МАТЕРИАЛЫ - Ульяновская государственная
реклама
Министерство сельского хозяйства РФ Федеральное государственное бюджетное учреждение высшего профессионального образования «Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия имени П.А.Столыпина» Департамент ветеринарии Ульяновской области Ульяновская областная общественная организация защиты животных «Флора и фауна» МАТЕРИАЛЫ Международной научно-практической конференции «Актуальные вопросы ветеринарной науки» 9-11 июня 2015 года Ульяновск, 2015 Материалы Международной научно-практической конференции «Актуальные вопросы ветеринарной науки». / Ульяновск, ГСХА им. П.А.Столыпина, 2015. - 271 с. Редакционная коллегия: Дозоров А.В., д.с.-х.н, профессор, ректор Пелевина Н.И., директор Департамента ветеринарии Ульяновской области В.А. Исайчев, д.с.-х.н., первый проректор - проректор по НИР Золотухин С.Н., д.б.н., профессор Васильев Д.А., д.б.н., профессор Богданов И.И., к.вет.н, доцент ISBN 978-5-905970-58-0 Авторы опубликованных статей несут ответственность за достоверность и точность приведенных фактов, цитат, экономико-статистических данных, собственных имен, географических названий и прочих сведений, а также за разглашение данных, не подлежащих открытой публикации. © ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина», 2015 ОРГАНИЗАЦИЯ ГОСУДАРСТВЕННОЙ ВЕТЕРИНАРНОЙ СЛУЖБЫ УЛЬЯНОВСКОЙ ОБЛАСТИ И ЕЁ РОЛЬ В ОБЕСПЕЧЕНИИ БЕЗОПАСНОСТИ ПРОДОВОЛЬСТВИЯ Пелевина Нина Ивановна Директор Департамента ветеринарии Ульяновской области – главный государственный ветеринарный инспектор Ульяновской области На современном этапе развития общества деятельность государственной ветеринарной службы региона неразрывно связана с реализацией государственной политики по решению комплекса социально-экономических задач, из которых одной из наиболее важных является продовольственная безопасность региона и страны в целом. Губернатором - Председателем Правительства Ульяновской области Сергеем Ивановичем Морозовым обозначена генеральная цель работы - повышение уровня и качества жизни в регионе, не смотря на сложную экономическую и геополитическую реальность. От нашей работы зависит благополучие и стабильность нашего региона, сохранение условий для дальнейшего роста экономики и благосостояния граждан. Ветеринария обеспечивает благополучие населения посредством защиты животных и получения безопасных и качественных продуктов питания. Государственная ветеринарная служба Ульяновской области представлена Департаментом ветеринарии (20 человек) и 19 подведомственными учреждениями (800 человек). Финансирование службы осуществляется из средств областного бюджета в рамках государственной программы «Развитие государственной ветеринарной службы Ульяновской области в 2014 - 2018 гг.» Подведомственные учреждения выполняют государственные задания на оказание пяти государственных услуг: 1) Организация и проведение противоэпизоотических мероприятий; 2) Ликвидация заразных и иных болезней животных; 3) Лабораторно-диагностические исследования с выдачей результатов по экспертизе; 4) Ветеринарно-санитарная экспертиза продовольственного сырья и пищевых продуктов животного и растительного происхождения; 5) Подтверждение благополучия перевозимых сельскохозяйственных животных, кормов, продуктов и сырья животного происхождения. С 2016 года в отрасли будет действовать единый перечень государственных услуг, утвержденный на федеральном уровне: - оформление и выдача ветеринарных сопроводительных документов; - проведение мероприятий по защите населения от болезней общих для человека и животных и пищевых отравлений; - проведение мероприятий по предупреждению и ликвидации заразных и иных болезней животных, включая сельскохозяйственных, домашних, зоопарковых и других животных, пушных зверей, птиц, рыб и пчел и их лечению. Департамент ветеринарии выполняет надзорные функции и является учредителем подведомственных учреждений. Кратко остановлюсь на выполнении государственных полномочий, направленных на обеспечение эпизоотического благополучия региона: – План противоэпизоотических мероприятий выполняется своевременно и в полном объеме. – На сегодняшний день в Ульяновской области зарегистрированы заразные инфекционные заболевания: 43 очага бешенство, 6 очагов лейкоз КРС, 1– туберкулез КРС. Бешенство Вопрос профилактики и ликвидации бешенства является актуальным в Ульяновской области, да и в целом по всей России. В 2015 году зарегистрировано 43 неблагополучных пункта, количество очагов по отношению к 2014 году возросло в 7 раз и источником заболевания, в основном, являются дикие животные – лисы. Вопрос бешенства среди безнадзорных животных решается: в регионе с 2010 года разработаны и действуют законы Ульяновской области от 07.10.2010 № 157-ЗО «О регулировании некоторых вопросов в сфере содержания домашних животных и обращения с безнадзорными домашними животными в Ульяновской области», 3 от 07.10.2010 № 158-ЗО «О наделении органов местного самоуправления муниципальных районов и городских округов Ульяновской области государственными полномочиями Ульяновской области в сфере организации отлова безнадзорных домашних животных», утвержден Постановлением Правительства Ульяновской области от 28.12.2010 № 467-П «Порядок отлова безнадзорных домашних животных на территории Ульяновской области», направленные на профилактику возникновения и распространения заболевания бешенством среди безнадзорных домашних животных методом регулирования их численности. Однако, сегодня основная проблема стоит с дикими животными. Законодательная база Российской Федерации не позволяет в жестком режиме проводить отлов диких животных в очагах (отстрел лис разрешен только с ноября по февраль). Этой теме мы посвятим отдельное совещание круглого стола. Лейкоз В 2015 году регионе согласно утвержденным планам проводятся оздоровительные мероприятия 5 неблагополучных пунктов по лейкозу КРС. В 2014 году был снят карантин с 6 неблагополучных пунктов, мероприятия проводились на протяжении длительного периода времени. Но, в связи с выходом в свет Технического регламента Таможенного союза «О безопасности молока и молочной продукции», утвержденного Решением Совета Евразийской экономической комиссии от 09.10.2013 № 67, борьба с заболеванием пошла гораздо эффективнее, чем в прежние годы, по одной простой причине – стали заинтересованы владельцы животных и молочной продукции. Эту тему мы также подробно обсудим. Туберкулез В 2015 году в области был выявлен очаг заболевания туберкулезом. Мероприятия проводятся в плановом режиме, достигнут положительный результат. Какой момент в ликвидации заболеваний я считаю интересным у нас? Решение о снятии карантина в очаге принимается только после проведения обязательной инспекционной проверки, несмотря на то, что таких требований в инструкции нет. Ветеринарно-санитарная экспертиза Ветеринарно-санитарную экспертизу проводят 170 экспертов в 38 лабораториях ветсанэкспертизы. Зарегистрировано и внесено в реестр ветслужбы 35 специализированных мест для убоя. 4 По результатам ветсанэкспертизы только за 2014 год не допущено до реализации около 150 тонн мяса и мясных продуктов, около 4 тонн молочной продукции, 2 тонны рыбной продукции, 36 тонн растительной продукции. Как выглядит динамика по видам продукции за последний год? Снизилось количество экспертиз мяса птицы, свинины, говядины, растёт число экспертиз мясных полуфабрикатов, мяса кроликов, рыбы, молока и молочной продукции. Продовольственные рынки стабильно держат планку на высоком уровне, а вот на мясоперерабатывающих предприятиях и убойных пунктах идет уменьшение продукции. Серьезная проблема – качество проведения ветсанэкспертизы. У нас совсем пропал вынужденный убой, чего в принципе быть не может! Причин много. Одна из самых важных – частные перерабатывающие предприятия отказываются перерабатывать условно-годное мясо. ВСЭ стала работать по «сокращенному» принципу, а результат ‒ угроза здоровью населения. Конечно, экспертиза на крупных перерабатывающих предприятиях поставлена на должный уровень, а вот когда убой идет на мелких убойных площадках, подход к экспертизе значительно упрощается. Вопрос проведения ветсанэкспертизы мы вывели в отдельную тему и хотим его обсудить за круглым столом. Отдельно хочу остановиться на аккредитации ветеринарной деятельности. С 2013 года в работу ветслужбы Ульяновской области внедрена система менеджмента качества. На сегодняшний день четыре государственных учреждения получили бессрочные аттестаты аккредитации в национальной системе Россаккредитации Минэкономразвития России. Подали заявку и проходят процедуру аккредитации еще пять ветеринарных лабораторий. ОГБУ «Симбирский центр ветеринарной медицины» проходит первый этап международной аккредитации в системе ILAC. В 2014 году повысили квалификацию 156 ветеринарных специалистов. Обучение проходило: в Европейском учебно-консультационном центре в г.Санкт-Петербурге; Литовском Национальном институте оценки риска в продовольствии и ветеринарии в г.Вильнюсе; в Центральной научно-методической лаборатории в г.Москве; в Федеральном научно-исследовательском институте здоровья животных в г.Владимире; и, конечно, в Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. Что из себя представляет система менеджмента качества и для чего она нам нужна? Это – эффективная организация ветеринарного дела, самоконтроль на всех этапах работы, основными принципами которых являются: компетентность, независимость, непредвзятость, неподкупность и объективность. Это – мировой стандарт работы ветеринарной службы и мощный рычаг повышения востребованности наших услуг. Только за 2014 год число обращений за оказанием услуг по лабораторным испытаниям возросло на 35 % и привычным стало, что ветеринарная служба исследует шоколад, безалкогольные напитки, крупы, и даже биологически-активные добавки. Вопросы аккредитации мы рассмотрим на научном семинаре. Не теряет свою актуальность лечение мелких домашних животных, проблема с безнадзорными животными. С 2012 на базе нашего подведомственного учреждения в г.Димитровграде действует круглосуточный стационар. Мы с удовольствием поделимся И об основной функции Департамента – контрольно-надзорной деятельности. Надзорные мероприятия проводятся в соответствии с требованиями Федерального закона от 19.12.2008 № 294-ФЗ «О защите прав юридических лиц и индивидуальных предпринимателей при осуществлении государственного контроля (надзора) и муниципального контроля», Кодекса Российской Федерации об административных правонарушениях, Соглашения о взаимодействии Департамента ветеринарии Ульяновской области и Управления внутренних дел по Ульяновской области от 30.07.2009, Планом проведения государственного ветеринарного лабораторного мониторинга качества и безопасности пищевых продуктов и кормов, утвержденного Губернатором – Председателем Правительства Ульяновской области С.И.Морозовым, 10 государственными ветеринарными инспекторами Департамента ветеринарии. В 2014 году проведено 1165 плановых и внеплановых надзорных мероприятий, привлечены к административной ответственности 856 физических, юридических лиц и индивидуальных предпринимателей. В бюджеты муниципальных районов и городских округов поступило 1659,2 тысяч рублей. Нагрузка на одного инспектора составила 129 проверок, выявляемость нарушений – 74 %. С 2013 года в целях реализации приоритетных направлений государственной политики в области обеспечения качества и безопасности пищевой продукции и здорового питания населения Ульяновской области, охраны его здоровья, а также для разработки мер по предотвращению поступления на потребительский рынок и оборота на нем некачественной и опасной пищевой продукции проводится государственный ветеринарный лабораторный мониторинг в соответствии с утверждённым Губернатором – Председателем Правительства Ульяновской области «Планом проведения ветеринарного лабораторного мониторинга остатков запрещённых и вредных веществ в продуктах животного происхождения и кормах». Мониторинг проводится в дошкольных, школьных образовательных учреждениях, учреждениях здравоохранения, учреждениях социальной защиты, в торговой сети и на перерабатывающих предприятиях. Особое внимание уделяется исследованиям на наличие ГМО в продуктах питания. Озвучу результат 2014 года. Генетически-модифицированных организмов в продуктах не выявлено. Приостановлено 2 тонны пищевой продукции, выявлено 48 случаев фальсификации молочной продукции жирами немолочного происхождения, расторгнуто 20 контрактов с поставщиками некачественной продукции, в торговой сети выявлен и ликвидирован один очаг заболевания сальмонеллёзом. Еще одна важная задача поставлена сегодня перед нами. В инвестиционном послании Губернатора – Председателя Правительства Ульяновской области С.И.Морозова на 2015 год обозначено, что Ульяновская область станет пилотной площадкой для внедрения риск-ориентированной модели контрольно-надзорной деятельности. Органы государственного контроля и надзора будут проверены на предмет их комфортного взаимодействия с предпринимателями. Губернатором отмечено, что мы готовы «забрать» себе ряд полномочий государственного надзора, которые на сегодня являются федеральными. Например, в области обеспечения качества и безопасности пищевых продуктов животного и растительного происхождения при их изготовлении, хранении, перевозке и реализации. А роль ветслужбы в данном направлении мы и будем обсуждать. Я надеюсь, что все поставленные проблемные вопросы найдут решения в ходе нашего совместного обсуждения. Дорогие наши коллеги! Сегодня мы будем презентовать наш опыт и учиться у вас! В этом и есть цель нашего форума! 5 УДК 619:616 НОВАЯ ТЕХНОЛОГИЯ ПРОФИЛАКТИКИ ОТЪЕМНОГО СТРЕССА ПОРОСЯТ А.В. Андреева, доктор биологических наук, профессор, О.Н. Николаева, кандидат биологических наук, Е.Т. Муратова, кандидат биологических наук, ГБУ БашНПВЛ, М.Л. Мюристая, кандидат биологических наук, Г.И. Баишева, кандидат биологических наук alfia_andreeva@mail.ru ФГБОУ ВПО «Башкирский ГАУ» Ключевые слова: поросята, отъемный стресс, профилактика, микробиоценоз, пробиотики Разработана экологически безопасная технология коррекции нормофлоры кишечника поросят при отъемном стрессе. Установлено, что метод оказывает ростостимулирующий эффект и обладает профилактической эффективностью при расстройствах желудочно-кишечного тракта поросят в послеотъемный период. Также технология способствует повышению сохранности поросят до 90-100 % и позволяет снизить затраты на проведение лечебно-профилактических мероприятий в свиноводстве. Важнейшая задача агропромышленного комплекса страны – обеспечение населения продуктами питания высокого качества, что невозможно без увеличения продуктивности сельскохозяйственных животных, которое может быть осуществлено путем целенаправленного выращивания молодняка, так как от состояния здоровья последнего зависят будущие рост, развитие, адаптация к неблагоприятным факторам окружающей среды и максимальная реализация генетического потенциала [4,5]. На сегодняшний день одним из самых рентабельных направлений в животноводстве является свиноводство. Желудочно-кишечные инфекции поросят-отъемышей, являются одной из наиболее острых проблем в современном животноводстве Российской Федерации, так как они имеют широкое распространение, особенно в крупных хозяйствах, и причиняют большой экономический ущерб [6]. В отъёмный период поросята подвергаются воздействию двух основных стресс-факторов – отлучение от свиноматки и переход от одного корма к другому, сопровождающихся временным нарушением аппетита, которое поросенок стремится компенсировать уже через несколько часов путем переедания высокобелкового корма на голодный желудок и не способен его усвоить. В период отъёма пищеварительная система у поросят еще недостаточно развита. Вследствие недораз6 витости ферментной системы желудочно-кишечного тракта поступивший корм не полностью переваривается, избыток неусвоенных питательных веществ и продуктов их ферментации приводит к задержке в кишечнике воды [3,7]. Включение пробиотиков в технологию выращивания молодняка - наиболее современный способ профилактики послеотъемного стресса и как его следствие желудочных болезней, основанный на экологически безопасных механизмах поддержания высокого уровня колонизационной резистентности кишечника. Однако, введение в организм пробиотиков, полученных вне самого организма, не всегда может производить достаточный эффект. Поэтому необходимы исследования в направлении поиска средств, оказывающих благоприятное воздействие на колонизацию кишечника бифидо- и лактобактериями путем создания благоприятного физиологического и биохимического режима в кишечнике с использованием пробиотиков в комплексе с препаратами прополиса и антиоксидантами [1,2]. Исходя из вышеизложенного, целью работы явилась разработка экологически безопасного метода коррекции нормофлоры кишечника поросят при отъемном стрессе. Материал и методы исследований. По принципу аналогов были подобраны поросята-отъемыши 45-дневного возраста и разделены на восемь групп (n=10). Животные первой группы (контрольные) находились на основном рационе – ОР), второй группы – получали кормовую добавку «Микровитам» + пробиотик «Ветоспорин» + прополисное молочко; третьей – пробиотик «Ветоспорин» + прополисное молочко, четвертой – кормовую добавку «Микровитам» + пробиотик «Ветоспорин»; пятой – кормовую добавку «Микровитам» + прополисное молочко; шестой – кормовую добавку «Микровитам»; седьмой - пробиотик «Ветоспорин»; восьмой прополисное молочко. Разовая доза кормовой добавки «Микровитам» составила 1 г на 1 кг корма, «Ветоспорин» - 1 мл на 10 кг массы тела и прополисного молочка – 10 мл внутрь на одно животное. Препараты задавались один раз в день до кормления в течение 10 дней. До начала опыта, а затем на 10-, 30-, 60-й дни брали содержимое кишечника для микробиологических исследований. Качественное и количественное исследование микрофлоры кишечника проводили по Э. П. Касаткиной с соавт. (1996). Для изучения профилактической эффективности применяемых препаратов учитывали физиологическое состояние поросят, заболеваемость, наличие диареи, течение и исход болезни. Абсолютный, среднесуточный приросты живой массы поросят рассчитывали по общепринятой методике. Относительный прирост живой массы вычисляли по формуле С. Броди (Н. В. Плохинский, 1970). Экономическую эффективность профилактических мероприятий определяли по В. М. Авилову (2000). Статистическую обработку экспериментальных данных проводили с использованием пакета статистического анализа для Microsoft Excel. Достоверность различий между группами по количественным признакам оценивалась при помощи t-критерия Стьюдента. Различия считали статистически значимыми при Р<0,05 (Г. Ф. Лакин, 1973). Результаты исследований. Установлено, что отъемный стресс у поросят сопровождается угнетением активности лакто- и бифидофлоры кишечника. Применение пробиотика в комплексе с препаратами прополиса и антиоксидантами способствуют восстановлению нормобиоза кишечника, выражающегося в увеличении количества лактои бифидофлоры, а также увеличению прироста и сохранности поросят при отъемном стрессе. Так, у поросят-отъемышей пятой и шестой опытных групп содержание бифидобактерий в кишечнике на 60-й день исследования превышало показатели фона в 1,23 (на 1,5 lg КОЕ/г) и 1,26 раза (на 1,72 lg КОЕ/г). У животных седьмой и восьмой опытных групп к 60-му дню также наблюдалась тенденция к повышению количества бифидобактерий и их уровень превысил показания фона в 1,23 (на 1,48 lg КОЕ/г) и 1,22 раза (на 1,4 lg КОЕ/г). Максимальное содержание лактобактерий в кишечнике поросят наблюдалось в четвертой опытной группе, что превысило фоновые показатели на 60 – й день исследований в 1,42 раза (на 2,11 lg КОЕ/г). Конкурентными преимуществами данной технологии являются: - рекомендуемый метод способствует профилактике отъемного стресса и повышению сохранности поросят до 90-100 %; - технология позволяет снизить затраты на проведение лечебно-профилактических мероприятий (экономическая окупаемость на один рубль затрат составляет 4,9 – 22,5 руб.). Кроме того, разработанная технология: - не имеет противопоказаний к применению; - не вызывает аллергии у животных; - не дает побочных эффектов и привыкания; - высокая экономическая эффективность, экологичность, простота выполнения процедур, доступность препаратов позволяет рекомендовать метод для широкого применения. Результаты научно-исследовательской работы могут быть реализованы в современных животноводческих комплексах и крестьянско-фермерских хозяйствах. При расчете на 150 голов свиноматок при использовании новой технологии профилактики отъемного стресса поросят экономическая эффективность составит 1 млн. 409 тыс. 760 руб. Технология позволит снизить затраты на проведение лечебно-профилактических мероприятий. Предотвращение заболеваемости в опытной группе составило 70%, в контрольной 30%. Сохранность в опытной группе составила 100%, в контрольной 80%. 