Дирофиляриозы - инвазионные заболевания плотоядных

МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РФ
ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ
УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ
“МОСКОВСКАЯ ГОСУДАРСТВЕННАЯ АКАДЕМИЯ ВЕТЕРИНАРНОЙ
МЕДИЦИНЫ И БИОТЕХНОЛОГИИ ИМЕНИ К. И. СКРЯБИНА”
Н.В. ЕСАУЛОВА, М.Ш. АКБАЕВ,
О.Е. ДАВЫДОВА,
С.А. ШЕМЯКОВА, Д.Н. ШЕМЯКОВ
ДИАГНОСТИКА И ЛЕЧЕБНОПРОФИЛАКТИЧЕСКИЕ МЕРОПРИЯТИЯ
ПРИ ДИРОФИЛЯРИОЗАХ
ПЛОТОЯДНЫХ ЖИВОТНЫХ
Методические рекомендации
Допущено учебно-методическим объединением
высших учебных заведений Российской Федерации
по образованию в области зоотехнии и ветеринарии
в качестве методических рекомендаций
для студентов высших учебных заведений,
обучающихся по специальности
310800 - Ветеринария
Москва - 2007
2
УДК: 619:616.995.121:636.7(075)
Н.В. ЕСАУЛОВА, М.Ш. АКБАЕВ, О.Е. ДАВЫДОВА, С.А. ШЕМЯКОВА,
Д.Н. ШЕМЯКОВ. Диагностика и лечебно-профилактические мероприятия
при дирофиляриозах плотоядных животных: Методические рекомендации. М.: ФГОУ ВПО МГАВМиБ, 2006, 22 с.
Описаны методы диагностики дирофиляриозов плотоядных животных с
учетом эпизоотологии, симптомов болезни и лабораторных методов
исследования, а также современные лечебно-профилактические меры борьбы.
Предназначена для студентов факультета ветеринарной медицины,
ветеринарно-биологического факультета и специалистов ветеринарного
профиля.
Рецензенты: Горохов В.В., докт. биол. наук, профессор (ВИГИС),
Даугалиева Э.Х. докт. вет. наук, профессор (ООО НВЦ «Агроветзащита»),
Гнездилова Л.А., докт. вет. наук, профессор (МГАВМиБ)
Утверждена на заседании учебно-методической комиссии ФВМ ФГОУ
ВПО «МГАВМиБ им. К.И. Скрябина» от 25 октября 2006 г., протокол № 1.
3
ВВЕДЕНИЕ
Дирофиляриозы - инвазионные заболевания плотоядных, вызываемые
паразитированием в кровеносной системе и подкожной клетчатке животных
нематод из семейства Filariidae, рода Dirofilaria. Известно два вида
возбудителей: Dirofilaria immitis (паразитирует в сердце и легочной артерии
собак, кошек, лисиц и волков) и Dirofilaria repens (вызывает дирофиляриоз
подкожной соединительной ткани у собак и лисиц). Промежуточными
хозяевами обоих видов дирофилярий являются комары сем. Culicidae родов
Culex, Aedes, Anopheles.
При паразитировании в предсердиях и желудочках сердца D. immitis
нарушается правильная циркуляция крови, наблюдается нарушение сердечной
деятельности, эндокардит, эмболия и тромбоз кровеносных сосудов, что
приводит к гибели собак.
При паразитировании D.repens наблюдаются поражения кожи в виде
папулезного дерматита и узелков с тенденцией к изъязвлению.
Дирофиляриоз, вызываемый D.repens, представляет серьезную опасность
и для человека. В России и
в странах СНГ известно более 110 случаев
заражения человека D.repens (Т.А. Авдюхина и др., 1997). При этом у людей
отмечают патологию с образованием подкожных узелков, отеков и поражения
глаз.
В последние годы отмечена тенденция к широкому распространению
дирофиляриозов и расширению их ареала не только на юге, но и в средней
полосе России (И.А. Архипов, Д.Р. Архипова, 2002 и др.). По мнению В.А.
