдение этого правила может привести к асфиксии.
Засохшая мокрота при сильном кашлевом толчке может оторваться от стенок канюли и проскочить в
трахею и бронхи, вызвав закупорку дыхательных путей.
Этапы ухода за кожей вокруг трахеостомы:
 очистить кожу вокруг трахеостомы с помощью салфеток, смоченных физиологическим
раствором или 3% перекисью водорода. Можно также использовать слабо-розовый раствор
марганцевокислого калия; тщательно удалить все загрязнения и корочки.
 подсушить кожу с помощью салфеток;
22
23
Никогда не извлекайте канюлю не сдув манжету!
Профилактика пролежней
Пролежни возникают в результете длительного давления на одно и то же место на теле животного. В
результате пережатия кровеносных сосудов нарушается кровоснабжение кожи и подлежащих
тканей, вследствие чего начинаются дегенеративные изменения, вплоть до некроза. Пролежни
возникают в местах над костными выступами: область маклока, лопатки, локтя, боковой
поверхности черепа, коленных суставов и пр.
Способы профилактики:
Необходимо каждые 4 часа (в том числе и ночью) переворачивать животное на другой бок, либо
менять положение частей тела, стараясь, чтобы кожа испытывала минимальное трение.
Подкладывать под места костных выступов валики или мягкие прокладки. Тщательно осматривать
животное 2 раза в день. Не выдергивайте мокрую простыню из-под животного, это может привести к
усилению повреждений кожи. Необходимо следить, чтобы в местах костных выступов не
образовывалось складок на подстилке, не находилось инородных предметов, кожа животного
должна быть сухой и чистой.
Уход за центральным и периферическим венозным катетером.
Один раз в день необходимо проверять состоятельность ЦВК, получая кровь аспирацией шприцем,
затем промывать ЦВК 1-5 мл раствора гепарина (1:1000), вводя его в катетер. После этого
необходимо снять фиксирующие катетер пластырь и бинт, обработать кожу вокруг катетера
тампоном, смоченным в спирте, убрать загрязнения и корочки салфеткой с перекисью водорода,
после чего закрепить катетер на шее животного, используя чистую марлевую салфетку, бинт и
лейкопластырь. Аналогично осуществляется уход за периферическим венозным катетером. Все
внутривенные доступы должны постоянно контролироваться, для обнаружения признаков флебита.
Во избежание воздушной эмболии постановка и удаление катетера необходимо производить в
положении животного с приподнятой, относительно уровня сердца нижней частью тела (тазовых
конечностей), нельзя оставлять катетер открытым, при использовании трехходовых краников
следите за их положением!
При пользовании катетером после процедуры необходимо введение «гепаринового замка»!
Вскрытие абсцесса подкожной клетчатки
Краткое описание, цель:
Абсцесс или гнойник - гнойное воспаление ткани с образованием ограниченного очага распада.
Гнойные абсцессы независимо от их локализации вскрывают и дренируют, как только устанавливается
наличие гноя. Применяют различные формы дренажа, но наименее болезненным и самым эффективным
является использование резиновой дренажной трубки.
Необходимое оборудование:
Лоток:
 лезвие для скальпеля
 спиртовые тампоны
 марлевая сафетка с перекисью водорода
 шприц 10-20 мл, в зависимости от размеров животного
23
24
 шприц 2-5 мл в зависимости от размеров животного
 р-р диоксидина 0,5%
 мазь «левомеколь»
Если планируется установка дренажа, то дополнительно:
 пинцет, корнцанг или хирургический зажим
 стерильная капельная система
 ножницы
 игла и шовный материал
Подготовка животного:
Специальной подготовки не требуется, беспокойным животным следует сделать седативные препараты.
Этапы проведения:
1. Зафиксировать животное удобном положении.
2. Удалить шерсть вокруг места локализации абсцесса
3. Обработать область абсцесса спиртовым тампоном
4. Пальпаторно и визуально определить локализацию абсцесса и направление разреза
5. Рассечь концом лезвия кожу над наиболее флуктуирующей частью абсцесса, аккуратно отдавить
содержимое
6. Обильно промыть полость абсцесса, вводя в отверстие шприц со снятой иглой, раствором диоксидина
7. Ввести в полость абсцесса мазь левомеколь
Установка дренажа:
5. Отрезать кусок трубки капельной системы, соответствующий длине будущего дренажа, сделать в нем
несколько отверстий, 1-3 мм в диаметре.
6. Лезвием скальпеля сделать 2 отверстия в тканях, расположенных в максимально удаленных друг от
друга частях абсцесса или в местах наибольшей флуктации. сначала делается одно отверстие, в которое
вводится зажим, который продвигается до другого края полости и натягивает кожу, второе отверстие
делается по введенному зажиму.
7. Зажимом захватывается заранее приготовленный кусок трубки системы и протягивается через оба
отверстия.
8. Обильно промыть полость абсцесса, вводя в отверстие шприц со снятой иглой, раствором диоксидина
9. Отрезок системы фиксируется подшиванием к коже.
10. Ввести в полость абсцесса мазь левомеколь
Нюансы:
Отверстие лучше делать таким образом и в таком направлении, чтобы отделяемое могло свободно
выделяться под действием силы тяжести в естественном положении животного. (при локализации
абсцесса на боку лучше сделать одно из отверстий внизу абсцесса, чтобы содержимое свободно
оттекало вниз при стоячем положении животного ). При подозрении на наличие «карманов» и
дополнительных полостей следует провести бужирование полости абсцесса.
Возможно применение местной анестезии по месту разреза.
Наиболее частые ошибки:
Недостаточно тщательное промывание абсцесса
Определение ВСК (время свертываемости крови)
Краткое описание, цель:
Примерная срочная оценка свертывающей способности крови
Необходимое оборудование:
Предметное стекло
Игла от шприца 2 шт
Грелка, температурой 37-39С
Спиртовые тампоны
Салфетки, смоченные перекисью водорода
24
25
Часы с секундной стрелкой или секундомер
Этапы проведения:
1. Зафиксировать животное в удобном для проведения манипуляции положении.
2. Положить предметное стекло на грелку
3. Стандартным способом получить из животного 1-2 капли периферической венозной крови на
предметное стекло
4. Засечь время
5. Каждые 30 сек проводить иглой от шприца по капле крови, при наличии тонких, тянущихся за
иглой нитей фибрина отметить время (начало), продолжать процесс до тех пор, пока кровь не
образует явный сгусток, отметить время образования сгустка
6. Записать оба значения времени в карту животного, отметив их как время начала свертывания и
время конца свертывания.
В норме эти значения должны быть время начала ок. 1,5 мин, конца – не более 7мин
Нюансы:
Следить, чтобы температура грелки была близка к физиологической.
Во многих случаях определение ВСК лучше выполнять в стеклянной пробирке, во избежание
высыхания крови.
Наиболее частые ошибки:
Неверная трактовка увиденных изменений крови. Ошибки с измерением времени.
Расчет общего объема инфузионной терапии (ООИТ), скорости инфузии растворов, перерасчет
весовых единиц в объемные
Введение инфузионных растворов проводится для того, чтобы:
-возместить потери воды тканями
- поддерживать нормальный водный баланс
- восстановить ОЦК (общий объем циркулирующей крови) и перфузию тканей
-увеличить или поддерживать на нормальном уровне коллоидно-осмотическое давление
- ввести необходимые электролиты или питательные вещества
- ввести необходимы препараты, нуждающиеся в большом разведении
поступление воды
потери воды
Питье
Пища
«Сгорание» в-в при
катаболизме
С мочой
С калом
Неощущаемые потери (через легкие,
испарение с кожи) – зависят от
интенсивности метаболизма
Степень дегидратации:
<5%
В анамнезе – потеря жидкости, но клинических симптомов потери нет
5%
Сухие слизистые, но нет тахикардии и одышки
7%
Легко или умеренно снижен тургор кожи, сухие слизистые, легкая тахикардия, характер
пульса не изменен
Заметно снижен тургор кожи, сухие слизистые, тахикардия, «запавшие» глаза,
нормальное пульсовое давление
10%
25
26
12%
> 12%
Очень выраженное снижение тургора кожи, сухие слизистые, запавшие глаза, возможно
развитие шока (в зависимости от скорости потерь)
То же, + ступор, шок
ОЦК в норме
- у кошки 65 мл/кг (6.5% от массы тела)
- у собаки 80 мл/кг (8% от массы тела)
Дефицит ОЦК = степень дегидратации х вес(кг) х ОЦК (мл/кг)
ООИТ- (общий объем инфузионной терапии) состоит из ПО (поддерживающего объема) и ДО
(дополнительного объема, )
ПО считают по формуле:
-30*вес (кг) +70 или
-1,2 (или1,3)*(70*вес(кг)*0,75)
Инфильтративная анестезия- разновидность местной анестезии.
Местная анестезия - искусственно вызванное обратимое устранение болевой чувствительности в
определённой части организма животного с сохранением сознания.
Механизмы действия местных анестетиков
Воздействуя на окончания чувствительных нервов и нервные волокна, анестетики препятствуют
генерации и проведению возбуждения. Считают, что они действуют на мембраны нервных волокон.
Блок проведения по нервным волокнам связан с тем, что анестетики снижают проницаемость их
мембраны для ионов натрия, т.е. они являются блокаторами натриевых каналов. Это препятствует
образованию потенциала действия и, следовательно, проведению импульса. Имеются данные о том, что
анестетики конкурируют с ионами кальция, участвующие в регуляции проницаемости мембраны
нервных волокон для ионов натрия. Высказывается также предположение, что снижение ионной
проницаемости мембраны аксона может быть связано с повышением анестетиками поверхностного
натяжения фосфолипидов, входящих в состав мембран. Это в свою очередь приводит к тому, что
ионные каналы закрываются.
Наиболее применение из препаратов для местной анестезии нашёл новокаин. Помимо местноанестезирующего действия, новокаин при всасывании и непосредственном введении в ток крови
оказывает общее влияние на организм: уменьшает образование ацетилхолина и понижает возбудимость
переферических холинореактивных систем, оказывает блокирующее влияние на вегетативные ганглии,
уменьшает спазмы гладкой мускулатуры, понижает возбудимость мышцы сердца и моторных зон коры
головного мозга.
В организме новокаин относительно быстро гидролизируется, образуя парааминобензойную кислоту и
диэтиламиноэтанол (ПАБК - ослабляет действие сульфаниламидов вступая в конкурентные отношения,
ДЭАЭ - обладает умеренным сосудорасширяющим действием).
Применение и концентрация раствора:
– для инфильтрационной анестезии - 0,25% - 0,5% р-ры
– по методу А.В.Вишневского
(метод тугого ползучего инфильтрата) - 0,125%-0,25% р-ры
Инфильтрация:
26
27
Анатомически метод основан на особенностях строения фасциальных образований. Раствор
анестезирующего вещества, вводимый под давлением в эти футляры, распространяется в них и
проникает к нервам и нервным окончаниям. Тугие новокаиновые инфильтрации продвигаются (ползут)
по футлярам и сливаются между собой. А.А. Вишневский назвал свой способ анестезии методом
ползучего инфильтрата.
Обезболивание проводит хирург в процессе операции, пользуясь попеременно шприцем и скальпелем
по мере рассечения слоя тканей.
Инфильтрацию тканей нужно осуществлять до вскрытия футляра, так как при рассечении или
случайном повреждении последнего раствор анестезирующего вещества будет выливаться в рану и
создавать плотный ползучий инфильтрат будет невозможно. Следовательно, достаточного
обезболивающего эффекта достичь в этих условиях не удаётся. Тугая инфильтрация тканей
обезболивающим раствором осуществляет гидравлическую препаровку тканей, в инфильтрате легко
определяются сосуды, нервы, что позволяет избежать их повреждения, легко произвести остановку
кровотечения. Для инфильтрационной анестезии используют 0,25% раствор новокаина с добавлением
адреналина (3 капли раствор адреналина 1:1000 на 100 мл раствора новокаина). Для футлярной
анестезии расходуется большое количество раствора (до 800 и даже 1000 мл), но благодаря низкой
концентрации анестетика и вытеканию в рану раствора при вскрытии футляров по ходу операции
интоксикации не наступает.
Для проведения анестезии пользуются двумя шприцами (2- и 5- миллилитровые или 5- и 10миллилитровые).
1. Для обезболивания кожи анестезирующий раствор вводят тонкой иглой внутрикожно, создавая
желвак в виде «лимонной корочки» по ходу всей линии разреза кожи. Каждый укол делают у края
желвака, образованного предыдущим уколом.
2. Через инфильтрированную кожу вводят новокаин в подкожную клетчатку. Достаточная
инфильтрация подкожной клетчатки определяется приподниманием в виде валика всей области разреза.
3. После рассечения кожи, подкожной клетчатки обезболивающий раствор вводят в глуболежащие
ткани, инфильтрируя мышцы, и затем - под мышцы в направлениях кверху, книзу и в стороны.
При рассечении мышц производят дополнительную инфильтрацию обезболивающим раствором тканей.
Кислородотерапия, работа с кислородным баллоном
Оксигенотерапия (кислородная терапия) - это введение кислорода в организм животного с лечебной
целью.
Показания:
-одышка любой этиологии,
-отёке легких,
-шоковые состояния,
-состояния, связанные с анемией,
-тепловые удараы и др.
При данных патологиях нарушается доставка кислорода к тканям, а оксигенотерапия позволяет создать
насыщенную кислородную среду и предотвратить состояние гипоксии.
Наиболее простым способом оксигенотерагош является ингаляционный способ через подушку. Для
наполнения подушки кислородом открывают кран, подсоединяют трубку подушки к редуктору.
Медленно открывают кран (вентиль) редуктора баллона, наполняют подушку, закрывают краны
редуктора и подушки. Конец трубки прикладывают к носу животного и открывают кран на трубке
подушки. Для меньшей потери кислорода можно сделать «палатку» из пеленки, в которой будет
повышенная концентрация кислорода. При этом способе оксигенотерапии происходит большая потеря
кислорода, трудно установить его концентрацию и равномерность поступления в дыхательные пути.
27
28
Кислородная палатка менее эффективна, чем кислородная маска. В условиях клиники допустимо
изготовления подобия кислородной маски, например, из пустого инфузионного пакета или
послеоперационного воротника .
Внимание!!! При нарушении правил обращения с баллоном, заполненным кислородом под давлением
150 ат, может произойти взрыв значительной разрушительной силы. Баллоны должны прикрепляться
хомутом или цепью к стене, колонне стойке и т. п. для устранения возможности падения. На территории
клиники баллоны нужно переносить на носилках или, лучше, перевозить на специальных тележках;
переносить баллоны на руках запрещается. Запрещается курить или использовать открытое пламя
вблизи кислородного баллона.
Оказание первой помощи владельцам (обмороки, укусы и пр)
Если вы знаете, что проводимая процедура может вызвать негативную реакцию у владельцев,
обязательно предупредите их об этом, некоторые люди сами примут решении выйти на время
проведения процедуры.
Если вы выполняете процедуру с животным , свободного человека нет в зоне видимости и владелец
явно чувствует себя плохо или падает в обморок, то первое, что вы должны сделать – закончить
процедуру, либо, прервать ее в безопасном для животного месте! Далее – снять животное со стола,
спрятать в переноску, дать в руки другому ассистенту, т.е избежать травмирования животного из-за
падения со стола! Если процедура длительная, животное агрессивно и пр. – позовите на помощь когонибудь из соседнего кабинета или коридора для оказания помощи владельцу.
Обморок: обычно кратковременная потеря сознания, вследствие нарушения кровоснабжения головного
мозга. Помощь: расположить человека на полу, так, чтобы ноги были немного выше уровня головы,
дать вдохнуть пары нашатырного спирта с ватного тампона(никогда не давайте нашатырный спирт
прямо из флакона, это может вызвать ожог дыхательных путей!). Если человек не приходит в себя в
течение 1-3 мин – срочно зовите врача!
Укусы: при любом укусе или ранении человека животным, даже минимальном, обязательно дайте
ватный тампон, смоченный спиртом, при явном кровотечении – салфетку с перекисью.
При подозрении на серьезное повреждение или по просьбе владельцев – позовите врача. Внимательно
оценивайте состояние владельца: при полуобморочном состоянии предложите принять сидячее
положение с наклоном корпуса на колени, нашатырный спирт, если ничего не помогло: см.п. Обморок
Техника безопасности при проведении химиотерепии, профилактика осложнений при
химиотерапии





Большинство препаратов, используемых в химиотерапии очень токсичны для персонала
(вдыхание аэрозоля, абсорбция через кожу, попадание в ЖКТ, случайная инъекция), при работе с
ними обязательно использование одноразовых перчаток, желательно – респираторов.
Недопустимо попадания препаратов на кожу как животному, так и человеку.
Недопустимо попадание препаратов подкожно, следует обратить особое внимание на
правильную постановку внутривенного катетера при проведении химиотерепии или проверке
уже стоящего катетера.
Животное должно быть голодным в течение 12ти часов, и.к многие из препаратов для
химиотерапии вызывают рвоту.
Препарат должен поступать со строго определенной скоростью, ошибиться можно только в
меньшую сторону.
28


29
Внимательно наблюдайте за пациентом, получающим химиотерапию, при признаках
беспокойства или ухудшения состояния прекратите подачу препарата и зовите врача.
Тщательно фиксируйте наконечник системы в катетере при помощи пластыря, чтобы избежать
его выпадения в процессе процедуры из-за движений животного.
Способы купирования гипогликемии:
Гипогликемия — патологическое состояние, возникающее при снижении уровня глюкозы в
периферической крови.
Клинические признаки:
-тахикардия, аритмия
-мышечная дрожь
-повышение артериального давления
-обморочное состояние
-неадекватное поведение, эпилептоморфные припадки, очаговые неврологические расстройства
Способы купирования:
 При первых признаках, если сохранен глотательный рефлекс и животное в сознании – р-р
глюкозы p.os 1-10 мл, в зависимости от размеров животного
 Если стоит венозный катетер – медленно струйно 0,5-10 мл 40% глюкозы, в зависимости от веса
животного.
Обязательно контроль глюкозы крови.
При обморочном состоянии животного, вызванном гипогликемией, отсутствии глотательного рефлекса
– срочное обеспечение доступа в вену.
Правила работы в регистратуре. Работа с компьютерной программой. Правила и регламент
общения с владельцами лично и по телефону. Работа с картотекой. Сбор первичной информации,
оформление амбулаторной карты.
Регистратура – место приема посетителей клиники. Для работы в регистратуре необходимо освоить
компьютерную программу Медиалог.
Задачи работника регистратуры:
1. Встреча посетителей, обеспечение решения вопросов с которыми посетитель обращается в клинику.
2. Поиск карты пациента, который находится на лечении в клинике либо заведение новой карты.
3. Осуществление принятия оплаты от пациентов, работа с кассовым аппаратом.
4. Ответ на телефонные звонки, общение с владельцами по телефону, либо обеспечение общения
пациентов с врачом приема (при необходимости).
5. Выдача лекарственных препаратов и расходных материалов сотрудникам клиники согласно бланкам
заказов.
6. Поддержание порядка в клинике в ночное время.
Правила работы регистратора:
1. Регистратор всегда должен быть приветливым, опрятно одетым и стараться решить все вопросы
обращающегося к нему посетителя клиники. При общении с владельцами животных необходимо
соблюдать общепринятые правила делового этикета, врачебного такта. Необходимо быть
терпеливым, внимательным и вежливым.
2. Регистратор отвечает за поиск/оформление новой амбулаторной карты пациента.
3. Регистратор отвечает за прием оплаты и выдачу сдачи посетителям клиники.
4. Регистратор осуществляет выдачу лекарственных препаратов и расходных материалов сотрудникам
клиники согласно бланкам заказов.
29
30
5. В ночное время регистратор отвечает на телефонные звонки, поступающие в клинику. При ответе
на звонок, регистратор обязан представиться. В нашей клинике это принято делать следующим
образом : «Клиника Белый Клык, здравствуйте,...(имя регистратора). Далее необходимо выслушать
звонящего и предпринять меры по решению возникших у него вопросов (проинформировать о
расписании интересующего врача, ответить на вопрос по животному (если это в Вашей
компетенции), записать звонок врачу или др.
6. До 2008 года карты в нашей клинике заводились в письменном виде. Старые карты хранятся в
картотеке в коридоре клинике согласно порядковым номерам.
7. При заведении новой карты пациента необходимо заполнить все основные графы, указанные в
программе. Не забывайте попросить владельца взвесить свое животное. После – вес записывается в
карту в соответствующую графу.
Поддержание порядка. Правила поведения в кабинетах 1 и 2.
Общие правила поддержания порядка и чистоты.
Помните! Любая процедура должна быть проведена эстетично, с соблюдением правил асептики,
антисептики!
Строго: перед началом любой манипуляции (установка катетера, взятие крови и пр.) следует убрать
сбритую шерсть! При попадании на стол любых биологических выделений (кровь, моча, кал и пр.)
необходимо убрать их так быстро, как позволяет ситуация, причем данная манипуляция в большинстве
случаев, является приоритетной!
Задачи ассистента врача:
1. Оказание своевременной квалифицированной помощи врачам на приеме. Уверенное владение
основными необходимыми манипуляциями.
2. Поддержание порядка на приемах 1 и 2.
Поддержание порядка в кабинетах:
1. Уборка стола после каждого принятого пациента принятым в клинике способом ( механическая
уборка мусора, шерсти и т.д, дезинфицирование спреем-дезинфектантом, протирание бумажным
полотенцем насухо).
2. Поддержание чистоты на манипуляционных столиках, на столе врача. Поддержание чистоты
стен, раковин, холодильников – всех поверхностей, имеющихся в кабинете.
3. Следить за наличием необходимых препаратов и расходных материалов (согласно спискам),
спиртовых тампонов, марлевых салфеток. При нехватке чего-либо – заказывать в регистратуре,
либо изготавливать самостоятельно (относится к спиртовым тампонам и марлевым салфеткам).
4. Следить за наличием набора инструментов в кабинетах 1, 2 согласно спискам. Инструменты
должны быть маркированы и находиться в емкостях с дезинфицирующим раствором.