1. Среднесуточные приросты в контрольной 214,3 г, в опытной 451,3 г, что значительно превышает показатели контрольной группы и сроки достижения массы в 110 кг опытной группе значительно меньше контрольной. 2. Использование технологии обеспечивает гарантированное производство экологически безопасных и биологически полноценных продуктов питания. 3. Чистая прибыль на голову составила в опытной группе 4272 руб., в то время как в контрольной прибыль составила 3815 руб. 7 4. На стоимость производства свинины большое значение влияет качество и количество поросят, которые были получены при отъеме. Заключение. Таким образом, новая технология профилактики отъемного стресса поро- сят обладает уникальными свойствами, гарантирующими профилактическую эффективность и экологическую безопасность, что позволяет рекомендовать её для широкого применения в сельском хозяйстве. Библиографический список: 1. Андреева, А.В. Коррекция микробиоценоза кишечника поросят при отъемном стрессе / А.В. Андреева, Г.И. Баишева, Г.Б. Бозова // Ученые записки казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э.Баумана. – 2011. – Т. 211. – С. 16-21. 2. Андреева, А.В. Профилактика расстройства желудочно-кишечного тракта у поросят в послеотъемный период / А.В. Андреева, О.Н. Николаева // Современные проблемы интенсификации производства свинины в странах СНГ: Сборник научных трудов XVII Международной научно-практической конференции по свиноводству, Ульяновск, 2010. – С. 205-209. 3. Использование пробиотиков и микробных препаратов направленного действия при выращивании молодняка / А.В. Андреева и [др.]. - Состояние, проблемы и перспективы производства и переработки сельскохозяйственной продукции: Материалы Международной научно-практической конференции, посвященной 10-летию факультета пищевых технологий (29-30 марта). - Уфа, ФГОУ ВПО «Башкирский ГАУ», 2011. – С. 4-10. 4. Кузнецов, А. Ф. Решение проблемы стресса у поросят / А. Кузнецов // Ветеринария сельскохозяйственных животных. - 2008. - № 10. - С. 20-21. 5. Козьменко, В. Адаптация поросят-отъёмышей / В. Козьменко, Е. Павличенко, Н. Наливайская // Животноводство России. – 2007. - № 6. – С. 27. 6. Олива, Т.В. Выращивание поросят без применения антибиотиков / Т. В. Олива // Безопасность и качество товаров. - 2008. - С. 54-55. 7. Nikolayeva O.N. Application phitoprobiotics and polysalts of microcells in animal industries / O. N. Nikolaeva, M.L. Mjuristaya, A.V.Andreeva / European journal of natural history. – 2007. - №6. – P. 145. NEW TECHNOLOGY FOR PREVENTION OF STRESS WEANED PIGS V. Andreeva, O. N. Nikolaeva, E. T. Muratova, M. L. Myuristaya, G. I. Baisheva Keywords: pigs, stress, prevention, microbiocenosis, probiotics. Summary: Ecologically safe technology of correction normoflor of intestines of pigs is developed at an stress. It is established that the method renders effect and possesses preventive efficiency at disorders of a digestive tract of pigs during the period. Also the technology promotes increase of safety of pigs to 90-100% and allows to lower costs of carrying out treatment-and-prophylactic actions in pig-breeding. 8 УДК 619:576 ФАГИ PROVIDENCIA ДЛЯ ЛЕЧЕНИЯ И ПРОФИЛАКТИКИ ЗАБОЛЕВАНИЙ МОЛОДНЯКА СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ Н.Г. Барт, кандидат биологических наук., ст.преподаватель тел. 8(8422) 55-95-47, bart1967@mail.ru С.Н. Золотухин, доктор биологических наук, профессор тел. 8(8422) 55-95-47, E-mail: fvm.zol@yandex.ru Д.А. Васильев, доктор биологических наук, профессор тел. 8(8422) 55-95-47, E-mail: dav_ul@mail.ru ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А.Столыпина» Ключевые слова: Бактериофаги, Providencia, литическая активность, терморезистентность, специфичность. В данной статье представлены результаты работы по выделению и изучению биологических свойств бактериофагов Providencia. В результате исследований были изучены: литическая активность, терморезистентность и специфичность. Введение. Бактерии рода Providencia широко распространены в природе, их выделяют из воды, почвы, фекалий и мочи животных и человека. Некоторые штаммы, вероятно, входят в состав нормальной микрофлоры кишечника, однако среди них встречаются и патогенные варианты, способные вызывать вспышки гастроэнтеритов, токсикоинфекций мочевых инфекций у детей и взрослых людей, раневые послеоперационных инфекций, желудочно-кишечных заболеваний у молодняка животных. Эффективность лечебных мероприятий во многом зависит от своевременности диагностики болезни, поэтому совершенствованию методов лабораторной диагностики заболеваний, вызываемых указанными микроорганизмами, является актуальной проблемой. При постановке диагноза бактериологическим методом на заболевания, причиной которых являются представители рода Providencia, существует ряд трудностей. Одна из них состоит в том, что основой идентификации этих бактерий являются их биохимические свойства. Трудоемкость и длительность изучения ферментативных свойств не позволяют быстро и точно идентифицировать названные микроорганизмы. В связи с этим возникла необходимость в поиске альтернативных методов лабораторной диагностики, которые были бы менее трудоемкими, более быстрыми и доступными для лабо- раторий любого уровня. Одним из таких методов является фагодиагностика. Поэтому целью наших исследований явилось изыскание активных бактериофагов, лизирующих патогенные штаммы бактерий рода Providencia. Методика исследований. Источником для выделения бактериофагов служили сточные воды взятые из животноводческих помещений разных хозяйств Ульяновской и Самарской областей и больниц города Ульяновска. В качестве индикаторных культур были использованы 26 патогенных штаммов рода Providencia, полученные из музея кафедры и выделенные нами из патологического материала и объектов внешней среды. В основу метода для поиска фагов положена схема, предложенная Грациа. Исследуемый материал (сточные воды) засевали с бактериями Providencia на МПБ. Бульон инкубировали при 37°С в течение 14-18 часов, затем фильтровали через бумажные фильтры. Полученный фильтрат подогревали при 60°С в течение 30 минут для инактивации сопутствующей микрофлоры. Наличие фага в фильтрате выявляли при его посеве на плотные питательные среды (1,5% мясопептонный агар) методом агаровых слоев. Селекцию штаммов фагов производили методом пассирования штаммов на индикаторных культурах с последующим клонированием однородных негативных колоний, типичной для каждого изолята. 9 Таблица 1 - Литическая активность бактериофагов рода Providencia № пп 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 Название фага F-67 УГСХА F-87 УГСХА F-3 УГСХА F-4 УГСХА F-5 УГСХА F-6 УГСХА F-7 УГСХА F-8 УГСХА F-9 УГСХА F-10 УГСХА F-11 УГСХА F-12 УГСХА F-13 УГСХА F-14 УГСХА F-15 УГСХА F-16 УГСХА Индикаторная культура P.rettgeri Н67 P.rettgeri С87 P.rettgeri Н67 P.rettgeri С87 P.rettgeri М45 P.rettgeri Н67 P.rettgeri С87 P.rettgeri С87 P.rettgeri М45 P.rettgeri Н67 P.rettgeri Н67 P.rettgeri Д1 P.rettgeri К1 P.rettgeri К1 P.rettgeri Н67 P.rettgeri М45 Активность выделенных фагов определяли по методам Грациа и Аппельмана. Результаты исследований. В результате проведенных исследований нами было выделено 16 термостабильных изолята бактериофагов, образующих прозрачные колонии различного диаметра от 1,0 до 5,0 мм или стерильные пятна в виде зон лизиса, диаметром от 5,0 до 9,0 мм. Литическая активность выделенных фагов по методу Аппельмана составляет от 10-6 до 10-9, по методу Грациа – от 2,1х108 до 1,2х1011 фаговых корпускул в 1 мл среды. Изучение специфичности двух бактериофагов (F-67 УГСХА, F-87 УГСХА), имеющих высокую активность и широкий диапазон литического действия проводили по отношению к представителям других родов семейства Enterobacteriaceae: Escherichia spp., Proteus spp., Morganella spp., Citrobacter spp., Salmonella spp., Enterobacter spp., Yersinia enterocolitica, а также родов других семейств: Staphylococcus spp., Streptococcus spp., Pseudomonas spp. на плотном питательном агаре методом нанесения капель фагов на газон исследуемой культуры. Для этого на поверхность МПА в чашках Петри пипеткой наносили 3 – 4 капли 18 часовой бульонной культуры исследуемых микроорганизмов. Затем равномерно распределяли 10 Активность фагов по Аппельману по Грациа 10-9 1 х 1011 10-8 1,5 х 1010 -8 10 7 х 109 10-7 5 х 108 -8 10 1 х 109 10-8 1,1 х 109 -8 10 1 х 109 10-8 7 х 109 -8 10 2 х 109 -6 10 4 х 107 10-8 1 х 109 -8 10 2 х 109 10-8 2,5 х 109 -8 10 2,5 х 109 10-8 8 х 109 -8 5 х 109 10 по поверхности среды стерильным шпателем. Чашки ставили в термостат для подсушивания на 15 – 20 минут. После чего, дно чашки маркером разделили на два сектора: на первый сектор засеянного агара, пипеткой легким прикосновением капли, наносили исследуемый фаг; на второй - по центру в качестве контроля наносили стерильный МПБ. Чашку наклоняли, чтобы капли стекли, а затем инкубировали при температуре 37°С, оценку результатов проводили через 24 часа. В результате проведенных исследований было установлено, что селекционированные фаги неактивны по отношению к представителям бактерий других родов и семейств, то есть явились специфичными для бактерий гомологичного рода. Таким образом, нами было выделено и селекционировано 16 термостабильных изолятов фагов, активных в отношении бактерий вида Providencia rettgeri (табл.1). Выводы. Были отобраны два специфичных штамма фагов F-67 УГСХА и F-87 УГСХА с наиболее выраженными биологическими свойствами (литическая активность, спектр литической активности, специфичность, устойчивость), которые позволяют использовать их для изготовления диагностических и лечебных биопрепаратов. Библиографический список: 1. Адамс М. Бактериофаги (перевод с английского) // - М., - 1961. -521С. 2. Барт Н.Г. Биологические свойства бактериофагов Providencia / Н.Г. Барт, С.Н. Золотухин, Д.А. Васильев // Актуальные вопросы аграрной науки и образования: Материалы Международной научно-практической конференции. – Ульяновск, 2009. – С. 6-8. 3. Барт Н.Г. Спектр литической активности бактериофагов Providencia / Н.Г. Барт, С.Н. Золотухин, Д.А. Васильев // Актуальные вопросы аграрной науки и образования: Материалы Международной научно-практической конференции. – Ульяновск, 2013. – С. 12-15. 4. Васильев, Д.А. Характеристика биологических свойств бактериофагов вида Bacillus subtilis / Д.А. Васильев Д.А., Н.А. Феоктистова М.А. Юдина [и др.] // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. - 2011. - № 1. - С. 79-83. 5. Ганюшкин В.Я. Бактериофаги сальмонелл и их применение в ветеринарии // Учебное пособие – Ульяновск. – 1988. – С.45. 6. Гольдфарб Д.М. Бактериофагия.// -М.: Медгиз. -1961. – С.297. 7. Золотухин С.Н. Малоизученные энтеробактерии и их роль в патологии животных. - 125 с., Ульяновск., -2004. 8. Золотухин С.Н., Каврук Л.С., Васильев Д.А. Смешанная кишечная инфекция телят и поросят, вызываемая патогенными энтеробактериями. – Ульяновск. – 2005. – С.48-51. 9. Калдыркаев, А.И. Разработка системы фаговаров бактерий Bacillus cereus для идентификации и мониторинга данного микроорганизма / А.И. Калдыркаев, Н.А. Феоктистова, А.В. Алешкин // В книге: «Бактериофаги микроорганизмов значимых для животных, растений и человека». - Ульяновск, 2013. - С. 211-225. 10. Ревенко И.П. Бактериофаги и их использование в ветеринарной практике. – Киев: «Урожай», 1978. –С.20-21. 11. Садеева, Н.Т. Выделение фагов бактерий вида Bacillus cereus / Н.Т. Садеева, Н.А. Феоктистова, М.А. Юдина [и др.] // В сборнике: Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии: материалы V-й Всероссийской (с международным участием) студенческой научной конференции. – Ульяновск: ГСХА, 2012. - С. 14-17. 12. Феоктистова, Н.А. Методы выделения бактериофагов рода Bacillus / Н.А. Феоктистова, В.А. Макеев, М.А. Юдина [и др.] // Вестник ветеринарии. - 2011. - Т. 59. - № 4. - С. 88-89. 13. Феоктистова, Н.А. Выделение и изучение биологических свойств бактериофагов рода Proteus, конструирование на их основе биопрепарата и разработка параметров практического применения / автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук / Саратовский государственный аграрный университет им. Н.И. Вавилова. Саратов, 2006. – С. 9-12. 14. Феоктистова, Н.А. Выделение и изучение основных биологических свойств бактериофагов бактерий Bacillus subtilis / Н.А. Феоктистова // В книге: «Бактериофаги микроорганизмов значимых для животных, растений и человека». - Ульяновск, 2013. - С. 186-197. PROVIDENCIA FAGI FOR TREATMENT AND PREVENTION OF DISEASES OF YOUNG GROWTH OF FARM ANIMALS N.G. Bart, S. N. Zolotukhin, D. A. Vasilyev Keywords: Bacteriophages, Providencia, lytic activity, thermoresistance, specificity. Results of work on allocation and studying of biological properties of bacteriophages of Providencia are presented in this article. As a result of researches were studied: lytic activity, thermoresistance and specificity. 11 УДК 619:578.832.1 ПОДБОР СЕЛЕКТИВНЫХ КОМПОНЕНТОВ К ПИТАТЕЛЬНОЙ СРЕДЕ ДЛЯ ВЫДЕЛЕНИЯ B.BRONCHISEPTICA Ю.Б. Васильева, кандидат ветеринарных наук, доцент, А.В. Мастиленко, кандидат биологических наук, доцент, Д.Г. Сверкалова, кандидат биологических наук, ст. преподаватель, Д.А. Васильев, доктор биологических наук, профессор, С.Н. Золотухин, доктор биологических наук, профессор grant-ugsha@yandex.ru ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина» Ключевые слова: Bordetella bronchiseptica, селективные добавки, диагностика бордетеллёза. В статье приводятся результаты исследований чувствительности бактерий вида Bordetella bronchiseptica к химиотерапевтическим средствам с целью подбора селективных компонентов к питательным средам для индикации возбудителя бордетеллёза животных. В качестве оптимальных селективных компонентов отобраны цефтриаксон, цефазолин, цефатоксим, линкомицин. Определена их максимальная подавляющая концентрация. Полученные данные могут быть использованы для совершенствования диагностики заболевания путем разработки новой селективной добавки. «Золотым стандартом» диагностики бордетеллёза животных остается бактериологическое исследование, при котором окончательный ответ выдается через 3-5 суток. Выявление возбудителя этим методом не превышает 25%. В этой связи актуальным представлялся поиск путей повышения эффективности бактериологической диагностики [1, 2, 4, 5, 11]. Основными питательными средами для культивирования бордетелл, выпускаемыми отечественной биопромышленностью, являются казеиново-угольный агар и его аналог бордетелагар [1, 5, 7, 8]. В нашей стране в качестве ингибитора сопутствующей микрофлоры многие десятилетия используется пенициллин. В зарубежной практике для этих целей используется цефалексин и амфотерицин В [10]. Данные исследований выявили возможность использования в качестве селективной добавки цефазолина, ампициллина и флуконазола [1, 5]. Недостатками выпускаемых селективных добавок является то, что часть бордетелл может проявлять чувствительность к антибиотикам, входящим в их состав, вследствие чего рост возбудителя подавляется и определенный процент заболевания остается нераспознанным. Кроме того, в связи с повышением агрессивности сопутствующей микрофлоры, селективные добавки полностью не подавляют рост ассоциантов [1, 5, 11]. 12 В связи с вышеизложенным, одной из актуальных проблем клинической микробиологии является разработка новых селективных добавок, позволяющих устранить вышеуказанные недостатки, что является целью настоящего исследования. Материалы и методы исследований. Экспериментальную часть работы выполняли в лицензированной для работы с микроорганизмами 3–4 групп патогенности лаборатории МИП «Научно-исследовательский инновационный центр микробиологии и биотехнологии». Объектами исследования послужили 4 лабораторных штамма B.bronchiseptica (№ 1, № 7, № 29, № 22-067, № 2). Все штаммы, полученные из музейных коллекций микроорганизмов, в соответствии с паспортными данными, обладали типичными для бактерий этих видов морфологическими, культуральными и биохимическими свойствами. Для проведения опытов использовали биоматериал – назофарингеальные мазки от животных. Для выбора селективных компонентов были использованы 57 антимикробных средств [9]. В работе использовали общепринятые в микробиологии методы и соответствующие реактивы, среды и лабораторную посуду [3, 6]. Результаты исследований и их обсуждение. Результаты определения резистентности штаммов B.bronchiseptica к химиотерапевтиче- Таблица - Определение максимальной подавляющей концентрации антибиотиков № разведения Концентрация АБ мг/мл цвет 1 500 Светло-желтый 2 50 Светло-желтый 3 5 Светло-желтый 4 0,5 Светло-желтый 5 0,05 Светло-желтый Контроль (+) - Светло-желтый Контроль (-) - Светло-желтый 1 500 Светло-желтый 2 50 Светло-желтый 3 5 Светло-желтый 4 0,5 Светло-желтый 5 0,05 Светло-желтый Контроль (+) - Светло-желтый Контроль (-) - Светло-желтый 1 500 Ярко-желтый 2 50 желтый 3 5 Светло-желтый 4 0,5 Светло-желтый 5 0,05 Светло-желтый Контроль (+) - Светло-желтый Контроль (-) - Светло-желтый 1 2 500 50 Светло-желтый Светло-желтый 3 5 Светло-желтый 4 0,5 Светло-желтый 5 0,05 Светло-желтый Контроль (+) - Светло-желтый Контроль (-) - Светло-желтый Суспензия B.bronchiseptica 29, 106 КОЕ/мл Рост в МПБ Рост в МПА через 48 ч пленка, инкубации Мутность осадок кольцо ЦЕФАЗОЛИН Рост по штриху с отдельными колониями Рост по штриху с отдельными колониями Рост по штриху с от+ дельными колониями Сплошной рост по + мелкая взвесь штриху Сплошной рост по + Сверху хлопья штриху Обильный рост по все+ му штриху Рост отсутствует ЦЕФТРИАКСОН Незначительные слабый рост в начале хлопья штриха Рост по штриху с разлиЛегкий осадок чимыми колониями Сплошной рост по + Осадка нет Желе сверху штриху Осадок в виде Сплошной рост по + Пленка облаков штриху Облака в 1 см Сплошной рост по + Пленка от дна штриху Обильный рост по все+ му штриху Рост отсутствует ЦЕФАТОКСИМ Рост по штриху с разли+ чимыми колониями мутный Рост по штриху с разли+ осадок чимыми колониями Сплошной рост по + Пленка штриху Сплошной рост по + Кольцо штриху Обильный рост по все+ му штриху Рост отсутствует ЛИНКОМИЦИН Роста нет + Рост по штриху Сплошной рост по + + Пленка штриху Сплошной рост по + Пленка штриху Сплошной рост по + Кольцо штриху Обильный рост по все+ му штриху Рост отсутствует 13 ским средствам показали, что бордетеллы высокочувствительны к мономицину, колистину, цефопиразону, офлоксацину, азитромицину, рокситромицину, доксициклину, ципрофлоксацину, левомицетину и хлорамфениколу. Исследуемые нами штаммы B. bronchiseptica, чувствительны к оксалиновой кислоте, карбенициллину, амоксициллину, амикацину, неомицину, канамицину, гентамицину, сизомицину, фурадонину, бацитроцину, цефоперазону, цефалотину, цефотаксиму, цефаклору, цефопиму, цефамандолу, левофлоскацину, энрофлоксацину, норфлоксацину, тетрациклину, имипенему, колексину, террамицину. Исследуемые нами референс-штаммы B. bronchiseptica, малочувствительны к бацитрацину и цефепину. Нами зарегистрирован высокий уровень устойчивости бордетелл к бензилпенициллину, ампициллину, амоксиклаву, бициллину, стрептомицину, ванкомицину, оксациллину, фуразолидону, фурагину, эритромицину, олеандомицину, кларитромицину, фузидину, фурадипану, нистатину, интраконазолу, клотримазолу, флуконазолу, амфотерину В, рифампицину, линкомицину, клиндамицину, цефазолину, цефтазидиму, цефотаксиму, цетриаксону, дитриму, отибиовету, оптохину. Учитывая, показатели антибиотикочуствительности носоглоточной флоры (биоматериал от животных), для конструирования селективной добавки мы выбрали 4 антимикробных средства: цефтриаксон, цефазолин, цефатоксим, линкомицин. Мы провели количественное определение максимальной подавляющей концентрации антибиотиков методом серийных разведений в бульоне. Результаты количественного определения оптимальной концентрации антибиотиков представлены в таблице. Результаты проведенных исследований показали, что концентрация цефтриаксона и цефазолина в субстрате не должна превышать 500 мг/мл, цефатоксима и линкомицина - 50 мг/ мл. При этом носоглоточная микрофлора полностью подавлялась в данных концентрациях антибиотиков. Таким образом, в качестве оптимальных селективных компонентов для питательных сред нами рекомендованы цефтриаксон, цефазолин, цефатоксим, линкомицин. Полученные данные могут быть использованы для совершенствования бактериологической диагностики заболевания путем разработки и внедрения новой селективной добавки к питательным средам для выделения и культивирования бактерий Bordetella bronchiseptica. Библиографический список: 1. Бордетеллёз домашних животных: характеристика заболевания и возбудителя, разработка методов диагностики / Д.