Башанкаева, Д.Р. Архиповой (2002) основными причинами распространения
этих заболеваний являются неограниченные перемещения животных из одного
региона в другой, ввоз зараженных животных из других стран, ограничение
4
использования химических средств защиты от промежуточных хозяев
дирофилярий - комаров, а также недостаточный арсенал антгельминтиков
против половозрелых дирофилярий.
В настоящее время разработаны методы диагностики, лечения и
профилактики дирофиляриозов плотоядных животных, однако нет литературы,
которая обобщала бы эти данные и рекомендовала ветеринарным врачам
оптимальные диагностические и лечебно-профилактические мероприятия.
В связи с этим становится необходимым издание методической
литературы, посвященной вопросам диагностики, лечения и профилактики
дирофиляриозов плотоядных с учетом последних достижений ветеринарной
науки.
МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ ДИРОФИЛЯРИОЗОВ ПЛОТОЯДНЫХ
ЖИВОТНЫХ
Эпизоотологические данные
Дирофиляриозы сердца и подкожной клетчатки широко распространены
в странах с тропическим и субтропическим климатом, встречаются и в странах
с умеренным климатом (Степанов А.В, 1982). Дирофиляриозы собак и других
плотоядных животных эндемичны для стран Америки, Азии, Австралии и
южной Европы (Soulsby E.J.L., 1968). Зарегистрированы случаи обнаружения
дирофилярий у собак в Испании, Великобритании, Нидерландах, Швеции,
Венгрии, Швейцарии, Германии, Польше и на Украине (Cancrini G., Allende E.,
2000). В настоящее время дирофиляриозы собак уже не являются редкостью
для Центральной зоны Нечерноземья и часто регистрируются ветеринарными
специалистами.
5
Первичное заражение животных совпадает с началом лета комаров и
заканчивается поздней осенью. Передача возбудителя происходит в процессе
питания комаров кровью; при этом микрофилярии проникают из хоботка
комара в кровь дефинитивного хозяина. Микрофилярии циркулируют в крови
около 70-120 сут, по истечении этого времени личинок D. immitis можно
обнаружить в сердце и легочной артерии. В последующие три месяца паразиты
развиваются
до
половозрелой
стадии
и
самки
начинают
отрождать
микрофилярий (в сутки одна самка отрождает до 30 тыс. микрофилярий). Таким
образом срок преимагинального развития D. immitis в организме собак
составляет 7-8 мес. Продолжительность жизни имаго 2-3 года. Максимальный
срок жизни микрофилярий в организме дефинитивного хозяина, если они не
попали в организм комара, составляет около 2 лет. Этот факт говорит о наличии
оптимальных условий для распространения микрофилярий комарами.
D.repens развивается так же как D. immitis, однако развитие D.repens в
организме
собак
происходит
на
6
недель
быстрее,
то
есть
срок
преимагинального развития составляет около 6 мес. (Д.Р. Архипова, 2003).
Установлено, что заболеванию подвержены собаки всех возрастных
групп, за исключением животных до 1 года. При этом наибольшая
экстенсивность инвазии отмечена у собак в возрасте 4-6 лет. Также отмечена
существенная разница в экстенсивности инвазии в разное время года.
Максимальную ЭИ отмечали у собак летом. В зимний период наблюдалось
значительное снижение инвазии. Максимальное количество микрофилярий в 20
мм3 крови собак отмечали в летний период (253,7±21,4 экз.), зимой данный
показатель снижался до 27, 2±6,4 экз. (Д.Р. Архипова, 2003).
Кошка считается более редким хозяином для дирофилярий, чем собака.
В.Б. Ястреб в 2003-2004 гг. провел исследование 438 проб крови от кошек из
Москвы и Московской области и выделил микрофилярий у двух кошек в
6
возрасте 4 и 9 лет. Интенсивность инвазии была 26 и 38 личинок в 1 мл крови.