5. Следить за чистотой пола в кабинетах приема и при необходимости самостоятельно мыть пол
шваброй, которая находится в специально отведенном месте.
6. Своевременно и качественно опорожнять красные тазики для мусора в приемных кабинетах, а
также заменять мусорные пакеты в металлических мусорных контейнерах.
7. При появлении в процессе приема/манипуляции на столе/полу какой-либо грязи (естественные
выделения, жидкости, шерстm и т.п.) необходимо сразу очистить загрязненную поверхность.
Помните! Владелец животного оценивает клинику не только по качеству работы врачей, но и по общему
виду клиники, состоянию кабинетов, чистоте полов в том числе. Будьте внимательны и аккуратны.
Правила работы в кабинете инфузионной терапии.
При работе в кабинете инфузионной терапии необходимо помнить, что в данном отделении содержатся
животные регулярно получающие капельные инфузии в дневное/ночное время и животные с
30
31
подозрением/установленным диагнозом вирусная инфекция. При работе с такими животными
необходимо соблюдать меры предосторожности! Во избежании самозаражения (если речь идет о
зооантропонозах), переноса инфекции неинфицированным животным, а также во избежании
контаминации расходного материала.
Задачи ассистента врача инфузионной терапии:
1. Осуществлять почасовые назначения врача для каждого животного, находящегося на лечении в
кабинете инфузионной терапии.
2. Следить за своевременным кормлением, дачей воды, выгулом животных отделения.
3. Осуществлять необходимый мониторинг жизненно важных функций организма больного
животного согласно указаниям врача.
4. Своевременно принимать меры и сообщать врачу о возникновении реанимационной либо любой
другой экстренной ситуации.
5. Поддерживать общий порядок в кабинете, своевременно протирать клетки, опорожнять тазик для
мусора, следить за чистотой пола.
6. При возникновении вопросов в назначениях/способе введения препарата и любых других,
связанных с животным, ассистент должен обратиться за советом к врачу!
Требования к ассистенту врача инфузионной терапии:
1. Перед началом работы необходимо проверять наличие всех инструментов , приборов, клеток,
штативов и препаратов (согласно списку). Все приборы, инструменты, а т.ж. документация должны
находиться в строго отведенных для них местах. Необходимо следить, чтобы инструменты, клетки,
приборы и штативы не выносились из кабинета инфузионной терапии, так как здесь обслуживаются
животные с возможными инфекционными заболеваниями.
2. Прием животных осуществляет врач инфузионной терапии.
Если животное нуждается только в процедуре, назначенной лечащим врачом, то повторный прием в
платежку не вписывается, в остальных случаях врач инфузии представляется как лечащий врач на время
проведения активной терапии(совместно с лечащим врачом). Повторный прием в платежку
вписывается.
По окончании курса активной терапии пациент передается под наблюдение лечащего врача, о чем
информируется владелец.
3. Животных также нужно размещать согласно их размеру, то есть крупных можно поместить на полу,
поместив под них пеленки. Если животное находится в кабинете без владельцев, то оно должно
находиться в клетке.
4. Если у животного подозревается инфекционное заболевание, необходимо работать с ним согласно
технике безопасности, воизбежание инфицирования других пациентов. Все препараты и инструменты,
которые использовались при работе с инфекционными животными нужно выбросить или обработать
дезинфицирующими средствами. Стол профламбировать.
5. Все назначения пациентам инфузионной терапии выполняются согласно карте и рекомендациям
врача. Если возникают какие- либо трудности надо проконсультироваться с врачом.
Обязательно все использованные расходные материалы и препараты выписываются на
специальный бланк через компьютерную программу Медиалог.
6. После работы с животными все препараты, пеленки, системы и т. д. выбрасываются. Если животное
находится на длительном лечении, то его препараты подписываются обязательно с указанием имени,
номера карты, даты и времени разведения.. Один раз в день проводить ревизию всех разведенных
препаратов и ненужные выбрасывать.
7. В течение дня необходимо:
а) проверять наличие инструментов, штативов, препаратов и приборов и восполнять то, чего не хватает;
б) следить чтоб все столы были чистые;
в) мыть полы с дез.средствами по мере их загрязнения, (минимум 4 раза в день).
г) не допускать переполнение тазиков отходами (выбрасывать мусор после каждого животного).
д) проводить УФ- дезинфекцию согласно графику. Если это не возможно, то после инфекционного
животного и в отсутствие пациентов.
31
32
8. При возникновении необходимости покинуть рабочее место (кабинет инфузионной терапии),
ассистент обязан сообщить об этом врачу, либо администратору и оставить на время своего отсутствия
замену в лице другого ассистента.
9. Если животные отсутствуют - проверить порядок в помещении ,
разложить все предметы на свои места, выбросить весь мусор, помыть пол в кабинете и прилегающем
коридоре, включить УФ, выбросить при необходимости мусор из контейнера в коридоре.
Правила работы в УЗИ-кабинете.
При работе в кабинете УЗИ ассистент врача должен соблюдать следующие правила:
1. Никогда самостоятельно не включать, не выключать и не проводить никаких манипуляций с
аппаратом УЗИ.
2. Помогать владельцу при фиксации животного для проведения УЗИ исследования.
3. Поддерживать порядок в кабинете по общепринятой схеме (дезинфекция и протирание стола,
своевременное опорожнение тазика для мусора, поддержание в рабочем состоянии машинки для
бритья, следить за наличием необходимых расходных материалов, соблюдать чистоту полов).
4. При отсутствии сотрудников в кабинете УЗИ – необходимо регулярно проводить УФ облучение
помещения.
Правила работы в рентген-кабинете.
При работе с рентгеновским аппаратом необходимо помнить следующее:
1. Рентгеновский аппарат в промежутках между работой должен быть выключен. Иначе он
перегревается.
2. При включении, выключатель должен быть в положении, указанном стрелкой.
3. Вертикальное положение выключателя не включает высокое напряжение. Аппарат гудит, свет
загорается, но снимка не будет.
4. Обязательно проверяйте положение выключателя перед тем как сделать снимок.
5. Помните, что рентгеновские кассеты очень нежны. Нельзя капать на них водой, ронять, царапать,
резко закрывать.
6. При попадании жидкостей на внутреннюю поверхность кассеты, она выходит из строя.
7. При необходимости сделать снимок мокрому, грязному животному, рентгеновскую кассету
необходимо обернуть в пакет.
При работе с проявочной машиной:
1. Проявочная машина должна быть всегда включена.
2. Панель подачи пленки должна быть всегда закрыта.
3. Панель подачи имеет крышку панели подачи.
Правила проявки рентгеновской пленки:
1.Если по каким-либо причинам проявочная машина выключена – включить ее кнопкой ВКЛ/ВЫКЛ
на передней панели.
2. Открыть панель подачи и крышку панели.
3. После того как загорятся красные лампочки, рентгеновскую пленку положить по краю панели.
Слева или справа – не имеет значения. Крышку панели следует закрыть, когда позволит уползающая
пленка.
4. После двойного звукового сигнала нужно положить следующую пленку, либо закрыть панель и
можно включать свет.
5. Выключать машину после снимка не требуется.
6. Не следует при появлении проявленной пленки из специального окна проявочной машины тянуть
пленку на себя.
Правила работы с рентгеновской пленкой:
32
33
1. Работать с пленкой только в рентген кабинете с запертой дверью, при выключенном свете!
2. Заряженные кассеты хранятся на специальном столе рядом с проявочной машиной.
3. Заряжать рентгеновскую пленку в кассету следует аккуратно, быстро, взяв пленку
соответствующего размера на полке над столом. После чего плотно завернуть пакет и закрыть
коробку с пленками. А необходимую пленку зарядить в кассету, плотно закрыв после этого
крышку до щелчка.
4. Не оставлять незаряженные кассеты на столе рядом с проявочной машиной. Незаряженные
кассеты следует убирать на полку чистыми, в закрытом виде, согласно маркировке размеров
кассет.
Првила работы с животными в рентген-кабинете:
1. Животных для снимка фиксируют согласно общепринятым стандартам и исходя из вида укладки,
необходимого для данного снимка.
2. Необходимо знать основные виды укладки животных для рентгенографии. Они схематично
изображены на плакате в рентген-кабинете.
Правила техники безопасности в рентген – кабинете:
1. Не забывайте одевать защитный фартук и пр. на себя и владельцев животного, которые
участвуют в фиксации животного в момент съемки.
2. Для врача/ассистента, который не участвует в фиксации, а лишь нажимает на кнопку для
получения рентгеновского снимка обязательно находиться за специальной ширмой(?).
Правила поведения в ординаторской и раздевалке клиники.
Ординаторская – место отдыха персонала клиники.
Раздевалка – помещение для переодевания сотрудников клиники.
При нахождении в ординаторской или раздевалке клиники необходимо соблюдать чистоту, убирать за
собой посуду и прочие предметы быта, поддерживать порядок. При возникновении неполадок в работе
бытовых предметов, необходимо сообщить об этом врачу либо техработнику.
Правила ухода из стационара по личным нуждам.
Ассистент, работающий в стационаре, при необходимости покинуть рабочее помещение должен
обязательно предупредить врача стационара о том, куда и на какое время он отлучается. Если
необходимо отлучиться из стационара более, чем на 10 мин, либо в стационаре находится животное,
требующее постоянного мониторинга, ассистент должен найти себе замену на время своего отсутствия,
задействовав для этого ассистента/ стажера, свободного в данный момент. Ассистенту, пришедшему на
временную замену необходимо кратко пересдать животных, обратив внимание на нуждающихся в
постоянном мониторинге и тех, которым необходимо в ближайшее время менять инфузионные
растворы, или делать какие-либо манипуляции, необходимо информировать также, где лежат те или
иные расходные материалы и препараты конкретных животных (особенно если они лежат в
нетривиальном месте). По возвращении следует узнать какие назначения делались и что происходило с
животными за время вашего отсутствия.
Ответ на телефонный звонок в отсутствии врача
Отвечать на телефонные звонки в отсутствии врача входит в обязанности ассистента дневной смены и
является обязательным для ассистента ночной смены. Остающегося дежурить в регистратуре.
Следует помнить, что ассистент может давать консультации по телефону только по расписанию приема
врачей, наличию/отсутствию каких-либо процедур в клинике, их стоимости, конкретному проведению
манипуляций в домашних условиях (что делать, если не идет раствор в катетер, как вытащить клеща и т.
33
34
п), при условии, что владельцы не хотят ехать в клинику. Во всех сколько-либо сомнительных
случаях или сомнениях в собственной компетенции следует проконсультироваться с врачом!
Ассистенту запрещено:
 давать консультации касающиеся заболевания животного (вопросы типа: «это ведь лечится
легко, да?», «а что это может быть?», «а чем обычно лечат в таких случаях?» и т. п),
 давать конкретную информацию о состоянии животного, находящегося в стационаре без
консультации с врачом стационара!
Общий рисунок разговора должен быть следующим
- вежливое приветствие (клиника «Белый клык», доброй ночи, чем могу помочь?)
- после высказанной клиентом информации следует оценить относится ли проблема к тем, которую
может самостоятельно решить ассистент (как правило - нет), если да, то проблема решается ассистентом
по телефону.
-фраза «подождите минутку, я проконсультируюсь с врачом», либо «подождите минутку, я соединю вас
с врачом»
- после разрешения проблемы любым способом, вежливое прощание.
Ассистентам ночной смены. Ночные звонки часто являются наиболее сложными, т.к такой звонок
человек совершает в экстренной ситуации и часто в состоянии аффекта. Будьте выдержаны! Именно от
ваших ответов на телефонные звонки, в том числе, складывается репутация клиники!
Правила фиксации информации о проведенных процедурах
Любая проведенная ассистентом (-интерном, стажером) манипуляция с животным должна быть
зафиксирована соответстующим образом.
1. Итак, если животное находится в стационаре (инфекционном или хирургическом), на это животное
имеется бланк-«простыня» - таблица, содержащая 24 часа (сутки нахождения животного в стационаре) и
в левой колонке – препараты и проведенные манипуляции (кормление, поение, выгул и т.д.). Такая
таблица соответственно заводится на животное ежедневно, в течение всего срока прибывания его в
стационаре. Ассистент обязан сразу после произведения манипуляции (инъекция, санация дренажа,
кормление и т.п.) сделать отметку в таблице (обычно это плюс в кружочке) напротив названия
проведенной манипуляции (согласно указанному времени).
Например:
Но-шпа 0,5 мл
в/м
Санация
мочевого
пузыря р-ром
Диоксидина
0,5%
12:00 13:00 14:00 15:00
+
+
2. Если требуется выполнить какое-либо назначения врача (например, инъекция препарата), но
препарата в наличии (в соответствующем ящичке стационара) на это животное нет, необходимо
выписать нужные препараты и расходные материалы через программу Медиалог в компьютере,
распечатать бланк заказа, получить препараты, произвести инъекцию и сделать соответствующую
отметку в бланке назначений или простыне.
3. Если требуется сделать процедуру животному на приеме, необходимо также выписать препараты и
расходные материалы через Медиалог, сделать процедуру и обязательно зафиксировать в
соответствующей графе карты – проведенное лечение - в Медиалоге все проделанные манипуляции и
время их выполнения (если это необходимо).
34
35
4. Важно не забывать информировать владельцев о проведенных на приеме манипуляциях и времени
их выполнения, а также, если далее владельцам самим дома придется выполнять данную процедуру –
предложить рассказать, показать и объяснить им технику выполнения данной процедуры, особенности и
возможные ошибки.
5. Не забывайте после выполнения инъекции антибиотика на приеме, подписывать флакон с
разведенным антибиотиком (либо другим препаратом) перед тем как поставить его в холодильник
(стационарное животное), либо отдать владельцу животного (если следующую инъекцию они будут
выполнять самостоятельно дома). На флаконе необходимо (маркером, разборчиво) написать вид
животного, кличку, дату и время разведения препарата, а также концентрацию разведения.
6. Если на прием (выполнение процедуры) пришли владельцы с животным, которое получает лечение в
другой клинике, а к нам приходит с назначениями только на выполнение процедур (инъекций, саниции
раны и т.п.) – необходимо выполнить процедуру (использовав препараты и расходные материалы
владельцев, либо выписать их через Медиалог) и сделать соответствующие отметки о времени
выполнения процедуры в бланке назначений, который принесли владельцы.
7.Если по каким – либо причинам Вы не можете самостоятельно выполнить процедуру, назначенную
врачом (из-за отсутствия навыков, либо агрессивности животного, отсутствия необходимого препарата
и т.п.) – обязательно информируйте об этом врача, назначившего данную процедуру!
Правила асептики и антисептики.
Асептика - комплекс мероприятий, направленных на предупреждение попадания микроорганизмов в
рану.
Антисептика -система мероприятий, направленных на уничтожение микроорганизмов в ране,
патологическом очаге,органах и тканях, а также в организме больного в целом, использующая
механические и физические методы воздействия, активные химические вещества и биологические
факторы.
Основные правила асептики и антисептики для работы ассистента:
Иглу шприца всегда закрывать колпачком. Шприцы для инъекций без иглы не переносить и не класть.
Недопустимо выбрасывание игл, не закрытых колпачком (это может привести к травме и заносу
патматериала в кровь человека при замене мусорного пакета)!
При проведении манипуляций не допускать касания иглой окружающих предметов, кроме
непосредственно места инъекции. При постановке капельницы не допускать касания стерильной частью
системы, вводимой в катетер окружающих предметов. При касании чего-либо необходимо протереть
переходник системы спиртом. Отвинченный колпачок от катетера нельзя оставлять в открытом виде,
необходимо накрутить на него стерильную иглу от шприца. Отсоединенный переходник системы
необходимо закрывать надеванием стерильной иглы от шприца. При проведении любых манипуляций
следует тщательно удалять все механические загрязнения, особенно биологическими материалами.
Необходимо следить за чистотой слола, где производится та или иная манипуляция.
Виды антисептики:
1. Механическая антисептика — уничтожение микроорганизмов механическими методами, то есть
удаление участков нежизнеспособных тканей, сгустков крови, гнойного экссудата. Механические
методы являются основополагающими — при их непроведении все другие методы оказываются не
эффективны.
Механическая антисептика включает:
35
36
туалет раны (удаление гнойного экссудата, удаление сгустков, очищение раневой поверхности и
кожи) — выполняется при перевязке;
первичная хирургическая обработка раны (рассечение, ревизия, иссечение краёв, стенок, дна раны,
удаление крови, инородных тел и очагов некроза, восстановление повреждённых тканей —
наложение шва, гемостаз) — позволяет предотвратить развитие гнойного процесса, то есть
превращает инфицированную рану в рану стерильную;
вторичная хирургическая обработка (иссечение нежизнеспособных тканей, удаление инородных тел,
вскрытие карманов и затёков, дренирование раны) — производится при наличии активного
инфекционного процесса. Показания — наличие гнойного очага, отсутствие адекватного оттока
из раны, образование обширных зон некроза и гнойных затёков;
другие операции и манипуляции (вскрытие гнойников, пункция идр.)
Таким образом, механическая антисептика — лечение инфекции истинно хирургическими методами, с
помощью хирургических инструментов.
2.Физическая антисептика. Основывается на законах осмоса и диффузии, сообщающихся сосудов,
всемирного тяготения и др.
Методы:
 использование гигроскопических перевязочных материалов (вата, марля, тампоны, салфетки —
отсасывают раневой секрет с массой микробов и их токсинов);
 гипертонические растворы (используются для смачивания перевязочного материала, вытягивают
из раны её содержимое в повязку. Однако следует знать, что гипертонические растворы
оказывают химическое и биологическое воздействие на рану и на микроорганизмы);
 факторы внешней среды (промывание и высушивание). При высушивании образуется струп,
способствующий заживлению;
 сорбенты (углеродосодержащие вещества в виде порошка или волокон);
 дренирование (пассивное дренирование — закон сообщающихся сосудов, проточнопромывное — минимум 2 дренажа, по одному жидкость вводится, по-другому выводится в
равном объёме, активное дренирование — дренаж с насосом);
 технические средства:
o лазер — излучение с высокой направленностью и плотностью энергии,
результат — стерильная коагуляционная плёнка,
o ультразвук — кавитационные пузырьки и H+ и OH-,
o УФ — для обработки помещений и ран,
o гипербарическая оксигенация,
3.Химическая антисептика — уничтожение микроорганизмов в ране, патологическом очаге или
организме больного с помощью различных химических веществ.
Выделяют: дезинфицирующие средства (используются в асептике для обработки инструментов, мытья
стен, полов и т. д.), собственно антисептические средства (наружно, для обработки кожи, рук хирурга,
промывания ран и слизистых), химиотерапевтические средства (антибиотики и сульфаниламиды —
подавляют рост бактерий, важное свойство — единственные средства, обладающие специфичностью
действия к определённым группам микроорганизмов, относятся к биологической антисептики).
Химические антисептики — вещества, используемые для местного применения, позволяющие создать
высокую концентрацию антибактериального препарата непосредственно в очаге воспаления. Эти
препараты более устойчивы, чем антибиотики, к воздействию продуктов воспаления и некроза тканей.
Положительными качествами препаратов являются широкий спектр антибактериального действия
(бактерицидный эффект), низкая лекарственная устойчивость микроорганизмов. Препараты отличает
плохая всасываемость, возможность длительного хранения, редкие побочные эффекты.
К средствам химической антисептики относят производные нитрофурана, кислоты и щёлочи, красители,
детергенты, окислители, производные хиноксиксалина, соли металлов (сулема, ляпис).
Способы применения химических антисептиков.
Местное применение:
36
37
а) использование повязок с антисептическими препаратами при лечении ран и ожогов; препараты
могут применяться в виде растворов (ими промывают рану во время перевязки), мазей и порошков; б)
введение растворов антибактериальных препаратов в рану, закрытые полости с последующей
аспирацией через дренажи.
Общее применение:
а) приём антибактериальных средств внутрь (в виде таблеток) с целью воздействия на микрофлору
больного при его подготовке к операции на кишечнике, а также последующему общему действию на
организм после всасывания препарата в кровь;
б) внутривенное введение некоторых препаратов.
4.Биологическая антисептика— применение биопрепаратов, действующих как непосредственно на
микроорганизмы и их токсины, так и действующих через макроорганизм.
К таким препаратам относятся: антибиотики и сульфаниламиды, оказывающие бактерицидное или
бактериостатическое действие; ферментные препараты, бактериофаги — пожиратели бактерий;
антитоксины — специфические антитела (средства для пассивной иммунизации), образующиеся в
организме животного под действием сывороток, анатоксины (средства для активной иммунизации),
иммуностимулирующие средства.
Антибиотики — это химические соединения биологического происхождения, оказывающие
избирательное повреждающие или губительное действие на микроорганизмы. Антибиотики,
применяемые в медицинской практике, продуцируются актиномицетами, плесневыми грибами, а также
некоторыми бактериями. К этой группе препаратов также относятся синтетические аналоги и
производные природных антибиотиков.
По спектру антимикробного действия антибиотики отличаются довольно существенно, кроме того,
воздействуя на микроорганизм, антибиотики вызывают либо бактериостатический, либо бактерицидный
эффект.
В клинической практике применения исключительно одного метода для борьбы с инфекцией является
нецелесообразным и, зачастую, неэффективным. Поэтому вводится понятие смешанной антисептики.
5.Смешанная антисептика — это воздействие на микробную клетку, равно как и на организм
животного, нескольких видов антисептики. Чаще их действие комплексное. Например: первичная хирургическая обработка раны (механическая и химическая антисептика) дополняется биологической
антисептикой (введением противостолбнячной сыворотки, антибиотиков) и назначением
физиотерапевтических процедур (физическая антисептика). Также примером смешанной антисептики
может служить перитонеальный диализ при гнойном перитоните.
В нашей клинике для дезинфекции столов, клеток, оборудования, материалов, поверхностей
применяется препарат Дезэффект.
 Для общего использования используют препарат в 3% концентрации: 15 мл Дезефекта развести
до 500 мл водопроводной водой.