А. Васильев, Ю.Б. Васильева, А.В. Мастиленко, Д.Г. Сверкалова [и др.] // Монография. - Ульяновск: УГСХА им. П.А. Столыпина. – 2014. – 190 с. 2. Васильев, Д.А. Выделение и идентификация Bordetella bronchiseptica от животных / Д.А. Васильев, А.В. Мастиленко, Д.Г. Сверкалова, Ю.Б. Васильева // Естественные и технические науки. – 2010. - № 5. – С. 233-235. 3. Васильев Д.А. Методы общей бактериологии. Учебно-методическое пособие / Д.А. Васильев, С.Н. Золотухин, Н.М. Никишина // Ульяновск, 1998. – 151 с. 4. Васильева, Ю.Б. Разработка методов детекции бактерий Bordetella bronchiseptica // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. - 2013. - №3 (23). С. 46-51. 5. Васильева, Ю.Б. Основы подбора компонентов питательных сред для первичного выделения Bordetella bronchiseptica / Ю.Б. Васильева, Д.А. Васильев, А.В. Мастиленко, Д.Г Сверкалова, А.Г. Семанин // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. 2014. № 1 (25). С. 85-92. 6. Методические указания «Отбор, проверка и хранение производственных штаммов коклюшных, паракоклюшных и бронхисептикозных бактерий». – М. – 2008. 7. Никульшина, Ю.Б. Культивирование Bordetella bronchiseptica на различных селективных средах / Ю.Б. Никульшина, Д.Г. Сверкалова, Д.А. Васильев, А.В. Мастиленко, Д.Н. Хлынов // Материалы Международной научно-практической конференции «Актуальные вопросы аграрной науки и образования». – Ульяновск: УГСХА. - Т. IV. - 2008. – С. 57-59. 8. Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам / Методические указания. - МУК 4.2.1890-04. 9. Gilchrist M.J.R. Bordetella/ In Manual of clinical microbiology. 5th ed./ Ed. Balows A., Hansler W.J., Herr14 mann K.L., Isenberg H.D., Shadomy H.J.­Washington, D.C., 1991.- P. 471-477. 10. Vasilyeva, Yu.B. Selection of the complex of microbiological tests for Bordetella bronchiseptica typing / Yu.B. Vasylyeva / Вестник Орловского государственного аграрного университета. - 2013. - Т. 43. - № 4. - С. 44-46. SELECTION OF SELECTIVE COMPONENTS TO THE NUTRIENT MEDIUM FOR THE ISOLATION B.BRONCHISEPTICA Y.B. Vasilyeva, A.V. Mastilenko, D.G. Sverkalova, D.A. Vasilyev, S.N. Zolotukhin Keywords: Bordetella bronchiseptica, selective supplements, diagnostics bordetellёza. The article presents the results of sensitivity studies the bacterium Bordetella bronchiseptica to chemotherapeutic agents in order to select the components to selective breeding ground for display pathogen bordetellёza animals. As an optimal selective components selected ceftriaxone, cefazolin, tsefatoksim, lincomycin. Determine their maximal inhibitory concentration. The data obtained can be used to improve diagnosis of the disease through the development of new selective supplements. УДК 619:616.9:597.2/5 ВЛИЯНИЕ МОНОГЕНЕТИЧЕСКИХ СОСАЛЬЩИКОВ НА РАЗВИТИЕ КАРПА В ПРУДОВЫХ ХОЗЯЙСТВАХ УЛЬЯНОВСКОЙ ОБЛАСТИ О.М. Голенева, кандидат биологических наук, старший преподаватель, Тел.:8 8(422) 55-95-38, klimina-83@mail.ru Е.М. Романова, доктор биологических наук, профессор Тел.:8 8(422) 55-95-38, vvr-emr@yandex.ru В.Н Любомирова, кандидат биологических наук, ассистент Тел.:8 8(422) 55-95-38, nvaselina@yandex.ru ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина», Ключевые слова: рыба, моногенетические сосальщики, дактилогироз карпа, вспышка заболевания рыб, выростные пруды. Работа посвящена определению влияний паразитарных инвазий вызываемых моногенетическими сосальщиками из рода Dactylogyrus на рыб прудовых хозяйств и установлению причины возникновения. Введение. Наиболее простой, дешевый и эффективный путь производства пищевого белка это разведение рыбы и моллюсков. Рыба - важный источник белковой пищи, и роль ее в питании человека значительна. Достаточно указать, что если мировое производство товарного мяса составляет 80 млн. т, то рыбы и других продуктов моря и пресных вод - 58,4 млн. т (1966 г.), или свыше 42% от общей мясной продукции [2,4,7]. Уплотненные посадки рыб в прудах предусматривают современные формы ведения прудового рыбоводства, что обуславливает тесный контакт выращиваемых рыб, а отсюда и благоприятные условия для распространения различных болезней. У рыб паразитирует большое число видов гельминтов, относящихся к различным классам: сосальщики (трематоды), ленточные черви (цестоды), круглые черви (нематоды) и др.[1,3,5] 15 Рисунок 1 - Пораженные дактилогирозом жаберные лепестки карпа В достижении успехов в рыбоводстве немалая роль принадлежит ветеринарным врачам и ихтиопатологам. Своевременная профилактика и проведение лечебных мероприятий позволили получить большое количество товарной рыбы, причем, половину этой рыбы произвели прудовые хозяйства. Проблема паразитарных заболеваний рыб в Ульяновской области является актуальной [2,5]. Для территории области характерно широкое видовое разнообразие эндои экзопаразитофауны, формирующей стойкие очаги инвазий [6,7]. Паразитарные заболевания рыб на территории области практически не изучены, соответственно - не разработаны методы их лечения. Борьба с паразитами имеет большое практическое значение не только для профилактики и ликвидации паразитарных инвазий [1-3], но и для повышения экономической эффективности аквакультуры. На установление закономерностей взаимоотношений между хозяином и паразитом, на формирование и угасание эпизоотического процесса при том, или ином паразитарном заболевании большое влияние оказывают биотические факторы [4,5]. Значительный экономический ущерб прудовому рыбоводству и аквакомплексам наносят остро протекающие инвазионные заболевания рыб, вызываемые моногенетическими сосальщиками из рода Dactylogyrus, поражающие жаберные лепестки рыб. У рыб пресноводных водоемов страны описано более 150 видов моногеней. [2,7]. Дактилогирозы карпов вызываются моногенетическими сосальщиками Dactylogyrus vastator, D. extensus, D. Anchoratus из сем. Dactylogуridae Bychowcky. Паразитируют они на жаберных лепестках карпов, сазанов и их гибридов. Заболевание выражается в травматизации 16 и разрушении жаберных лепестков, нарушении функции жаберного аппарата, вследствие чего ухудшаются кровообращение в жабрах и дыхание. От дактилогироза гибнут преимущественно мальки рыб, но болеют и сеголетки. Цель нашей работы исследовать развитие паразитарных инвазий в условиях прудового хозяйства Ульяновской области. В задачи работы входило определение влияний паразитарных инвазий вызываемых моногенетическими сосальщиками из рода Dactylogyrus на рыб прудовых хозяйств и установление причины возникновения. Материалы и методы. Исследования мы проводили в прудовом хозяйстве Ульяновкой области, где занимаются разведением карпов, в летний период 2014г. Применяли паразитологический и микроскопический методы. Результаты исследований. В ходе наших наблюдений нами было установлено, что в прудовых хозяйствах Ульяновской области обстоятельствами, предшествующими возникновению заболеванию являлись совместные содержания в выростном пруду производителей с личинками карпа, куда были посажены еще ремонтные карпы, и в пруд проникла сорная рыба. В выростном пруду карпы – производители дополнительно нерестились, что создало высокую плотность мальков. В июле стали отмечать неадекватное поведение мальков. Они большой стаей двигались в поверхностном слое воды, скапливались на притоке, заглатывали воздух, не реагировали на приближение людей, легко вылавливались руками. В связи с повышением температура воды - 27-300С. в пруду в излишнем количестве разрослась мягкая подводная растительность. Нами был проведен паразитологический анализ, где мы использовали 52 малька. При микроскопическом исследовании установили 100% экстенсивность инвазии, при интенсивности от 21 до 54 гельминтов на одного малька. Особенно сильно были поражены мальки от последнего нереста в выростном пруду. Обнаружили, что моногенетическими сосальщиками Dactylogyrus vastator, D. extensus, D. Anchoratus из сем. Dactylogуridae Bychowcky локализовались по всей поверхности жаберных лепестков (см. рис.1). Наблюдалась отечность жабр, обильное выделение слизи, отмечался некротический распад жабр. Острая вспышка болезни отмечалась с 18 по 26 июля, повлекшая массовую гибель мальков, особенно за счет мальков позднего нереста. По результатам наших исследований причинами вспышки болезни явились: сверхплотная посадка рыб, совместное выращивание рыб старших возрастных групп, высокая температура воды, недостаток естественной пищи (зоопланктона), разрастание излишней водной растительности и, как следствие плохой газовый режим. Это создало благоприятные условия для бурного раз- множения и нарастания численности паразитов. Подавляющая часть мальков подвергалась заражению и погибала, начиная с возраста 20 дней, имеющих линейный рост 1,5-2,5 см. Предложения и рекомендации. Описанный случай острой вспышки дактилогироза обязует в необходимость проведения в рыбоводных хозяйствах следующих мероприятий: Обязательное удаление производителей из нерестовых прудов в летне-маточные сразу после нереста. Строго соблюдать установленные плотности посадки личинок карпа в выростные пруды. Обеспечивать выростные пруды рыбозаградительными устройствами, предупреждающих проникновение в пруд сорной рыбы. Организовать проведение раннего нереста карпов, что обеспечит хорошее развитие мальков до периода наибольшей опасности заражения их дактилогирусами. Библиографический список: 1. Голенева О.М. Роль биотических факторов в снижении заболеваемости аргулезом, лернеозом и постодиплостомозом при прудовом разведении рыб / Голенева O.М., Федорова Е.В., Шадыева Л.А., Романова Е.М., Егорова А.Р. // Материалы II Всероссийской научно-практической конференции с международным участием: «Современные достижения ветеринарной медицины и биологии – в сельскохозяйственное производство», посвящённую 100-летию со дня рождения заслуженного деятеля науки РСФСР и Башкирской АССР, доктора ветеринарных наук, профессора Аюпова Хамита Валеевича (21-22 февраля 2014г.). – Уфа: Башкирия ГАУ, 2014. – С.43-47. 2. Голенева О.М. Лечение паразитарных заболеваний рыб в аквакультуре / Голенева O.М., Федорова Е.В., Шленкина Т.М., Романова Е.М. / Голенева O.М., Федорова Е.В., Шадыева Л.А., Романова Е.М. // Материалы II Всероссийской научно-практической конференции с международным участием: «Современные достижения ветеринарной медицины и биологии – в сельскохозяйственное производство», посвящённую 100-летию со дня рождения заслуженного деятеля науки РСФСР и Башкирской АССР, доктора ветеринарных наук, профессора Аюпова Хамита Валеевича (21-22 февраля 2014г.). – Уфа: Башкирия ГАУ, 2014. – С.47-51. 3. Голенева О.М. Профилактика и лечение ботриоцефалеза и кавиоза карповых рыб в условиях аквакультуры / Голенева О.М., Шадыева Л.А., Шленкина Т.М. ,Федорова Е.В. // Международный научно-исследовательский журнал ISSN 2303-9868. – Екатеринбург, №2 (21) 2014 Часть1. – С 54-55. 4. Федорова Е.В. Перспективы аквакультуры золотой дорадо в России / Федорова Е.В., Голенева O.М., Шленкина Т.М., Романова Е.М. // Материалы II Всероссийской научно-практической конференции с международным участием: «Современные достижения ветеринарной медицины и биологии – в сельскохозяйственное производство», посвящённую 100-летию со дня рождения заслуженного деятеля науки РСФСР и Башкирской АССР, доктора ветеринарных наук, профессора Аюпова Хамита Валеевича (21-22 февраля 2014г.). – Уфа: Башкирия ГАУ, 2014. – С.413-416. 5. Голенева О.М., Романова Е.М., Шадыева Л.А. Влияние поллютантов на популяционные характеристики гирудофауны в Ульяновской области. / IV Международной научно-практической конференции «Аграрная наука и образование на современном этапе развития: опыт, проблемы и пути их решения» 22-24 ноября 2012 года – Ульяновск, 2012. – С. 172-175 6. Климина О.М. Биоресурсы класса Hirudinea в зоне Среднего Поволжья, экологическая значимость и перспективы использования / Е.М. Романова, О.М. Климина // журнал «Известия Самарского научного центра РАН» - Т 12. №1. – Самара, 2010. – С. 208-211. 17 7. Федорова Е.В. Разведение потамотригонид в аквакультуре / Федорова Е.В., Романова Е.М., Голенева О.М., Шленкина Т.М. // Международный научно-исследовательский журнал ISSN 2303-9868. – Екатеринбург, №2 (21) 2014 Часть1. – С 67-68. THE INFLUENCE OF MONOGENETIC FLUKES ON THE DEVELOPMENT OF CARP IN THE PONDS OF THE ULYANOVSK REGION Goleneva O.M., Romanova E. M., Lyubomirova V. N. Key words: fish, monogenetic flukes, dactylogyrus carp, the outbreak of fish nursery ponds. The work is devoted to determining the effects of parasitic infestations caused by monogenetic flukes of the genus Dactylogyrus on fish pond farms and the establishment of the causes. УДК 579.6 ИСПОЛЬЗОВАНИЕ МЕТОДА ЭЛЕКТРООПТИЧЕСКОГО АНАЛИЗА ДЛЯ ДЕТЕКЦИИ БАКТЕРИОФАГОВ О.И. Гулий 1;2;3, С.С.Макарихина 4, В.Д. Бунин 5, С.А. Староверов1;2;3, О.В. Игнатов1 - ФГБУН Институт биохимии и физиологии растений и микроорганизмов Российской академии наук, Саратов 2 - ФГБОУ ВПО Саратовский государственный аграрный университет имени Н.И.Вавилова, Саратов 3 - Саратовский научно-исследовательский ветеринарный институт Российской академии сельскохозяйственных наук, Саратов 4 - Лицей-интернат естественных наук» (ЧОУ «ЛИЕН»), Саратов 5 - Elosystems GbR, Берлин, Германиия 1 Ключевые слова: детекция, бактериофаги, микробные клетки, электрооптический метод анализа Изучены изменения электрооптических параметров (ЭО) суспензии клеток при взаимодействии с бактериофагами. На примере бактериофага ΦAl-Sp59b показана возможность детекции вирусных частиц методом ЭО анализа, предел детекции бактериофагов составляет 106 фаговых частиц/мл при времени анализа 1-5 мин. Полученные результаты могут быть использованы для создания экспресс-метода детекции бактериофагов. В связи с широким распространением и использованием бактериофагов задачи определения вирусных частиц привлекают все большее внимание, имеющие как научное, так и практическое значение. Для определения вирусов разработано огромное количество микробиологических, биохимических, молекулярно-биологических, иммунологических, физических методов [1]. По объекту исследования используемые подходы выявления бактериофагов можно разделить на: 18 1) методы детекции непосредственно вирусных частиц и определения вирусной инфекционности; 2) методы детекции компонентов вирионов (нуклеиновой кислоты); 3) методы определения вирусных антигенов [2]. Несмотря на значительное число разработанных методов детекции вирусных частиц, их практическое использование затруднено из-за сложности процедуры анализа и малого числа существующих измерительных приборов. Поэтому актуальной задачей остается разработка новых методов детекции вирусов бактерий в различных образцах, позволяющих получать результат за короткое время. В последнее время методы электрооптического (ЭО) анализа все чаще находят применение для решения ряда задач в микробиологии и биотехнологии. Методы ЭО анализа микробных суспензий основаны на регистрации изменения оптических свойств суспензии под влиянием переменного электрического поля. Исследование основано на измерении зарядов, индуцированных электрическим полем, на границе клеточных структур. После взаимодействия зарядов на этой границе с электрическим полем меняется ориентация бактерий в окружающей среде, что приводит к изменению оптических свойств суспензии [3]. Целью работы являлось исследование возможности использования метода ЭО анализа для детекции бактериофагов на примере микробных клеток Azospirillum lipoferum Sp59b и бактериофага ФAl-Sp59b. Материалы и методы исследования. Бактериальные штаммы и условия выращивания бактерий. В работе использовали микробные клетки Azospirillum lipoferum Sp59b и A. brasilense штаммы Cd, Jm6B2, A. irakense KBC1,полученные из коллекции культур ИБФРМ РАН. Для культивирования бактерий использовали жидкую питательную среду LB следующего состава (г/л): NaCl – 10.0; пептон - 5.0 («Becton, Dickinson and Company», Франция), дрожжевой экстракт («DIFCO», США) – 5.0. Культуры бактерий выращивали в 250 мл колбах Эрленмейера на жидкой среде LB на круговой качалке при интенсивности перемешивания (160 об/мин) в течение 18-20 ч при 30±1°С. Выделение и характеристика бактериофагов. Выделение бактериофага проводили с использованием методики, описанной ранее в работе [4]. Определение количества фаговых частиц. Количество фаговых частиц определяли спектрофотометрически на приборе Specord BS250 (Analytik Jena, Германия) в кювете 1 мм. Подготовка клеток к электрооптическому анализу. Для электрооптического анализа клетки трехкратно промывали дистиллированной водой с последующим центрифугированиемипри 2800 g в течение 5 мин, а затем ресуспендировали в небольшом объеме воды (электропроводность 1.6 μS/см) и центрифугировали при 110 g в течение 1 мин для удаления конгломе- ратов, как описано [5]. Полученную бактериальную суспензию клеток в надосадочной жидкости разбавляли дистиллированной водой до значений оптической плотности при 670 нм, равным 0.4, что соответствовало концентрации 4.5×108 клеток/мл. Проведение электрооптического анализа клеточных суспензий. Измерение ориентационных спектров (ОС) клеток проводили на электрооптическом анализаторе ELOAnalyser (производства EloSystem GbR, Berlin, Germany) с дискретным набором частот ориентирующего электрического поля 20; 40; 100; 200; 400; 900; 1400 и 2100 кГц при 670 нм, напряженности электрического поля 17 В/см, времени его приложения 16 с. Длина оптического пути электрооптической ячейки составляла 8 мм, объем - 1 мл, концентрация клеток - 4.5×108 клеток/мл. Количество клеток определяли стандартным методом с использованием светового микроскопа (Ergaval, Carl Zeiss, Jena, Германия). Все анализы проводились, по крайней мере, в пяти повторностях, и результаты представлены в виде средних значений, полученных с указанием стандартного отклонения. Относительная погрешность результатов измерений стандартных образцов составляла ± 3%. Результаты и их обсуждение. За счет рецепторов, расположенных на поверхности клетки осуществляется узнавание и прикрепление бактериофагов только к специфичным бактериальным клеткам. Мы предложили использовать этот принцип для детекции бактериофагов при помощи метода ЭО анализа микробных суспензий. В результате адсорбции бактериофага на микробной клетке происходит перераспределение белков клеточной поверхности, что приводит к изменениям ЭО параметров микробных суспензий [6]. Таким образом, регистрируя изменения ЭО параметров клеточной суспензии при взаимодействии со специфическим бактериофагом возможно идентифицировать присутствие бактериофага в исследуемом образце. В качестве