Микрофилярии были идентифицированы как личинки D. immitis.
Симптомы болезни
При сердечном дирофиляриозе (рис. 1) клинически болезнь начинает
проявляться с началом гипертрофии желудочка. Развивающееся позже
расширение сердца выражается в сердечной недостаточности, которая в свою
очередь сопровождается отеком легких, почек и печени, повышенным
портальным давлением, асцитом, гидротораксом и отеком различных частей
тела. Симптомы болезни зависят от интенсивности инвазии. Наиболее общими
признаками являются хронический кашель, одышка, хрипы в легких, цианоз
кожи
и
общее
недостаточности,
истощение.
Позже
выражающиеся
в
развиваются
учащенном
явления
затрудненном
сердечной
дыхании,
появлении шумов в сердце и коллапсе после целенаправленной нагрузки.
При высокой степени инвазии D. immitis у животных развивается так
называемый
полостной
синдром,
обусловленный
наличием
большого
количества
гельминтов, локализующихся в синусе полых вен и правом
предсердии. При этом происходит частичная преграда притока крови к сердцу,
развивается недостаточность трехстворчатого клапана и легочная артериальная
гипертензия. Кроме того паразиты оказывают разрушающее действие на
эритроциты, что клинически проявляется гемоглобинурией. Как осложнение
может разбиваться печеночная и почечная недостаточность. Клинически
полостной синдром проявляется внезапным началом анорексии, вялости,
слабости и, иногда, кашля. Наличие гемоглобинурии является характерным для
этого синдрома. При клиническом исследовании устанавливают анемию
слизистых оболочек, слабый пульс, переполнение и пульсацию яремных вен,
7
гепатоспленомегалию и одышку. При аускультации грудной полости выявляют
систолический сердечный шум при недостаточности трехстворчатого клапана,
акцент первого тона, и ритм галопа. Также развивается асцит, желтуха и
кровохарканье. Температура тела либо не изменяется, либо незначительно
повышена.
Однако очень часто у животных при дирофиляриозе на момент
исследования никаких клинических признаков не отмечается.
При
дирофиляриозе
подкожной
клетчатки
болезнь
клинически
проявляется у 20% инвазированных собак: наблюдаются поражения кожи в
области головы и на лапах в виде папулезного дерматита. Кожа в этих местах
гиперемирована, папулы наполнены серозным или гнойным содержимым, в
котором обнаруживаются личинки дирофилярий. При этом могут наблюдаться
потеря аппетита, снижение упитанности и быстрая утомляемость. При
интенсивной инвазии возможно поражение периферической нервной системы в
виде парезов конечностей. Дирофиляриоз подкожной клетчатки является
хроническим заболеванием, длящимся несколько лет.
Лабораторные методы диагностики
Кровь для исследования на микрофилярии желательно брать вечером.
При подозрении на дирофиляриоз кровь (при отсутствии микрофилярий в
первой пробе) исследуют 2-3 раза с 1-2-х недельными интервалами. С целью
более эффективной постановки диагноза и выявления микрофилярий в крови в
большем количестве, особенно при слабой интенсивности инвазии или в
период сезонной диапаузы (зимой) или суточной периодичности (днем),
рекомендуется за 30-60 минут до исследования крови вводить дексаметазон в
дозе 4 мг на голову (Архипова Д.Р., 2003). Применение дексаметазона вызывает
8
провокацию микрофиляриемии в крови собак в первые 30-60 минут после его
введения.
Микрофилярии в крови животных можно обнаружить следующими
лабораторными методами:
1. Микроскопией капли свежей цельной крови.
2. Исследованием сыворотки крови.
3. Проверкой гемолизированной крови с использованием
а) уксусной кислоты,
б)2%-ного формалина (модифицированный метод Кнотта).