 Для дезинфекции после инфекционных животных в 5% конентрации: 25 мл Дезефекта до 500 мл
водопроводной водой.
Правила ухода за машинкой для стрижки животных.
1. Каждая машинка, находящаяся в клинике должна быть маркирована и находиться в соответствующем
кабинете.
2. При неисправности машинки об этом необходимо сообщить Старшему смены и Ответственному за
машинки лицу
3. После каждой работы с машинкой необходимо при помощи специального набора по уходу за
машинкой, находящегося в каждом помещении где есть машинка произвести следующие действия:

Механически очистить лезвие Машинки от шерсти при помощи щеточки.

Произвести дезинфекцию Машинки спиртом
37


38
Смазать рабочие поверхности маслом.
Включив в сеть, проверить работоспособность Машинки.
4. Положить/повесить Машинку на соответствующее место. Не класть машинку на стол, во избежание
ее падения и повреждения.
5. Если необходимо заменить лезвие – нужно взять новое, произвести замену, проверить
работоспособность Машинки, а неисправное лезвие положить в соответствующий ящичек
6. Нельзя использовать Машинку сразу после бритья животного с подозрением на вирусную инфекцию.
Необходимо помимо очистки произвести дезинфекцию принятым в клинике способом.
1.
2.
Правила работы в компьютерной программе Медиалог:
Что необходимо знать и уметь ассистенту при работе с программой:
Заведение и поиск карты пациента.
Принципы заполнения карты (разделы Осмотр животного, Диагнозы, Проведенная терапия,
Назначенное лечение и т.д.).
Уметь зарегистрировать анализы (кровь, моча, кал, соскобы, смывы и т.д.).
Уметь выписать платежку за проведенные процедуры, манипуляции.
Уметь работать с расписанием, записывать звонок врачу.
При возникновении вопросов по работе программы – обращаться в ИТ-отдел клиники.
3.
4.
5.
Санация перианальных синусов
Краткое описание, цель: Промывание синусов используется для удаления скопившегося экссудата и
снятия местного воспаления.
Необходимое оборудование:
Лоток:
 перчатки
 катетер в/в
 диоксидин
 шприц 10 мл
 левомеколь (теплая) в шприце
 марлевые салфетки
Подготовка животного:
Фиксация в удобном для проведения процедуры положении, как правило лежа на груди или на боку.
Этапы проведения:
1. Надеть перчатки
2. Пальцами расправить складку ануса и визуализировать отверстие перианального синуса.
3. Ввести катетер в синус, предварительно смазав катетер левомеколью.
4. Присоединить к катетеру шприц с диоксидином и промыть синус.
5. Руками отдавить содержимое синуса и введенный раствор
6. Присоединить шприц с левомеколью и ввести в синус мазь.
7. Вынуть катетер, протереть салфеткой анус.
8. Повторить все сначала с другой стороны.
Десмургия
38
39
Краткое описание, цель: Десмургия – наука о наложении повязок. Повязки используются в различных
целях: фиксация, согревание/охлаждение, защита раны и мн. др.
Необходимое оборудование:
Бинты, вата, марля, пластырь, фиксирующие лангеты, в зависимости от типа и назначения повязки
Подготовка животного:
Фиксация в удобном для проведения процедуры положении.
Типы повязок:
 на голову
 на конечности
 повязка Роберта-Джонса (с ватой и эластичным бинтом)
 на грудную клетку
 фиксация тазовой конечности
Нюансы
Правильное положение бинта – спинкой к бинтуемой поверхности.
Наиболее частые ошибки
1. Выбор неверной траектории наложения туров бинта
2. Чрезмерное перекручивание бинта
3. Слишком слабое/тугое наложение повязки
Возможные осложнения:
_________________________________________________________________________________________
_________________________________________________________________
Общие правила работы с анализами:
Любые образцы, поступающие на исследование в лабораторию должны быть надлежащим образом
маркированы: маркером подписаны вид животного, кличка и номер карты. На анализы, поступающие в
лабораторию, уже должны быть созданы направления в Медиалоге. Если анализ должен быть выполнен
срочно (CITO!) при оформлении направления на анализ в Медиалоге нужно обязательно поставить
галочку в графе CITO, т.е. оформить анализ как срочный, в противном случае анализ будет выполнен в
обычном режиме.
1.Клинический анализ крови
Цель: количественное определение форменных элементов крови (эритроциты, лейкоциты, тромбоциты),
описание их морфологии, а также определение гемоглобина, гематокрита и подсчет лейкоцитарной
формулы.
Основные ошибки:
1. Отсутствие маркировки,
2.Отсутствие направления в Медиалоге,
3.Ошибки объема биоматериала (количество крови слишком мало по сравнению с количеством
антикоагулянта в пробирке и наоборот).
Нюансы:
для корректного подсчета тромбоцитов
1. кровь не должна помещаться в холодильник (Поэтому все пробирки с кровью для общеклинического
анализа взятые после 7 утра и до 5 часов вечера помещаются в штатив, который стоит на холодильнике.
Только анализы, взятые после времени последнего забора биоматериала (5 часов вечера) помещаются в
холодильник из-за невозможности их быстрого исследования.);
2. анализ производится не менее чем через 30 минут после взятия крови, и не более чем через 6 часов;
39
40
3. необходиом брать кровь во вторую пробирку (например, сначала набрать кровь для
биохимического анализа, а затем – для клинического, т.к. при прокалывании иглой сосуда тканевый
тромбопластин попадает с током крови в пробирку, что может вызвать агрегацию тромбоцитов);
4. используются пробирки с антикоагулянтом ЭДТА.
Клинические пробирки
Объем 2 мл
Объем 750 мкл
Объем 200 мкл
Объем 1,2 мкл
2. Биохимический анализ крови
Цель: Количественное определение следующих веществ сыворотки крови: общий белок, альбумин,
креатинин, мочевина, глюкоза, общий билирубин, прямой билирубин, АЛТ, АСТ, ЩФ, альфа-амилаза,
ГГТ, КФК, КФК-МВ, ЛДГ, железо, кальций, фосфор, магний, натрий, хлориды, калий, фруктозамин,
мочевая кислота, холестерин, триглицериды, липаза, желчные кислоты.
Основные ошибки:
1. Отсутствие маркировки,
2.Отсутствие направления в Медиалоге,
3.Ошибки объема биоматериала,
4. Взятие крови не натощак.
Нюансы: кровь набирают в биохимические пробирки с пластиковыми шариками либо в биохимические
пробирки малых объемов (для небольших животных).
1. При взятии крови на биохимическое исследование необходимо избегать гемолиза и хилеза, так как
они затрудняют исследование:
гемолиз - разрушение эритроцитов, сопровождающееся выходом из них гемоглобина. При этом кровь
или взвесь эритроцитов превращается в прозрачную красную жидкость (лаковая кровь). Поэтому
следует избегать сильного встряхивания пробирки, так как вследствие этого возникает механический
гемолиз;
хилез - это нерасщепленный жир в сыворотке крови, чаще всего возникает при взятии крови не
натощак.
2. Если предполагается исследование электролитов, необходимо как можно скорее доставить кровь в
лабораторию для получения сыворотки.
3. Если хранить кровь для биохимического анализа при комнатной температуре, то содержание глюкозы
снижается примерно на 30% в час, т.к. ее будут поглощать метаболически активные клетки крови, при
сильном лейкоцитозе этот процесс будет проходить еще быстрее.
40
41
Биохимические пробирки
Объем 4,5 мл
Объем 500 мкл
Объем 5,5 мл
В биохимические пробирки также берется кровь для проведения лекарственных мониторингов,
определения С-реактивного белка, ревматоидного фактора, гормонов, желчных кислот, маркеров
аутоиммунных заболеваний и всех серологических исследований.
1.
Газы крови
Цель: измерение pH и парциального давления кислорода (О2) и углекислого газа (СО2), а также
следующих электролитов Na, Cl, K.
Перед взятием крови для анализа газов необходимо предупредить лабораторию телефонным звонком.
Кровь должна быть взята без доступа воздуха и доставлена в лабораторию в течение 10 минут.
Количество крови необходимое для адекватного анализа составляет не менее 1,5 мл.
Основные ошибки:
1. Отсутствие маркировки,
2. Отсутствие направления в Медиалоге,
3. Ошибки объема биоматериала,
4. Взятие пробы с пузырьками воздуха и сгустками крови,
Нъюансы: если есть возможность, следует подождать как минимум 20 минут после любых изменений
подачи О2 (т.е. до стабилизации состояния пациента).
Гепаринизированный шприц для газов крови
2. Коагулограмма
Цель: определение свертываемости крови по показателям тромбиновое время, протромбиновое
время, АЧТВ, фибриноген.
41
42
Основные ошибки:
1. Отсутствие маркировки,
2. Отсутствие направления в Медиалоге,
3. Ошибки объема биоматериала (при выполнении коагулограммы недопустима погрешность объема,
кровь должна быть набрана строго до метки,
4. Плохое или недостаточное перемешивание крови со стабилизатором. Для предотвращения этого
требуется немедленно после заполнения пробирки кровью до требуемого объема закрыть ее крышкой
(не резиновой) и 2-3 раза медленно перевернуть (не встряхивая).
5. Недопустимо попадание в образец первых капель крови, т.к. при прокалывании иглой сосуда
тканевый тромбопластин попадает с током крови в пробирку, что заметно изменяет показатели
свертываемости.
6. КРОВЬ ДЛЯ КОАГУЛОГРАММЫ НЕЛЬЗЯ СТАВИТЬ В ХОЛОДИЛЬНИК, т.к. низкая температура
также активирует факторы свертывания.
7. Коагулограмма должна быть проведена не позже, чем через 45 минут после взятия крови. В случаях
когда это невозможно, плазму для исследования следует заморозить.
8. Кровь, содержащая сгустки исследованию не подлежит.
Нюансы:
1. Важным моментом является длительность наложения манжеты. Она не должна превышать 1
минуты. Стаз крови при длительном наложении манжеты вызывает активацию фибринолиза,
повышение концентрации факторов гемостаза из-за освобождения белков из сосудистой стенки и
активацию тромбоцитов.
2. Кровь берут иглой с широким просветом без шприца (самотеком). Использование шприца
нежелательно. Если кровь брать слишком быстро, то из-за турбулентного движения крови в шприце
и смешивании ее с воздухом (вспенивание) происходит активация тромбоцитов и освобождение из
них тромбоцитарных факторов.
Пробирки для коагулограммы
5.
Анализ кала на яйца глистов и цисты простейших
Цель: обнаружение в кале яйца глистов и цисты простейших.
Основные ошибки:
1. Отсутствие маркировки,
2.Отсутствие направления в Медиалоге,
3. Длительное хранение пробы.
Нюансы: Для исследования кал собирают в сухой чистый одноразовый контейнер. Обычно исследуют
кал утренней дефекации, это особенно важно для обнаружения простейших и яиц гельминтов. Кал
должен быть доставлен в лабораторию не позднее 8-12 часов после дефекации, и храниться до
исследования в холодильнике.
42
43
Работа с глюкометром
Современные модели глюкометров имеют достаточно схожие технические характеристики. Почти все
они используют электрохимический метод измерения, и капиллярные тест-полоски. Время измерения
составляет от 5 до 10 секунд. Современные глюкометры требуют от 0,3 до 2 микролитров (мкл) крови
для проведения анализа. Калибруются они "по плазме крови" или "по цельной крови" (т.е. глюкометр
показывает концентрацию глюкозы в цельной крови или в плазме крови). Результат "по плазме" всегда
будет примерно на 11-12% выше, чем "по цельной крови".
При пользовании глюкометром обратите внимание, чтобы тест полоски соответствовали типу
глюкометра, иначе результат будет недостоверным.
Большинство глюкометров предназначено для работы со свежей капиллярной кровью,
использование иного снижает достоверность результата!
Максимально ограничьте пребывание тест-полосок на свету.
Полоску следует вставить в отсек для тест-полосок темным квадратом вверх. Следите, чтобы капля
крови полностью заполнила предназначенную для нее область.
Оберегайте глюкометр от механических и иных повреждений повреждений.
Измерения глюкозы крови при помощи глюкометра.
Краткое описание, цель:
Определение содержания глюкозы в периферической крови при помощи глюкометра. Необходимо для
диагностики гипо- и гипер- гликемических состояний различной этиологии (диабет, ятрогенные и пр.)
Необходимое оборудование:
 глюкометр
 Спиртовые тамоны
 Одноразовая стерильная игла от шприца
Этапы проведения:
1. Зафиксируйте животное, если это требуется
2. Осмотрите ушные раковины с целью обнаружения наиболее удобного места для взятия крови,
отсутствия на ушах повреждений и избытка грязи. При обнаружении грязи – удалите ее.
3. Вставьте тест-полоску в глюкометр, дождитесь его загрузки, убедитесь, что она прошла корректно.
4. Помассируйте ушную раковину животного для улучшения кровотока.
3. Протрите область будущего взятия крови спиртовым тампоном. Дайте спирту полностью высохнуть.
4. Одним движением сделайте на ушной раковине надрез иглой, длиной до 3-4 мм. Избегайте прокола
ушной раковины.
5. Аккуратно сдавите область вокруг повреждения пальцами, массирующими движениями выдавливая
каплю крови.
6. Приложите тест-полоску реагентным (индикаторным) окном к капле крови. Убедитесь, что вся
реагентная зона покрыта кровью.
7. Вставьте тест-полоску в глюкометр
8. Протрите место взятия крови спиртовым тампоном.
9. Запишите результат измерения уровня глюкозы (ммоль/л или мг/дл, в зависимости от настроек
конкретного глюкометра)
Нюансы:
Внимательно ознакомьтесь с инструкцией Вашего глюкометра. Точно следуйте указаниям
производителя.
Для проведения анализа возможно использования слизистой щеки.
43
44
Смазывание кожи ушной раковины тонким слоем вазелинового масла предотвращает растекание
капли крови.
Активное выдавливание крови снижает точность исследования.
Наиболее частые ошибки:
Прокалывание кожи и ушной раковины насквозь.
Недостаточная глубина надреза.
Возможные осложнения:
Гематома, повреждения хряща при грубом сдавлении и перегибе ушной раковины
Примечания:
У хорьков можно получить каплю крови из подушечки лап, или когтя, у мыши/крысы – из кончика
хвоста.
На показания глюкометра может оказать влияние следующее:
1. Грязь на коже. Если место, откуда вы собираетесь брать кровь (обычно ухо), покрыто видимым слоем
грязи следует вымыть его перед процедурой.
2. Сильное обезвоживание может привести к занижению результата анализа.
3. Чрезвычайно высокая концентрация витамина С ( аскорбиновая кислота) может привести к
завышенным результатам.
4. Уровень гематокрита в крови влияет на результат анализа: при гематокрите более 55% результат
занижается, при гематокрите менее 30% - результат завышается.
Правила забора, обработки, хранения и оформления крови для оперделения концентрации
гормонов.
Биологический материал должен находиться в маркированных пробирках (контейнерах) и
сопровождаться заполненным индивидуальным направлением в одном экземпляре.
Накануне взятия крови исключить чрезмерные физические нагрузки, стрессовые ситуации,
физиотерапевтические процедуры, прием лекарственных средств (за исключением случаев
медикаментозного лечения по назначению врача).
При исследовании функции щитовидной железы в период лечения препаратами, содержащими
гормоны ЩЖ, исследование проводится через 24 ч. после последней дачи препарата; за 2-3 дня до
взятия крови исключить прием препаратов, содержащих йод.
Взятие крови производят, натощак после 12-ти часового голода (во избежание хилёзности, т.е. мутности
сыворотки)
Кровь собирают в стерильную пробирку, шприц-моновет или cистему для взятия крови (Vacutainer®,
Vacuette®).
Для получения сыворотки венозная кровь отстаивается до полного свертывания. После образования
фибринового сгустка последний отделяют от стенок стерильной стеклянной палочкой, строго
индивидуальной для каждой пробы, пробирку центрифугируют при 3000 об/мин в течение 15 мин*.
*Шприц-моновет и cистемы для взятия крови (Vacutainer®, Vacuette®) подвергаются
центрифугированию без предварительных манипуляций.
Надосадочную жидкость желтого цвета (сыворотку) осторожно переносят пипеткой в пустую
пробирку с крышкой (на 5 мл).
Хранение:
Кровь:
- в холодильной камере (+40С - +80С) в течение 1-х суток.
44
45
Сыворотка крови:
- в холодильной камере при температуре +40С - + 80С в течение 4-х суток;
- в морозильной камере при температуре -200С в течение 2-х недель.
Допускается только однократное размораживание!
Исследованию подлежит сыворотка, не содержащая примеси эритроцитов, бактериальных проростов,
хилёза, гемолиза. При наличии любого из указанных признаков сыворотка уничтожается и назначается
повторное взятие крови.
Постановка лекарственной/очистительной клизмы.
Краткое описание, цель: введение через прямую кишку растворов с диагностической или лечебной
целью. Для рентгенологического исследования толстой кишки (ирри-госкопии) используют клизму,
содержащую взвесь рентгеноконтрастного препарата. С лечебной целью применяют очистительные,
сифонные и лекарственные клизмы.
Показания для постановки очистительной клизмы. Очистительные клизмы, предназначенные для
разжижения и удаления содержимого нижних отделов толстой кишки, используют при упорных
запорах, для удаления токсичных веществ при отравлениях, перед операциями и родами,
рентгенологическими исследованиями пищеварительного тракта и эндоскопическими исследованиями
толстой кишки, перед применением лекарственных клизм.
Противопоказания для постановки очистительной клизмы. Острые воспалительные и эрозивноязвенные поражения слизистой оболочки толстой кишки, некоторые острые хирургические заболевания
органов брюшной полости, желудочно-кишечные кровотечения, распадающиеся опухоли толстой
кишки, первые дни послеоперационного периода после хирургического вмешательства на органах
брюшной полости, тяжелая сердечно-сосудистая недостаточность.
Необходимое оборудование:
Лоток:
 капельная система, либо зонд и воронка
 ножницы
 марлевые салфетки
 вазелиновок масло
 раствор для введения
 зажигалку
 перчатки
Подготовка животного:
Фиксация в удобном для проведения процедуры положении, обычно стоячем, или лежачем.
Этапы проведения:
1. Система обрезается ножницами таким образом, чтобы края были как можно менее острыми и
оплавляется зажигалкой, к противоположному концу системы присоединяется либо шприц с раствором
для введения, либо пакет с раствором, убедиться, что система не содержит воздуха, слив немного
раствора.
2. Если это необходимо, то фиксация животного в удобном для выполнения манипуляции положении.
3. Осмотр области ануса. При обнаружении кровотечения, опухоли и т.п – проконсультироваться с
врачом.
4. При скоплении большого количества каловых масс в прямой кишке необходимо механически
очистить ее от содержимого при помощи пальцев.
5. Смочить оплавленный конец системы вазелиновым маслом.
6. Ввести в прямую кишку на глубину 5-20 см в зависимости от размера животного.
7. Открыть систему или надавить на шприц, медленно вводя раствор. Прекращать поступление раствора
при сильном беспокойстве животного.
8. Вынуть систему из прямой кишки, зажав анус салфеткой или прижав к нему хвост животного для
того, чтобы жидкость максимально долго находилась в прямой кишке.
45
46
9. По прошествии некоторого времени (зависит от типа препарата, ожидаемого эффекта,
темперамента животного) следует вывести животное на прогулку и тщательно следить за поддержанием
чистоты в вольере.
10. Если после проведения клизмы из прямой кишки животного выделяется кровь, слизь или иные
патологические выделения следует доложить об этом врачу.
11. Убрать на место все использованные инструменты, одноразовые приспособления выбросить.
Привести в порядок рабочее место.
Нюансы:
Следует вводить растворы комнатной температуры, если не указано иное. Не вводите холодные или
горячие растворы без указания врача!
При проведении клизмы животному в наркозе необходимо вводить теплые растворы, чтобы избежать
переохлаждения.
Наиболее частые ошибки:
Несоблюдение гигиеничности и чистоты проводимой процедуры. Недостаточно глубокое введение,
особенно у животных с обстипацией.
Возможные осложнения:
1. При неаккуратной обрезке системы и грубом проведении процедуры – повреждения прямой кишки,
кровотечения из заднего прохода.
2. При ведении холодного раствора – спазмы кишечника.
3. Травмирование опухолей при несвоевременном их обнаружении.
Измерение ЧСС, ЧДД, температуры, СНК, оценка АД по пульсу
Измерение ЧСС (уд/мин) - частота сердечных сокращений измеряется либо пальпаторно, приложив
пальцы к грудной клетке в том месте, где сильнее всего выражен сердечный толчок (область 4-5 ребра
слева, чуть ниже линии плечелопаточного сочленения), либо аускультативно, при помощи
фонендоскопа, расположенного в зоне наибольшего сердечного толчка. Считается за минуту, либо за 15,
20 или 30 сек, умножая получившуюся цифру на 4,3 или 2 соответственно. Норма для кошек/собак: 60220уд/мин.
ЧДД (дых.дв/мин) - частота дыхательных движений в минуту измеряется по колебаниям
грудной/брюшной стенки за минуту. Не следует измерять ЧДД по колебанию носового зеркала , данные
могут быть неточными. Следует перепроверять данные, если животное ведет себя очень беспокойно,
вокализирует или принюхивается. Норма: 60-120 дых.дв/мин. Повышение ЧДД может говорить о
гипертермии, беспокойстве, болевом синдроме и пр. Не следует подсчитывать ЧДД, если животное
дышит открытым ртом.
Температура (°С) измеряется ректально, в течение минимум 2х минут, либо в течение времени, пока
показания термометра визуально изменяются (либо до звукового сигнала, при использовании
электронного термометра). Следует помнить, что вводить термометр в прямую кишку следует на
глубину 2-3см и располагать его, по возможности, так, чтобы он касался стенки прямой кишки.
Температурная норма для кошек и собак: 37,5 – 39,5 °С . Повышение температуры на 1-2 может быть
вариантом нормы, если животное сильно беспокоится, при воздействии внешнего источника тепла и др.