модельных объектов использовали бактериофаги ФAl-Sp59b, выделенные из клеток A. lipoferum штамма Sp59b. Основные свойства бактериофага описаны в работе [4]. Предварительно проводилась оптимизации условий измерений ЭО параметров клеточных суспензий A. lipoferum штамма Sp59b, по напряженности, частоте, времени приложения электрического поля. Далее исследовали изменений величины ЭО параметров клеточной суспензии A. lipoferum 19 Рисунок 1 - (А) Динамика изменения величины ЭО-сигнала суспензии клеток A. lipoferum Sp59b при их инфицировании бактериофагом ФAl-Sp59b: (1) – контроль – клетки без добавления бактериофага; клетки с добавлением бактериофага: мин от начала инфекции: (2) – 5, (3) – 10, (4) – 20, (5) – 30, (6) – 40. (Б) Изменение значений относительных величин при частоте ориентирующего поля 100 кГц. Рисунок 2 - (А) Изменение величины ЭО-сигнала смешанной суспензии клеток A. lipoferum Sp59b, A. brasilense Сd, Jm6B2 и A. irakense KBC1 при их инфекции бактериофагом ФAl-Sp59b: (1) – контроль – клетки без добавления бактериофага; (2) - клетки с добавлением бактериофага штамма Sp59b при взаимодействии с бактериофагом ΦAl-Sp59b в зависимости от количества фагов, внесенных в суспензию из расчета на 1 бактерию. Для этого в суспензию клеток, подготовленных для ЭО анализа, вносили разное количество специфичного бактериофага ΦAl-Sp59b из расчета 5, 10, 15, 20, 25, 30 фаговых частиц на 20 клетку. Затем суспензии клеток с бактериофагами инкубировали при 37°С в течение 5 мин, после чего подготавливалась и использовались для ЭО измерений. В качестве контроля использовали клетки A. lipoferum Sp59b без добавления бактериофага. Было установлено, что в исследуемом диапазоне частот регистрируются значительные изменения величины ЭО сигнала суспензии клеток после взаимодействия с бактериофагом ΦAlSp59b, при этом максимальное изменение величины ЭО сигнала происходит при внесении бактериофага из расчета 5 фаговых частиц на клетку. В последующих экспериментах для регистрации инфицирования клеток в суспензию вносили 10 фагов на 1 бактерию. Установлено, что минимальный титр бактериофага ΦAl-Sp59b, регистрируемый в образце, с помощью микробных клеток A. lipoferum Sp59b, составляет 106 фаговых частиц в 1 мл. Далее изучали динамику изменений ЭО параметров суспензии клеток A. lipoferum Sp59b при их инфицировании бактериофагом ΦAl-Sp59b. Для этого в суспензию вносили бактериофаг ΦAlSp59b, затем бактериальная суспензия инкубировалась в течение 1, 5, 10, 20, 30, 40 и 60 мин, подготавливалась и использовалась для ЭО анализа. Показано, что изменения величины ЭО сигнала происходит уже через 1 мин после добавления бактериофага ΦAl-Sp59b к суспензии клеток A lipoferum Sp59b (рис. 1 (А)), и незначительно изменялось при дальнейшем воздействии бактериофага. Изменения величины ЭО сигнала суспензии клеток после 5, 10, 20, 30, 40 и 60 мин от начала инфекции клеток бактериофагом фиксировались в пределах 5%. Для удобства представления данных была использована величина ЭО сигнала при частоте ориентирующего поля 100 кГц (рис. 1 (Б)). Таким образом, можно заключить, что оптимальное время для проведения ЭО анализа регистрации наличия исследуемого бактериофага составляет в среднем 1-5 мин. На следующем этапе исследований изучалась возможность детекции изучаемого бактериофага в присутствии микробных клеток других микроорганизмов. В качестве балластных культур использовали клетки A. brasilense штаммов Cd, Jm6B2, а также A. irakense штаммов KBC1. Выбор данных культур обусловлен тем, что бактериофаг ФAl-Sp59b не проявляет активность в отношении них [4]. Для этого к смешанной суспензии клеток A. lipoferum штамма Sp59b, A. brasilense штаммов Сd, Jm6B2 и A. irakense KBC1 (в соотношении 1:1:1:1) добавляли бактериофаг ФAl-Sp59b из расчета 10 фаговых частиц на клетку и регистрировали изменение величины ЭО сигнала. Условия проведения эксперимента были аналогичны вышеизложенным. В качестве контроля использовалась смешанная суспензия клеток A. lipoferum Sp59b, A. brasilense штаммов Сd,Jm6B2 и A. irakense KBC1 без добавления бактериофага (рис. 2). Из представленных данных видно, что при добавлении бактериофагов к суспензии клеток A. lipoferum Sp59 в присутствии мешающих факторов (клеток других видов микроорганизмов) происходит изменение величины электрооптического сигнала. Дополнительно были проведены контрольные эксперименты по изучению неспецифического взаимодействия бактериофага ФAl-Sp59b с клетками A. brasilense штаммов Сd, Jm6B2 и A. irakense KBC1. Было показано, ОС клеток A. brasilense штаммов Сd, Jm6B2 и A. irakense KBC1 после их инфицирования исследуемым бактериофагом не изменяются, т.е., бактериофаг ФAl-Sp59b не инфицирует клетки данных штаммов. Таким образом, в результате проведенных исследований показано, что ЭО анализатор позволяет четко разграничивать ситуации, когда происходит взаимодействие бактериальных клеток A. lipoferum Sp59b со специфическим бактериофагом ФAl-Sp59b от контрольных экспериментов, когда такое взаимодействие отсутствует, при этом предел детекции бактериофагов 106 фаговых частиц/мл. Определено оптимальное время для проведения ЭО анализа регистрации исследуемого бактериофага, которое составляет в среднем 1-5 мин. Показана возможность детекции бактериофагов на примере бактериофага ФAl-Sp59b и микробных клеток A. lipoferum Sp59b при помощи метода ЭО анализа в присутствии в присутствии таких мешающих факторов, как посторонние бактерии. Данные результаты в последующем могут быть использованы для создания экспресс метода индикации вирусов в объектах окружающей среды с целью проведения санитарной экспертизы. Библиографический список: 1. Yousef A.E., Detection of bacterial pathogens in different matrices: current practices and challenges, in: Zourob, M., Elwary, S., Turner, A.P.F. (Eds.), Principles of Bacterial Detection: Biosensors, Recognition Receptors and Microsystems. Springer, New York, 2008, 31-48. 2. Virology: principles and applications / Ed. J. Carter, V. Saunders, London: J. Wiley & Sons Ltd, 2007. P.358. 3. Shchyogolev, S.Y., Khlebtsov, N.G., Bunin, V.D., Sirota, A.I. and Bogatyrev, V.A. Inverse problems of spectroturbidimetry of biological disperse systems with random and ordered particle orientation / Quantifi- 21 cation and localization using diffused photon in a highly scattering media / Ed. by B. Chance et al., Proc. SPIE. V. 2082. - Bellingham, Washington: SPIE, 1994. P. 167-176. 4. Макарихина С.С., Гулий О.И., Соколов О.И., Буров А.М., Павлий С.А., Сивко О.Н., Володин Д.Ю., Игнатов О.В. Выделение и характеристика бактериофага Azospirillum lipoferum штамма SP 59B // Известия Саратовского университета. Новая серия. Серия Химия. Биология. Экология. Саратов, 2013, Том 13, Выпуск 2. С. 56-61. 5. Guliy O.I., Matora L.Yu., Dykman L.A., Staroverov S.A., Burygin G.L., Bunin V.D., Burov A.M., Ignatov O.V. Electro-optical study of the exposure of Azospirillum brasilense carbohydrate epitopes. J Immunoassay Immunochem. V. 36. 2015. P. 379-386. 6. Bunin V.D., Ignatov O.V., Guliy O.I. Zaitseva I.S. Dykman L.A., O’Neil D., Ivnitski D. Electro-optical analysis of the Escherichia coli–phage interaction. // Anal. Biochem. 2004. V. 328. P.181-186. USING ELECTROOPTICAL ANALYSIS FOR DETECTION BACTERIOPHAGES O.I. Guly, S.S.Makarihina, V.D. Bunin, S.A. Staroverov, O.V. Ignatov Keywords: detection, bacteriophages, microbial cells electrooptical analysis method The changes of the parameters of the electro-optic (EO) of the cell suspension in the interaction with bacteriophages. For example, the bacteriophage ΦAl-Sp59b the possibility of detection of viral particles by the EA analysis, the detection limit is 106 bacteriophage phage particles / ml at analysis time of 1-5 minutes. The results can be used to create a rapid method for detecting bacteriophages. УДК 639.311 СОВРЕМЕННЫЕ СПОСОБЫ ПРОФИЛАКТИКИ БАКТЕРИАЛЬНЫХ БОЛЕЗНЕЙ ПРУДОВЫХ РЫБ В.В. Зотов, аспирант ФГБОУ ВПО «Московский государственный университет пищевых производств», 8 (926) 548-97-00, valeriyzotov@mail.ru Ключевые слова: аэромоноз, псевдомоноз, динамика численности, прудовое рыбоводство, рыбопродуктивность, сапрофитные бактерии, эвтрофикация. В работе показаны перспективы увеличения выхода рыбной продукции в прудовом рыбоводстве страны, прочно связанные с интенсификацией рыбоводной технологии. Интенсификация рыбоводства в таких водоемах неизбежно сопряжена с эвтрофикацией. Введение. Увеличение загрязненности рыбоводных прудов органическими отходами сопровождается ростом бактериальной деструкции. Четким признаком загрязненности водоема является численность в воде сапрофитных бактерий. Наиболее распространенными в воде сапрофитными бактериями – возбудителями болезней рыб, являются бактерии рода Aeromonasи почвенные сапрофиты Pseudomonas[2, 5]. 22 С каждым годом в рыбоводстве РФ все большее значение приобретает товарное выращивание карпа, белого и пестрого толстолобиков. У этих рыб все чаще стали отмечать вспышки заболеваний аэромонадной этиологии. Они протекают, как правило, параллельно с краснухоподобными заболеваниями карпа. В холодное время года в рыбоводных прудах наиболее часты вспышки псевдомоноза толстолобиков. Аэромонады пре- Рисунок 1 - Исследуемые зоны акватории рыбоводного пруда Примечание: I – прибентосные толщи воды, глубина 1,2-2,0 м; II - вода лимнической зоны, глубина 0,5-0,8 м; III - вода приповерхностной зоны, глубина 0,1 м; IV - вода литоральной зоны, у уреза воды. обладают весной, летом и осенью, когда температура воды достигает 14-160С и выше [4]. В связи с повсеместным ростом эвтрофикации водоёмов и, соответственно, возрастанием численности аэромонад и псевдомонад в воде, участились вспышки септических заболеваний рыб, связанные с перевозкой живой рыбы из хозяйства в хозяйство. Отмечаются случаи замедленной гибели перевезенных рыб в результате аэромонадного инфицирования, связанного с транспортным стрессом [3, 6]. Существующие профилактические мероприятия против этих заболеваний предусматривают создание оптимальных зоогигиенических условий путем регулярной очистки водоемов и водообмена в соответствии с плотностью посадки рыб.Эти мероприятия энергоемки и не всегда могут быть выполнены на практике. Специальные методы борьбы с этими септицемиями не разработаны и для лечения этих септицемий используют антибиотики. Однако, в последние годы отмечено приобретение резистентностиA. hydrophila к антибиотикам и, кроме того, установлено наличие Р-фактора у аэромонад, что может привести к ускорению выработки резистентности аэромонадами или другими эпизоотически важными бактериями к антибиотикам. Поэтому, антибиотики в рыбоводном хозяйстве применяются кратковременно и только в лечебных целях. Кроме того, для терапии в рыбоводстве используют препараты нитрофуранового ряда, внося их прямо в воду или давая с кормом. Отмечено заражение аэромонадами человека, которое может возникать после контакта с инфицированной водой, рыбой или землей, как раневая инфекция, а также в виде диарей, энтерита [8, 9]. В связи с повсеместным ростом загрязняющего антропогенного воздействия на среду, способность организмов, считающихся непатогенными, вызывать заболевания у людей и животных приобрела в последние годы значительные размеры. Особый интерес в этом плане приобретают микробные группы, находящиеся на современном этапе эволюции на стыке,с одной стороны, с сапрофитными видами, с другой – с безусловными патогенами. Такие организмы, называемые условно-патогенными, составляют группу, непрерывно пополняемую новыми видами. В эту группу входят бактерии родов AeromonasиPseudomonas, представляющие интерес с ихтиопатологической и ветеринарно-санитарной точек зрения [1, 7]. Материалы и методы исследований. Исследования проводили в ОАО «Бисеровский рыбокомбинат» Московской области, расположенном во II зоне рыбоводства России в июле 2013 г. Отбор проб проводили в 4 зонах по глубинам (рисунок 1). Обработку проб воды для гидрохимического и санитарно-бактериологического анализов осуществляли по общепринятым методикам с определением следующих основных рыбоводных показателей: бихроматной и перманганатной окисляемостей, азота (ам- 23 Выловлено, тыс. шт/ га Средняя навеска при вылове, г Внесено за сезон кормов, т/га Внесено за сезон минераль-ных удобрений, т/га Внесено за сезон органичес-ких удобрений, т/га Общаярыбопродуктив-ность, т/га №4 Средняя навеска при зарыблении, г № 2контроль №3 Посажено, тыс. шт/га №1 Площадь пруда, га Пруд Объекты зарыбления: двухлетки Таблица 1 - Характеристика нагульных прудов ОАО «Бисеровский рыбокомбинат» в 2013 г.* карпа толстолобика карпа толстолобика карпа толстолобика карпа толстолобика 52 1,7 1,9 11 34 0,24 0,63 320 330 0,09 0,38 0 0,319 23 4,2 4,0 20 27 2,60 0,40 323 200 3,37 0,40 0 1,103 45 4,0 2,9 23 24 3,20 1,90 305 258 3,12 0,28 0 1,578 51 4,0 3,3 19 26 2,00 1,90 287 318 2,69 0,36 0 1,243 монийного, нитритного, нитратного), биогенов (фосфора, железа, кремния), солевого состава (гидрокарбонатов, сульфатов, хлоридов, кальция магния, натрия и калия), жесткости, минерализации.Для бактериологических исследований прудовую водув количестве 0,01-0,04 мл, в зависимости от интенсивности деструкционных процессов,отбирали в литоральной зоне, ближе в водовыпуску пруда. Высевали на МПА и инкубировали в термостате при температуре 26-28 0 С в течение двух суток. Каждую пробу воды высевали на две чашки (в двух повторностях) эритрит агара, две чашки ДНК агара (“Gibco”) и две чашки селективной аэромонадной среды. Количество желто-оранжевых колоний на этой среде в пересчете на 1 мл воды выражало количество аэромонад. Общее количество колоний, выросших на эритрит агаре в пересчете на 1 мл воды, характеризовало общее количество сапрофитных бактерий. Для родовой идентификации аэромонад и псевдомонад делали три теста: окраску по Граму, цитохромоксидазный тест и О/Ф-тест. В результате бактериологического анализа были определены, по результатам посева на эритрит агар: общее количество сапрофитных бактерий, число бактерий рода Aeromonas, число бактерий рода Pseudomonas,соотношение аэромонад и псевдомонад в процентах от общего числа сапрофитов. 24 Собственные исследования, их результаты и обсуждение. Изучение эффективности систематической обработки нагульных прудов бактерицидными препаратами (гипохлоритом кальция и гашеной известью) проводили в 4 нагульных прудах. Характеристика прудов представлена в таблице 1. Пробы для бактериологических исследований прудовой воды отбирали через 7 и 14 суток после обработок прудов бактерицидными препаратами. Осенью по итогам облова прудов определяли экономическую эффективность систематической обработки прудов бактерицидными препаратами по приросту рыбопродуктивности в опытных прудах по сравнению с контролем. Для выяснения экологических предпосылок формирования эпизоотической ситуации в водоеме изучали распределение бактерий родов Aeromonasи Pseudomonas по акватории рыбоводного водоема. Минимум численности аэромонад и псевдомонад приходился на лимническую зону открытой акватории.Попадая в эту зону, условно-патогенные бактерии, при избытке их численности, оказывались в неблагоприятных условиях и создавали предпосылки для перехода бактерий из сапрофитной в фаготрофную форму обитания. Единство неблагоприятных условий сапрофитного обитания бактерий, избытка их численности в воде с ослаблением защитных свойств организма рыбы и увеличением бактериальной обсеменённости паренхиматозных органов приводило к росту вирулентности бактериальных деструкторов. В результате проведенных исследований было установлено, что в зимнее время в водоёмах псевдомонады преобладали над аэромонадами. Весной в водоёмах бурно активизировались микробиологические процессы. Определяющими экологическими факторами интенсивности бактериальной деструкции являются уровень рыбоводной эвтрофикации и температура воды, рост численностиаэромонад и псевдомонад. Рыбоводные загрязнения способствовали преимущественному размножению аэромонад по сравнению с псевдомонадами. При этом ярко проявлялся антагонизм между этими двумя группами условно-патогенныхсапротрофов. В прудах с интенсивным рыбоводством лимитирующим фактором для псевдомонадявлялся падающий в результате роста деструкционных процессов уровень растворённого в воде кислорода. Сезонная динамика численности условно-патогенных бактерий в рыбоводных прудах сильно зависела от уровня рыбоводной эксплуатации водоёма. Пики численности аэромонад совпадали с пиками интенсивности бактериальной деструкции (численности общего количества бактериальных деструкторов органики в прудах) и приходились на периоды наибольшей вероятности возникновения аэромонадной инфекции рыб (конец июня, конец августа). В холодное время года сапротрофныхаэромонад в воде очень мало и пики численности псевдомонад по времени совпадали с периодами наибольшей вероятности возникновения псевдомонадных инфекций (ранняя весна, поздняя осень). Экологический аспект прудового рыбоводства заключался в преобразовании энергии сырьевых ресурсов (комбикорма, удобрения)в форму биомассы рыбной продукции. Недостаток сырьевых ресурсов (невысокое качество комбикормов), дефицит водообмена, конструкция прудов, определяемая целями экстенсивного рыбоводства, где в качестве источника энергии для выращивания биомассы рыбной продукции используется солнечная энергия, в условиях интенсификации, обусловливают загрязнение водоёмов отходами рыбоводного производства и процесс этот тем мощнее, чем выше интенсивность рыбоводной эксплуатации. Накопление энергоёмких отходов в прудах привело к дестабилизации экосистемы, ее перестройкепо деструкционному типу (накопление сапрофитных бактерий, соответствующих групп водорослей, зоопланктонных организмов), что неизбежно сопровождалось вытеснением продукционной части экосистемы, т.е. рыбы в форме заморов, интоксикаций и бактериальных болезней рыб. Рост численности условно-патогенных бактерий в воде, обусловленный эвтрофикацией, приводил кснижению рыбопродуктивности водоёма. Поэтому, кардинальным методом профилактики инфекционных болезней рыб и общего повышения рыбопродуктивности интенсивно эксплуатируемых эвтотрофных прудов являлось поддержание стабильности между продукционной и деструкционной энергетическими цепями в экосистеме пруда. Для такой стабилизации была необходима систематическая утилизация, изъятие или нейтрализация отходов рыбоводного производства, в частности, иловых масс. Для временной консервации отходов применяли систематическое внесение в пруды гипохлорита кальция. Для этой цели могут быть использованы и другие бактерицидные препараты при соответствующей доработке их ассортимента, доз и режимов внесения. Заключение. Таким образом, перспективным представляется разработка новых экологически чистых средств депрессии деструкционных процессов в рыбоводных прудах, таких как озонирование и облучение воды. Вспомогательнымиметодами регулирования численности сапрофитныхаэромонад может также служить корректировка режимов внесения минеральных и органических удобрений в соответствии с интенсивностью и динамикой деструкционных процессов в прудах, перевод эвтрофикантов в усвояемую для продукционных цепей форму. В результате проведенных работ был предложен способ поддержания равновесия в загрязняемой экосистеме интенсивно эксплуатируемого рыбоводного пруда, заключающийся в систематическом подавлении деструкционных процессов в водоёме с применением бактерицидных препаратов на примере гипохлорита кальция. При этом режим внесения препарата менялся в соответствии с уровнем деструкции, контролируемым по ряду параметров. Внешние проявления эффекта от применения способа заключались в профилактике бактериальных болезней рыб, росте общей рыбопродуктивности водоёма, оптимизации кислородного режима. 25 Библиографический список: 1. Антипчук А.Ф. Микробиология рыбоводных прудов. М.: Легкая и пищевая промышленность, 1983. С. 29-33. 2. Афанасьев В.И. Источники возбудителя аэромоноза рыб // Тр. ЦНИИ экспериментальной ветеринарии, 1984. Т. 60. С. 109-113. 3. Желтов Ю.А., Рудый Н.