1. Микроскопия капли свежей крови под малым увеличением
микроскопа (х 10) является наиболее легким и быстрым, но не всегда надежным
методом. Этот метод можно использовать при высокой степени инвазии, но при
слабом заражении собак использование этого метода не всегда дает
положительные результаты. Кровь для исследования берут в вечернее время из
периферических
сосудов,
разводят
физиологическим
раствором
1:1
и
помещают на предметное стекло, сверху накрывают покровным стеклом.
Подвижные микрофилярии заметны по активному движению их между
эритроцитами.
2. Для исследования сыворотки крови несколько миллилитров венозной
крови от собаки берут в пробирку. Кровь свертывается, а микрофилярии
мигрируют в сыворотку. Сыворотка со сгустком должна постоять в пробирке
несколько часов. После этого пастеровской пипеткой берут несколько капель
сыворотки со дна пробирки или в месте соприкосновения сыворотки со
сгустком крови. Эти капли помещают на предметное стекло, накрывают
покровным и исследуют под малым увеличением микроскопа на наличие
подвижных микрофилярий. Если кровь до исследования находилась в
9
холодильнике, то предметное стекло с каплями сыворотки выдерживают
несколько минут при комнатной температуре для того, чтобы личинки
дирофилярий
восстановили
свою
подвижность.
С
целью
облегчения
обнаружения личинок препарат можно окрасить. Для этого под покровное
стекло заливают 1 каплю водного раствора метиленового синего (1: 1000).
Препарат можно положить в чашку Петри со смоченными водой кусочками
ваты и хранить в холодильнике (при температуре 0 оС - 2 оС) - при этом
личинки сохраняют жизнеспособность до нескольких дней, их двигательная
активность восстанавливается после выдерживания препарата некоторое время
при комнатной температуре.
3.Исследование гемолизированной крови.
Метод с применением уксусной кислоты. К 1 мл венозной крови
добавляют 5 мл 2%-ного раствора уксусной кислоты. Смесь центрифугируют
при 100 об/мин в течение 3-5 минут. Надосадочную жидкость выливают и
осадок микроскопируют для обнаружения микрофилярий. При этом методе
личинки погибают и их часто трудно обнаружить в исследуемом материале.
Модифицированный метод Кнотта дает наилучшие результаты при
практической постановке диагноза на наличие микрофилярий у собак
(эффективность 85-95%). Метод заключается в следующем: к 1 мл венозной
крови добавляют 10 мл 2%-ного раствора формалина. Получившийся раствор
хорошо перемешивают и центрифугируют при 1500 об/мин в течение 5 мин.
Надосадочную жидкость удаляют, а осадок смешивают с равным объемом
метиленового синего в разведении 1:1000 и оставляют для окрашивания на 5
мин. Окрашенный осадок микроскопируют для обнаружения фиксированных
окрашенных микрофилярий (рис. 2).
Достоинством модифицированного метода Кнотта является то, что
микрофилярии равномерно окрашиваются. Это позволяет дифференцировать
10
микрофилярии на видовом уровне, поскольку только Dirofilaria immitis является
высоко
патогенным
видом.
Dirofilaria
repens
умеренно
патогенна.
Микрофилярии видов Dipetalonema reconditum и Dipetalonema dracunculoides,
также паразитирующие у собак, слабопатогенны. Половозрелые особи
Dipetalonema reconditum паразитируют у собак в полости тела, соединительной
ткани и почках; Dipetalonema dracunculoides - в брыжейке. Оба этих вида
нематод распространены в основном в Италии, США и Африке.
Дифференциальная диагностика микрофилярий
по морфологическим
признакам представлена в таблице 1.
Для фиксации и окрашивания микрофилярий можно также применять
метод окрашивания тонких мазков крови по Романовскому-Гимзе (рис. 3).