При температуре у животного более 40 ° следует немедленно сообщить об этом врачу!
СНК (сек) (скорость наполнения капилляров) определяется методом нажатия на видимую слизистую
оболочку и засекания времени полного исчезновения белого пятна. Измерения проводят, обычно, на
десне, либо внутренней части щеки. При сильной пигментации данных участков можно использовать
46
47
другие видимые слизистые. Нормой считается СНК =1сек, вариантом нормы у пожилых животных
может считаться СНК=1,5 сек.
Оценка АД по пульсу
Артериальное давление оценивается пальпаторно на бедренной артерии. Таким же способом
оценивается частота пульса. Пульс характеризуется: наполненностью, частотой, ритмичностью,
напряженностью.
Пульс - периодические толчкообразные колебания стенок кровеносных сосудов (артерий, вен),
обусловленные сокращениями сердца.
Артериальный пульс формируется колебаниями давления и кровенаполнения в артерии в течение
сердечного цикла: в фазе систолы давление и ток крови в артериях повышаются, растягивая стенки
артерий, в фазе диастолы — снижаются.
Артериальный пульс определяют с помощью пальпации крупных артерий, чаще всего бедренной. На
артерию кладут два или три пальца и сдавливают ее с различной силой до полного прекращения
кровотока; затем давление на артерию постепенно уменьшают, оценивая основные свойства пульса:
частоту, ритмичность, напряжение.
Жесткость (по сопротивлению сосуда сдавливанию)- амплитуду пульсовой волны-систолическое
давление и наполнение. Диаметр сосуда отражает волиемию, но оценка в клиничекой практике
затруднена Оценка артериального давления при пальпации неточный и субъективный метод и требует
пальпаторного опыта исследования, однако достаточно точно отражает показатель низкого или
нормального давления, менее точно у кошек. Кроме того, в тех случаях, когда при измерении прибором
цифры получаются крайне высокими или крайне низкими, позволяет определить ошибочного измерения
прибором.
Пример, прибор показывает 80/40 , а пальпаторно амплитуда пульсовой волны хорошая и СНК норма,
то надо считать измерение прибором у данного пациента не достоверным.
Частоту пульса при правильном ритме определяют, подсчитывая число пульсовых ударов за 30 с и
умножая результат на 2; при аритмии число пульсовых ударов подсчитывают в течение целой минуты.
Интубация трахеи
Интубация трахеи — введение особой трубки в гортань и трахею при их сужениях, грозящих удушьем
(при проведении интенсивной терапии либо реанимационных мероприятий), а также для проведения
анестезиологического обеспечения.
Интубации трахеи является потенциально инвазивной процедурой, которая требует большого
клинического опыта.
Показания к интубации трахеи:
I. НАРУШЕНИЯ ДЫХАНИЯ
1) Апноэ
2) Острые диспноэ (нарушения ритма дыхания)
3) Выраженное брадипноэ.
4) Выраженная одышка.
5) Прогрессирующий отек верхних дыхательных путей, некоррегируемый консервативными
мероприятиями
6) Неконтролируемая обильная саливация и бронхоррея (например, при отравлении ФОС)
II. НАРУШЕНИЯ СОЗНАНИЯ
Все комы, вне зависимости от этиологии и степени нарушения дыхания, с целью профилактики
аспирационного синдрома (за исключением быстрообратимой гипогликемической комы)
47
48
Необходимое оборудование:
 ларингоскоп
 эндотрахеальная трубка необходимого диаметра
 марлевая салфетка
 бинт/пластырь
 лидокаин-спрей 10%
Подготовка животного:
- животное должно находиться под седацией, в случае необходимости интубации для
анестезиологического обеспечения
-если животное проявляет активный кашлевой рефлекс или ларингоспазм при попытке интубации,
оросив глотку раствором анестетика
-если животное без сознания (при проведении реаниматологических мероприятий) специальной
подготовки не требуется
Этапы проведения:
 Животное укладывают на спину/на бок, или на живот
 Вводят клинок ларингоскопа в ротовую полость (оставляя язык слева от клинка) и под контролем
зрения подвигают его до основания надгортанника (изогнутый клинок концом вводят между корнем
языка и надгортанником, прямым клинком захватывают и приподнимают (или опускают
надгортанник, взависимости от положения тела животного на столе) надгортанник на язык). Затем,
стараясь не давить на зубы, отводят надгортанник, при этом в поле зрения оказывается голосовая
щель.
 Под контролем зрения в голосовую щель вводят интубационную трубку, продвигая ее конец в
трахею на 5—7 см, следя, чтобы надувная манжета скрылась за голосовыми связками.
 Ларингоскоп удаляют, в трубку делают пробный вдох, чтобы убедиться в правильном ее положении,
 Шприцем без иглы надувают манжету, трубку подсоединяют к аппарату или подушке Амбу.

Трубку фиксируют к голове животного бинтом или пластырем, (во избежание выпадения или
проскальзывания в дыхательные пути, что приводит к перекрытию просвета бронха)
промаркировав полоской лейкопластыря ее положение относительно губ. Во избежание пережатия
трубки зубами в рот животного вводят распорку (свернутая марлевая салфетка диаметром 3—4 см,
воздуховод), которую фиксируют к интубационной трубке.
Тактильную интубацию по методу Кюна производят следующим образом.
 Рукой вытянуть язык животного из ротовой полости.
 Двумя пальцами, введенными глубоко в ротовую полость, ощупать корень языка и надгортанник.
Захватить надгортанник и отодвинуть его вперед вместе с корнем языка, в результате чего вход в
трахею становится свободным для введения эндотрахеальной трубки. Вводят указательный палец в
трахею, прижимают его к дорсальной части трахеи и между подушечкой пальца и вентральной
частью трахеи проводят тубус по пальцу.
Введение по пальцу наиболее удобный метод у крупных и средних животных и по скорости установки
трубки значительно превосходит технику с ларингоскопом. Однако у мелких и у кошек,
предпочтительно использовать ларингоскоп.
При интубации кошек, желательно иметь проволочный проводник для тубуса.
 Ввести эндотрахеальную трубку
 После введения нажать на грудную полость, если трубка установлена правильно, ее стенки
начинают «запотевать», во время выдоха. Сделать несколько дыхательных дыижений мешком
Амбу, если трубка установлена правильно – грудная клетка поднимается во время сжатия мешка и
опускается во время отпускания мешка Амбу, если спадения грудной клетки не происходит, значит
трубка стоит в пищеводе.
Нюансы:
Целостность манжетки необходимо проверять до интубации.
Признаком попадания интубационной трубки в пищевод является отсутствие видимых движений
грудной клетки и дыхательных шумов при вдохе, раздувание желудка при продолжающихся попытках
искусственной вентиляции легких.
48
49
Следует следить, чтобы манжета была надута достаточно плотно, недостаточное надувание
манжеты приводит к неэффективности ИВЛ, слишком сильное надувание манжеты – к повреждению
слизистой трахеи.
Тубус необходимо брать максимального диаметра для данного животного.
У кошек, при интубации, возможно использование проводника, который не должен выступать за
пределы трубки.
Если интубацию проводит врач, задача ассистента открыть животному рот, запрокинуть голову,
зафиксировать язык при помощи салфетки. Если голосовая щель закрыта, то ее раскрытия можно
добиться резким нажатием на грудную клетку, имитируя выдох.
Если у животного жидкость в трахее не следует пытаться очистить ее, следует интубировать и начинать
ИВЛ.
Возможные осложнения: Повреждения повреждения гортани и глотки, слизистой пищевода и
дыхательных путей при неудачной грубой интубации
Кюретаж фолликулов третьего века и препуция
Краткое описание, цель:
Механическое удаление фолликулов на препуции или третьем веке. Причина фолликулярного
баланопостита и фолликулярного конъюнктивита до конца не ясна. В качестве возможных ричин
называют гиперответ иммунной системы, скопление грязи, смазки,мочи и развитие в них
бактериального агента в случае фолликулярного баланопостита. Процедура выполняется под местным
обезболиванием, очень беспокойным животным лучше сделать седативные препараты.
Необходимое оборудование:
 Ложка Фолькмана или скальпель
 Марлевые салфетки
 10% р-р лидокаина (препуций), или 1% р-р новокаина , 2% р-р лидокаина
 пинцет (для третьего века)
Подготовка животного:
Закапывание на нижний свод конъюнктивы 2% р-ра лидокаина. Орошение препуциального мешка и
полового члена 10% р-м лидокаина.
Этапы проведения:
Кюретаж фолликулов препуция
1.Зафиксировать животное
2. Отодвинуть препуций к основанию члена, зафиксировать его в этом положении одной рукой,
используя марлевую салфетку
3.Определить визуально и пальпаторно (пропальпировав препуциальный мешок изнутри)
местонахождение фолликулов. Половой член выводится полностью, если выводить его в каудальном
направлении.
4. Ложкой Фолькмана производить скоблящие движения по поверхности фолликулов, добиваясь их
повреждения и выделения сукровицы.
5. Равномерно обработать все обнаруженные фолликулы.
6. Тщательно промыть препуциальный мешок раствором хлоргексидина (мирамистином)
Кюретаж фолликулов третьего века
1.Зафиксировать животное
2. Раздвинуть веки, осмотреть конъюнктиву, осторожно пинцетом вытянуть третье веко и осмотреть его,
определить визуально местонахождение фолликулов
3. Ложкой Фолькмана производить скоблящие движения по поверхности фолликулов, добиваясь их
повреждения и выделения сукровицы.
49
50
Можно взять москит, обернуть губки тонкими полоскими платыря, захватить 3-е веко, вывернуть его
наружу. Взять скальпель расположить его под тупым углом к поверхности коньюнктивы 3 го века и
соскоблить несколькими движениями фолликулы.
4. Равномерно обработать все обнаруженные фолликулы.
5. Промыть конъюнктивальный мешок физиологическим раствором.
Возможные осложнения:
1. Местная воспалительная реакция
2. Повреждение органов при грубом выполнении процедуры.
Пироплазмоз
Пироплазмоз собак это сезонное паразитарное заболевание крови, передающееся с укусом клещей.
Основным способом передачи этой болезни между животными является укус клеща видов Dermacentor
pictus, Dermacentor marginatus, Rhipicephalus sanguineus, Rhipicephalus turanicus.в теплое время года с
пиками в марте-мае и августе - октябре. Во время кровососания в кровь, вместе со слюной клеща,
попадает возбудитель пироплазмоза простейший микроорганизм Бабезия канис (Piroplasma (Babesia)
canis) и далее размножается в эритроцитах собак. В зависимости от различных факторов
инкубационный период пироплазмоза у собак составляет от 2 - 4 дней до 3 недель. Если передача
возбудителя пироплазмоза произошла в процессе переливания крови, болезнь развивается гораздо
интенсивнее, и уже на следующие сутки проявляются первые ее симптомы. Тяжелее всего переносят
заболевание старые животные, щенки, а так же породистые собаки, по сравнению с беспородными.
Лечение пироплазмоза собак состоит из 3 направлений:
-Применение специфических лекарственных средств - азидин, беренил, верибен, имидосан, имизол,
пиросан - эти препараты убивают самих паразитов.
-Проведение вспомогательной терапии направленной на поддержание организма в зависимости от
общего состояния - сердечные препараты, витамины и другое.
-Инфузионная терапия, форсированный ощелачивающий диурез для предотвращения осложнений
пироплазмоза и непосредственное лечение осложнений.
Очень важное значение имеет раннее начало лечения - при этом внешнее выздоровление наступает уже
через 1 - 2 дня, в запущенных случаях лечение осложнений пироплазмоза затягивается на 5 - 20 дней и
не всегда приводит к выздоровлению.
Через несколько часов после инъекции Верибена начинается массовая гибель бабезий и разрушение
пораженных эритроцитов, в последующем все остатки клеток выделяются через почки, закупоривая
почечные канальцы - что в большей степени и обуславливает осложнения пироплазмоза в виде
почечной недостаточности собак .
К профилактическим мероприятиям относятся обработки собак спреями, каплями защищающими от
блох и клещей, применение аналогичных ошейников по схемам описанным в инструкциях. Как правило,
обработки защищающие от иксодовых клещей необходимо проводить каждый месяц, начиная с апреля
и заканчивая октябрем и обязательно осматривать после прогулки всю поверхность тела собаки, чтобы
вовремя обнаружить клеща.
К сожалению все чаще встречается хроническая форма пироплазмоза, это связано с тем, что иммунитет
при пироплазмозе собак не стерильный. Не стерильный иммунитет значит, что после выздоровления в
организме продолжают жить единичные паразиты, а в некоторых случаях при ослаблении общей
сопротивляемости снова может возникать активная форма болезни.
Аускультация и перкутирование грудной клетки
50
51
При аускультации грудной клетки оценивается локализация и интенсивность звуков, возникающих
при работе сердца и дыхании. Систему следует прослушивать в направлении от гортани к периферии
грудной клетки, необходимо аускультировать обе стороны грудной клетки.
Рекомендации:
 Существует широкий ассортимент фонендоскопов, обычно качество аппарата
пропорционально его стоимости.
 Головки стетоскопов небольшого размера более пригодны для аускультации мелких животных
с целью точного определения местоположения шумов.
 Важно чтобы наушники были удобными и располагались так, чтобы помехи от внешних шумов
были минимальными, а проведение звука от мембраны фонендоскопа - максимальным.
 Наушникам фонендоскопа следует придавать удобное положение, чтобы свести к минимуму
шум, создаваемый трением волос на шкуре животного и пощелкиванием суставов ваших
пальцев.
Звуки, издаваемые при дыхании:
Классификация аномальных (побочных) респираторных звуков на основе классификации
Американского общества изучения грудной клетки.
Прерывистые звуки - слышны только при вдохе.
 Потрескивания – связаны с очередным открытием расслабленного дыхательного пути.
 Мелкие потрескивания – высокий тон, низкая амплитуда, кратковременность проявления.
 Грубые потрескивания – низкий тон, высокая амплитуда, кратковременность проявления.
Непрерывные звуки могут прослушиваться как при вдохе, так и при выдохе.
 Свисты – связаны с сужением воздушного пути (высокий тон, изменчивые амплитуда и
длительность)
 Хрип – быстрое прохождение воздуха по крупным дыхательным путям (низкий тон, изменчивые
амплитуда и длительность).
 Свистящее дыхание – верхние дыхательные пути (при вдохе).
 Храп – носовые ходы (при вдохе).
Хрипы могут слышаться как при вдыхании, так и при выдыхании и связаны с сужением воздушных
путей. Хрипы – громкие звуки нижних тонов, связаны с быстрым прохождением воздуха по крупным
дыхательным путям. Следовательно, они могут появляться при нормальных обстоятельствах –
например, после физической активности. В случае препятствия в области верхних дыхательных путей
хрипы возникают на вдохе.
Другие звуки – такие, как крепитирующие хрипы и везикулярные звуки, - являются элементами
дыхания, далее распознаванию не поддающимися, хотя журчащие и булькающие звуки часто можно
слышать при бронхопневмонии и тяжелом отеке легких.
Сочетание хрипов, свистов и потрескивания при выслушивании иногда дает сложную звуковую
картину, идентификация которой может вызвать затруднения.
Аускультация сердца:
 Обычно аускультации поддаются только два тона сердца. Тон1 связан с началом систолы и
замыканием АВ-клапанов и более отчетлив в области над верхушкой сердца. Тон 2 связан с
окончанием систолы (началом диастолы) и замыканием полулунных клапанов (аортальных и
легочной артерии) и более отчетлив над левой стороной основания сердца.
 При аускультации сердца важно медленно продвигаться по всему участку грудной клетки, где
прослушиваются тоны сердца.
 Обращайте внимание на область, над которой сердце поддается выслушиванию. Если она больше
обычного, это может свидетельствовать о кардиомегалии.
 Если тоны сердца приглушены, это может свидетельствовать о перикардиальном и плевральном
выпоте.
51
52

У собак в норме встречается дыхательная аритмия – повышение ЧСС на вдохе. Она может
варьировать или усиливаться (в особенности, при респираторном заболевании), затрудняя
исключение «истинной» аритмии.
 Следует определить ЧСС и сравнить ее с частотой пульса. В случае, когда пульс не поддается
пальпации после слышимого биения сердца, это рассматривается как дефицит пульса. Это может
указывать на экстрасистолию или фибрилляцию предсердий.
 У многих собак при СН встречается компенсаторная тахикардия, в этом случае учет ЧСС может
помочь при дифференциации респираторной болезни и сердечного заболевания.
 При полной блокаде сердца обычно наблюдают снижение ЧСС, которая является постоянной и
не меняется, в противоположность частичной блокаде сердца и синусовой брадикардии, при
которых часто происходит определенное изменение ритма.
 Шумы возникают вследствии вибрации структур в сердце, при аномально быстром кровотоке и
турбулентных явлениях. Шумы условно подразделяются на категории, для определения их
происхождения. Для узнавания разновидностей шума требуется более детальное изучение
вопроса.
См. Рисунок Точки максимальной интенсивности сердечных шумов при различных поражениях.
Основная цель перкуссии грудной клетки – проверка на наличие асимметрии поражений полости
грудной клетки или пневмоторакса либо плевральных экссудатов. Наиболее эффективно, когда
животное находится в стоячем положении.
Резонансы грудной клетки можно подразделить на нормальный, приглушенный (экссудат в плевральной
полости, уплотненное легкое) или усиленный (пневмоторакс, чрезмерно вздутое легкое). Звуковой тон
резонанса зависит от количества воздуха в полости грудной клетки.
Аускультация и перкутирование брюшной полости
При аускультации брюшной полости можно услышать нормальные, измененные (булькающие) или
усиленные шумы в кишечнике или установить их полное отсутствие.
В брюшной полости при помощи перкуссии по гиперрезонансу можно выявить тимпанию
(скопление газов).
Основы пальпации животных – поверхностные лимфоузлы, брюхо, кожа
Пальпацию туловища начинают с передней части. При обследовании туловища посредством
ощупывания определяется упитанность. Посредством оттягивания вверх кожной складки
проверяется тургор кожи. Если складка сразу же не разглаживается, то это является признаком
обезвоживания, что требует установить причины потери жидкости или уменьшения поступления
жидкости; причиной этого могут являться почечная недостаточность, сильные поносы,
продолжающаяся рвота, заболевания печени или полигурия.
Прощупывается кожа и подкожный слой (например, опухоли), подлежащие структуры грудной и
брюшной полостей, а также мышцы и молочные железы. При обследовании кожи вначале
определяется состояние волосяного покрова, является ли он достаточно густым и блестящим, или
тусклым, ломким, редким или с проплешинами. Нарушения могут быть следствием хронического
общего заболевания или симптомом гормонального нарушения или иметь локальное
происхождение. Далее проверяется внешний вид и запах кожи (себорея), она пальпируется (для
обнаружения утолщений, атрофии). Если обнаруживаются отклонения от нормального состояния, то
необходимо специальное дерматологическое обследование.
Также при пальпации кожи мы оцениваем поверхностные лимфоузлы: нижнечелюстные и
ретрофарингеальные, плечевые, лимфатические узлы коленной впадины и паховой области.
52
53
Увеличения регионарных лимфатических узлов могут свидетельствовать о наличии воспалений
или опухолей, а также лейкоза. При пальпации лимфоузлов следует также оценивать их
подвижность и консистенцию.
Аналогичным образом проверяются и выходы грудной клетки при дыхании на симметрию,
соотношение между продолжительностью вдоха и выдоха и костально-абдоминальное
распределение дыхания.
При пальпации брюшной полости прощупывается ее объем, состояние, напряженность брюшной
стенки, и таким образом можно получить информацию об аномальном содержимом, таком как
тяжелая, булькающая жидкость с горизонтальным верхним ограничением при асците или
гемоперитонеуме, либо о наличии газов в желудке или кишечнике вследствие тяжелой темпании.
Пальпаторно можно также установить увеличение печени, когда ее каудальный край отчетливо
выступает за мечевидный отросток грудины или сгиб ребра в каудальном направлении. У собак с
глубокой грудью пальпация передней части брюшной полости облегчается, когда их приподнимают
в передней части туловища. Изменения величины, формы и консистенции почек и селезенки
прощупываются при напряженной брюшной стенке, точно так же, как и инородные тела большой
величины в кишечнике. В этом случае при пальпации следует соблюдать осторожность с тем, чтобы
не вызвать перфорацию в результате грубого давления в случае, если инородное тело имеет острые
края. Большой, наполненный мочевой пузырь, к примеру, при скоплении мочи вследствие закупорки
конкрементом, хорошо прощупывается. Большие камни в мочевом пузыре можно прощупать при
пустом мочевом пузыре. Наполненная матка при пиометре прощупывается как мягкое, иногда как
туго наполненное образование.
Начиная с седьмой недели беременность у собак легко диагностируют пальпаторно: ощущается не
только плод в увеличенной матке, но и его движения.
Пальпация брюшной полости затрудняется или делается невозможной из-за сильного напряжения
брюшной стенки вследствии страха (необходимо седативное средство) или сильных болей в животе,
как например, гиперальгезии при параличе у такс, панкреатите или травмах. При перитоните
сильное напряжение брюшной стенки у собак наблюдается, как правило, только в начальной стадии
и в большинстве случаев затем проходит.
Основы осмотра животного
Систематическое общее обследование должно проводиться в каждомслучае, даже тогда, когда
выявление при первичном осмотре ведущего симптома может склонить к тому, чтобы сразу же
сконцентрироваться на затронутой системе органов. Невнимание к сопутствующим заболеваниям,
например, сердечной или почечной недостаточности при очевидной травме, может закончиться для
пациента летальным исходом. Целесообразно проводить обследование по определенной схеме:
1. Температура, дыхание, пульс, вес. Вначале ректально измеряется температура тела
животного. Во время измерения температуры на внутренней стороне бедра на A. femoralis
нащупывается пульс. Перед считыванием температуры обследуется налипший на термометр
кал с точки зрения его консистенции, возможно наличия крови, слизи или запаха.