А. Получение товарного карпа в зависимости от плотности посадок. «Рыбоводство и рыболовство», 1993. №3. С. 13. 4. Каховский А.Е. Динамика условно-патогенной и сапрофитной бактериофлоры в прудовой воде некоторых хозяйств МССР в зимне-весенний период // Интенсификация товарного рыбоводства Молдавии: тез.докл. респ. научно-техн. конф. Кишинев, 1986. С. 41-42. 5. Романенко В.И. Микробиологические процессы продукции и деструкции органического вещества во внутренних водоемах. Л.: Наука, 1985. 6. Серветник Г.Е., Субботина Ю.М., Смирнова И.Р. Использование животноводческих стоков в качестве удобрений// Ветеринария, 2000. №4. С. 27-33. 7. Серветник Г.Е. Научное обеспечение интеграции аквакультура с отраслями сельского хозяйства // Перспективы и проблемы развития аквакультуры в составе АПК: Материалы Всероссийской научно-практической конференции (Москва, ВВЦ, 4-6 февраля 2014 г.) [Электронный ресурс] – ГНУ ВНИИР – М.: Издательство «Перо», 2014. – 316 с. 1 CD-ROM. 8. Симаков Ю.Г. Гидробиология и борьба с загрязнением рыбохозяйственных водоёмов: Учеб. Пособие / Ю.Г. Симаков. - М.: ВЗИПП, 1982. 9. Сулейманян В.С., Панасенко В.В., Афанасьев В.И. Борьба с аэромонозом карпов в осенне-зимне-весенний период // Материалы Всесоюзной научной конференции по направлению и интенсификации рыбоводства во внутренних водоемах Северного Кавказа. М., 1979. С. 213-215. EFFICIENCY, ECOLOGICALMETHOD FORTHE PREVENTION OF BACTERIAL DISEASES OF POND FISH V.V.Zotov Keywords: aeromonosis, pseudomonosis, population dynamics, pond fish farming, fish productivity, saprophyticbacteria, eutrophication. The paper demonstrates the prospects for increasing the yield offish production in pond culture of the country, strong lyassociated with the intensification of aquaculture technology. Intensification offish farming in these watersare inevitably accompanied byeutrophication. 26 УДК 619:576.89; 619:616.995.1 ИНТЕРПРЕТАЦИЯ РЕЗУЛЬТАТОВ СЕРОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ В ПТИЦЕВОДСТВЕ А. Колбасенко, доктор ветеринарных наук, представитель IDEXX в России тел.: +49-151-4671-9244; моб.: +7-985-367-3570 Email: alexey-kolbasenko@idexx.com Ключевые слова: серология, мониторинг заболеваний, исследования ИФА В статье приведены сведения об интерпретации результатов серологических исследований в птицеводстве Десять принципов интерпретации результатов серологических исследований: Серология является фундаментальной основой диагностики и мониторинга заболеваний домашней птицы и наблюдения за их течением. Но все ее возможности раскрываются в том случае, если полностью учитываются и тщательно изучаются все сопутствующие факторы. Изложенные ниже десять принципов позволяют учесть все переменные, отследить региональные тенденции и оценить сопутствующие факторы, дополняющие комплексную диагностику, которой вы можете доверять. Корпорация IDEXX считает, что сомнения, в получаемых результатах исследований, неприемлемы. 1. Используйте быстрый, чувствительный, специфический и экономный серологический метод. Нет никаких сомнений в том, что твердофазный иммуноферментный анализ (ИФА/ELISA) является превосходным серологическим методом. Для обнаружения и измерения антител против различных патогенов за короткое время можно обработать сотни или тысячи образцов сыворотки. Несмотря на то, что другие типы анализов могут быть также чувствительными, специфическими и, возможно, менее затратными в краткосрочной перспективе, но для их проведения зачастую требуются продолжительные трудоемкие процедуры, что в перспективе может привести к увеличению затрат. 2. Создайте и используйте свою собственную базу данных и базовые линии титров антител. В условиях консолидации и высокой динамики в птицеводческой отрасли при распространении полевых процессов на многие географические регионы критически важно создавать системы, которые дают возможность ветеринарам-орнитологам быстро и объективно анализировать свои данные с целью идентификации острых проблем или тенденций при заболевании птицы. Собственная база данных крайне важна для объективной оценки серологических исследований. Ни при каких обстоятельствах ветеринар-орнитолог не должен полагаться исключительно на предварительно установленные стандартные титры антител, полученные для других регионов, систем производства, программ вакцинации и ситуаций полевого заражения, которые могут отличаться от фактических данных предприятия. Например, более высокие, чем нормальные титры антител против вируса инфекционного бронхита (IBV), в убойном возрасте могут указывать на следующие возможные проблемы: • Предприятие сталкивается с полевым возбудителем чаще обычного. • Используемая программа вакцинации требует соответствующих изменений. • Могут существовать другие возбудители болезней, которые провоцируют, содействуют или осложняют заболевание IBV. Для создания оптимальных стандартов оценки мы рекомендуем использовать систему, автоматически генерирующую данные, которые можно хранить и обрабатывать в электронном виде. Это повысит точность, качество оценки и сэкономит время. 3. Сравнивайте свою базу данных с данными из вашего региона. Собственная база данных серологических исследований является той наиболее важной точкой отсчета, с которой начинается программа управления птицеводческим хозяйством. Она может использоваться ежедневно, но при этом важно сравнивать ваши собственные данные с данными вашего региона. Сравнивая собственные данные о титрах антител, полученных после вакцинации или при мо- 27 ниторинге, с данными всех остальных птицеводческих хозяйств вашего региона, вы скорее всего обнаружите возможности для совершенствования с точки зрения фактических титров антител и однородности ответной реакции на вакцинацию (обычно выражается коэффициентом вариации, или CV%). Однако сравнение вашей собственной базы данных с данными, полученными в других регионах мира, может дать существенно отличающуюся картину титров антител (поствакцинальных или на фоне циркуляции полевого возбудителя) и быть менее эффективной и рискованной альтернативой. 4. Учитывайте сезонные изменения серологических данных. Даже при отсутствии проблем с инфекционными заболеваниями в полевых условиях, титры антител обычно не одинаковы в течение всего года. Это утверждение особенно справедливо для тех широт, где погода существенно меняется в течение года. Даже в тех регионах, которые переживают лишь «сухой» и «влажный» сезоны, могут наблюдаться значительные вариации титров антител в ИФА между сезонами. Зимние месяцы и начало весны обычно связаны с ростом числа респираторных заболеваний в полевых условиях и, следовательно, в это время года титры антител могут быть выше. Всякий раз важно сравнивать полученные данные титров антител с собственными данными, полученными в тот же самый период года. Именно поэтому предварительно установленные данные титров антител, полученные для других регионов, не должны использоваться в качестве приемлемой точки отсчета. 5. Знайте возможности и ограничения каждого лабораторного анализа. ИФА используется во всем мире и служит очень важным целям. ИФА - это незаменимый инструмент поиска тенденций в сероконверсии при воздействии вируса инфекционного бронхита (IBV), инфекционного бурсита (IBDV) или реовирусного артрита (REO), а также многих других возбудителей. ИФА позволяет обнаружить любые существенные вариации полевого заражения или изменения в подходе к вакцинации. Тем не менее, необходимо знать, что методом ИФА нельзя «классифицировать» иммунные реакции, вызванные специфическими или вариантными штаммами. Например, методом ИФА нельзя определить, каким именно серотипом вируса инфекционного бронхита заражено стадо: Массачусетс, Арканзас, Коннектикут, DEO72, и т.д. 28 6. Избегайте рискованных одиночных точечных оценок. Для клинической диагностики критическое значение имеет исследование парных сывороток. Эти исследования заключаются в тестировании образцов сыворотки, отобранных в течение острой и реконвалесцентной фазы болезни. Многие ветеринары-орнитологи не всегда принимают эту концепцию, полагая, что пока они ожидают взятия второй пробы в течение реконвалесцентного периода, в этот период ничего нельзя делать со стадом. В сегодняшних системах интенсивного производства очень важно определять тенденции, чтобы произвести предупреждающие мероприятия для всего производства, а не только для отдельного стада. Сбор образцов в течение острой и реконвалесцентной фазы для определения уровня антитела необходимо проводить сразу после идентификации первых клинических признаков, а затем через 2–3 недели, чтобы можно было определить сероконверсию в отношении конкретного патогена. Зачастую невозможно держать птицу достаточно долго для отбора проб, так как по плану подходит срок убоя. Поэтому в подобной ситуации мы рекомендуем оставить несколько особей в изоляции на несколько дней до повторного отбора проб. Дальнейший сбор проб у изолированной птицы даст ценную информацию и может сэкономить компании значительные средства. 7. Соблюдайте требования местных, государственных и иных официальных норм. Для мониторинга заболевания должны использоваться все методики, рекомендованные официальными органами власти. У многих птицеводческих компаний имеется внутренний протокол проведения исследований для определения здоровья поголовья, а также дополнительная программа тестирования для соблюдения местных норм и выполнения требований при экспорте в другие страны. 8. Учитывайте те штаммы, варианты или серотипы патогенных микроорганизмов, которые циркулируют локально. Ошибочным является представление об обеспечении биологической защиты на основании наличия уровня антител в определенном интервале без учета типов тех штаммов, вариантов или серотипов патогенных микроорганизмов, которые циркулируют локально. Тестирование при помощи ИФА не может определить, против какого именно штамма, варианта или серотипа направлены антитела. Вот несколько типичных примеров: • Титр 3000 может быть защитным против штамма Lukert вируса инфекционного бурсита (IBDV), но он не может быть защитным против штамма DelE вируса IBD. • Титр 2000 против вируса инфекционного бронхита (IBV) может говорить о серьезной проблеме на некоторых предприятиях, в то время как для здоровых стад в других предприятиях это не является проблемой. • Титр 1200 против реовирусного артрита (REO) многие предприятия могут интерпретировать как наличие полевого заражения, в то время как бройлерные стада могут чувствовать себя прекрасно. Все это недвусмысленно иллюстрирует важность идентификации локальных тенденций, признаков заболевания, эффективности вакцины и эффективности работы службы вакцинации и т.д. - всё зависит от внутренних процедур компании, а не от тех проблем, которые обнаружены в отдаленных регионах мира. 9. При интерпретации результатов серологических исследований необходимо знать реальную полевую ситуацию и эпидемиологию заболевания. Хорошая взаимосвязь компаний, занятых в производстве птицы, существует далеко не везде. При интерпретации серологических данных следует учитывать всю имеющуюся релевантную информацию, так как это способствует реальной оценке ситуаций по заболеванию. Например, если производитель никогда не сталкивался с проблемой реовирусной инфекции (REO), не знает, что в регионе был диагностирован REO, и обычно не тестирует на антитела к возбудителю микоплазмоза птиц (MS), так как MS обычно не представляет проблемы в этом регионе, такой производитель может не заметить тенденцию в сероконверсии против MS и может не принять во внимание необходимость тестирования на REO. 10. Необходимо знать, как и когда проводить качественную и количественную интерпретацию данных серологических исследований. Любой ветеринар-орнитолог смотрит на «высокие» титры антител как на признак хорошей сероконверсии после вакцинации или признак полевого воздействия определенного патогена. Это количественная оценка результатов. При этом также важно видеть однородный антителогенез, который обычно выражается коэффициентом вариации (CV). В птицеводстве коэффициенты вариации обычно выражаются в процентах, CV%. Это простое стандартное отклонение, деленное на среднее значение и умноженное на 100, полученное по результатам тестирования титров антител у однородной массы 20-недельных цыплят селекционного стада. CV является мерой вариации антител в пределах группы образцов сыворотки крови. Чем ниже CV, тем более однороден антителогенез. Низкое значение CV обычно связано с качественно проведенной вакцинацией или с недавним антителогенезом вследствие воздействия полевого патогена. Таким образом, в количественном отношении, чем выше количество антител, тем лучше ответная реакция; чем ниже CV, тем более однородна ответная реакция, независимо от титра. Итак, антителогенез может быть небольшим в количественном отношении (низкий титр антител) и однородным одновременно, но это не то, что нам обычно нужно. Так как титр в ИФА или диапазон титра ИФА количественно отражает антителогенез, такие титры должны использоваться следующим образом: 1) в качестве точки отсчета для наблюдения возможных тенденций в сероконверсии на птицеводческом предприятии при возникновении полевой инфекции; 2) для определения сероконверсии в парных сыворотках, взятых для исследований в острой и реконвалесцентной фазах; 3) для исследований вакцин и техники их применения; или 4) для документального подтверждения отсутствия антител к патогенам, таким как птичий грипп (AIV), респираторный (MG) или синовиальный (MS) микоплазмоз. Стандартные данные, полученные в чисто количественном анализе, таком как ИФА, в некоторых регионах мира, не должны использоваться для оценки степени защиты против специфических патогенов без учета местных обстоятельств и возможности полевого заражения различными вариантами, штаммами и серотипами. Также при этом необходимо учитывать реальную информацию о местной эпидемиологической обстановке по конкретному заболеванию и применяемые системы птицеводства. Для дополнительной информации или возникающим вопросам прошу обращаться к дистрибутору IDEXX на территории РФ или по электронной почте alexey-kolbasenko@idexx.com. Также информацию можно получить по телефонам: +7-985-367-3570 и +49-151-4671-9244. 29 INTERPRETATION OF SEROLOGICAL IN POULTRY A. Kolbasenko Keywords: serology, monitoring of diseases, study IFA This article provides information about interpreting the results of serological poultry УДК 619 РЕПРОДУКТИВНО-РЕСПИРАТОРНЫЙ СИНДРОМ СВИНЕЙ А. Колбасенко, доктор ветеринарных наук, представитель IDEXX в России тел.: +49-151-4671-9244; моб.: +7-985-367-3570 Email: alexey-kolbasenko@idexx.com Ключевые слова: репродуктивно-респираторный синдром, ПЦР, исследование ИФА. В статье приведены сведения о методах диагностики и профилактики репродуктивно-респираторного синдрома свиней Заболевание «репродуктивно-респираторный синдром свиней» не относится к заболеваниям, контролируемым государством, но это заболевание является важным с экономической точки зрения, так как ежегодно приносит большие убытки в свиноводческой индустрии. К сожалению по этому заболеванию нет четкой статистики для России или прилежащих стран, но зарубежная статистика однозначна и указывает на серьезные экономические потери. Так статистические исследования в США показывают, что экономические потери только в этой стране составляют 640 млн. долларов ежегодно. Принимая во внимание объемы свиноводческой промышленности можно сказать, что экономические потери в России примерно находятся на том же уровне. Из чего складывается проблематика этого заболевания? В первую очередь негативным моментом является филогенетическое разнообразие возбудителя заболевания и появление новых высоко-патогенных штаммов, таких как ВосточноЕвропейский штамм «Лена». Следующей проблемой является не достаточная изученность заболевания, механизма иммунного ответа и защиты от этого возбудителя. К сожалению, специфическая иммунопрофилактика не дает 100% защиты, т.к. возбудитель подвержен мутациям, и даже в случае применения вакцины, содержащей соответствующий для 30 конкретного предприятия штамм, вакцинация не является полнЫм решением проблемы на данный момент. Не исключено, что в будущем будут появляться вакцины и схемы вакцинации с более протективным эффектом действия. Проблемой так же является отсутствие стандартизированных программ по борьбе с РРСС и программ мониторинга этого заболевания, что в совокупности с увеличением производства и скученности животных на одном условном квадратном метре ведет к увеличению вспышек этого заболевания и их продолжительности. При этом проблема экономических потерь сохраняется. Одной из причин быстрого распространения возбудителя в поголовье является его стабильность в окружающей среде, которая зависит от качества очистки и дезинфекции, а также от температуры и влажности окружающей среды. При высокой влажности и комфортной температуре вирус может долгое время оставаться вирулентным и вызывать заболевание у животных. Также очень важное значение имеет относительно длительная персистенция вируса в организме/лимфоузлах животного. Установлен тот факт, что вирус может сохраняться в заглоточных лимфоузлах до 200 дней. При этом «закрытие» поголовья на срок до 200 дней может способствовать элиминации возбудителя. Для снижения распространения вируса в поголовье и в целом борьбы с заболеванием необходимо: 1. Соблюдать высокие стандарты гигиены и биобезопасности на предприятии. 2. Не смешивать разновозрастные группы животных, т.к. это благоприятствует продолжению циркуляции возбудителя в поголовье. 3. Следовать принципу «все пусто - все занято» с проведением качественной дезинфекции эффективными дезинфектантами, что является очень важным для разрыва инфекционной цепи. 4. «Закрывать» поголовье по меньшей мере на 200 дней для качественной эрадикации заболевания на конкретном предприятии. 5. Устанавливать фильтрующие элементы в системе воздухоснабжения для предотвращения аэрозольного заноса и распространения инфекции в помещении. Известен тот факт, что с воздушным потоком вирус может передаваться на расстоянии до 80 км, поэтому фильтрация воздуха является очень важным моментом в предотвращении распространения возбудителя заболевания. 6. Проводить массовую вакцинацию живыми или модифицированными вакцинами. Несмотря на то, что вакцинация не является решением проблемы, ее обязательно нужно использовать как вспомогательный инструмент для снижения распространения вируса в поголовье, снижения периода виремии у животных и сокращения длительности выделения вируса в окружающую среду. При этом необходимо проявлять осторожность в применении этих вакцин, т.к. живой вакцинный вирус может передаваться от животного к животному и может самостоятельно вызывать инфекционный процесс в легочной и лимфатической ткани. 7. Для сокращения рисков распространения РРСС на предприятии, необходимо проводить регулярный мониторинг возбудителя, что является инструментом управления сохранностью стад от клинической РРСС инфекции. При этом исследовать животных на носительство нужно из всех возрастных групп и всех производственных единиц. Так необходимо подтверждать индивидуальный отрицательный статуса по РРСС у производителей из «семенного фонда». Здесь в связи с трудностями взятия крови предпочтительным является взятие спермы и ее исследование в методе ПЦР. Далее необходимо подтверждать статус свободы от РРСС у ремонтных свинок перед их введением в материнское стадо и желательно это делать в начале и в конце карантинного периода. Следующей неотъемлемой частью мониторинга является контроль эффективности вакцинации или подтверждение статуса РРСС у основных свиноматок и поросята. Исследования также всегда нужно проводить перед перегруппировкой животных. Эти диагностические лабораторные исследования у ремонтных свинок, основных свиноматок и поросят эффективно проводить с использованием методики иммуноферментного анализа. При этом необходимо обращать внимание на то, что бы ни одна из групп животных не оставалась не исследованной, и количество проб соответствовало нормативам выборки. Так исследование хряков нужно проводить поголовно не менее 4 раз в год при отборе и исследовании спермы в ПЦР, либо проб крови в ИФА. Основные свиноматки должны также исследоваться не менее 4 раза в год по 10-30 образцов из каждой группы воспроизводства. Исследование ремонтных свинок желательно проводить поголовно или по крайней мере брать пробы от 30-60 голов из каждой партии в начале и в конце карантина. У поросят-сосунов отбираются 10-30 образцов из каждой группы воспроизводства для исследования снижения уровня материнских антител. У поросят-отъемышей отбираются 10-30 из партии, и также отбираются 10-30 образцов крови для исследования у животных перед убоем. Вся полученная информация анализируется в сопоставлении с производственными показателями, замечаниями, полученными в ходе осмотра поголовья, клиническими признаками и на этом основании делаются выводы для дальнейших действий. При обнаружении циркуляции полевого возбудителя в поголовье результаты серологических исследований позволят понять динамику распространения заболевания. При этом исследование парных сывороток является решающим моментом, и взятие проб от не привитых животные является предпочтительным, т.