Для этого берут кровь из периферических сосудов, готовят тонкие мазки (от
одного животного желательно сделать 3-4 мазка), которые высушивают на
воздухе. Высушенные мазки фиксируют в метиловом спирте (5 минут) или в
этиловом спирте 90-96о (15 минут). После фиксации мазки вновь высушивают
на воздухе. Для приготовления рабочего раствора краски необходимо взять 1-3
капли
фабричного
раствора
краски
Романовского-Гимзе
и
1
мл
дистиллированной воды. Окрашивают мазки в течение 20-30 мин, после чего их
промывают дистиллированной водой, высушивают и просматривают под
микроскопом.
Также для этих целей можно применять метод окрашивания толстой
капли крови: каплю периферической крови наносят на предметное стекло и
добавляют 2-3 капли дистиллированной воды. При этом эритроциты
гемолизируются.
Затем
делают
толстый
мазок,
который
высушивают,
фиксируют и окрашивают по Романовскому-Гимзе.
Для дифференциации личинок D. immitis от личинок Dipetalonema
reconditum предложен следующий метод: 1 мл крови смешивают с 9 мл 2%-ного
11
раствора формалина; смесь центрифугируют 5 минут. Осадок помещают на
предметное стекло, добавляя 1 каплю метиленового синего в разведении
1:1000. При просмотре под микроскопом обращают внимание на хвостовые
концы обнаруженных личинок: у микродирофилярий хвост прямой, а у личинок
D. reconditum он изогнут в виде крючка.
Таблица 1.
Морфологические признаки фиксированных микрофилярий для
дифференциальной диагностики.
Длина (мкм):
Ширина
Dirofilaria
Dirofilaria
Dipetalonema
Dipetalonema
immitis
repens
reconditum
dracunculoides
262,1-338,2
274,6-361,9
241,2-286,9
190,8-211,8
4,0-6,2
5,8-7,3
3,8-5,0
4,8-5,8
тупой
конический
часто крючко-
прямой
(мкм):
Передний
конический прямоугольный
конец
Задний конец
прямой
прямой
образный
Для обнаружения микрофилярий в крови можно также применять метод
Куликова, который заключается в следующем: 20 мл венозной крови
смешивают с 2 мл 3,8%-ного водного раствора лимоннокислого натрия
(цитрата натрия) и отстаивают 20-25 минут. По истечении этого времени в
пробирке образуется 3 слоя: внизу - эритроциты, в середине - лейкоциты и
микрофилярии, вверху - плазма крови. Берут пипеткой средний слой, каплями
наносят на предметное стекло, накрывают покровным стеклом и исследуют при
малом и среднем увеличении микроскопа.
12
Все вышеперечисленные методы не предусматривают количественного
учета микрофилярий в крови. Однако для определения интенсивности инвазии,
изучения сезонной и возрастной динамик инвазированности и оценки
эффективности лечебно-профилактических мероприятий при дирофиляриозах
собак определение количественных показателей необходимо.
Поэтому
Архиповой Д.Р. (2003) разработан количественный метод прижизненной
диагностики дирофиляриозов собак, основанный на применении меланжера
для подсчета количества лейкоцитов и счетной камеры Фукс-Розенталя.
Меланжер до метки I заполняют кровью и до метки II раствором, состоящим из
ледяной уксусной кислоты, раствора Фуксина и дистиллированной воды в
соотношении 3:4:93. Для равномерного смешивания меланжер с кровью и
раствором кладут на вибратор на 2-3 минуты. К чистой и сухой камере ФуксРозенталя притирают покровное стекло до появления колец Ньютона. Затем
раствор в меланжере встряхивают и каплю (но не первую) раствора наносят на
среднюю часть пластинки камеры и при увеличении микроскопа в 100 раз
подсчитывают количество микрофилярий во всех квадратах. Полученное
количество личинок умножают на 6,23, так как для 20 мм 3 раствора
потребовалось бы
6,23
объема камеры. Для определения количества
микрофилярий в 1 мл крови число выявленных микрофилярий в 20 мм 3
умножается на 50.
Эффективность
описанных
методов
может
повышаться
при
их
комплексном применении. Однако ни один из этих методов не может
исключать
дирофиляриоз
окончательно
из-за
распространенности
амикрофиляриемической формы болезни и при небольшом количестве
циркулирующих
в
крови
личинок.