Определяется упитанность животного. Эти четыре показателя – температура, ЧСС, ЧДД, вес
– в любом случае заносятся в карточку наряду со всеми остальными отклонениями от нормы
и дальнейшим течением заболевания. Подробнее – смотри специальный раздел пособия.
2. Осмотр и пальпация головы и шеи. Осматривают носовое зеркало. При воспалениях оно
может быть чрезмерно теплым и сухим, а поверхность носа – утолщенной, растрескавшейся.
Но подобные изменения, в сочетании с утратой пигмента, обнаруживаются также и при
аутоиммунных заболеваниях. Необходимо отметить наличие/отсутствие выделений из носа,
травм. Оценить качество прохождения воздуха через носовые ходы. При обследовании глаз в
первую очередь внимание уделяется состоянию конъюнктивы, по которому можно судить о
состоянии крови и системы кровообращения: бледность говорит об анемии или
недостаточном притоке крови (шок), сильное покраснение отмечается при гипертермии,
53
54
3.
4.
5.
6.
простуде; могут быть также иктеричность, синюшность
конъюнктивы. Обращают
внимание на характер секреции глаз. Следует обращать внимание на уменьшение или
увеличение глазного яблока, помутнение или дефекты роговой оболочки или хрусталика.
Реакция зрачков на свет. Любые серьезные отклонения от нормы – требуют специального
офтальмологического обследования. При обследовании полости рта внимание в первую
очередь обращают на состояние слизистой оболочки – цвет, наличие \отсутствие петехий
(точечных кровоизлияний), измеряют СНК. Осматривают зубы на предмет их наличия,
целостности, наличия зубного налета, камня. Проверяют наличие новообразований в ротовой
полости, осматривают миндалины: лежат ли они без воспалений в своих ямках, выдаются ли
они наружу, наблюдается ли гиперемия, увеличение. Одновременно при этом можно
осмотреть часть глотки и вход в гортань. Затем пальпируются нижнечелюстные и
ретробульбарные лимфоузлы, обследуются ушные раковины и слуховые проходы –
количество ушной серы, наличие специфических выделений, запах, расчесывание ушей.
Любой из этих признаков должен мстать поводом для детального обследования при помощи
отоскопа. Глотка, гортань, трахея до входа в грудную полость и щитовидная железа
пальпируются на наличие припухлостей и болезненных мест, при этом захватываются также
плечевые лимфоузлы. Важно проверять кашлевой рефлекс (надавливанием на гортань).
Осмотр и пальпация туловища и конечностей. Определяют упитанность, тургор кожи,
состояние кожного покрова. Обследуют половые органы. Для обследования препуция
необходимо вывести пенис для обнаружения воспалений, опухолей и склеивания слизистой
оболочки. Оценивают лимфоузлы коленной впадины и в паховой области. При осмотре
анального отверстия следует обратить внимание на следы поноса, покраснения, набухания,
изменения и увеличения анальных желез. Анальные железы могут быть закупорены,
воспалены или иметь свищи. Выпячивания в перианальной области могут также являться
дивертикулами прямой кишки или перианальными грыжами. Пальпация прямой кишки
указательным пальцем позволяет уточнить результаты обследований и, кроме того, оценить
состояние предстательной железы у кобелей. Вульва обследуется с точки зрения ее величины
и консистенции, а также на наличие выделений. Отечное набухание и кровянистые либо
слизистые выделения свидетельствуют о течке, грубая консистенция – о гормональных
расстройствах, гнойные или коричневые выделения – о пиометре. Слизистые оболочки
вульвы, препуция и анального отверстия, также как слизистая губ, позволяет судить о
состоянии капиллярной системы. Ощупывание больших суставов и проверка их пассивной
подвижности может, помимо всего прочего, помочь обнаружить полиартрит при лихорадке
неясной этиологии. На лапах недостаточная степень стертости когтей позволяет сделать
вывод о недостаточной для данной породы подвижности. Надо обследовать кожу между
пальцами лап на наличие покраснения, припухлостей и свищей. Изменения подушки когтей и
подушечек лап могут указывать на аутоиммунные заболевания. Припухлости пальцев лап или
подушек когтей могут быть признаком воспалений или опухолей.
Аускультация. Перед аускультацией сердца путем пальпации грудной стенки определяют
верхушечный толчок сердца и, при наличии, дрожание грудной стенки. Аускультацию сердца
начинают там, где ощущается верхушечный толчок сердца. Необходимо обращать внимание
на громкость звука, частоту, количество и ритм сердечных тонов и на шумы, оценивая их
громкость, наступление по времени, качество и локализацию. Одновременное нащупывание
пульса позволяет распознавать дефицит пульса. Аускультация производится слева и справа у
входа в грудную полость. Все отклонения должны служить поводом для дальнейшего
проведения обследования сердца (ЭКГ, рентген, эхокардиография). Далее проводится
аускультация легких.
Перкуссия. После аускультации можно дополнительно провести перкуссию, постукивая при
помощи кончика среднего пальца правой руки по средней фаланге среднего пальца левой
руки. Перкуторно можно установить наличие пневмоторакса, жидкости в грудной полости,
увеличение сердечной тупости и большие массы в легких.
Пальпация брюшной полости. См. Специальный раздел.
54
55
Установка центрального венозного катетера
Краткое описание, цель: Установка внутривенного катетера - манипуляция, необходимая для
облегчения многократного введения лекарственных веществ через вену, введения больших объемов
жидкости, взятия крови. Данная манипуляция используется когда периферические вены не доступны,
либо требуется установка одновременно нескольких венозных катетеров одному животному, либо
необходим доступ к вене для быстрого введения больших объемов лекарств (например при
противошоковой терапии). При установке центрального катетера используется яремная вена (vena
jugularis), или бедренная вена и катетер достаточной длины для проведения до каудальной полой вены
Необходимое оборудование:
Лоток:
 центральный катетер
 салфетки с перекисью водорода
 спиртовые тампоны
 пластырь
 ножницы
 набор для ушивания раны: иглодержатель, пинцет, иглы, шовный материал
Подготовка животного:
 Фиксация в удобном для проведения манипуляции положении.
 Выбривание шерсти на участке предполагаемой установки катетера.
Этапы проведения:
До начала проведения процедуры необходимо внимательно подготовиться. Подготовить стол для
укладки животного, машинку для бритья, пеленку под голову животного и лоток с
необходимыми инструментами и материалами.
Зафиксировать животное в положении лежа на спине. После выбривания необходимого участка шеи
(брить необходимо полностью ту половину шеи, в которую планируется ставить катетер) тщательно убрать шерсть, продезинфицировать место установки катетера спиртом либо
специальным дез. раствором. Продезинфицировать собственные руки, либо надеть стерильные
перчатки.
Далее ассистент должен пережать вену рукой: при помощи нажатия большим пальцем в области
грудной апертуры.
После визуализации вены можно приступить к установке катетера по общепринятой методике.
Необходимо перед установкой отмерить расстояние до правого предсердия и на эту длину провести
катетер.
После того как катетер установлен, необходимо подшить его к коже через специальные «ушки» на
самом катетере для более прочной фиксации. Если длина катетера слишком большая, то можно
подшивать не за ушки, а плотно обернуть пластырем катетером на отмеренной перед установкой
длинне и оставить ушки из пластыря и подшить к ним. Убедиться что пластырь надежно
зафиксирован на катетере и не будет сползать. После подшивания, дополнительно закрепить
катетер пластырем, обернув его аккуратно вокруг шеи животного.
При необходимости использовать салфетки с перекисью водорода для удоления следов крови с кожи
и шерсти животного. Сразу после проведения манипуляции – убрать все вспомогательные
материалы (машинку, салфетки, шовный матероиал и т.д.), продезинфицировать стол.
Следует помнить, что центральный катетер нуждается в каждодневном уходе, который включает
замену повязки, обработку спиртом области постановки.
Наиболее частые ошибки:
1. Несоблюдение правил асептики
2. Неправильная установка катетера
3. Не достаточно надежное закрепление катетера на коже животного.
4. Слишком глубокое проведенияе катетера.
Возможные осложнения:
55
56
1. Тромбофлебит
2. Гематома
3. Отек
4. Некроз тканей.
5. Попадание воздуха в сердце
Санация зубов и ротовой полости
Краткое описание, цель: Санация зубов и ротовой полости у животных производится под общей
анестезией с целью удаления зубного налета, камня, удаления неработоспособных зубов, не
сменившихся во время зубов, общей гигиенической обработки полости рта.
Процедура проводится в стационаре, не требует соблюдения стерильности.
Необходимое оборудование: Машинка для санации ротовой полости.
Подготовка животного:
 Общая анестезия (выполняется врачом-анестезиологом).
 Укладка животного в боковом положении (на пеленку).
Этапы проведения:
1. Подготовка места проведения манипуляции (стол, пеленка), подготовка машинки
(скалера) для санации ротовой полости. Скалер перед проведением процедуры
необходимо собрать, включить в сеть, убедиться в ее работоспособности, установить на
удобное для проведения манипуляции место. Подготовить лоток с марлевыми
салфетками. Набор инструментов для стоматологических процедур.
2. Уложить животное в боковое положение. Положить несколько марлевых салфеток в рот
животному таким образом, чтобы вода, образующаяся в процессе работы машинки не
затекала животному в гортань и трахею. Включить машинку и приступить к санации
ротовой полости.
3. Для того чтобы правильно работать с машинкой, необходимо обрести практические
навыки. Зубной камень, налет удаляется тщательно со всех сторон каждого зуба.
Необходима только полировка зубов, недопустимо ставить насадку скалера под прямым
углом к поверхности зуба, это может привести к повреждению эмали. Недопустим
сильный нажим и долгая задержка в одной точке, по тем же причинам. При наличии
шатающихся или «лишних» зубов, врач оценивает их состояние и при необходимости
удаляет при помощи специального стоматологичнского инструментария. Кровь
останавливается приложением марлевых салфеток, тампонированием.
4. По окончании процедуры необходимо еще раз осмотреть ротовую полость, зубы, десны. В
результате ваших действий у животного не должно оставаться зубного налета, камня,
неработоспособные зубы должны быть удалены, кровь остановлена, следы проведения
санации отсутствовать (кусочки зубного камня, запекшаяся кровь и т.п.)
5. Животное можно поместить в клетку для дальнейшего наблюдения. Сразу после
проведения процедуры убрать весь инструментарий, разобрать, продезинфицировать и
положить на место машинку, продезинфицировать стол.
Нюансы: Во времы проведения процедуры не забывайте, что животное находится под наркозом.
Необходимо следить за состоянием животного!
Наиболее частые ошибки:
1. Неправильная сборка машинки
2. Не аккуратное проведение процедуры.
Возможные осложнения: При не аккуратном проведении процедуры возможно травмирование десен.
Будьте осторожны!
Удаление зубов должен производить врач либо опытный ассистент во избежание отлома корня зуба и
др. осложнений.
56
57
Кастрация котов
Кастрацию производят у здоровых котов по требованию владельца или в связи с заболеванием или
повреждением семенников, для снятия полового влечения. Кастрированные коты становятся более
флегматичными, склонны к ожерению. Оптимальный возраст для кастрации котов 10-12 месяцев.
Кастрацию проводят открытым способом. Кроме того при вскрытии мошонки следует быть
внимательным и не повредить препуций и половой член, которые расположены вблизи передней стенки
мошонки.
В клинике «Белый Клык» принято производить кастрацию котов «На биологический узел».
Необходимое оборудование:.
Набор для кастрации (цапки 2 шт, стерильная салфетка, зажим типа «Москит» 2 шт, пинцет), скальпель,
пеленка, дезинфицирующий раствор, йод, ватные палочки, стерильные перчатки, шприц с 0,5%
новокаином.
Подготовка животного:
 Седация.
 Фиксация в боковом либо спинальном положении на столе (обязательно на пеленке).
Этапы проведения:
1. Подготовка инструментария включает в себя: дезинфекцию стола, накрытие его пеленкой. На
столе выкладываются в ряд дез. раствор, йод, ватные палочки, шприц с новокаином, перчатки
(открытые стерильно) и инструменты (открытые стерильно). После предварительной подготовки
необходимого инструментария и укладки животного можно приступить к выполнению
процедуры. Сначала механически, рукой (путем выдергивания) тщательно удаляется шерсть с
мошонки. Далее область мошонки дезинфицируется дез. раствором. Подкожно по линии
предполагаемого разреза и в семенной канатик производится местное обезболивание путем
введения 0,5-1 мл 1% р-ра новокаина или 0,1 мл 2%. После чего необходимо надеть стерильные
перчатки и присупить к выполнению «условно стерильной» части операции.
2. Большим и указательным пальцами левой руки захватывают один семенник таким оразом, чтобы
кожа над ним была сильно натянута. Коротким разрезом длиной менее 2 см параллельно шву
мошонки (Raphe scroti) кожу и отросток влагалищной оболочки рассекают таким образом, чтобы
семенник переместился вперед. Затем его зажимают большим и указательным пальцами, немного
вытягивают вперед, ножницами надрезают отросток влагалищной оболочки как можно дальше в
проксимальном направлении и отделяют каудальную связку придатка (Lig. Caudae epididymidis) с
большей частью влагалищного отростка. На достаточно большом удалении в проксимальном
направлении на открытый семенной канатик накладывают зажим. Семенник удаляют. На
завершающем этапе семявыносящий проток и сосудистый пучок завязывают совместно на
биологический узел при помощи зажима типа «Москит». Таким же образом отделяют другой
семенник. Рану не закрывают.
3. После проведения кастрации ватной палочкой, смоченной в растворе йода обрабатывают культи
обоих семяпроводов и кожу мошонки. Накладывают салфетку. Перекладываю животное в клетку
для проведения далльнейшего наблюдения. Не забывайте что во время наркоза температура тела
сильно снижается! Необходимо согреть животное при помощи грелок до нормальной
температуры тела. Выполнять дальнейшие назначения врача.
4. Сразу убрать результаты проведения процедуры.
Наиболее частые ошибки:
1. Несоблюдение правил асептики
2. Неправильное завязывание биологического узла
3. Слишком большой разрез мошонки
Возможные осложнения:
1. Кровотечение (первичное, вторичное)
2. Самопроизвольное развязывание узла
3. Воспаление в месте проведения операции
57
58
Примечания: Для самостоятельного проведения данной операции необходимо хорошо овладеть
тонкостями ее проведения. Уметь завязывать «биологический узел», самостоятельно останавливать
кровотечение, быть готовым к изменению хода операции.
Овариогистерэктомия кошек и сук
Кастрация самок (овариогистерэктомия) – оперативное удаление обоих яичников и матки,
обеспложивание самок.
Показанием к проведению операции могут служить: патологии яичников, матки, нарушение цикла с
пиометрой (скопление гноя в полости матки), железисто – кистозная гиперплазия эндометрия,
дисфункция яичников, опухоль яичника, матки или шейки матки, снятие полового влечения, лишение
способности к размножению, прерывание беременности.
Анатомия. Яичники плотоядных подвешены на уровне третьего или четвертого поясничного позвонка,
как правило, на очень короткой, иногда несколько более длинной брыжейке, и у собаки полностью, а у
кошки частично закрыты сумкой яичника. Канатиковая краниальная связка половых желез проходит
краниально по направлению к диафрагме рядом с почками. В каудальном направлении яичник
соединяется с концом рога матки собственно связкой яичника, очень короткой у собаки и несколько
более длинной у кошки. Большую часть сумки яичника занимает брыжейка маточной трубы. У собак
она представлена «жировым телом», а у кошек – сумкой, практически не имеющей жировой ткани. В
этом месте расположен яйцевод.
Плотоядные имеют двурогую матку. Длина рогов матки составляет у кошек 10 см, у собак – 10-14см, а
ширина – соответственно 4 мм и 5-10мм. Рога соединяются в короткое тело матки длиной 2-3 см, к
которому примыкает очень короткая (5-10 мм) шейка матки. Она переходит в свод влагалища еще в
перитонеальной части полости таза.
Мезометрий (широкая связка матки) представлен двумя широкими полосками брюшины, содержащими
у хорошо упитанных собак достаточно большой объем жировой ткани. Сбоку (латерально) с этими
полосками соединяется широкая складка брыжейки круглой и длинной маточной связки, проходящей от
конца рога матки по направлению к внутреннему паховому кольцу и у сук иногда соединяющейся с
образованным в этом месте отростком влагалищной оболочки.
При беременности матка претерпевает определенные изменения в отношении размеров, формы и
положения. Плотоядные относятся к плацентарным, имеющим отпадающую оболочку матки и
поясообразную (опоясывающую) плаценту.
Кровоснабжение внутренних половых органов суки и кошки осуществляется через яичниковые артерию
и вену (прямые ветви брюшной аорты или ветви, ведущие к каудальной полой вене и левой почечной
вене), а также маточными артерией и веной (ответвления влагалищных артерии и вены). Управление
органами осуществляется нейро – гормональным путем. Вегетативнаянервная система образует
овариальное и маточно – влагалищное сплетение.
Операция производится под общей анестезией в условиях операционной. Ассистенту необходимо знать
ход операции для того чтобы уметь грамотно ассистировать хирургу.
Необходимое оборудование: Операционный набор (стандартный)
Подготовка животного:
 Премедикация с последующим введение животного в наркоз.
 Подготовка операционного поля – сбривание шерсти в области брюха животного. От
мечевидного хряща до лонного сращения.
 Фиксация кошки в спинном положении на операционном столе.
Этапы проведения:
1. Лапаротомия по белой линии. Разрез по белой линии начинают на расстоянии около 1 см
каудальнее пупка и ведут до точки, расположенной на расстоянии 2-3 пальца краниальнее
переднего края лонной кости. При необходимости разрез продолжают краниально до
пупка или еще дальше. Кровотечение останавливают и тщательно удаляют остатки
средней пузырной связки, а также жировую клетчатку в области пупка.
58
59
2. Если матка не увеличена или незначительно увеличена, пальцем нащупывают тело
матки между мочевым пузырем и прямой кишкой перед входом в таз. Затем кончиком
пальца прощупывают сначала левый рог матки, захватывают его за переднюю треть и
перемещают вперед. Таким же образом производят эвентрацию правого рога матки. Для
вытеснения кишки из области операционного поля в передний угол разреза вкладывают
марлевый компресс или салфетку.
3. Первую лигатуру накладывают на левый мезоварий, поскольку он, как правило, немного
длиннее правого. Хирург правой рукой захватывает левый конец рога матки и отводит
каудально прикрепленную в этом месте круглую и длинную маточную связку. Связку
яичника прокалывают зажимом каудальнее верхнего места прикрепления сумки в месте,
где значительно меньше жировой клетчатки. Затем проводят рассасывающуюся нить и с
медиальной стороны связки на расстоянии около 1 см над местом прикрепления сумки
яичника завязывают узел. На конец рога матки и широкую связку матки накладывают
зажим или лигатуру. При этом необходимо пережать сосуды, идущие от матки, не
захватывая круглую и длинную маточную связку. Затем ножницами рассекают мезоварий
с каудальной стороны на расстоянии около 1 см дистальнее лигатуры. Кровь сразу
удаляют и тщательно обрабатывают все места, где начинается кровотечение, даже самое
незначительное. Широкую связку матки и ответвляющуюся от нее круглую и длинную
маточную связку разделяют примерно посередине тупым путем почти до шейки матки,
предварительно наложив на нее лигатуру.
4. Правый рог матки с яичником и сумкой яичника отделяют таким же способом. После
этого матку перемещают вперед настолько, чтобы кишечнымзажимом можно было
зафиксировать влагалище каудальнее шейки матки. Краниальнее зажима в области
влагалища накладывается лигатура. После ампутации матки культю матки можно
зафиксировать для дальнейшей обработки при помощи зажима, не натягивая лигатуру.
5. Немного краниальнее лигатуры накладывают второй зажим, накрывают брюшную
полость и отделяют матку каудальнее шейки матки. Слизистую оболочку
культивлагалища иссекают и коагулируют.
6. Лапаротомную рану сшивают прерывистым швом (нерассасывающаяся нить) послойно.
Нюансы: В ходе операции, ассистируя хирургу, важно всегда четко выполнять свою работу и быть
готовым к изменению хода операции.
Наиболее частые ошибки: Ошибок может быть много при несоблюдении техники операции.
Возможные осложнения:
Перитонит
Расхождение швов и др.
Кастрация кобелей
Кастрация – удаление оперативным путем половых желез у самцов и самок.
Показания. Новообразования семенников, орхиты, глубокие травмы мошонки, семенников, семенного
канатика, снятие полового влечения.
Операция проводится под общей анестезией в условиях операционной.
Необходимое оборудование: Операционный набор (стандартный, на малую операцию).
Подготовка животного:
 Премедикация и введение в наркоз животного.
 Сбривание шерсти в области лонного сращения – на семенниках и вокруг.
 Укладка животного на операционном столе в спинном положении. Грудные конечности
вытягивают краниально, а тазовые – каудально и привязывают.
Этапы проведения:
1. Доступ к семенникам можно получить при помощи разреза кожи по срединной линии
краниальнее мошонки или разрезов над семенниками. Во втором случае оба семенника
выдавливают краниально и вручную фиксируют в таком положении. Разрез кожи ведут
59
60
примерно от середины семенника до места, расположенного над головкой придатка
яичка. На заключительном этапе можно также произвести скротэктомию, которая
предотвращает нарушения процесса заживления раны вследствие мошоночных отеков и
дает хороший косметический эффект. При этом мошонку отрезают дугообразным
(выпуклым) разрезом у ее основания, стараясь оставить при этом как можно больше кожи,
и рассекают срединную мошоночную перегородку. Рыхлую жировую и соединительную
ткань отпрепаровывают тупым путем, захватывают влагалищный отросток и выдвигают
вперед вместе с семенником. После этого рассекают мошоночную связку и на достаточно
большое расстояние в проксимальную сторону снимают внутреннюю семенную фасцию
влагалищного отростка. По возможности вблизи наружного пахового кольца на закрытый
семенной канатик накладывают лигатуру, по периферии которой при необходимости
делают дополнительные проколы, чтобы она не сползала. После отрезания концов нити
семенной канатик отсекают снаружи от лигатуры.