к. все это позволяет более легко и точно интерпретировать результаты исследований. При регистрации клинических признаков и подозрении наличия РРСС в поголовье, необходимо всегда проводить дифференциальную диагностику. При этом если имеются проблемы с репродуктивностью у свиноматок необходимо проводить дифференциацию от парвовирусной 31 инфекции, КЧС и Ауески. При регистрации ранних опоросов и получении мелкого приплода необходимо исследовать на наличие стресс-факторов. Если при рождении приплод имеет низкий вес – нужно исключить нарушения в кормлении свиноматок и условиях их содержания. При наличии респираторных признаков заболевания необходимо провести дифференциацию РРСС от актинобациллярной плевропневмонии, гриппа, энзоотической пневмонии свиней, стрептококковой инфекции, гемофилезной и коронавирусной инфекций, а также рассмотреть условия содержания и климата в помещениях. На данный момент для проведения серологических исследований для определения антител к вирусу РРСС в IDEXX имеются диагностические наборы IDEXX HerdChek* PRRS-X3 и IDEXX HerdChek* PRRS-OF, обладающие высокими характеристиками чувствительности, специфичности и воспроизводимости. Наборы позволяют проводить очень быстрый скрининг поголовья при исследовании проб слюнной жидкости от 15-20 голов в одной пробе с получением точных результатов, и позво- ляют проводить индивидуальные исследования животных для перепроверки сомнительных/положительных проб. При этом характеристики специфичности составляют 99,9% и характеристики чувствительности 96,8 - 98,8%. Лабораторная диагностика с использованием данных наборов гарантирует точные результаты, которые можно получить для большого количества животных в кратчайшее время – порядка 2х часов, с минимальными затратами труда лабораторных специалистов. Быстрые и точные тесты позволяют проводить исследования непосредственно перед перегруппировкой животных, их транспортировкой, сортировкой положительных голов от отрицательных и дают возможность быстрого подтверждения наличия инфекции или статуса свободы от инфекции. Для дополнительной информации или возникающим вопросам можно обращаться к дистрибутору IDEXX на территории РФ или по электронной почте alexey-kolbasenko@idexx.com. Также информацию можно получить по телефонам: +7-985-367-3570 и +49-151-4671-9244. REPRODUCTIVE AND RESPIRATORY SYNDROME FEVER A. Kolbasenko Keywords: reproductive and respiratory syndrome, PCR ELISA research. This article contains information about the methods of diagnosis and prevention of reproductive and respiratory syndrome virus 32 УДК 619:576.89; 619:616.995.1 ВИРУСНАЯ ДИАРЕЯ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА – ДИАГНОСТИКА И БОРЬБА С ЭТИМ ЗАБОЛЕВАНИЕМ НА ПРОИЗВОДСТВЕННОМ ПРЕДПРИЯТИИ А. Колбасенко, доктор ветеринарных наук, представитель IDEXX в России тел.: +49-151-4671-9244; моб.: +7-985-367-3570 Email: alexey-kolbasenko@idexx.com Ключевые слова: исследования, вирусная диарея, экспресс-тест. В статье приведены сведения о современных методах диагностики и борьбы с вирусной диареей крупного рогатого скота Вирусная диарея КРС является серьёзным заболеванием, которое влечёт за собой экономические потери и является причиной развития многих вторичных инфекций. Многие недооценивают Вирусную Диарею КРС и считают, что единственная проблема, которую вызывает этот вирус - это профузная диарея. На самом деле серьёзными последствиями этого заболевания могут быть респираторные болезни, аборты, снижение продуктивности и гибель скота. Снижение иммунитета, являющееся следствием перенесённого заболевания, открывает ворота различным вторичным вирусным и бактериальным инфекциям и влечёт за собой значительные экономические потери в хозяйстве. По словам Брэда Вильямса, Доктора Ветеринарных Наук, МВА, технического консультанта компании Эланко, собственники хозяйств и ветеринарные врачи могут никогда не узнать, что начальной причиной заболеваний явилась ВД КРС. «Животное может переболеть и выздороветь от Вирусной Диареи прежде чем мы узнаем, что оно было больно. Была ли вторичная бактериальная инфекция обусловлена ВД? Возможно, но на тот момент это очень сложно определить. На откормочных площадках животные могут получать не достаточно корма, и корм может быть не качественным, или болезнь может протекать бессимптомно и по клиническим признакам ее невозможно выявить». У коров инфекция может приводить к ранней гибели эмбрионов и абортам. В некоторых случаях животные выглядят истощенными. При этом больные животные могут просто поедать не достаточное, по сравнению со здоровыми животными, количество корма. В мировом масштабе количество инфицированного скота может составлять 1-2%, как замечает Дуглас Шольц, Доктор Ветеринарных Наук, директор ветеринарной службы компании Новартис. Обычно заражение вирусной диареей происходит, когда новые животные вводятся в стадо, а так же, когда больных животных помещают в соседние загоны или выпасают на общих пастбищах и таким образом, происходит передача вируса здоровым животным посредством прямого контакта, через инвентарь, ограждения или общие места поения. «В большинстве случаев вирус вносится в поголовье новоприобретёнными животными», - говорит доктор Шольц. «Возможно, животные были приобретены соседним хозяйством и контактировали со здоровыми особями через изгородь или выпасались на одном пастбище. Существует ещё один возможный вариант инфицирования – это распространение вируса на определённой территории другими жвачными животными, такими как белохвостые олени». Персистентно инфицированные (ПИ) животные. Вирусная диарея КРС обычно одинаково распространена во всех частях неблагополучной по этому заболеванию страны и может проявляться в любой период года. Распространению заболевания так же способствует выращивание изначально инфицированных телят. Это происходит, когда плод получает вирус трансплацентарно в утробе матери в период от 30 до 150 дня стельности. Телёнок рождается уже инфицированным и остается постоянным носителем вируса (персистентно инфицированным) всю жизнь. При этом он будет ежедневно выделять во внешнюю среду вирус с фекалиями, мочой, носовыми истечениями и другими секретами. Таких телят уже невозможно вылечить. С другой стороны, временно (транзиентно) инфицированных животных можно излечить за две – три недели. Большинство ПИ телят очень слабые и часто погибают до того, как наберут нормальный 33 Номер в Формат теса каталоге IDEXX BVDV Ag Point-of- 98-29124-00 10 тестов в упаковке Care Test Ушные выщипы (биопсия ушной ткани) IDEXX BVDV Ag/Serum Plus Test 99-43810 Сыворотка, плазма, цельная кровь и ушные выщипы IDEXX BVDV Ag/Serum Plus Test 99-43830 IDEXX BVDV Ag/Serum Plus Test 99-43899 IDEXX BVDV Ag Leucocytes Test 99-43520 Название теста IDEXX BVDV Total Ab 99-44000 Test IDEXX BVDV p80 Ab Test P00645-5 Определение антигена; 2 планшета/стрипы Определение антигена; 5 ланшетов/стрипы Определение антигена; 30 планшетов/цельные Определение антигена; 5 ланшетов/стрипы Определяет антитела; 5 ланшетов/стрипы Определяет р80 антитела; 5 ланшетов/стрипы вес. Несмотря на то, что некоторые животные могут иметь вполне нормальный вид и вес, они по-прежнему будут выделять вирус ВД с фекалиями, мочой и т.д. Введение больного телёнка в здоровое стадо может спровоцировать вспышки респираторных заболеваний и массовые аборты, как замечает доктор Шольц. Изолирование инфицированного скота от общего поголовья снижает уровень заболеваемости и затраты на лечение. Поэтому, покупатели готовы платить более высокую цену за клинически и серологически здоровых животных. «Покупатели готовы платить больше за тот скот, у которого меньше проблем со здоровьем», говорит доктор Шольц. «В среднем доплачивается 15$ за голову, если телята были исследованы на наличие ВД и результаты являются отрицательными. Мы должны изучать этиологию вируса и патогенез этого заболевания. Если в стаде находятся ПИ телята, то необходимо проводить активную программу вакцинации, которая может дать большой дополнительный эффект. Таким образом, вы разрушите жизненный цикл вируса». Диагностика и Биобезопасность. «Если в вашем стаде присутствует персистентно инфицированное животное, оно будут являться 34 Исследуемый материал Сыворотка, плазма, цельная кровь и ушные выщипы Сыворотка, плазма, цельная кровь и ушные выщипы Лейкоциты периферийной крови, пробы ткани, носовые смывы и культура клеток Сыворотка, плазма крови и пробы молока Определяет антиген р80 в индивидуальных и смешанных (до 10) пробах сыворотки, плазме крови и пробах молока, а также в индивидуальных и смешанных (до 5) пробах сыворотки крови овец постоянным источником инфекций», говорит Кристоф Эгли, доктор ветеринарных наук, старший менеджер по маркетингу направления КРС в лаборатории IDEXX. «Вы не можете применить антибиотики и ПИ теленка невозможно вылечить. Вы можете только удалить его из стада. Единственный способ подтвердить присутствие больного животного – это проведение лабораторного исследования, которое сейчас стало еще более быстрым и удобным». Тестирование животного на наличие вируса может производится сразу после выгрузки молодняка из грузового автомобиля. В идеале, проведение исследования перед отправкой животного является самым правильным шагом, таким образом можно снизить вероятность контакта животного со здоровыми особями. Если проведение тестирования до покупки скота невозможно, то можно использовать экспресс тесты с использованием проб ушной ткани. Эти тесты производятся IDEXX и дают быстрые результаты, что позволяет незамедлительно принять решение о дальнейшей судьбе животного (необходимости убоя, отчуждения от стада). Для проведения обычного мониторинга поголовья, Кристоф Эгли рекомендует использовать ИФА тесты для лабораторного определения вирусного антигена при исследовании отдельных проб. Для подтверждения отрицательного статуса поголовья можно воспользоваться ПЦР тестом и исследовать от 10 до 20 объединенных проб, чтобы снизить затраты на одну голову. По словам доктора Эгли, очень важно делать упор на диагностику и биобезопасность, принимая во внимание тот ущерб, который ежегодно наносится хозяйствам вирусной диареей КРС и по последним оценкам, сделанным в США, превышает 2 миллиарда американских долларов. «Вакцинация ПИ животных не предотвратит выделение вируса во внешнюю среду, но поставив правильный диагноз, удалив ПИ животных из стада и проведя вакцинацию остального поголовья вы значительно улучшить биобезопасность стада», замечает Кристоф Эгли. Как видно из приведенной таблицы, в списке ИФА диагностики IDEXX имеется большое количество тестов для определения специфического антигена или антител к ВД КРС, находящихся в распоряжении ветеринарных специалистов и лабораторий. Эти тесты, кроме BVDV Ag Point-ofCare теста, предназначены для использования в лаборатории и отвечают различным требованиям, в том числе требованиям международного стандарта ISO. Исходя из ситуации, можно подобрать соответствующий тест. При этом учитывается: что необходимо определить - антиген или антитела, какой исследуемый материал используется и какое количество проб необходимо тестировать. В зависимости от протокола постановки теста результат может быть готов уже в течение двух часов. При этом все тесты обладают высоким показателями специфичности и чувствительности и позволяют точно определять, является ли животное вирусоносителем. Тесты IDEXX позволяют быстро и качественно проводить полный скрининг стада и дают ценную информацию для разработки программы вакцинации и биозащиты поголовья. Особого внимания среди приведенных тест-систем заслуживает BVDV Ag Point-of-Care тест. Этот не дорогой экспресс тест позволяет получать качественные результаты исследования в течение 15 минут и в регионах, где нет лаборатории с возможностью постановки ИФА, этот тест имеет решающее значение. Он очень удобен для диагностики новорожденных телят, определения персистентно инфицированных животных, незаменим для быстрого установления статуса по заболеванию животного перед его продажей, покупкой, перевозкой или перегруппировкой. Тест позволяет быстро подтвердить или опровергнуть подозрение на заболевание, при схожих клинических признаках, гибели животного, произошедшем аборте или мертворождении. При возникновении вопросов или необходимости в дополнительной информации просьба обращаться в компанию Биопром-Центр, E-mail: alexpan4@mail.ru, тел.: +7-495-739-4217 или моб.: +7-964-506-1294, или компанию IDEXX, E-mail: alexey-kolbasenko@idexx.com, тел: +7-985367-3570 или +49-151-4671-9244. Статья создана на основании материалов журнала «Veterinary Advantage», (2014 год,1 номер). BOVINE VIRUS DIARRHEA - DIAGNOSIS AND CONTROL OF THE DISEASE IN MANUFACTURING PLANTS A. Kolbasenko Keywords: research, viral diarrhea, rapid test. This article contains information about modern methods of diagnosis and control of bovine virus diarrhea 35 УДК 619:578.828:636.2:637.12.04/.07 РЕТРОВИРУСНЫЕ ИНФЕКЦИИ КРС, ИХ ВЗАИМООБУСЛОВЛЕННОСТЬ И ВЛИЯНИЕ НА КАЧЕСТВО КОРОВЬЕГО МОЛОКА О.С. Ларионова, доктор биологических наук, доцент Е.С. Красникова, кандидат биологических наук, доцент ФГБОУ ВПО «Саратовский ГАУ» 8(8452)692532, rector@sgau.ru Ключевые слова: вирусный иммунодефицит, энзоотический лейкоз, крупный рогатый скот, ретровирусная микстинфекция, полимеразная цепная реакция, реакция иммунодиффузии, молоко. Статья посвящена выяснению частоты выявления и взаимообусловленности вирусного иммунодефицита и энзоотического лейкоза крупного рогатого скота, а также определению качества молока, полученного от коров, инфицированных данными ретровирусами. Семейство Retroviridae включает два патогенных для крупного рогатого скота (КРС) вируса: Bovine immunodeficiency virus (BIV) и Bovine leukemia virus (BLV). Ретровирусные инфекции КРС широко распространены в мире. В эндемичных регионах инфицированность животных ретровирусами стремиться к 100% [1, 2]. Вирус иммунодефицита действует как иммуносупрессор, снижая устойчивость животных к другим инфекциям и инвазиям, так как поражает центральное звено иммунной системы – Т-хелперы. Вирус лейкоза также угнетает иммунную систему, так как паразитирует в мононуклеарах крови, поражая преимущественно В-лимфоциты. В результате резко снижаются адаптивные возможности организма, специфическая и неспецифическая резистентности, что неизбежно приводит к развитию патологического процесса [1, 3]. Распространение ретровирусных инфекций среди скота приводит к значительному экономическому ущербу, складывающемуся из снижения количества и качества молочной и мясной продукции, падежа или вынужденного убоя животных, недополучения молодняка, а также потери его племенной ценности и ограничения в реализации, затрат на проведение противоэпизоотических мероприятий и обеззараживание молока. Например, потери в молочной промышленности от энзоотического лейкоза (ЭЛ) в США в 2003 году срставили 525 миллионов долларов. Что касается отечественного животноводства, стоимость одной головы высокопродуктивного племенного скота, например голштино-фриз36 ской породы, составляет около 130 тыс. руб. В связи с увеличением курса евро, стоимость телки, завозимой из зарубежных стран, в ряде случаев превышает 270 тыс. рублей. В настоящее время хозяйства Российской Федерации теряют в первый год эксплуатации от 8 до 35% поголовья скота, купленного за рубежом, в том числе 3-4% животных выбраковываются по причине выявления у них лейкоза [3, 4]. Среднесуточный удой племенной коровы составляет 28 л молока в день. Если взять среднюю стоимость молока 20 руб./литр, то ущерб от недополучения продукции составит примерно 170 тыс. руб./год. В сумму ущерба так же нужно включить и стоимость недополучения телят при выбраковке коров репродуктивного возраста. У инфицированного лейкозом скота удои и выход мяса уменьшаются на 5,5-12,7%. Кроме того, в молоке снижается содержание жира, общего белка и большинства аминокислот, накапливаются продукты распада белков. В случае выявления лейкоза у полновозрастных высокопродуктивных коров, их приходится выводить из товарного производства, заменяя их нетелями, которые еще не имеют высоких надоев. При этом валовое производство молока на сельхозпредприятии снижается примерно на 6%. Экономический ущерб из-за снижения молочной продуктивности составляет в среднем 2,5 тыс. рублей на одну инфицированную корову. Общий экономический ущерб от лейкоза только в одном племенном хозяйстве может достигать более 10 млн. рублей в год [4]. Наиболее часто ретровирусы поражают высокопродуктивных молочных коров. Среди 93,75% 100,00% 80,00% 60,00% 40,00% 6,25% 20,00% 0,00% ПЦР-отрицательные ПЦР-положительные Рисунок 1 - Результаты ПЦР-исследования РИД-положительного КРС 80% 70% 60% 50% 40% 30% 20% 10% 0% 73,33% 16,67% 10% BLV-положительные BIV-положительные BLV-BIV-положительные Рисунок 2 - Результаты ПЦР-исследования носителей ретровирусов среди КРС исследователей нет однозначного мнения о безопасности продуктов питания, полученных от животных, инфицированных вирусами лейкоза и иммунодефицита. Доказана возможность инфицирования клеток человека BLV. Молоко от клинически больных лейкозом коров запрещено для питания, молоко от носителей нельзя давать детям, оно разрешено к переработке только после обеззараживания [2, 3]. В настоящее время, для диагностики вирусного иммунодефицита (ВИ) КРС в РФ не существует сертифицированных тест-систем и официально утвержденных инструкций. Согласно утвержденным правилам, при выявлении BLVинфицированных животных регламентированными являются реакция иммунодиффузии (РИД) и гематологические исследования. В то же время они не являются абсолютными методами прижизненной диагностики гемобластозов КРС [4, 5]. Целью наших исследований явилось выявление взаимообусловленности при ЭЛ и ВИ КРС, а также установление влияния ретровирусных инфекций на качество коровьего молока. Для достижения цели нами были поставлены следующие задачи: - выяснить уровень инфицирования КРС вирусами иммунодефицита и лейкоза; - установить степень микстинфицирования животных обоими ретровирусами; - дать оценку качества молока, полученного от коров при ретровирусных инфекциях; 37 Рисунок 3 - Определение КМАФАнМ в сыром молоке. Рисунок 4 - Определение кислотности сырого молока при хранении 4ºС - сравнить динамику изменения белкового состава молока, полученного от коров, инфицированных ретровирусами. Материал и методы. Материалом для исследования явились 32 пробы периферической крови от коров из села Озерное Саратовской области, которые по результатам РИД были признаны инфицированными BLV, а также молоко кров, инфицированных ретровирусами. Исследование крови КРС на носительство вируса лейкоза и иммунодефицита осуществляли методом ПЦР с использованием набора «Лейкоз» (ИнтерЛабСервис, Россия) и по оригинальной методике (Колотвин В.В.). 