Амикрофиляриемическая
форма
дирофиляриоза связана, очевидно, с развитием иммунологических реакций,
13
приводящих к лизису микрофилярий. При амикрофиляриемической форме врач
вынужден ставить диагноз на основании клинических, патологоанатомических,
иммунологических, и рентгенографических методов диагностики.
Метод непрямой иммунофлюоресценции
используется, с целью
обнаружения антител к микрофиляриям, и может использоваться для
диагностики дирофиляриоза при наличии микрофилярий в крови, и в тех
случаях, когда личинки отсутствуют из-за иммунного разрушения. Также
разработан метод иммуноферментного анализа при диагностике дирофиляриоза
(ELISA), при помощи которого можно обнаружить антитела к дирофиляриям
или сам антиген. Тесты, обнаруживающие непосредственно дирофиляриозный
антиген,
являются
более
предпочтительными.
Метод
непрямой
иммунофлюоресценции и ИФА разработаны за рубежом, где стали широко
использоваться из-за их точности, чувствительности, специфичности и
быстроты исполнения.
Рентгенография грудной полости хотя и не является наилучшим
методом для обнаружения дирофилярий, но позволяет косвенно определить
степень инвазии по оценке изменений в сердце и легких. Рентгенографические
изменения включают увеличение правого желудочка, расширение легочной
артерии
в
месте
ее
выхода
из
сердца,
расширение
и
увеличение
рентгенографической плотности легочных артерий, а также извитость легочной
артерии. Если при этом присутствует сердечная недостаточность, то отмечается
увеличение синуса полых вен, печени и селезенки, а также наблюдается
плевральный выпот или асцит.
Электрокардиография
позволяет
обнаружить
аритмии,
но
по
сравнению с рентгенографией не дает возможности выявить увеличение
полостей сердца. Если по результатам рентгенографии нельзя предположить
дирофиляриоз, то маловероятно, что электрокардиограмма поможет установить
14
эту инвазию.
Обнаружение увеличения правого желудочка позволяет
заподозрить дирофиляриоз.
Эхокардиография относительно более чувствительна в обнаружении
индуцированного
гельминтами
увеличения
правого
отдела
сердца.
Перекрестная эхокардиография может время от времени демонстрировать
гельминтов в легочной артерии.
Гематологические (морфологические) и биохимические изменения
показателей крови не позволяют поставить точный диагноз на дирофиляриоз,
но помогают определить патологические изменения в органах и тканях,
которые могут быть связаны с дирофиляриозом.
Наиболее
часто
при
дирофиляриозах
встречаются
гипохромная
нерегенеративная анемия, нейтрофилия, эозинофилия и базофилия. В тяжелых
случаях, особенно, если присутствует сердечная недостаточность, повышается
активность АлАТ и АсАТ, иногда отмечается гипербилирубинемия. Азотемия,
может быть вне почечного происхождения, если присутствуют дегидратация
или порок сердца, или может быть вторична при гломерулонефрите.
Гломерулонефрит может усложнять клиническую картину.
При исследовании мочи редко выявляют изостенурию, чаще наблюдается
альбуминурия.
Результаты исследований Архиповой Д.Р. (2003) показали, что наиболее
патогенными являются дирофилярии вида D. immitis, которые вызывают
снижение количества эритроцитов, гемоглобина, СОЭ и повышение количества
лимфоцитов и эозинофилов. D. repens, паразитируя в организме собак
вызывают менее выраженные изменения в показателях крови. В биохимических
показателях крови собак также наблюдаются более существенные изменения
при дирофиляриозе, вызванном D. immitis.
15
В случаях когда диагноз на дирофиляриоз приходиться ставить без
обнаружения микрофилярий в крови (при отрицательных 2-3-х кратных
исследованиях с интервалом в 1-2 недели) можно сделать следующие выводы:
1. До постановки диагноза для лечения был использован микрофиляриоцид, о
чем неизвестно врачу.