2. Далее сшивают подкожный слой и кожу прерывистыми швами.
Нюансы: Необходимо соблюдать последовательность операции. Быть готовым к изменениям в ходе
операции.
Возможные осложнения:
1. Расхождение кожного шва
2. Воспалительные процессы в месте операции.
Лапароцентез и лаваж брюшной полости
Лапароцентез – пункция перитонеальной полости. Проводится с целью отбора жидкости,
перитонеального диализа.
Для проведения манипуляции иногда требуется проведение анестезии.
Необходимое оборудование:
 Машинка для бритья
Лоток:
 бранюля (троакар)
 марлевые салфетки
 спиртовые тампоны
 стерильный шприц для взятия материала на лабораторные исследования
Подготовка животного:
 Рекомендуется предварительное опорожнение мочевого пузыря.
 Укладка животного в боковое положение. Для собаки – возможно выполнять манипуляцию в
положении сидя или стоя.
Этапы проведения:
1. Пункцию проводят в районе средней линии в зависимости от размеров животного на 1-3
см каудальнее пупка. Шерсть вокруг места пункции предварительно выбривают. Перед
проколом кожу немного тооягивают в сторону для того, чтобы она после удаления
инструмента (иглы) закрыла место прокола в белой линии живота (Linea alba –
сухожильная полоса между брюшными мышцами от мечевидного отростка до симфиза).
Участок вокруг предполагаемой пункции дезинфицируется спиртом.
2. В случае, если пункция по белой линии безуспешна, возможна пункция сбоку брюшной
стенки в верхней трети поверхности боковой брюшной стенки на этом же уровне( 2-3 см
ниже уровня пупка)
3. При прокалывании вытянутый указательный палец врача лежит на ручке троакара или
канюли таким образом, чтобы расстояние до острия инструмента приблизительно
соответствовало толщине брюшной стенки. Это исключает непроизвольное введение
инструмента на недопустимую глубину. Бранюлю направляют под небольшим углом в
каудальном направлении, т.к у пациентов с асцитом часто бывает гепато-спленомегалия и
важно не пунктировать эти органы. После перфорации брюшной стенки троакар
60
61
вынимают из гильзы. Затем необходимо собрать вытекающую жидкость для
определения объема. После чего можно удалить троакар (бранюлю), прижав к месту вкола
спиртовой тампон.
4. Убрать результаты проведения процедуры.
Наиболее частые ошибки: Будьте осторожны! Возможно повреждение внутренних органов.
Возможные осложнения:
Кровотечение вследствие попадание в кровеносный сосуд или ранения внутренних органов, особенно
опасно ранение селезенки.
Торакоцентез при гидротораксе и пневмотораксе
Гидроторакс – скопление жидкости в грудной полости.
Гемоторакс – скопление крови в грудной полости.
Пиоторакс – скопление гноя в грудной полости.
Пневмоторакс – скопление воздуха в грудной полости.
Торакоцентез – прокол грудной полости с целью откачивания воздуха, жидкости, взятия материала на
исследование.
Перед проведением процедуры необходимо сделать рентгеновский снимок на предмет уточнения
наличия количества и местоположения наибольшего скопления воздуха (жидкости) в грудной полости.
Необходимое оборудование: Толстая игла, капельная система с обрезанным концом для
подсоединения шприца, шприц большого объема., лоток для удаления жидкости, пробирки для для
проведения лабораторных исследований полученной жидкости. При пневмотораксе, желательно, на
обрезанный конец системы, надеть резинку с другой системы, чтобы было удобно многократно
отсоединять и присоединять шприц.Марлевые и спиртовые тампоны, зажим. Все необходимое
оборудование собирается в стерильный лоток.
Подготовка животного:
 Седация (при необходимости).
 Местная анестезия (при необходимости).
 Желательно выбрить шерсть вокруг места предполагаемой пункции.
 Фиксация животного в боковом, стоячем положении, или лежа на животе. У пациентов с
выраженной дыхательной недостаточностью укладка на бок, может сопровождаться
усугублением дыхательной недостаточности.
Этапы проведения:
1. Пункцию проводят на правом или левом боку в районе шестого или седьмого
межреберного промежутка, (лучше - в месте максимального притупления или
ориентируюсь по рентгену, выбирая место максимального скопления жидкости.) для
отсасывания жидкости – рядом с вентральной границей ребра и реберного хряща, для
отсасывания воздуха – как можно дорсальнее. Перед проколом кожу немного оттягивают
в сторону для того, чтобы она после удаления канюли закрыла место прокола в
мускулатуре.
2. Вводят иглу перепердикуллярно грудной клетке в межжреберный промежуток, до
ощущуния провала, после этого иглу разворачивают под углом вниз, к грудной стенке,
чтобы не повредить легкие. Скос иглы развернуть от легких
3. Прокол проводят аккуратно, медленно в месте предполагаемого скопления воздуха
(жидкости). Как уже говорилось выше, канюля шприца (или бранюли, но стоит помнить,
что она часто заминается и ее использование не всегда удобно) должна быть герметично
соединена с капельной системой. При введении в плевральную полости иглы ассистенту
дается команда плавно натягивать поршень, в системе появится жидкость, необходимо
создавая отрицателное давление дать уровню жидкости опуститься ниже уровня стола,
после этого можно отсоединить шприц и дать жидкости свободно стекать в лоток. В
61
62
случае с пневмотораксом, воздух отсасывается шприцем, после наполнения его
полностью воздухом перед отсоединением накладывают зажим на систему. После
попадания в полость, можно дать свободно течь жидкости по системе (в лоток, таз), либо,
если мы имеем дело с пневмотораксом, самостоятельно откачивать воздух через систему
путем оттягивания его шприцем с противоположного от места прокола конца системы.
После завершения процедуры необходимо обработать место прокола спиртом.
Нюансы: Процедуру необходимо выполнять предельно внимательно!
Важно во время процедуры, после того как игла вошла в плевральную полость не держать пальцами за
иглу, а упереться ладонью на грудную клетку и положить иглу на ладонь. Это необходимо для того
чтобы при дыхательных движениях ладонь и лежащая на ней игла поднималась вместе с грудной
клеткой и игла не меняла свое положение в грудной полости.
Наиболее частые ошибки:
1. "Насасывание" воздуха извне в грудную полость во время проведения процедуры
2. Прокол в неправильном месте
3. Отсасывание не всего возможного объема жидкости.
4. Создание слишком большого разряжения.
Возможные осложнения: Из-за не правильного проведения процедуры – вплоть до летального исхода.
Цереброспинальная пункция
Краткое описание, цель: Производится с целью отбора спинномозговой жидкости, измерения ее
давления, миелографии, пневмоэнцефалографии.
Необходимое оборудование: Спинальная игла для пункции с мандреном, при необходимости – коротко
заостренная канюля, шприц. Салфетки и спиртовые тампоны, шприц. Процедура проводится под общей
анестезией.
Подготовка животного:
 Премедикация и введение в наркоз.
 Укладка животного в положении на груди или на боку. Голова разворачивается под прямым
углом к оси шейного отдела позвоночника.
Этапы проведения:
1. Пункционную канюлю вкалывают точно в дорсальную срединную линию углубления в
центре между пальпируемыми наружным затылочным выступом и крыльями атланта или
краниального гребня осевого позвонка. Канюля должна быть установлена приблизительно
под прямым углом к поверхности кожи и при введении оставаться в срединной линии.
Более сильное сопротивление ощущается при достижении атлантозатылочной мембраны,
которая расположена над твердой мозговой оболочкой. При перфорации твердой
мозговой оболочки часто наблюдается подергивание кожи или головы, поэтому ее
необходимо надежно иммобилизовать при проведении пункции.
2. Иногда острие канюли из-за сильного наклона при введении наталкивается на чешую
затылочной кости. В этом случае канюлю необходимо немного вытянуть на себя и,
увеличив угол наклона, возобновить введение. Таким образом, осторожными
манипуляциями можно достичь атлантозатылочной мембраны.
3. После удаления мандрена вытекающую спинномозговую жидкость можно взять для
исследования.
4. Далее после завершения процедуры, аккуратно удалить иглу, обрабтать место инъекции
спиртом.
5. Переместить животное в клетку для дальнейшего наблюдения.
Нюансы: При выполнении процедуры необходимо соблюдать осторожность.
Не использовать галогеновые дезинфектанты для обработки кожи.
Наиболее частые ошибки: Не попадание в спинномозговой канал.
Возможные осложнения: Воспаление в месте введения иглы.
Грыжа мозжечка при повышенном внутричерепном давлении.
62
63
Правила подключения к кардиомонитору. Выставляемые параметры.
Перед тем как подключить животное к монитору, необходимо убедиться в наличии всех
вспомогательных приспособлений и работоспособности монитора.
Итак, в стационаре есть кардиомониторы, которые стоят на строго отведенных (маркированных)
местах. Вспомогательные приспособления (шнуры и пр.) К ним лежат в соответствующих ящиках.
Животное должно находиться в клетке. Желательно в лежачем положении.
Для снятия ЭКГ обычно используют четыре провода, один из которых заземлен, а остальные являются
активными и соединены с положительными или отрицательными электродами. Когда провода
зафиксированы на животном, переключение каналов электрокардиографа может обеспечить различные
дипольные отведения. Следовательно, три провода и два электрода дают комбинацию из шести
дипольных отведений.
Цвет проводов электрокардиографа
Конечность
Правая передняя
Левая передняя
Левая задняя
Правая задняя
(заземление)
Стандарт
Красный
Желтый
Зеленый
Черный
Обозначения
RA
LA
LL
RL
Чтобы прикрепить провода электрокардиографа к коже животного, требуются соединения, которые
называют электродами.
В клинике применяются 2 вида электродов – клейкие «человеческие». И так называемые
«крокодильчики»
При использовании клейких электродов, необходимо предварительно выбрить шерсть на латеральных
поверхностях передних конечностей плантарно и на задней левой – пальмарно. На выбритую
поверхность приклеивается электрод и закрепляется гипоаллергенным пластырем вокруг кисти (стопы)
соответственно.
Либо, для мелких животных, возможно приклеивание таких электродов непосредственно к подушечкам
лап (без предварительного выбривания).
При использовании электродов – крокодильчиков (прикрепляются они на локтевых и коленных сгибах
соответственно):
1. Захватывают достаточно большой участок кожи. Наносят на него специальный гель для ЭКГ.
2. Разжимают челюсти «крокодила» как можно шире и забирают в них как можно больше кожи с
нанесенным на нее гелем.
3. Закрепляют зажим.
После того как все электроды закреплены на животном ( или параллельно с этим) можно включить
монитор. Обычно, достаточно нажать на кнопку Вкл, после чего монитор включится и автоматически
начнет изображение ЭКГ. Для более грамотной записи ЭКГ необходимо уметь пользоваться монитором
и знать как выставлять и регулировать основные параметры в меню кардиомонитора, такие как:
скорость записи ЭКГ, высота зубцов, фильтры, звуковые сигналы и т.п. Данные навыки лучше
осваивать на практике при работе с конкретным кардиомонитором.
Выписывание и получение расходных материалов
63
64
Расходные материалы (в т.ч. препараты) на каждое животное выписываются через программу
Медиалог через карту данного животного в соответствующем разделе Добавление препаратов.
Если животное поступило в стационар на операцию, все препараты и расходные материалы в течение
суток нахождения этого животного в стационаре (соответственно в эти сутки входит период в несколько
часов До и несколько часов После операции) берутся из специального шкафчика в предоперационной.
Либо выдаются врачом – анестезиологом. Стоимость этих препаратов и расходных материалов входит в
стоимость операции.
Правила кормления
Каждое животное, находящееся в стационаре имеет лист назначений с расписанным лечением (на
сутки), в котором помимо препаратов есть графы Кормление и Жажда – обязательные к заполнению.
При поступлении животного в стационар, необходимо уточнить у врача можно ли кормить данное
животное, если можно , то чем и как часто. Эту информацию врач согласовывает предварительно с
владельцем животного при помещении его (животного) в стационар. Как правило, если животное
кормить можно, владельцы приносят корм (либо приготовленную пищу) из дома.
Соответственно:
1. Если животное кормить/поить нельзя (например перед или сразу после операции) – об этом
делается соответствующая запись в Бланке назначений с указанием примерного времени начала
кормления животного. И животному не дается корм и вода до указанного времени.
2. Если животное, находящееся в стационаре кормить можно, животное способно поглощать корм
самостоятельно, необходимо кормить его 2-3 раза в день соответствующим кормом (либо пищей,
приготовленной владельцами). Обязательно, пищу (мясо, каши, творожки, овощи ит.п.) взятые у
владельцев подписывать – кличка животного, датя взятия пищи в стационар, и класть в
холодильник (обычно еда складывается в пакеты). Если владельцы принесли корм, тактика та же.
Обязательно, перед каждым кормлением, проверять доброкачественность и свежесть пищи (по
крайней мере визуально и по запаху).
3. У всех животных, не имеющих противопоказаний, в клетках должна постоянно находиться миска
с чистой питьевой водой.
4. Для животных, получающих корм или лечебный корм – необходимо не забывать соблюдать
дозировку корма, указанную обычно на пакете с кормом.
5. Если животное не способно /отказывается самостоятельно питаться, есть вариант
«насильственного вскармливания». То есть дачи (чаще всего мягкого корма, каш, мешанок)
насильно в рот, либо через шприц (без иглы) также в рот или за щеку.
6. У некоторых животных предусмотрен специальный режим питания – например у животных
после энтеротомии. Необходимо его соблюдать. Если нужна жидкая пища, бульоны –
разогревать их до комнатной температуры и выпаивать в миске либо из шприца.
7. Бывают варианты, когда у животного (кошки) установлен назо-гастральный зонд. В таком случае
осуществляется кормление через зонд. Обычно это «Нутризон» (специализированная
питательная смесь), которую предварительно разводят теплой водой, либо набирают в жидком
виде из бутылки, подогревают до комнатной температуры и выпаивают животному медленно
через зонд, предварительно проверив работоспособность зонда путем введения р-ра Натрия
хлорида в небольшом количестве через зонд. Также после кормления «Нутризоном» необходимо
не забывать промывать зонд раствором.
8. После каждого принятия животным пищи/воды необходимо не забывать делать
соответствующую пометку в Бланке назначений.
Правила выгула
Выгуливать собак, находящихся на стационарном лечении в клинике можно только в специально
отведенном месте – во дворе клиники.
64
65
Собак необходимо выгуливать 2-3 раза в день (при условии что собака способна самостоятельно
передвигаться и у нее нет показаний к установке мочевого катетера).
Если у собаки стоит периферический или центральный катетер, перед прогулкой необходимо закрыть
его бинтом, чтобы избежать попадания грязи. Мочевой катетер следует зафиксировать при помощи
бинта на животном так, чтобы он не касался земли.
Выгуливать собак необходимо на поводке. Если собака плохо передвигается самостоятельно, возможно
выгуливать ее вдвоем, поддерживая собаку под живот руками, либо используя пеленку (ткань) для
поддерживания собаки под живот.
Также после выгула, необходимо сделать соответствующую отметку в Бланке назначений.
Правила использования и замены пеленок
Существуют различные размеры пеленок для животных. Обычно это 60*60см, 60*40см, 60*90см,
90*90см и др.
Для наших клеток удобно использовать пеленки размера 60*90см.
Перед тем как поместить любое животное в стационар клиники (собаку, кошку, кролика и т.п.)
необходимо предварительно подготовить место для этого животного. Место (клетка) готовится с учетом
размера животного. Так, мелкие собаки, кошки и др. мелкие животные часто помещаются в клетки
верхнего ряда (более маленькие по размеру), в то время как для крупных собак отведены клетки
нижнего ряда (более крупные).
Перед помещением животного в клетку, клетка должна быть соответствующим образом вымыта,
продезинфицирована, быть пустой и на полу клетки должна быть постелена чистая пеленка (или 2 – для
крупной собаки).
В процессе нахождения животного в стационаре необходимо регулярно, по мере загрязнения, проводить
замену пеленок. Степень загрязнения пеленки определяется ассистентом самостоятельно. Но в
результате – все животные всегда должны находиться на чистых, целых пеленках.
Использованные пеленки сразу после замены их на новые, выносятся в мусорный бак в свернутом виде.
Не забывайте выписывать пеленки на каждое животное через программу Медиалог.
После инфекционных животных пеленки необходимо помещать в дезраствор (например 2% виркон)
,или специальные герметичные мешки, в которых их впоследствии отправляют на утилизацию.
Закрытие лапаротомной раны
Краткое описание, цель: Закрытие лапаротомной раны производится после проведения собственно
операции путем наложения швов для сопоставления краев раны. Процедура производится в условиях
операционной под общей анестезией.
Необходимое оборудование: Иглодержатель, иглы (режущая и колющая), шовный материал, пинцет
(хирургический), стерильные марлевые тампоны.
Подготовка животного: Поскольку данная процедура входит в состав собственно операции
(лапаротомии), специальной подготовки, кроме общей предоперационной, не требуется.
Этапы проведения:
1. Необходимо вывернуть брюшную стенку таким образом, чтобы прокол производился по
направлению «к себе», чтобы исключить повреждение внутренних органов. Фиксация края раны
при помощи пинцета облегчает прохождение иглы сквозь ткань и манипулирование иглой. Если
рана небольшая, а сопротивление ткани незначительно, то иглой можно проколоть оба края раны,
не перехватывая ее иглодержателем. Для этого края раны фиксируют пинцетом по отдельности
или вместе. Место прокола и выходное отверстие иглы должны находиться на одинаковом
65
66
расстоянии от края раны. Важно, чтобы игла по обе стороны раны шла в одном направлении и
при этом захватывала такой объем ткани, который обеспечивал бы хорошее совмещение раневых
поверхностей и в глубине раны.
2. Расстояние между отдельными швами должно составлять около 10 мм. При завязывании узлов
необходимо иметь ввиду, что через несколько часов после окончания операции рана всегда,
пусть даже незначительно, опухает. Поэтому нити необходимо натягивать ровно настолько,
чтобы раневые поверхности хорошо прилегали друг к другу.
3. Самым важным этапом в закрытии раны брюшной стенки является зашивание апоневроза, этот
шов будет нести основную нагрузку. При закрытии лапаротомной раны мышечный слой,
подкожную жировую клетчатку и кожу ушивают послойно. Снимать швы рекомендуется на 1012 день после операции.
Наиболее частые ошибки: Слишком большое (маленькое) расстояние между швами, недостаточная
сила натяжения нити, как результат – слабо завязанный узел и др.
Возможные осложнения: Воспаления в области шва, расхождение швов.
Обработка послеоперационной раны и снятие кожных швов
Краткое описание, цель: Послепроведенной операции, необходимо тщательно следить за местом
операции и наложенными швами.
Если во время операции животному был установлен аппарат внешней фиксации – необходимо
ежедневно проводить гигиеническую обработку аппарата до момента его удаления.
Необходимое оборудование:
Лоток:
 пинцет
 ножницы или скальпель
 бинт
 марлевые салфетки
 спиртовые тампоны
 перекись водорода 3%
Подготовка животного: Фиксация в удобном для проведения манипуляции положении.
Этапы проведения:
1. Если необходимо обработать послеоперационный шов – достаточно ежедневно протирать шов
спиртовым тампоном, удалять выделения. Далее накладывать мазь Левомеколь. И обязательно
носить защитную попону либо воротник (либо при необходимости и то и другое) вплоть до
момента снятия швов.
2. Если необходимо обработать послеоперационную рану при установленном аппарате внешней
фиксации, необходимо тщательно при помощи пинцета и тампона с перекисью водорода
обработать места «входа» спиц, далее провести обработку спиртом (не забывая саму
металлоконструкцию) и также наложить мазь Левомеколь на участки «вхождения» спиц в кожу.
После чего металлоконструкцию, предварительно подложив марлевые тампоны, можно
забинтовать.
3. Защитные воротники попоны на животных выпускаются с учетом размера животного, и
соответствующим образом пронумерованы. Необходимо внимательно подбирать попону
(воротник) – таким образом, чтобы животному было комфортно и чтобы выполнялась защитная
функция.
4. При снятии шва – необходимо учесть, что швы снимаются в среднем на 10-12 день после
операции, при условии полного заживления раны и отсутствия воспалительных реакций в
области шва. Необходимо обработать шов спиртом, а затем удалить нити при помощи лезвия (см.
Схему). После снятия шва возможно будут необходимы обработки еще в течение 2-3 дней. Это
решается при оценке состояния операционной раны.
66
67
Нюансы: Швы снимаются только по указанию врача!
Внимательное и аккуратное отношение к животному с учетом специфики проведенной операции
является залогом успеха.
Наиболее частые ошибки: Недостаточно качественная и внимательная обработка послеоперационной
раны может привести различным осложнениям в виде местного воспаления и др.
Возможные осложнения:
1. При недостаточной обработке шва – возможно появление воспалительного процесса, нагноения
раны.
2. На месте шва возможны скопления серомы, различные воспалительные реакции.
3. При раннем снятии шва – возможно расхождение краев раны! Необходимо внимательно следить
за процессом заживления и временем, прошедшим с момента операции.
4. При снятии шва возможно непроизвольное ранение кожи вокруг шва. Необходимо обработать
пораненный участок.
Примечания: При наличии признаков воспаления, инфильтрации, отеков, признаков серомы,
нестабильности шва – необходимо обратиться за помощью к врачу!
Чаще всего снятие швов производят через 10-12 дней. Через 15-21 день – после мастэктомии, операции
на подколенной связке, ляминэктомии, уретростомии, пластики слухового прохода.
Глубокий соскоб
Необходимое оборудование:
Лоток:
 стекла (нанести капли масла по числу соскобов)
 лезвие скальпеля (лучше не новое, с округлым брюшком)
 вазелиновое масло с пипеткой
 ножницы
 йод для обработки кожи после соскоба
 маркер для подписания стекла
Этапы проведения:
Состричь шерсть; сдавить кожу перед взятием соскоба, как бы выдавливая возможных клещей на
поверхность, нанести каплю вазелинового масла на кожу; зафиксировать кожу, собрав в складку или
наступив на кожу выше места соскоба; при соскобе держать лезвие строго под углом 90° к поверхности,
скрести по направлению роста волос до появления капиллярного кровотечения. Последним движением
собрать материал с кожи и перенести в каплю масла на подготовленном заранее стекле. Кожу после
соскоба обработать йодом.