38 Молоко исследовали методом высокоэффективной жидкостной хроматографии с предварительной пробоподготовкой на 1, 3 и 6 день хранения при +4ºС. Исследования выполнялись на системе жидкостной хроматографии «СтайерАквилон» с УФ детектором, снабженным колонкой Рhenomenex BioSep-SEC-S2000 с размером пор 145 Å, 300х7,80 мм. Детектирование проводили при длине волны 214 нм, в качестве подвижной фазы использовали раствор содержащий 0,025% азида натрия и 0,1 м фосфатносолевого буфера с скоростью потока 2 мл/мин. Исследования проводили на базе центра коллективного пользования лаборатории «Молекулярно-биологических исследований». Цельное молоко в объеме 10 мл центрифу- Рисунок 5 - Хроматограмма белков молока BIV-инфицированной (1) и BIV-BLV-инфицированной (2) коров на 1ый (А), 3ий (Б) и 6ой (В) дни хранения при +4ºС. Рисунок 6 - Соотношение высоко- и низкомолекулярных белков в молоке инфицированных коров 39 гировали на 10 тыс. об/мин при температуре +5Сº 30 мин. Отделяли верхнюю фракцию липидов и осадок. Затем в обезжиренное молоко при 37ºС по каплям, при постоянном перемешивании, вносили соляную кислоту до достижения рН 4,5, далее продолжали перемешивание на протяжении 30 минут. Полученный раствор центрифугировали на 5 тыс. об/мин при температуре +25ºС на протяжении 10 минут, отделяли надосадочную фракцию и 1 М раствором натрия рН осадка доводили до 6,5. Также в день получения молока определяли его органолептические, физико-химические показатели. Микробиологические исследования и изучение кислотности молока проводили в динамике. Работу выполняли на базе учебно-научно-испытательной лаборатории по определению качества пищевой и с.-х. продукции и в лаборатории кафедры «Микробиология, биотехнология и химия» по стандартным методикам. Результаты исследований. Результаты ПЦРанализа представлены на рисунках 1 и 2. Как показано на рис. 1, 6,25% РИДпозитивных животных не являются носителями ретровирусов, в том числе возбудителя ЭЛ КРС. Рис.2 иллюстрирует, что среди РИДположительных вирусносителей выявляют как животных, инфицированных ВИ (16,67%), так и вирусом ЭЛ КРС (10%), но большинство животных (73,33%) являются носителями одновременно двух ретровирусов. Наши данные коррелируют с литературными сведениями, о том, что BIVBLV-микстинфицирование часто обнаруживается у КРС [2]. Роль ВИ в патологии зачастую позиционируется авторами как неопределенная. Мы можем предположить, что распространение ВИ среди КРС предрасполагает к заражению BLV и, следовательно, способствует росту инфицированности животных вирусом ЭЛ КРС. По органолептическим и физико-химическим показателям молоко инфицированных коров почти не отличалось от молока здоровой и находилось в пределах нормы. Но в молоке здоровой коровы не обнаруживалась кишечная палочка, в отличие от молока инфицированных коров. Изменение кислотности и бактериальной обсемененности проб молока в динамике представлены на рисунках 3 и 4. Как показано на рис. 3 и 4, молоко от микстинфицированной коровы скисало медленнее, при этом в нем обнаруживалось огромное количество секундарной микрофлоры, значительно превышающее предельно допустимые нормы для сырого коровьего молока. То есть, конкурентное действие секундарной микрофлоры приводило не 40 к скисанию молока, а к развитию в нем гнилостных процессов. У молока BIV- и BLV-инфицированных коров значительно снижалось время бактерицидной фазы молока, и оно начинало скисать уже на первые сутки хранения в холодильнике, тогда как молоко здоровой коровы с течение 3 суток сохраняло кислотность в пределах нормы, а затем быстро превращалось в простоквашу. Данные исследования белкового состава молока представлены на рисунках 5 и 6. Как показано на рис. 5 - 6, в молоке латентно инфицированной вирусом иммунодефицита коровы на 3 день еще обнаруживались высокомолекулярные белки (иммуноглобулины, казеин) в достаточно большом количестве, к 6 дню в нем уже преобладали низкомолекулярные белки – продукты микробной ферментации молока. В молоке коровы микстинфицированной вирусами иммунодефицита и лейкоза уже на первый день количество низкомолекулярных белков было высоким, а полноценные молочные белки в нем практически отсутствовали. И со временем картина усугублялась. Известно, что микробы ферментируют не только белки, но отдельные аминокислоты молока, в том числе серо-, азотсодержащие и циклические, что приводит к образованию токсичных для человека веществ (Н2S, NН3, фенолы). Выводы: 1. Микстинфекция BIV-BLV была выявлена у 73,33% исследованных коров, тогда как в моноинфекции BIV выявлялся у 16,67%, а BLV- у 10% животных. 2. По результатам санитарно-микробиологического исследования в пробе молока от микстинфицированной коровы была выделена культура кишечной палочки, наблюдалось недопустимое увеличение показателя КМАФАнМ. 3. BIV и BLV-инфицирование способствуют снижению бактерицидных свойств молока, что приводит к постепенному скисанию молока уже на первые сутки, BIV и BLV – микстинфекция приводит к развитию в молоке гнилостных процессов. 4. Молоко латентно инфицированной ВИ коровы в течение первых трех дней хранения в холодильнике сохраняет достаточно стабильный белковый состав, а молоко при BIV-BLV-микстинфекции уже на первые сутки имеет признаки деградации белков, что значительно снижает его пищевую ценность и способствует накоплению в нем токсичных для человека веществ. Библиографический список: 1. Ларионова О.С., Красников А.В., Утанова Г.Х. Анализ инфицированности крупного рогатого скота ретровирусными инфекциями в саратовской области//Аграрный научный журнал. №2/2015. С. 1719. 2. Brujeni GN, Poorbazargani TT, Nadin-Davis S, Tolooie M, Barjesteh N.J Bovine immunodeficiency virus and bovine leukemia virus and their mixed infection in Iranian Holstein cattle//Infect Dev Ctries. 2010 Oct 4;4(9):576-9. 3. Галеев Р.Ф., Хусаинов Р.Ф. Лейкоз крупного рогатого скота. Уфа: Издательство «Новый стиль». 2009г. - 220 с. 4. Воробьев А.Л., Антюхов В.М. Лейкоз КРС: диагностика и проблемы оздоровления//Передовые технологии: Ветеринарная медицина http://borona.net/hight-technologies/veterinary/Lejkoz_KRS_ diagnostika_i_problemy_ozdorovlenija.html 5. Красникова Е.С., Агольцов В.А., Мелкина П.С. Диагностическая оценка серологического и молекулярногенетического методов лабораторных исследований на ретровирусные инфекции крупного рогатого скота//Ветеринарная патология. Вып. 45, №3/2013. С. 23-29. CATTLE’S RETROVIRAL INFECTION, THEIR INTERDEPENDENCE AND INFLUENCE ON THE QUALITY OF COW’S MILK O.S. Larionova, E.S. Krasnikova Keywords: viral immunodeficiency, enzootic leukemia, cattle, retroviral mixed infection, polymerase chain reaction, immunodiffusion reaction, milk. Article is devoted to identifying the incidence and interdependence of viral immunodeficiency and enzootic bovine leukemia, as well as the definition of quality milk from cows infected with the retroviruses. УДК 578:579.672 ПАТОГЕНЕТИЧЕСКАЯ, ЗООТЕХНИЧЕСКАЯ И ЭКОНОМИЧЕСКАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ ВАКЦИНЫ БАЙОВАК® МИКО ПРОТИВ ЭНЗООТИЧЕСКОЙ ПНЕВМОНИИ (ЭП) СВИНЕЙ Доктор Антонио Муноз Луно профессор Доктор Франциско Жозе Палларес Мартинез, профессор Доктор Гильермо Рамис Видал, профессор Университет Мурсии, Испания Ключевые слова: M. Hyopneumonia, вакцина, энзоотическая пневмония, эффективность В статье приведены результаты оценки влияния вакцины Байовак® Мико (компания Байер) против M. Hyopneumonia на патологические изменения, характерные для ЭП, а также оценка зоотехнической и экономической целесообразность её применения. Место проведения исследования: Откормочное хозяйство «Juan Jimenez, S. A.» Лорка, Мурсия, Испания. Бойня, где проводилось исследования легких «Grupo Alimentario de Lorca, S. A.» Лорка, Мурсия, Испания. 41 Цель: Провести оценку влияния вакцины на патологические изменения, характерные для ЭП, а также оценить зоотехническую и экономическую целесообразность применение вакцины Байовак® Мико (компания Байер) против M. Hyopneumonia. Введение. В ходе настоящего полевого исследования была разработана система оценки патологических, зоотехнических и экономических аспектов применения вакцины Байовак® Мико (компания Байер) против M. Hyopneumoniae, производство Италия. Тестирование вакцины проводилось с помощью двух разных протоколов. После чего ее сравнивали с другой европейской вакциной, а также с контрольными животными, не вакцинированными против энзоотической пневмонии свиней (ЭП). Материалы и методы. Животные и препараты. В настоящем исследовании использовали в общей сложности 6 548 свиней, которых разделили на 4 группы: • ГРУППА I (1 701 кастрированное животное) была вакцинирована двукратно (1 мл + 1 мл) препарата Байовак® Мико (на 1-й и 3-й неделях жизни). • ГРУППА II (928 кастрированных животных) была вакцинирована однократно (2 мл) препарата Байовак® Мико (на 5-й неделе жизни). • ГРУППА III (830 некастрированных животных) была вакцинирована однократно (2 мл) вакцины сравнения, производство Германия. • ГРУППА IV (3 089 свиней), включающая животных, не вакцинированных против ЭП, которых разделили на три подгруппы в соответствии с тремя разными откормочными блоками: • ГРУППА IVa (818 кастрированных животных); • ГРУППА IVb (1 334 кастрированных животных); и • ГРУППА IVc (937 некастрированных животных). В свиноводческом хозяйстве, где проводилось исследование, кастрированные животные поступают на забой при достижении живого веса приблизительно 110 кг, в то время как тот же показатель для некастрированных свиней составляет 100 кг. Макроскопическое исследование поражений при убое. В общей сложности при убое было исследовано 3 045 легких, полученных от животных из всех групп с целью определения частоты возникновения макроскопических поражений, соответствующих ЭП. Для количественной оценки указанных поражений использова42 лась система, предложенная Мадеком (Madec) и Дерьяном (Derrien) (Journées Rech. Porcine en France, 1981 г.: с. 231-236). В этой системе значения варьируют от 0 (полное отсутствие поражений) до 28 (обширное поражение легких), причем каждая доля легких оценивается в диапазоне от 0 до 4 баллов в зависимости от степени поражения (0 – отсутствие поражения; 1 – точечные очаги пневмонии; 2 – более выраженное поражение, но не затрагивающее среднюю долю; 3 – более выраженное поражение, но с наличием функциональной паренхимы; 4 – обширное поражение доли). Гистологическое и иммуноцитохимическое исследование. После макроскопического исследования поражений был выполнен забор образцов тканей легких от 20 вакцинированных животных с целью микроскопического подтверждения наличия поражений, соответствующих ЭП. Образцы 10 таких животных подверглись иммуногистохимическому исследованию с использованием поликлональной сыворотки с антителами к M. hyopneumoniae свиней, конъюгированной с флуоресцинизотиоцианатом (CNEVA, г. Плуфраган, Франция) для выявления M. hyopneumoniae на ресничках клеток эпителия бронхов и бронхиол. Исследование зоотехнических параметров. К зоотехническим параметрам, которые измерялись в ходе настоящего исследования, относились: начальный вес, убойный вес, процент смертности, конверсия корма и среднесуточный привес. Исследование экономических параметров. К экономическим параметрам, которые измерялись в ходе настоящего исследования, относились: стоимость препаратов на одно животное, затраты на 1 кг привеса, стоимость корма и транспортировки, потенциальная упущенная прибыль на 1 килограмм набранного при откорме веса (в результате смертности), конечная стоимость одного животного и конечная стоимость произведенного килограмма продукции. Результаты и оценка. Частота поражений легких при убое. К макроскопическим поражениям легких, которые при забое оценивались как соответствующие ЭП, относились хорошо определяемые, вдавленные зоны консолидации красно-коричневого или сероватого оттенка, расположенные в кранио-вентральных отделах легких, которые снижали или ограничивали вентиляцию. В таблице 1 представлены средние балльные оценки макроскопических поражений легких при забое у вакцинированных и контрольных животных. Таблица 1 - Анализ балльных оценок поражений легких (4-балльная шкала Мадека) Группы ГРУППА I (двукратное применение Байовак® Мико) ГРУППА II (однократное применение Байовак® Мико) ГРУППА III (однократное применение вакцины сравнения) ГРУППА IV (невакцинированные животные) Количество образцов 408 Баллы по Мадеку 1,487 416 1,752 419 1,816 1 802 3,152 Таблица 2 - Значения основных зоотехнических и экономических параметров в разных группах. Группа ГРУППА I (двукратное применение Байовак® Мико) ГРУППА II (однократное применение Байовак® Мико) ГРУППА III (однократное применение вакцины сравнения) ГРУППА IVa (невакцинированные) ГРУППА IVb (невакцинированные) ГРУППА IVc (невакцинированные) Началь- Убойный Смертный вес, вес, кг ность, % кг Среднесуточный привес, г Конверсия Стоимость Затраты на корма препара- 1 кг приветов, руб. са, руб. 15,06 108,13 6,14 638 2,59 64 49 26,52 114,18 7,64 658 2,62 74 50 18,67 100,09 7,59 591 2,58 76 51 33,91 108,68 7,88 544 2,69 72 53 19,52 110,24 4,71 697 2,73 71 52 21,14 93,19 6,30 636 2,66 90 53 Результаты в ГРУППЕ I (двукратное применение Байовак® Мико) достоверно отличались от результатов в ГРУППЕ III (однократное применение вакцины сравнения) (P = 0,034) и в ГРУППЕ IV (невакцинированные животные) (P < 0,001), однако статистически достоверные отличия от ГРУППЫ II (однократное применение вакцины Байовак® Мико) отсутствовали (P = 0,148). Результаты в ГРУППАХ II (однократ- Курс 1 евро = 70 руб. ное применение Байовак® Мико) и III (1 доза вакцины сравнения) достоверно отличались от результатов в ГРУППЕ IV (невакцинированные животные) (P < 0,001), но не между собой (P = 0,78). Количество свиней в вакцинированных группах, у которых при забое макроскопические поражения легких, соответствующие ЭП, отсутствовали: 43 Таблица 3 - Экономический анализ Группа ГРУППА I (двукратное применение Байовак® Мико) ГРУППА II (однократное применение вакцины Байовак® Мико) ГРУППА III (однократное применение вакцины сравнения) ГРУППА IVa (невакцинированные) ГРУППА IVb (невакцинированные) ГРУППА IVс (невакцинированные) Стоимость Общее ко- Стоимость Введение ПотенСтоимость Общая подсвин- личество корма, в стадо + циальная на 1 от- стоимость ка, руб. кг, наруб. транспор- упущенная кормоч- на 1 вырабранных тировка, прибыль в ную сви- щенную во время руб. результате нью, руб. свинью, откорма смертноруб. сти, руб. 2450 93,07 3759 770 214 7196 66,5 2450 97,66 3990 770 267 7476 65,8 2520 81,42 3276 770 266 6832 68,6 3360 74,77 3143 770 276 7546 69,3 2660 90,72 3871 770 165 7462 67,9 2730 72,05 2989 770 221 6713 72,1 ГРУППА II (однократное применение вакцины Байовак® Мико) - 55 % ГРУППА I (двукратное применение Байовак® Мико) - 45,7 % ГРУППА III (однократное применение вакцины сравнения) - 38,7 %. Мы можем утверждать, что у свиней, вакцинированных двукратно препаратом Байовак® Мико, наблюдалось на 15 % меньше легочных поражений по сравнению с животными, вакцинированными однократно той же вакциной. А также на 18 % меньше по сравнению с особями, получившими вакцину сравнения и на 52 % меньше по сравнению с невакцинированными животными. Что касается количества свиней без макроскопических поражений легких, соответствующих ЭП, то наибольший процент таких животных был зафиксирован в группах, вакцинированных препаратом Байовак® Мико по двум разным протоколам. 44 Курс 1 евро = 70 руб. Частота микроскопических поражений легких и иммуноцитохимическое исследование. Двадцать образцов легких с поражениями, которые были взяты в качестве контроля макроскопического исследования, представляли собой типичные поражения, наблюдаемые при заболевании различной степени тяжести. Из 10 образцов, использованных при иммуноцитохимическом анализе для выявления M. hyopneumoniae, 8 были положительными, а 2 — отрицательными, но, как сказано выше, эти два отрицательных образца содержали типичные для ЭП микроскопические поражения. Результаты гистологического и иммуноцитохимического исследований подтверждают то, что макроскопическая диагностика при забое была корректной и соответствовала типичным микроскопическим поражениям ЭП в случаях, когда было доказано наличие M. hyopneumoniae. Таблица 4 - Показатели экономической разницы при стандарте привеса за время откорма 80 кг (средняя прибавка массы тела в период откорма) и применении Байовак® Мико в качестве стандартного препарата. Группы ГРУППА I (двукратное применение Байовак® Мико) ГРУППА II (однократное применение вакцины Байовак® Мико) ГРУППА III (однократное применение вакцины сравнения) ГРУППА IVa (невакцинированные) ГРУППА IVb (невакцинированные) ГРУППА IVc (невакцинированные) Исследование зоотехнических и экономических параметров. Значения основных зоотехнических и экономических параметров в разных группах представлены в таблице 2. Все виды статистического анализа, выполненные с помощью многофакторной модели, продемонстрировали отсутствие влияния «типа животных» (кастрированные или некастрированные) на полученные результаты. Таким образом, различия обусловлены только применяемым препаратом (типом вакцины). Стоимость лекарственных препаратов включает в себя стоимость вакцин. Разница в стоимости килограмма привеса, в ГРУППЕ I (двукратное применение Байовак® Мико) по сравнению с ГРУППОЙ II (однократное применение вакцины Байовак® Мико) составила 1 руб. в сравнении с ГРУППОЙ III (однократное применение вакцины сравнения) – 2 рубля, с ГРУППОЙ IV (невакцинированные животные) - в среднем на 3,7 рублей. Стоимость лекарственных препаратов также была ниже в ГРУППЕ I (двукратное применение Байовак® Мико). В таблице 3 представлены значения экономического анализа результатов, полученных в разных группах. В ходе настоящего исследования мы показали, что из трех групп, получавших препараты, группа с одной дозой Байовак® Мико продемонстрировала низкие показатели потенциальной упущенной прибыли в результате смертности во время откорма (рассчитывается как среднее значение для животного весом 50 кг с учетом всех затрат, необходимых для этого животного), с разницей в 53 руб. и 54 руб. по сравнению с группой, получившей вакцину сравнения, и группой, получившей одну дозу Байовак® Мико, соответственно. При анализе итоговой стоимости 1 кг живого веса, полученного при откорме, наимень- Экономическая разница, руб. - 42,7 101,5 315,7 204,4 328,3 Курс 1 евро = 70 руб. шие показатели были зафиксированы в группе с одной дозой Байовак® Мико при затратах 65,8 руб./кг и разнице, составляющей 70 коп. по сравнению с группой, получившей две дозы Байовак® Мико, 2,8 руб. по сравнению с группой, получившей вакцину сравнения. Принимая за стандарт 80 кг привеса за время откорма, а также Байовак® Мико в качестве стандартного препарата, получим показатели экономической разницы, представленные в таблице 4. На основании показателей экономической разницы, которые варьируют в достаточно широком диапазоне, можно говорить о целесообразности применения вакцины Байовак® Мико против ЭП. Выводы. Опыт полевого применения, а также результаты макроскопического, микроскопического и гистологического исследований, проведенных для оценки эффективности вакцины Байовак® Мико (компания Байер) в Испании, позволяют нам сделать следующие выводы: 1. Указанная вакцина способствует формированию достаточно эффективной защиты против ЭП. 2. В полевых условиях настоящего исследования балльные оценки поражений, наблюдаемых в разных группах, были достоверно ниже у животных, вакцинированных препаратом Байовак® Мико. 3. Экономический анализ производственных затрат свидетельствовал о преимуществе групп, вакцинированных препаратом Байовак® Мико по сравнению со всеми другими группами. 4. Результаты настоящего исследования убедительно подтверждают целесообразность применения вакцины Байовак® Мико, при использовании которой во всех случаях было получено положительное соотношение прибыли и затрат. 