2. Возможно, что у собаки паразитируют только самцы или самки.
3. Дирофилярии не достигли половой зрелости и не отрождают личинок.
4. Собака страдает от болезни сердца или сосудов другой этиологии.
При отсутствии половозрелых дирофилярий и при обнаружении
микрофилярий:
1. Возможно, что половозрелые дирофилярии погибли несколько месяцев
назад, а микрофилярии остались в крови.
2. Обнаруженные микрофилярии были личинками Dipetalonema sp. или
некоторых других филяриид.
Используя существующие методы, невозможно определить количество
половозрелых дирофилярий в организме, исходя из числа обнаруженных
микрофилярий.
ЛЕЧЕБНО-ПРОФИЛАКТИЧЕСКИЕ МЕРОПРИЯТИЯ
Терапия при поражении половозрелыми формами гельминтов часто
сопряжена с тромбоэмболическими осложнениями, особенно при высокой
степени инвазии.
Лечение при поражении половозрелыми формами гельминтов.
Тиацетарсамид натрия (капарсолат, «Мериал») применяют внутривенно
2 раза в день в дозе 2,2 мг/кг в течение 2 дней. Лечение можно повторить через
3-5 мес. Гельминты начинают погибать в течение первой недели после
16
обработки, этот процесс завершается в пределах 3 недель. Гибнет от 46% до
96%
паразитов,
Тиацетарсамид
поэтому
-
необходимо
весьма
проведение
токсичный
повторных
препарат
курсов.
(гепатотоксичный,
нефротоксичный), может вызвать некроз кожи, гепаторенальную дисфункцию и
эмболию легочной артерии мертвыми гельминтами. Некроз кожи можно
предотвратить введением в месте инъекции физиологического раствора.
Тиацетарсамид оказывает губительное действие только на взрослых
дирофилярий, начиная с 7-ми месячного возраста.
Применение аспирина в дозе 5 мг/кг ежедневно уменьшает вероятность
закупорки легочной артерии мертвыми гельминтами, так как способствует их
лизису. Для профилактики тромбоэмболии можно применять гепарин в дозе 50100 ед./кг подкожно 3 раза в день в течение 1 недели до лечения и в течение
всего лечения.
Меларсомин дигидрохлорид (иммитицид, «Мериал») применяют в дозе
2,5 мг/кг два раза с интервалом 3 часа в/м в поясничную мускулатуру.
Двукратное
применение
меларсомина
действует
губительно
на
96%
дирофилярий.
Меларсомин эффективен как против взрослых, так и против личинок 5-й
стадии. При применении меларсомина не отмечено токсическое действие на
печень. Наиболее частые побочные явления при применении меларсомина
заключались в проявлении воспалительной реакции на месте введения.
Ивомек применяют в дозе 0,2 мг/кг подкожно – вызывает супрессию
репродуктивной системы взрослых гельминтов.
Лечение препаратами, действующими на микрофилярий.
• Ивермектин (ивомек) в дозе 0,2 мг/кг п/к однократно;
• Фентион в дозе 4,4 мг/кг п/к 1-3-х кратно с 2-недельным перерывом;
17
• Левамизол в дозе 11 мг/кг п/к в течение 10 дней (следует применять с
осторожностью, так как возможны побочные эффекты – возбуждение,
мышечный тремор, гиперсаливация, рвота, одышка и др.);
• Таблетки Диронет в дозе 6 мкг/кг (1 таб./10 кг) однократно;
• Таблетки Абиктин в дозе 0,05 мг/кг однократно;
• Мебендазол в дозе 40-80 мг/кг внутрь в течение 30 дней.
С целью профилактики дирофиляриозов собак предложены следующие
препараты:
Таблетки Диронет применяют в дозе 6 мкг/кг (1 таб./10 кг) 1 раз в месяц в
период лета комаров.