Поверхностный соскоб
Необходимое оборудование:
Лоток:
 стекла (нанести капли масла по числу соскобов)
 лезвие скальпеля (лучше не новое, с округлым брюшком)
 вазелиновое масло с пипеткой
 ножницы
 маркер для подписания стекла
Этапы проведения:
Состричь шерсть на всей поверхности кожи, необходимой для соскоба; нанести каплю вазелинового
масла на кожу; зафиксировать кожу, нажав на нее выше места соскоба; при соскобе держать лезвие
67
68
строго под углом 90° к поверхности, скрести по направлению роста волос. Последним движением
собрать материал с кожи и перенести в каплю масла на подготовленном заранее стекле.
Взятие цитологии с поверхности кожи
Скотч-тест:
Необходимое оборудование:
 скотч
 стекла
 маркер для подписания стекла
 ножницы (если необходимо состричь шерсть)
Этапы проведения:
Оторвать необходимый кусок ленты; свободный, не тронутый пальцами, край ленты прижать к коже
несколько раз. Приклеить скотч на стекло, оставив край с материалом свободным, т.е. используя стекло
как держатель. Маркером на стекле подписать, указав место взятия.
Отпечаток:
Необходимое оборудование:
стекла, маркер для подписания стекла, тонкая игла (если необходимо вскрыть пустулу или снять
корочку), ножницы (если необходимо состричь шерсть).
Этапы проведения:
Прижать стекло к поверхности кожи (влажная поверхность или под корочкой) или к пустуле,
предварительно аккуратно вскрыв ее иглой, чтобы материал отпечатался на стекле. Подписать со
стороны нанесенного материала, указав место взятия.
Цитология из НСП
Необходимое оборудование:
Лоток:
стекла
маркер для подписания стекла
ватные палочки
Этапы проведения:
Подписать стекла, отметив правое и левое ухо (R и L). Ватной палочкой взять материал из слухового
прохода, стараясь достать глубже, прижать палочку к стеклу напротив соответствующей буквы,
прокатать (не размазывать) палочку по стеклу. Другой ватной палочкой взять материал из другого
слухового прохода.
Аспирационная цитология
Необходимое оборудование:
Лоток:
стекла
маркер для подписания стекла
шприц 2-5 мл
иглу 20-22G (для полостей с жидким содержимым)
игла 18G, (для плотных образований)
спирт для обработки кожи перед пункцией
Этапы проведения:
Продезинфицировать место пункции.
Пункция полостей с жидким содержимым (пустула, пузырь, везикула, киста, абсцесс). Игла вводится в
поражение, присоединенным шприцем набирается содержимое. Каплю содержимого нанести на
подготовленное стекло и либо другим стеклом, либо иглой распределить тонким слоем. Подписать
стекло.
68
69
Пункция плотных поражений. Ввести иглу без шприца в поражение в нескольких направлениях,
поворачивая иглу вокруг оси и полностью не выходя иглой из поражения, вынуть иглу. Присоединить
шприц с оттянутым поршнем к игле, иглу держать срезом к стеклу, резко нажать на поршень, выдавив
давлением материал из иглы. Распределить материал по стеклу иглой или вторым стеклом. Подписать
стекло.
При пункции очень плотных образований можно вводить иглу с присоединенным шприцом, создавая
шприцом отрицательное давление в момент движений иглы. В таком случае перед извлечением иглы из
образования необходимо шприц отсоединить.
Используемый вакуум – не более 3-5мл, необходимо тщательно контролировать введение иглы, во
избежание протыкания опухоли насквозь.
Биопсийный канал должен проходить таким образом, чтобы потом он был удален вместе с опухолью.
Необходимо делать не менее 3-4 мазков. Перед отправкой мазка в стороннюю лабораторию 1 стекло
должно быть окрашено и исследовано на наличие на нем клеточного материала.
Трихоскопия
Необходимое оборудование:
Лоток:
 стекло
 маркер для подписания стекла
 вазелиновое масло
 москит.
Этапы проведения:
Москитом захватить необходимые волоски ближе к коже, выдернуть по направлению роста волос,
уложить волоски в одном направлении в каплю масла на стекле. Подписать стекло.
Тест с влажной бумагой
Необходимое оборудование:
 лист белой смоченной водой бумаги
 частая расческа
Этапы проведения:
Интенсивность счесывать расческой шерсть на подложенную бумагу. Распределить материал по бумаге,
обращая внимание на контакт крупинок с влажной поверхностью. Оценить результат. Могут
визуализироваться блохи или фекалии блох, расплывающиеся красным цветом на влажной бумаге.
Исследование лампой Вуда
Необходимое оборудование:
 включенная лампа Вуда
 затемненное помещение
Этапы проведения:
Разогреть лампу 5-10 минут. Стабильность интенсивности и длины световой волны зависят от
температуры. Обследовать кожу и шерсть на наличие свечения.
Показания: предварительное исследование при подозрении на дерматофитию.
Интерпретация: яблочно-зеленое свечение волос в 30-80% - показание к исследованию данных волос
под микроскопом для выявления поражения спорами.
Ложно-положительное свечение – кератин, чешуйки, струп, медикаментозные и гигиенические
средства.
Санация ушного прохода
Необходимое оборудование:
 лосьон для очищения ушей
 салфетки
Этапы проведения:
69
70
Рутинная: Залить лосьон обильно в слуховой проход, помассировать основание ушной раковины 310 минут, дать возможность потрясти головой, протереть салфеткой ушную раковину. Процедура
проводится по мере необходимости для очищения слуховых проходов от ушной серы.
Лечебная. Проводится ежедневно или через день, а также реже – по усмотрению лечащего врача.
Промывание физиологическим раствором
Необходимое оборудование:
 теплый физиологический раствор
 подключичный катетер 1,4 мм или внутривенный катетер 16 G (серый)
 шприц 20 мл
 кювета
Этапы проведения:
Обрезать катетер примерно по длине вертикального слухового прохода. Над пламенем (зажигалки)
оплавить края катетера. Набрать теплый физиологический раствор в шприц, присоединить катетер.
Предварительно возможно размягчить выделения при помощи лосьона для ушей. Ввести катетер в
слуховой проход, ввести физиологический раствор, подставив кювету под ушную раковину для
вытекающего раствора и оценки содержимого. Промывание следует проводить до вытекания чистого
раствора из ушных проходов. Частота применения – по усмотрению лечащего врача – ежедневно, через
день.
Правила обработки и хранения насадок для отоскопа и лезвий для соскобов
Насадки применяются разные для каждого слухового прохода. После применения насадки должны быть
тщательно очищены при помощи губки, ершика и моющего средства, промыты и высушены. До мытья
насадки могут храниться в дез. растворе.
Лезвия от скальпеля после взятия соскобов очищаются от материала при помощи салфетки и
помещаются для хранения в емкость с 96%-ым спиртом. Лезвия, использованные для соскобов при
подозрении на дерматофитию должны быть утилизированы.
Взятие посева на дерматофитию
Необходимое оборудование:
 чашка Петри со средой
 запечатанная зубная щетка
 москит
Этапы проведения:
Если есть поражения на коже, москитом выдернуть волоски с пораженной области, взять корочки или
чешуйки и разместить на поверхности среды, немного погружая их в среду. Метод Макензи: Зубной
щеткой собрать материал со всего тела в подставленную чашку Петри. Также максимально снять
материал с зубной щетки и поместить его в чашку. Подписать чашку. Заклеить скотчем или пластырем,
чтобы не открылась крышка. Перевернуть чашку средой кверху.
Взятие материала для диагностики отодектоза
Необходимое оборудование:
Лоток:
 стекло
 маркер для подписания стекла
 вазелиновое масло
 ватные палочки
 игла или лезвие
Этапы проведения:
Ватной палочкой взять материал из слухового прохода или обоих проходов, перенести материал в
каплю вазелинового масла на стекле, при необходимости помогая иглой или лезвием. Подписать стекло.
70
71
Окрашивание цитологии
Необходимое оборудование:
 раствор для фиксации
 зажигалка
 набор растворов для быстрой окраски
 фильтровальная бумага
Этапы проведения:
Шаг 1. Фиксация материала.
Для материала на скотче – не нужна. Край скотча с материалом – свободен, остальная часть скотча –
закреплена на стекле, как держателе. Перед помещением в краску свободный край скотча немного
загнуть.
Материал из слуховых проходов – несколько секунд прогреть над пламенем зажигалки.
Отпечатки – поместить на 3-5 секунд в раствор для фиксации.
Шаг 2. Окрашивание красным красителем.
Зафиксированное стекло поместить на 2-3 минуты в краситель или 10-15 раз окунуть стекло в
краситель. Аккуратно просушить стекающую краску фильтровальной бумагой, чтобы не смешивалась
со следующей краской.
Шаг 3. Окрашивание синим красителем.
Поместить стекло на 2-3 минуты в краситель или 10-15 раз окунуть. Если раствор не новый, времени
для окраски может потребоваться больше.
Шаг 4. Промыть стекло под струей воды или в контейнере с водой.
Шаг 5. просушить стекла. Излишек воды аккуратно промокнуть фильтровальной бумагой. Можно
использовать фен для просушки.
Подготовка соскобов к микроскопии
Необходимое оборудование:
 вазелиновое масло
 стекло с материалом
 покровные стекла
Этапы проведения:
Накрыть материал на стекле покровным стеклом. При недостатке вазелинового масла – аккуратно
добавить, поднеся пипетку к краю покровного стекла – полости под стеклом заполнятся маслом.
Исследование соскобов и трихоскопия
Исследуются при помощи микроскопа с опущенным конденсором и закрытой диафрагмой – для
увеличения контрастности при помощи объективов с увеличением 4Х или 10Х. При необходимости
исследования более мелких структур (споры дерматофитов) используют объектив с увеличением 40Х
(без использования иммерсионного масла!).
Материал под микроскопом исследуется полностью, перемещая стекло последовательно по
вертикальной или горизонтальной оси от одного края покровного стекла до другого.
Исследование цитологии
Исследуются при помощи микроскопа с поднятым конденсором и открытой диафрагмой. Сначала при
помощи объективов с увеличением 4Х или 10Х выбирается участок (группа нейтрофилов и пр.) для
более детального исследования. Затем на исследуемый участок наносится капля иммерсионного масла и
используется объектив для исследования под иммерсией (с увеличением 90-100Х).
Малая дексаметазоновая проба.
Краткое описание, цель:
определения уровня кортизола крови спустя определенное время после введения дексаметазона.
Используется для оценки функции коры надпочечников.
71
72
Необходимое оборудование:
В/в катетер и все необходимое для его постановки.
Шприц необходимого объема, в зависимости от веса животного
Дексаметазон в необходимом количестве
Шприц-моновет или cистема для взятия крови (Vacutainer®, Vacuette®)
Этапы проведения:
1. Зафиксировать животное, если это необходимо.
2. Поставить катетер в периферическую вену
3. Набрать из него в шприц-моновет или cистему для взятия крови (Vacutainer®, Vacuette®) 1-2 мл крови
(проба 1)
4. Сразу после взятия крови ввести в катетер 0,01 мг/кг дексаметазона.
5. Снять в/в катетер.
6. Через 3-4 часа повторно взять венозную кровь для исследования кортизола. (проба 2)
7. Взять кровь через 8 часов после введения дексаметазона. (проба 3)
Наиболее частые ошибки:
Несоблюдение временного интервала, неверный расчет дозировки препарата, отсутствие маркировки
проб.
Возможные осложнения:
Нюансы: тщательно пронумеровать и подписать каждую пробу (1,2,3) , указав ее номер.
Проба с лишением жидкости
Метод дифференциальной диагностики полиурических синдромов.
Пациент после 12 часовой голодной диеты принимается в стационар.
Мочевой пузырь опорожняется, измеряется плотность мочи и производится взвешивание животного.
Далее пациент лишается жидкости.
Каждый час производится опорожнение мочевого пузыря, определение плотности мочи и взвешивание
животного. Проба проводится до тех пор, пока плотность мочи не превысит 1.025 или животное не
потеряет 5% массы тела. Проба прерывается так же при появлении признаков ухудшения общего
самочувствия пациента.
Если пациент потерял 5% массы тела, а плотность мочи не превысила 1.025, делается внутримышечная
инъекция минирина. После этого продолжается ежечасное опорожнение мочевого пузыря и измерение
плотность мочи.
Проба считается положительной, если плотность мочи после инъекции минирина превысила 1.025-1.030
Предоперационная подготовка животных. Премедикация.
В большинстве случаев операции проводят под наркозом. Перед его применением проводится общее
обследование пациента, особое внимание при этом уделяется органам кровообращения и дыхания. В
зависимости от результатов обследования с целью уменьшения риска для жизни может возникнуть
необходимость проведения курса предоперационной терапии и использования особых методов
анестезии.
Предоперационная подготовка животных включает в себя следующие этапы:
1. Помещение животного в стационар. Размещение его в клетке.
2. Премедикация.
3. Установка в/в катетера, мочевого катетера (если это необходимо), закрепление электродов (на
72
73
лапах).
4. Подготовка операционного поля: выбривание шерсти, тщательная уборка шерсти, мытье
операционного поля с мылом.
5. Далее животное можно переместить в операционную. Животное укладывается на операционном
столе, конечности фиксируются при помощи бинтов.
6. Операционное поле обрабатывается спиртовыми тампонами от места предстоящего разреза к
периферийным участкам до тех пор, пока они не станут чистыми. При этом необходимо следить
за тем, чтобы одно и то же место не протиралось дважды одним и тем же тампоном.
Очищеннный и обезжиренный таким способом участок кожи спрыскивают или протирают
дезинфицирующим раствором.
7. Продезинфицированный участок кожи закрывают простынями до определенной заранее линии
разреза. При этом приложенные к коже простыни уже не передвигаются.
8. Важные участки тела должны быть доступными для внутривенного вливания и инъекций и
контроля даже после накрывания их простынями.
Премедикация
Премедикация – введение препаратов, облегчающих последующее введение животного в наркоз и
профилактирующих возможные осложнения со стороны дыхательной, сердечно-сосудистой систем.
Дла премедикации в нашей клинике применяются препараты: атропин, пипольфен, рометар(ксила),
буторфанол (бутомидор).
Введение препаратов обычно осуществляется в 2 этапа:
1 этап: атропин + пипольфен в/м,
2 этап (через 15 минут): рометар + буторфпнол в/м.
Необходимо тщательно следовать указаниям врача, соблюдать дозировки препаратов, следить за
состоянием животного.
Подготовка операционной. Работа операционной сестры (ассистента)
Операционный блок – комплекс специально оборудованных помещений для выполнения операций и
проведения обеспечивающих их мероприятий. В состав операционного блока Клиники входят:
предоперационная и собственно операционная.
Организация работы операционного блока и правила поведения в нем персонала строго
регламентированы. Организует работу операционного блока его заведующий (хирург) и старшая
операционная сестра. Доступ в операционный блок строго ограничен. В операционной разрешается
находиться только в специальной одежде: шапочка, бахилы, маска (обязательно!).
В операционной при проведении плановых операций в первую очередь выполняются чистые операции,
и лишь затем производят операции, связанные с возможным микробным загрязнением.
Подготовку операционной, инструментов, белья, и помощь в подготовке хирургу осуществляет
операционная сестра или ассистент в ее отсутствие.
Предоперационная – помещение, предназначенное для обработки (мытья) рук хирурга, ассистента,
сестры. В предоперационной также располагается сухожаровой шкаф для стерилизации инструментов и
белья, шкафы с инструментами, шовным материалом, расходные материалы для проведения операций
(костюмы хирурга, шапочки, маски, бахилы и др.).
Операционная – специально оборудованное помещение для проведения хирургических операций.
Режим работы операционного блока предусматривает ограничение посещений его, а в зоне стерильного
режима должны находиться только участвующие в операции хирурги, их ассистенты, операционная
сестра и анестезиолог. В зону стерильного режима допускаются студенты, стажирующиеся врачи.
Уборка операционной всегда осуществляется влажным способом. Существуют следующие виды уборки
73
74
операционной:
1 Предварительная проводится утром перед началом работы; все горизонтальные поверхности
(пол, столы и подоконники) протирают влажной тряпкой, чтобы собрать пыль, осевшую за ночь;
включаются бактерицидные ультрафиолетовые лампы для дезинфекции воздуха;
2 Текущая проводится во время операции; ассистент собирает с пола все случайно упавшие
шарики, салфетки, вытирает попавшую на пол кровь или другую жидкость;
3 Промежуточная делается между операциями; убирается весь материал, использованный во
время операции, пол вытирается влажной тряпкой;
4 Окончательная осуществляется в конце операционного дня; все предметы оборудования
операционной и ее пол обрабатываются мыльным раствором;
5 Генеральная проводится по плану в свободный от операций день один раз в неделю. При этом
стены, пол, окна моют горячей водой с дезинфицирующим раствором. Также обрабатывают все
предметы, находящиеся в операционной.
Общий хирургический инструментарий
1
2
3
4
5
Инструменты для разъединения тканей (скальпели, ампутационные и резекционные ножи,
ножницы, пилы и др).
Инструменты для остановки кровотечения (кровоостанавливающие зажимы Кохера, Бильрота,
типа «Москит», артериальные зажимы и др.)
Расширяющие и оттесняющие инструменты (ретракторы) (крючки Фолькмана, Фарабефа,
зеркало Дуайена и др).
Инструменты для соединения тканей (иглодержатели, хирургические иглы, лигатурные иглы и
др.)
Вспомогательные инструменты (пинцет, зажимы:цапки, Микулича, корнцанг, зажимы Allis,
кишечные зажимы, троакары и др.)
А также для целого ряда хирургических вмешательств или манипуляций требуются особые
инструменты.
Все инструменты хранятся в предоперационной либо в операционной в стерильном виде в
специализированных полиэтиленовых пакетах с маркировкой о дате стерилизации, фамилией
собравшего данный набор и вложенным термоиндикатором.
Инструменты могут быть собраны в наборы (в таком виде они обычно хранятся в операционной) либо
разложены отдельно (в предоперационной на соответствующей полке).
Стерилизуются инструменты в сухожаровом шкафу.
Сразу после операции использованные инструменты складываются в раковину с дезинфицирующим
раствором, где тщательно моются при помощи щетки в течение 5 мин, затем споласкиваются проточной
водой и раскладываются на специальном столике для высушивания. Только абсолютно чистые и
высушенные инструменты можно упаковывать в наборы для дальнейшей стерилизации в сухожаровом
шкафу.
Операционная сестра (ассистент хирурга) должны четко знать название всех инструментов, их
местоположение в операционной, уметь простерилизовать и подготовить к операции нужный
инструментарий.
Операционное белье и перевязочный материал
Предстерилизационная подготовка материала – первый этап. К перевязочному материалу относятся
марлевые шарики, салфетки, тампоны, турунды, бинты. Они применяются во время операций и
перевязок с целью осушения раны, остановки кровотечения, для дренирования или тампонады раны.
Перевязочный материал готовят из марли и ваты. Марлю складывают так, чтобы края были подвернуты
внутрь и не было свободного края, из которого могут осыпаться волокна ткани. Материал
заготавливают впрок, пополняя его запасы по мере расходования.
К операционному белью относятся простыни, полотенца, халаты хирургические, маски, шапочки (при
74
75
условии использования данного вида хирургической одежды). Материалом для их изготовления
служат хлопчатобумажные ткани – бязь, полотно. Операционное белье многоразового пользования
должно иметь специальную метку и сдаваться в стирку отдельно от другого белья в специальных
мешках.
Укладка и подготовка материала к стерилизации. Стирка – второй этап. Перевязочный материал
укладывают в стерилизационные пакеты.
Операционное белье после операции ск4ладывают в специальный мешок, стирают в стиральной
машине, после чего складывают и запаковывают в стерилизационные пакеты.
Стерилизация – третий этап. Осуществляется в сухожаровом шкафу согласно приведенной инструкции.
Хранение стерильного материала – четвертый этап. Хранят операционное белье в операционной в
специально отведенном месте согласно срокам хранения.
Шовный материал стерилизуют автоклавированием (если это не готовый шовный материал,
стерилизованный промышленным способом) и хранят в растворе спирта 96%.
Операционная бригада
Хирургическая операция выполняется операционной бригадой, в состав которой входят:
1 Хирург оперирующий.
2 Хирург – ассистент. Главная обязанность ассистентов – подготовка операционной раны таким
образом, чтобы на протяжении всей операции хирург мог легко различать все анатомические
структуры и ясно видеть производимые им действия. Ассистенты должны прекрасно знать все
стадии операции и делать все возможное, чтобы операция проходила в установленном порядке,
несмотря на встречающиеся затруднения.
3 Операционная сестра. До начала операции обязана подготовить свое рабочее место: подготовить
и разложить необходимые инструменты, отрегулировать потолочную бестеневую операционную
лампу, проверить наличие шовного материала, стерильных и дезинфицирующих растворов,
правильную установку операционного стола, привести в рабочее положение электроотсос (при
необходимости), аппарат – электронож (электрокоагулятор). Операционная сестра проверяет
правильное положение больного животного на операционном столе, чтобы не случилось
сдавлений нерва, ожогов или других ранений. Она должна прекрасно знать различные стадии
операции и операционную технику. Только при этом условии она сможет подготовить все
необходимые материалы.
4 Врач-анестезиолог.
Расположение хирурга и его помощников по отношению к больному и операционному столу должно
отвечать условиям лучшего доступа к ране и согласованного взаимодействия членов операционной
бригады.
Операционный стол должен находиться на уровне локтя самого высокого члена операционной бригады,
чтобы кому-либо не пришлось прекращать работу из-за боли в спине.
Ассистент обычно занимает позицию напротив хирурга. Он должен хорошо видеть операционное поле и
четко манипулировать ретракторами.