По указанию фирмы Pfizer стронгхолд применяют для профилактики
дирофиляриозов 1 раз в месяц в период сезона активности комаров. Стронгхолд
можно назначать также за 1 месяц до перевозки собак в регионы
распространения дирофиляриозов с целью предотвращения заражения собак и
дальнейшего распространения возбудителей дирофиляриозов.
Д.Р. Архиповой (2003) изучена персистентность микрофилярицидного
действия двух отечественных препаратов - ивермека и абиктина (в дозе 6
мкг/кг).
Результаты
исследований
показали,
что
персистентность
микрофилярицидного действия ивермека составила 45 дней, абиктина
соответственно 40 дней. Рекомендовано применение этих двух препаратов для
профилактики дирофиляриозов собак перед началом периода лета комаров и
затем через каждые 1,5 месяца в течение периода активности комаров.
Для профилактики дирофиляриозов применяют отпугивающие средства
или инсектициды против комаров.
18
Инсектицидный препарат Адвантикс (в форме пурона), обладающий
репеллентными и инсектицидными свойствами применяют для отпугивания
комаров. Препарат наносят на кожу собаки в три-четыре места на спине от
лопаток до крестца. Имидаклоприд и перметрин, входящие в состав препарата
оказывают инсектицидное, акарицидное и репеллентное действие на насекомых
и иксодовых клещей, паразитирующих на собаках.
Обрабатывают не только животных, но и помещения. Помещения
обрабатывают 1%-ной эмульсией дифоса при норме расхода 20мл/м2 при
помощи дезинфекционных установок (ЛСД, ДУК и др.). Личинок комаров
уничтожают 0,005-0,02%-ной водной эмульсией дифоса из расчета 20-50 г ДВ
на 1 га площади, сульфидофоса - 40-100 г/га, бактокулицида - 0,5-2 кг/га.
БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК
1. Акбаев М.Ш. с соавт. Паразитология и инвазионные болезни животных.- М.:
Колос, 2002.
2. Акбаев М.Ш. с соавт. Практикум по диагностике инвазионных болезней
животных. М., Колос, 1994.
3. Авдюхина Т.И., Супряга В.Г., Постнова В.Ф.. Дирофиляриоз в Российской
Федерации// Роль Российской гельминтологической школы в развитии
паразитологии. Тез. докл. М., 1997. С. 1-2.
4. Архипова Д.Р. Биология дирофилярий и эпизоотология дирофиляриоза собак
в степной зоне юга России: Автореф. ... канд. биол. наук. - М., 2003. - 26 с.
5. Архипов И.А., Архипова Д.Р. Дирофиляриоз. – М., 2004. – 194 с.
6. Скрябин К.И., Петров А.М. Основы ветеринарной нематодологии. М.: Колос,
1964.
19
7. Степанов А.В. Гельминтозы сельскохозяйственных животных в тропических
странах. Нематодозы. Спируратозы, филяриатозы. Учебное пособие - М.:
МВА, 1982.
8. Степанов
А.В.
Лабораторная
диагностика
гельминтозов
сельскохозяйственных животных тропических стран. Методические указания
- М.: МВА, 1983.
9. Ястреб В.Б. Дирофиляриоз кошек в Москве. Материалы докл. науч. конф.
«Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». М., 2005. С. 415417.
10.Cancrini G., Allende E., Favia G., Bornay F., Anton F., Simon F. Canine
dirofilariosis in two cities of Southeastern Spain. Vet. Parasitol., 2000, Sep. 10;
92(1):81-6.
11.Soulsby E.J.L. Helminths, arthropods & protozoa of domesticated animals,
London, Bailliere, Tindal and Cassell, 1968.
20
Рис. 1. Dirofilaria immitis в сердце собаки.
21
Рис. 2. Микрофилярии, окрашенные по методу Кнотта.
22
Рис. 3. Микрофилярии D. immitis, окрашенные
по Романовскому-Гимзе в крови собаки (х 900).