Внимание хирурга и операционной сестры сосредотачивается на операционной ране. Хирург получает
передаваемые ему хирургические инструменты «не глядя», т.е. не отвлекая свое внимание на этот
процесс. При этом только правая рука хирурга находится в движении.
Этапы работы операционной сестры
1
2
3
Открыв операционный блок, сестра осматривает помещение, при необходимости осуществляет
уборку.
Ознакомившись с планом операций на день, сестра может приступить к «накрытию»
операционной. Предварительно помыв руки, одев шапочку, маску и бахилы, сестра входит в
операционную и готовится к операции.
Сначала производятся нестерильные манипуляции – подготовка хирургических наборов,
75
76
4
5
6
7
салфеток, белья, стерильной одежды хирурга, перчаток и т.п.
Далее – стерильные манипуляции – вскрытие и выкладка инструментов и расходных материалов
на большом и малом операционных столах, подготовка электрокоагулятора и т.п. Удобно
«накрывать» операционную при помощи двух стерильных пинцетов (корнцангов) – бранши
которых хранятся в спирте и могут соприкасаться со стерильными поверхностями, а концы –
допускается держать в руке без предварительной стерилизации. Операционная сестра достает из
набора стерильную простыню и в два слоя накрывает ею большой инструментальный стол.
Вторую простыню она кладет таким образом, чтобы одна ее половина закрывала стол, а вторая
была свернута валиком на дальнем краю стола. Это требуется для того, чтобы в дальнейшем
закрыть разложенные на столе инструменты. Сестра выкладывает инструменты на середину
стола и разбирает их. Каждому виду инструментов отводится свое место. При этом инструменты,
применяемые наиболее часто, кладутся ближе к краю стола. Размещение их может быть
различным. Важно, чтобы сестра четко знала это размещение и безошибочно находила
понадобившийся в ходе операции инструмент. Также на столе выкладывается халат и стерильные
перчатки для хирурга и сестры. Когда все инструменты разложены, сестра покрывает их
сложенной вдвое простыней, причем ее края должны свисать с краев стола. После этого можно
приступить к накрытию малого операционного стола таким же образом. Малый операционный
столик накрывается стерильной пеленкой , а затем сложенной вдвое простыней так, чтобы одна
половина простыни закрывала стол, а другая свешивалась и могла бы потом закрывать
собранные инструменты. Необходимые инструменты перекладываются корнцангом (пинцетом) с
большого инструментального стола на малый и раскладываются в строго определенном порядке,
к которому быстро привыкают и сестра, и хирург. По правому краю стола лежат салфетки. По
переднему (ближе к хирургу) размещаются инструменты, постоянно необходимые для операции:
кровоостанавливающие зажимы, пинцеты, ножницы, крючки. Инструменты с переднего края
стола могут браться самим хирургом и помощниками, а сестра только поддерживает порядок на
столе и восстанавливает правильное размещение инструментов. Задний край стола находится в
полном распоряжении операционной сестры, и хирург к нему не прикасается. Здесь
располагаются запасные инструменты, готовые к употреблению в процессе работы, шовный
материал. Когда инструменты и шовный материал расположены на малом инструментальном
столе, подготовка сестры к операции закончена.
Далее сестре необходимо самостоятельно надеть стерильный халат и перчатки и помочь
переодеться хирургу. Перед любыми стерильными манипуляциями необходимо обработать
(вымыть) руки по принятой в клинике методике.
Непосредственно перед началом операции сестра подает хирургу стерильные пеленки для
накрытия операционного поля. Функции сестры в процессе операции изложены выше.
После окончания операционного дня, сестра обязана вымыть, просушить и поставить
стерилизоваться хирургический инструментарий, произвести полную уборку операционной.
Патологическая анатомия
Патологическая анатомия – наука о возникновении, развитии и исходе морфологических или
структурных изменений в органах, тканях и клетках больного организма. Структурные нарушения
изучают на организменном, системном, органном, тканевом, клеточном, ультраструктурном и
молекулярном уровнях. Объектами изучения патологической анатомии являются павшие или
вынужденно убитые животные, аутопсийный (посмертный) и биопсийный (прижизненный) патматериал
с применением патологоанатомических , патогистологических, морфометрических и других методов
исследования.
Правила работы с трупом животного
1. В первую очередь врач (ассистент) должен зафиксировать биологическую смерть животного.
После полной остановки дыхательной и сердечной деятельности, можно приступить к работе с
76
77
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
трупом животного. Необходимо удалить с трупа все последствия лечебных мероприятий:
тубус, внутривенный катетер, мочевой катетер, электроды, пластыри и т.п.
Очистить ротовую полость, шерсть животного от естественных выделений, крови, и т.п.
Придать трупу боковое положение, лапы сложить.
После того как труп животного приведен в надлежащее состояние (отсутствие на нем следов
выделений, катетеров и т.п.), можно приступить к упаковке трупа в полиэтиленовый пакет. Труп
аккуратно упаковывается в пакет, заворачивается в несколько слоев. Далее пакет фиксируется
несколькими слоями лейкопластыря. На лейкопластыре в доступном полю зрения месте пишется:
Вид животного, кличка, номер карты, дата и время смерти и способ утилизации.
Далее необходимо поместить труп (согласно обсужденному с врачом способу утилизации) в
секционную – соответственно в холодильный ящик или на него (например, если вскрытие будет
производиться немедленно).
Необходимо занести всю информацию о павшем животном в таблицу в секционной.
Ассистент должен самостоятельно уметь зашить труп животного (после проведенного
паталогоанатомического вскрытия) ровно, аккуратно, красиво.
При необходимости выдачи владельцам – труп должен быть приведен в надлежащее состояние.
Все катетеры, пластыри и т.п. удалены. Сам труп аккуратно упакован в полиэтиленовый пакет
(коробку). Только после того как Вы убедились, что труп находится в надлежащем состоянии его можно отдать владельцу. Не забывайте, что смерть домашнего животного - серьезное
огорчение для владельца. Всегда соблюдайте правила врачебного этикета.
Принципы терапии болезней глаз путем введения глазных капель, мазей
При болезнях глаз различной этиологии у домашних животных широко применяются глазные капли и
мази.
Глазные капли. Это наиболее распространенная лекарственная форма в офтальмологии. Ее достоинство
– простота применения. В процессе приготовления капель их осмотическую концентрацию приближают
к концентрации хлорида натрия в слезной жидкости (1,4%). Малая осмотическая концентрация
вызывает раздражение, набухание и даже гибель клеточных элементов роговицы и конъюнктивы, а
большая – помимо раздражения еще и обратный ток жидкости в конъюнктивальный мешок.
Итак, применяя глазные капли следует закапывать их в глаза животному следующим образом:
1. Аккуратно оттянуть вниз и несколько на себя нижнее веко.
2. Закапать необходимое количество капель препарата в «карман», образовавшийся при опускании
нижнего века, ближе к внутреннему углу глаза.
3. Отпустить нижнее веко и аккуратно прикрыв глаз обоими веками, слегка помассировать для
лучшего распределения капель.
4. Дать животному самостоятельно открыть глаза. Излишки капель вокруг глаза можно аккуратно
вытереть марлевой салфеткой.
Глазные мази. Поскольку глазные капли не могут длительно задерживаться в конъюнктивальном мешке,
то целесообразно применять мази, основа которых по своему составу ближе к отделяемому
конъюнктивы. В качестве основы для глазных мазей используют вазелин. Мази и линименты почти не
раздражают оболочки глаза, не разрушают действующее вещество и долго сохраняют его
эффективность. Чтобы мазь равномерно распределялась по роговице и конъюнктиве, в нее добавляют
ланолин и воду.
Техника закладывания мази принципиально ничем не отличается от закапывания глазных капель. Мазь
необходимо также закладывать за нижнее веко.
Соответственно, агрессивных животных при проведении процедуры необходимо хорошо фиксировать.
Все манипуляции с глазами проводить в перчатках или с предварительно вымытыми руками.
77
78
Техника переливания крови
Краткое описание, цель:
Переливание крови – лечебная процедура, необходимая при значительных кровопотерях, анемиях,
некоторых серьезных заболеваниях, затрагивающих кровеносную систему. Переливание крови
необходимо, если кислородная транспортная емкость крови стала недостаточной.
Показания:
 Острые кровопотери 30-60 мл/кг (1/3-2/3 общего количества крови).
 Острые кровопотери со значением гематокрита 20% и менее.
 Хронические кровопотери со значением гематокрита 15% и менее.
 Добавление факторов свертывания крови. Этого можно достичь также с помощью переливания
плазмы.
 Неспецифическое лечение анемичных, сильно ослабленных животных посредством введения
эритроцитов, белков, антител, тромбо- и лейкоцитов.
 Подготовка к наркозу, для чего значение гематокрита должно приблизительно составлять 25%.
Относительные противопоказания (кроме несовместимости крови при переливании):
 Гемолитические анемии со значением гематокрита 10-15%.
 Гиповолемия.
 Беременные животные.
Процедуру переливания крови назначает только лечащий врач животного и проводится она в его
присутствии, так как в процессе переливания возможны серьезные осложнения вплоть до летального
исхода.
Перед проведением процедуры, необходимо предварительно провести исследование крови «на
совместимость».
Вместе с переливанием крови производится замещение как эритроцитов, так и замена всего остального
объема (плазма и т.д.). Однако эритроциты могут быть заменены отдельно, как и плазма.
Рассмотрим случай переливания заготовленной цельной крови из специального пакета с системой.
Необходимое оборудование:
 Комплект инструментов для доступа к венам (бранюля, марлевые салфетки, спиртовые тампоны,
ножницы, пластырь, машинка)
 Пакет с кровью
 Специальная капельная система ( с фильтром)
Этапы проведения:
1. Установка в/в катетера (бранюли) животному, которому требуется переливание
крови, согласно принятой методике.
2. Беспокойных животных следует успокоить с помощью седативных средств.
3. Подготовка пакета с кровью, присоединение к нему капельной системы,
заполнение ее кровью (аналогично с подготовкой капельной системы для любых
внутривенных вливаний). Консервированную кровь необходимо перед
употреблением несколько раз перемешать и для предотвращения трансфузионной
гипотермии нагреть в воде (40градусов Цельсия) до комнатной температуры.
4. Собственно проведение инфузии крови с заданной врачом скоростью. Переливание
производится в головную вену предплечья или малую подкожную вену, реже в
яремную вену. В крайних случаях можно предпринять венесекцию.
5. Отсоединение пакета и системы. Закрывание бранюли крышкой. Наблюдение за
состоянием животного.
78
79
Наиболее частые ошибки: Переливание несовместимой крови, невнимательное обращение с
пациентом в процессе проведения процедуры. Возможно непредвиденное сворачивание крови в пакете!
Необходимо тщательно следить за проведением процедуры.
Возможные осложнения: При несовместимости крови – вплоть до летального исхода. Важно во время
проведения процедуры ассистенту неотступно находиться возле животного и отмечать любые
отклонения от нормы в физиологических показателях, клиническом состоянии животного (одышка,
беспокойство, гиперемия или цианоз слизистых и др.)
Кардиология: интерпретация ЭКГ. СЛР. Прямой массаж сердца. Дефибрилляция.
Интерпретация ЭКГ
Ввиду относительно большого значения сердечных заболеваний у собак и кошек, электрокардиография
занимает важное место в практике обследования.
Случаи использования электрокардиографии:
 Нарушение ритма работы сердца.
 Электролитические расстройства.
 Гипертрофия сердечных камер.
 Экссудат в полости перикарда.
 Эффекты, вызываемые приемом лекарственных препаратов.
 Ишемическая болезнь сердца и фиброз.
 Определение ответной реакции на лечение.
 Мониторинг при критических состояниях.
Для того чтобы сердце эффективно функционировало в качестве «насоса», все его отделы должны очень
сокращаться согласованно. Два предсердия, сокращаясь, проталкивают кровь в два желудочка, которые
при сокращении выталкивают ее из сердца в аорту и легочную артерию - атриовентрикулярное
(предсердно – желудочковое) сокращение. Чтобы начать сокращаться, клетки сердечной мышцы
должны получить электрический стимул. Именно эту электрическую активность и можно выявить при
помощи электрокардиографии.
Электрические стимулы в первую очередь деполяризуют оба предсердия, а затем через
соответствующий временной интервал стимулируют оба желудочка. После этого сердце реполяризуется
(и снова наполняется) до следующего стимула и сокращения. И данный цикл повторяется снова и снова,
причем он протекает быстрее, если увеличивается нагрузка на организм, и замедляется, когда последний
находится в покое.
Принцип метода ЭКГ:
 Волны возбуждения, деполяризации и затем реполяризации создают разность электрических
потенциалов между одной и другой частями сердца.
 Распространение возбуждения по сердечной мышце вызывает слабые электротоки, идущие по
внеклеточной жидкости.
 ЭКГ – процесс записи разницы потенциалов, возникающей в результате деполяризации и
реполяризации сердечной мышцы.
 Устройство для записи ЭКГ – сигналов является гальванометром, записывающим изменения
напряжения между его положительными и отрицательными отведениями.
79
80
Оценка ЭКГ:
Оценку ЭКГ при отсутствии опыта целесообразно производить, придерживаясь следующей схемы:
1. Определение частоты сердечных сокращений на ЭКГ
2. Определение ритма сердечных сокращений
3. Измерение амплитуд (P, Q, R, S, T)
4. Измерение интервалов (P, PQ, QRS, QT)
5. Определение формы импульсов и ST-участков
6. Векторная оценка ЭКГ
Сердечно-легочная реанимация (СЛР)
Сердечно-легочная реанимация предусматривает порядок мер по восстановлению легочной вентиляции
и кровообращения в жизненно важных тканях.
Если у животных летальный исход связан (или предполагается, что связан) с последней стадией
заболевания, и лечение, вероятнее всего, не будет успешным, то СЛР не проводят.
СЛР проводят обычно при неожиданной СЛО, когда процесс, представляющий угрозу для жизни,
рассматривается как обратимый.
Оборудование для СЛР:
 Эндотрахеальные трубки (тубусы)
 Ларингоскоп
 Трахеостомические трубки
 Жидкости и установки для введения
 Внутривенные катетеры, шприцы, иглы
 Препараты для применения в экстренных случаях
 Система ЭКГ-мониторинга
 Инструменты для оперативного проведения торакотомии и перикардэктомии
 Инструментарий для аспирации дыхательных путей
Для воспроизведения в памяти этапов проведения СЛР в критический момент может оказаться
полезным изложенный перечень мероприятий:
1. Дыхательные пути. Установка эндотрахеальной трубки с манжетой. При невозможности
интубации (при закупорке верхних дыхательных путей) в разветвление трахеи следует
вводить длинную канюлю и подавать 100% кислород из расчета 150мл/кг до появления
возможности проведения трахеостомии.
2. Дыхание. Затем следует обеспечить искусственную вентиляцию легких (ИВЛ или мешок
Амбу). Наполнение легких воздухом должно обеспечить значительный (выше нормы)
подъем стенки грудной клетки. Важно, чтобы воздух из легких полностью выходил после
каждого наполнения при вентиляции.
3. Кровообращение. Восстановление кровотока достигается путем применения одного или
двух методов, в зависимости от породы и степени податливости грудной клетки: Метод
прокачивания сердца – традиционный метод сердечного массажа и включает сжатие
желудочков и крупных сосудов, оказывая давление на ребра над областью сердца
(эффективен при реанимации кошек, щенков, собак с узкой грудной клеткой). Метод
прокачивания грудной стенки – при этом методе давление на стенку грудной клетки (в
наиболее широкой ее части) вызывает повышение интраторакального давления,
сдавливая, таким образом, крупные сосуды и вызывая изгоняющий кровоток. Темп
массажа поддерживают в пределах 60-120 раз/мин, в зависимости от породы животного.
Для обеспечения венозного притока грудную клетку следует резко сдавливать и оставлять
достаточно времени на декомпрессию. Применим внутренний массаж сердца.
4. Препараты. Подбор препаратов обусловлен складывающейся ситуацией. Основной набор
препаратов для СЛР: атропин, адреналин, лидокаин2% в разведении 1:10. Применение
80
81
дополнительных препаратов определяет лечащий врач.
5. Электрическая дефибрилляция. Применяется для преобразования фибрилляции
желудочков в синусовый ритм. Необходимы подходящая для данной цели
дефибрилляционная установка и ЭКГ – монитор. Важно продолжение массажа сердца в
течение каждого промежутка между ПТ-ударами. Наружная дефибриляция: На пластины
и стенку грудной клетки над областью сердца наносят проводящий гель или солевой
раствор. Затем пластины помещают над левой и правой сторонами верхушечной области
сердца. Перед подачей ПТ-удара оператор и весь наличный персонал должны быть
изолированы от животного и пластин. Кардиограф также должен иметь защиту. При
отсутствии реакции на ЭКГ массаж сердца возобновляют, дефибриллятор переключают на
следующий уровень напряжения и продолжают процедуру. Внутренняя дефибрилляция:
Внутренние области пластин покрывают смоченными в солевом растворе тампонами и
помещают в непосредственном контакте с сердцем друг напротив друга; процедуру
проводят, как указано выше.
6. Последующее наблюдение. При успешном проведении СЛР и возобновлении
нормальной работы сердца животным обычно требуются поддерживающие процедуры:
инфузия, ИВЛ, поддержание температуры тела и др.
Внутренний (открытый) массаж сердца наиболее эффективен для работы с собаками весом свыше 20
кг и представителями широкогрудых пород с плохой сжимаемостью стенки грудной клетки. Показан
при следующих состоянийх:
 Пневмоторакс,
 Перикардиальная тампонада,
 «Незафиксированная» (плавающая) грудная клетка,
 Диафрагмальная грыжа,
 Гиповолемия,
 Выраженное ожирение.
 5-10 минут неэффективного закрытого массажа
Процедура включает быструю и аккуратную торакотомию полного профиля и растягивание ребер
ректракторами. Перикард вскрывают и сердце осторожно сжимают в направлении от верхушки к
основанию со скоростью, соответствующей скорости заполнения желудочков (около 80-120 раз/мин).
Важно не приподнимать сердце чрезмерно высоко, поскольку это может перекосить крупные сосуды и
закрыть кровоток. Поперечное пережимание нисходящей аорты атравматическим пинцетом или
пальцами значительно улучшает церебральный и коронарный кровоток. Следует поддерживать
температуру и влажность сердца, вливая теплую жидкость в полости перикарда и грудной клетки.
Внутренний массаж сердца в среднем в 2-3 раза более эффективен по сравнению с внешним.
Прогноз:
 СЛР часто не приводит к успеху, требует большого количества времени и представляет собой
дорогостоящую процедуру.
 Для СЛР необходимы высококвалифицированные, обученные сотрудники.
 После продолжительной СЛО возможны неврологические нарушения (слепота, кома, припадки
различной этиологии).
Декомпрессия желудка. Зонды. Промывание желудка.
Необходимость в экстренной декомпрессии желудка возникает при таких патологических состояниях
как Острая дилатация желудка и Перекрут желудка у собак.
Под острым расширением желудка понимается неожиданно возникающее массивное вздутие желудка –
неважно, произошло ли это из-за пищи и жидкости или из-за сильного скопления газов. Живот более
или менее напряженный, животное чувствует себя явно неблагополучно, ведет себя беспокойно и
81
82
стонет.
Перекрут желудка включает целый комплекс симптомов, в том числе и его острую дилатацию.
Заболевание протекает в острой или острейшей форме и без лечения приводит через несколько часов к
смерти животного. Перекрут желудка чаще наблюдается у крупных пород собак, однако не является
редкостью и для средних и малых пород.



Частичная декомпрессия посредством пункции желудка: первое и самое срочное мероприятие,
заключается в пункции иглой диаметром 1,2 мм желудка с левого бока и отсасывании газа с
помощью насоса. Отсасывание продолжается во время всех подготовительных работ, что
позволяет уменьшить давление на воротную вену и диафрагму, а также стабилизировать
кровообращение и дыхание.
Декомпрессия с помощью желудочного зонда: на стоящей собаке без применения седативных
средств предпринимается кратковременная попытка ввести желудочный зонд. В отдельных
случаях это удается. Эта мера не дает большой пользы, так как желудок редко удается
опорожнить с помощью зонда и через небольшой промежуток времени нужно ждать нового
перекрута желудка.
Оперативная декомпрессия и возвращение желудка в физиологическое положение: необходимо
всегда стремиться к оперативному лечению перекрута желудка, дающему длительный эффект.
Только путем коррекции положения желудка и гастропексии можно достичь полного
выздоровления. Во время операции также устанавливается желудочный зонд (резиновый шланг)
для полнейшего опорожнения желудка. После полного удаления содержимого из желудка
необходимо промыть желудок путем заливания теплого физиологического раствора через
установленный зонд. Промывать необходимо до тех пор, пока выделяемое не станет прозрачным.
Часто при длительных тяжелых заболеваниях у кошек с отсутствием аппетита, требуется постановка
назо-гастрального зонда. Зонд устанавливается хирургом, подшивается и может находится в желудке
длительное время.
Животные с установленными назо-гастральными зондами должны находиться в стационаре для
дальнейшего лечения, наблюдения и тщательного ухода.
Через назо-гастральный зонд осуществляется кормление кошки путем введения жидких фракций пищи
или специального питания (Нутризон и т.п.).
При работе с животным у которого установлен назо-гастральный зонд, необходимо постоянно
поддерживать гигиену и периодически проверять работоспособность зонда. Перед и после каждого
кормления – зонд промывается чистым, теплым раствором Рингера или Натрия хлорида 0,9%.
Правила разведения Перекиси водорода 3%
В клинику Белый Клык поставляется Перекись водорода 30% концентрации. Для работы нам
необходима Перекись водорода 3% концентрации. Соответственно, для того чтобы приготовить раствор
нужной концентрации нужно:
1 часть перекиси водорода 30%+9 частей воды
То есть если нам надо получить 200 мл 3%-ной перекиси водорода, мы берем 20 мл 30%-ной перекиси
водорода и разводим ее до 200 мл водой.
82