45 PATHOGENETIC, ZOO-TECHNICAL AND COST-EFFECTIVE VACCINES BAYOVAK® MICО AGAINST ENZOOTIC PNEUMONIA (EP) PIGS Antonio Muñoz Luna, Francisco José Pallarés Martíz, Guillermo Ramis Vidal University of Murcia, Spain Keywords: M. Hyopneumonia, vaccine, enzootic pneumonia, efficiency The results of assessment of the impact of the vaccine Bayovak® Miko (Bayer) against M. Hyopneumonia pathological changes characteristic of EP, as well as evaluation of animal production and the economic feasibility of its application. УДК 619:615:547.461.4:616.152.112:636.2\.4 К ВОПРОСУ РАЗРАБОТКИ СРЕДСТВ ИММУНОМЕТАБОЛИЧЕСКОЙ НАПРАВЛЕННОСТИ С АНТИМИКРОБНОЙ АКТИВНОСТЬЮ И.И. Михайлова, кандидат ветеринарных наук, доцент ФГОУ ВПО «Донской Государственный аграрный университет» 8-928-167-38-86, olnimix@mail.ru Е.П. Евглевская, кандидат сельскохозяйственных наук, старший научный сотрудник, ФГБНУ «Курский НИИ агропромышленного комплекса», ФГОУ ВПО «Курская государственная сельскохозяйственная академия» 8-910-318-99-10, evgl46@yandex.ru Н.Ф. Ерыженская, кандидат биологических наук, старший научный сотрудник, ФГБНУ «Курский НИИ агропромышленного комплекса» 8-915-518-97-15, kniiapp@mail.ru О.Н. Михайлова, кандидат ветеринарных наук, доцент ФГОУ ВПО «Донской Государственный аграрный университет» 8-989-507-61-26, olnimix@mail.ru Ключевые слова: янтарная кислота, АСД-второй фракции, йодинол, иммунометаболические составы. В статье представлены теоретические аспекты разработки средств иммунометаболической направленности с антимикробной активностью. В качестве показательного примера представлена разработка комплексного состава на основе янтарной кислоты, иммуностимулятора АСД второй фракции и антимикробного компонента – йодинола. В ходе клинических испытаний состава установлено, что данный состав обеспечивает выраженное позитивное влияние на обменные процессы, гемопоэз и систему иммунитета, что имеет важное значение в отношении устойчивости организма к возбудителям эндогенной инфекции, в том числе и к заболеванию диареей. Введение. В настоящее время в медицине и в ветеринарии широкую известность получили лекарственные препараты на основе янтарной кислоты (ЯК). ЯК и ее соли обладают широким спектром действия на различные механизмы регуляции метаболической активности клеток[1,3,4,6]. Объектом действия ЯК явля46 ются клетки тканей, находящиеся в состоянии возбуждения или патологически измененные. Абсолютная безвредность ЯК и ее солей, обладающих способностью оказывать положительный эффект при самых низких дозировках, делает ее весьма привлекательной при разработке нового поколения так называемых «умных» лекарств [3,4,5,7]. Именно эти качества ЯК нами приняты во внимание при разработке препаратов серии янтарный биостимулятор[2,5], предназначенных для нормализации обменных процессов, стимуляции системы иммунитета, потенцирования биологической активности иммуномодуляторов, антибиотиков, антгельминтиков. Для лечения очаговых инфекционных процессов широко практикуются средства химио- и антибиотикотерапии. В определенном диапазоне эти средства обеспечивают гибель микроорганизмов не нанося большого вреда для макроорганизма. Антиинфекционное действие химио-терапевтических препаратов при кишечных инфекциях приводит к гибели не только патогенных микроорганизмов, нередко они вовсе не погибают, но и нормальной микрофлоры. В конечном итоге, это ведет к другой проблеме - к проблеме дисбактериозов. Серьезной проблемой химиотерапии является токсичность и побочные эффекты применяемых лекарственных средств. При длительном курсе их применения токсические эффекты приобретают тенденцию нарастанию. Разработка экологически и биологически безопасных лекарственных средств для управления инфекционным процессом всегда привлекала внимание исследователей. В данном сообщении мы посчитали целесообразным результаты исследований по разработке оральной формы комплексного иммунометаболического состава с антимикробной активностью. Материал и методология исследований. Применительно к выбранному научному направлению исследований у нас возникла идея разработать комплексный иммунометаболический состав с антимикробной активностью. В качестве метаболика мы использовали янтарную кислоту. Логика перорального применения янтарной кислоты заключается, что она сама по себе обладает широким спектром фармакологических эффектов. Как известно, процессы пищеварения тесно связаны с существенными затратами энергии. В этой связи ЯК, обеспечивая энергией клетки слизистой оболочки желудка, улучшает пищеварение. В результате используются содержащие в пище витаминные, белковые, минеральные вещества. Кроме того, некоторые микро- и макроэлементы, связываясь с ЯК образуют легко доступные для организма комплексы. Пероральное применение ЯК обеспечивает стимуляцию и иммунной системы, что очень важно для повышения защитных механизмов новорожденного организма. В медицине препараты ЯК используются для усиления секреции желудоч- ного сока (Малюк., 1979)., устранения побочного действия химио – антибиотикотерапии, гепатитах и токсикозах различного генеза (Алексеева Л.С. с соавт.,2001). В качестве иммуномодулятора мы использовали препарат АСД второй фракции. АСД-2 при пероральном применении оказывает активизирующее действие на ЦНС и вегетативную нервную систему, стимулирует моторную деятельность желудочно-кишечного тракта, секрецию пищеварительных желез, повышает активность пищеварительных и тканевых ферментов, улучшает проникновение ионов Na+ и K+ через клеточные мембраны, способствует нормализации процессов пищеварения, усвоения питательных веществ и повышению естественной резистентности организма. При наружном применении препарат стимулирует активность ретикулоэндотелиальной системы, нормализует трофику и ускоряет регенерацию поврежденных тканей, обладает выраженным антисептическим и противовоспалительным действием. Следует отметить, что антисептическая активность препарата АСД напрямую связана с очень высокой щелочной реакцией. Нейтрализация янтарной кислотой щелочной реакции препарата АСД привела к утрате его антисептической активности (Лебедев А.Ф. с соавт.,2007). В качестве антимикробного компонента мы использовали йодинол. Йодинол — высокомолекулярный комплекс, состоящий из кристаллического йода, йодида калия, поливинилового спирта и воды. Как эффективный антисептик он обладает широким спектром биологического действия, что позволяет начинать лечение без предварительного определения вида или штамма, чувствительности возбудителей. Ценное качество йодинола — отсутствие к нему резистентности микроорганизмов. В то же время при длительном применении йодинола возможны явления йодизма. Кроме того, противопоказанием применения йодинола является снижение функциональной активности печени и почечной недостаточности. Включения йодинола в состав янтарного биостимулятора позволило бы снизить риск побочного действия йодинола. Следует отметить, что такая возможность показана в авторской разработке йодинол янтарный (Патент №2486908 от 10.07.2013 г.). Для проведения опытов мы использовали составы на основе: 1% янтарной кислоты и 4% АСД второй фракции; 1% янтарной кислоты и 4% АСД второй фракции в комплексе с йодинолом в соотношении 3:1. 47 Таблица 1 - Влияние препаратов на гематологические показатели телят Показатели Эритроциты, 1012/л Гемоглобин, г/л Лейкоциты, 109/л Лимфоциты, % Нейтрофилы, % Базофилы, % Эозинофилы, % Моноциты, % В начале опыта 4,9±0,3 4,9±0,3 4,8±0,1 96,0±2,5 96,0±2,5 95,8±3,1 12,1 ±0,3 12,4±0,2 12,6±0,3 49,18±2,51 49,71±2,18 50,06±2,54 36,41±1,72 36,22±1,45 36,12±1,38 0,10±0,03 0,10±0,03 0,11±0,05 1,17±0,14 1,19±0,12 1,22±0,16 7,84±0,35 7,75±0,43 7,52±0,28 Периоды исследований 3 5,5±0,2* 4,9±0,2 10 5,5±0,3 5,0±0,1 103,4±1,6* 96,0±2,3 104,5±1,7* 96,4±1,4 12,7±0,2 12,5±0,1 11,8±0,2 12,0±0,1 52,10±2,72 49,75±2,76 51,62 ±2,18 50,14±2,44 41,52±1,43* 36,17±1,35 40,37±1,35* 36,15±1,28 0,11±0,09 0,13±0,08 0,11±0,05 0,14±0,04 1,19±0,26 1,35±0,22 1,12±0,25 1,39±0,18 10Д2±0,21* 7,28±0,35 10,18±0,24* 7,32±0,12 Примечание: верхняя строка – показатели крови телят 1-й группы; средняя строка– показатели крови телят 2-й группы ; нижняя строка- показатели крови телят контрольной группы *р<0,05 Таблица 2 - Влияние препаратов на биохимические показатели крови телят Показатели Общий белок, г/л Общий кальций, ммоль/л Неорганический фосфор, ммоль/л Резервная щелочность, Об%СО 2 Периоды исследований В начале опыта 62,3±1,4 61,3±1,4 61,8±1,2 2,46±0,17 2,45±0,25 2,45±0,18 1,82±0,12 1,83±0,14 1,85±0,11 31,1±2,5 31,7±2,8 32,1±2,7 3 69.0±3,8 69,5±2,9 62,4+2,7 2,78±0,18 2,84±0,12 2,43+0,16 1,92±0,15 1,86±0,11 1,91+0,14 40,8±3,3* 42,5±2,6* 33,7+1,9 10 67.8±2,4 69,2±3,1 61,5+2,4 3,23±0,15* 3,49±0,14* 2,47+0,16 2,14±0,12 1,95±0,17 2,05+0,12 45.3±2,9* 46,2±2,3* 35,2+2,6* Примечание: верхняя строка – показатели крови телят 1-й группы; средняя строка– показатели крови телят 2-й группы ; нижняя строка- показатели крови телят контрольной группы *р<0,05 48 Таблица 3 - Влияние препаратов на иммунологические показатели крови телят Показатели Фагоцитарная активность нейтрофилов, % Фагоцитарное число Бактерицидная активность, % Лизоцимная активность, % В начале опыта 46,8±2,43 46,2±2,29 45,4±2,42 8.06±0.26 8,13±0,32 7,96±0,48 41,5±2,4 40,8±2,2 38,2±2,7 6,83±1,25 6,94±1,46 6,29±1,26 Периоды исследований 3 51,7±2,92 53,8±3,25 46,6+56 9,32±0,47* 10,12±0,24 8,14+0,26 46,4±1,9 45,3±1,8 41,3+1,9 9,82±1,27 * 10,56±1,46* 7,06+1,26 10 52,6±2,29 56,2±2,91 49,1+2,78 10,38±0,36 10,54±0,39 8,22+0,29 49,6±2,7* 51,8±2,9* 41,8+2,1 10,83± 1,44* 11,64±1,18* 7,08+1,23 Примечание: верхняя строка – показатели крови телят 1-й группы; средняя строка– показатели крови телят 2-й группы ; нижняя строка- показатели крови телят контрольной группы *р<0,05 по отношению к контрольной группе Оценку иммунометаболической активности состава провели на трех группах телят при возникновении первых признаков диарейного синдрома. Первой опытной группе (п=5) выпаивался состав №1, второй (п=5) состав №2. Третья группа (п=5) была контрольной. Телятам этой группы выпаивался водный раствор йодинола (3:1). Препараты выпаивались в объеме 100 мл, один раз в сутки в течение 5 дней за 30 минут до выпойки молока. Отбор проб крови для проведения исследований провели до, на третьи и десятые сутки после выпаивания препаратов. Результаты исследований и их обсуждение. В таблицах – 1,2,3 мы приводим результаты гематологических, иммунологических и биохимических исследований. Результаты гематологических исследований свидетельствовали о том, что применение препаратов янтарной кислоты оказало позитивное влияние на уровень эритроцитов и насыщенность их гемоглобином. Уровень содержания гемоглобина на 3 и 10 сутки после курса применения препаратов был достоверно выше у опытных телят по отношению к их сверстникам из контрольной группы. Показатель резервной щелочности у телят контрольной групп во все периоды исследований был ниже физиологической нормы, в то время как у животных обеих опытных групп он находился в пределах физиологических показателей. Это указывало на то, что пероральное применение препаратов янтарной кислоты обеспечило устранение метаболического ацидоза. Устранение метаболического ацидоза оказало позитивное влияние и на белковый обмен. Уровень общего белка в крови телят опытных групп находился в пределах средних физиологических показателей, в то время как у их сверстников он был чуть выше нижней границы. В контрольные периоды исследований после курса применения препаратов у телят обеих опытных групп показатели бактерицидной и лизоцимной активности были достоверно выше, чем у особей из контрольной группы. Заключение. Результаты проведенных исследований свидетельствуют о том, что состав на основе янтарной кислоты в комплексе с АСД второй фракции и йодинолом обеспечивает выраженное позитивное влияние на обменные процессы, гемопоэз и систему иммунитета, что имеет важное значение в отношении устойчивости организма к возбудителям эндогенной инфекции, в том числе и к заболеванию диареей. Библиографический список: 1. Басанкин А.В. Фармако-токсикологическое обоснование применения янтарной кислоты в животноводстве и ветеринарии. Автореф. дис. к. в. н.- Казань, 2007. 2. Евглевский А.А. Разработка нового поколения иммунометаболических препаратов и эффективность их применения в ветеринарии / А.А. Евглевский, Г.Ф. Рыжкова, О.М. Швец, Е.П. Евглевская, 49 В.С. Попов, С.Н. Кретова // Вестник Курский ГСХА № 4. – 2010. – 28с. 3. Коваленко А.Л. Фармакологическая активность янтарной кислоты и ее лекарственные формы/ А.Л. Коваленко ,Н.А. Белякова, М.Г. Романцов , Л.С. Алексеева, Л. Шигарова , А. Петров //Врач, №4, 2000, -С. 26-27. 4. Кондрашова М.Н. Регуляция янтарной кислотой энергетического обеспечения и функционального состояния ткани. Автореф. дис. д.б. н. Пущино, 1971. 5. Лебедев А.Ф. Разработка и применение препаратов на основе янтарной кислоты / А.Ф.Лебедев, О.М. Швец, А.А.Евглевский, Е.П. Евглевская, В.С. Попов, И.В.Ермилов, В.Ю.Тарасов, Ж.А.Кудряшова, С.Ю. Щепихин, С.М.Коломийцев// Ветеринария.-2009.- №3. С.-48-51. 6. Литвинова Т.И. Янтарная кислота - сила XXI века. //М., 2002.- 44с. 7. Михайлова О.Н. Теоретические и практические аспекты профилактики и лечения желудочно-кишечных заболеваний телят раннего постнатального периода. Автореф.дисс. к.в.н.-Курск, 2012. TO THE QUESTION OF DEVELOPMENT FUNDS IMMUNOMETABOLIC DIRECTION WITH ANTIMICROBIAL ACTIVITY I. I. Mikhailova, E. P. Engleska, N. F.Erigena, O. N. Mikhailova Key words: succinic acid, SDA-second fractions, Iodinol, immunometabolic compositions. The article presents the theoretical aspects of the development funds immunometabolic direction with antimicrobial activity. As an illustrative example presents the design of a complex consisting of succinic acid, immunostimulant ASD second fraction and antimicrobial components - Iodinol. During clinical tests it was found that this composition provides a pronounced positive effect on metabolism, haematopoiesis and the immune system that is important in relation to the body’s resistance to pathogens endogenous infection, including to the disease and diarrhea. УДК 616:619 ЗООНОЗНЫЕ ИНФЕКЦИИ, С ПРИРОДНОЙ ОЧАГОВОСТЬЮ, С ПОЗИЦИИ ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКОГО И ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКОГО ДИАГНОЗОВ А.А. Нафеев, доктор медицинских наук, профессор ФБУЗ «Центр гигиены и эпидемиологии в Ульяновской области» ФГОУ ВПО «Ульяновский государственный университет» ФГОУ ВПО «Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия» 8(84231)55-95-47, nafeev@mail.ru Д.А. Васильев, доктор биологических наук, профессор 8(84231)55-95-47, dav_ul@mail.ru С.Н. Золотухин, доктор биологических наук, профессор тел. 8(84231)55-95-47, fvm.zol@yandex.ru Ю.Б. Васильева, кандидат ветеринарных наук, доцент 8(84231)55-95-83, vet_yulia@mail.ru ФГОУ ВПО «Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия» Ключевые слова: эпизоотология, эпидемиология, зооантропонозы, диагностика Работа посвящена особенностям постановки эпидемиологического и эпизоотологического диагноза при инфекционных зооантропонозах с природной очаговостью. 50 Среди биологических видов, населяющих территорию Ульяновской области, имеются возбудители инфекционных болезней человека и животных. Такие болезни называют природно-очаговыми. Природный очаг — биотоп на территории конкретного географического ландшафта, заселённый животными, видовые или межвидовые различия которых обеспечивают циркуляцию возбудителя за счёт его передачи от одного животного другому, обычно через кровососущих членистоногих-переносчиков [1]. Эпидемиологи подразделяют природно-очаговые инфекции на эндемичные зоонозы, ареал которых связан с ареалом животных — хозяев и переносчиков (например, клещевой энцефалит). В простом случае резервуаром возбудителей служат почвы и водоемы. Такие природные очаги называют сапронозными, а инфекции - сапронозами. Основой природного очага сапронозов является популяция возбудителя инфекции. В более сложном случае возбудитель инфекции общих для человека и животных (чума, туляремия, лептоспироз, орнитоз, туберкулез, бешенство, геморрагическая лихорадка с почечным синдромом). Такие инфекции эпидемиологи называют зоонозными, а эпизоотологии - зооантропонозными. Их возбудители циркулируют в популяциях животных, а человек заражается ими случайно. Для подавляющего большинства возбудителей природно-очаговых зоонозов и сапронозов человек является случайным хозяином и биологическим тупиком, ни в коей мере не определяющий возможность их существования в естественных экосистемах. Возбудитель природно-очаговых инфекций (за редкими исключениями) не передается от человека к человеку, и в этом главное отличие эпидемиологии таких инфекций от антропонозов. Каждое заболевание - результат ненужной для возбудителя встречи с конкретным человеком, который проник в экосистему, где обитает возбудитель. Основой природного очага зооноза являются две взаимодействующие популяции - возбудителя инфекции и животного, в котором циркулирует (при этом не обязательно с развитием заболевания) возбудитель. В еще более сложном случае в передаче возбудителя от одного позвоночного животного другому или человеку происходит обязательно через специфического переносчика. Это облигатно (обязательно) трансмиссивные природно-очаговые инфекции. Основой природного очага облигатно трансмиссивных инфекций являются три взаимодействующие популяции – возбудителя, животного, и специфического переносчика. Если возбудитель сохраняется в специфическом переносчике длительный срок (несколько сезонов) и передается его потомству, то такой переносчик становится основным резервуаром возбудителя инфекции. Примером этому служит клещевой вирусный энцефалит, возбудитель которого сохраняется в иксодовых клещах годами, передается трансфазово (от личинки к нимфе и от нимфы к имаго) и трансовариально (через яйца, отложенные самкой, следующему поколению). Исходя из основных законов Е.Н. Павловского о природно-очаговых инфекциях (ПОИ) следует, что: 1) природные очаги инфекционных болезней возникают и длительно существуют вне зависимости от человека в результате эволюционно сложившихся межвидовых взаимоотношений биоценозов (патогенными паразитами, их живыми переносчиками, животными-донорами и животными-реципиентами); территориально они связаны с определенными участками географического ландшафта, с его биологическими топами; 2) заражение восприимчивого человека сопряжено с пребыванием его без специальной защиты на территории природного очага только в то время, когда он находится в валентном состоянии, т.е. в период эпидемиологической активности зараженных животных-хозяев и членистоногих-переносчиков; 3) сельскохозяйственные (одомашненные) животные и синантропные грызуны могут служить звеном перехода некоторых природно-очаговых инфекций из дикой природы к человеку. Основными задачами эпидемиологического-эпизоотологического диагноза по группе ПОИ являются: 1) изучение распространения заболеваемости среди населе­ния, установление причинно-следственных связей между заболевае­мостью и контактами с животными (сельскохозяйственными, домашними, дикими) тем самым, проводится выявление: а) групп риска (возрастные, профессио­нальные и иные группы населения); б) времени риска (временные периоды в многолетней или годовой динамике); в) территорий риска (административные и другие территории); 2) планирование, проведение и оценка эффективности мероприятий по профилактике и борьбе с болезнями; 3) разработка критериев, которые могут быть использо- 51 ваны в виде показателей для оценки качества работы учреждений здравоохранения (включая санитарно-эпидемиологическую службу) и ветеринарии; 4) определение качества и полноты эпидемиологической и эпизоотологической информации. В последние годы, учитывая экономическую целесообразность тех или иных мониторинговых исследований, остро встаёт вопрос о необходимости регулярного проведения эпизоотологических (энтомологических) мониторингов за переносчиками (резервуарами) возбудителей ПОИ. Важнейшие элементы этой работы – учет численности переносчиков природно-очаговых инфекций, а также определение их инфицированности. Для принятия управленческих решений (эпидемиологический и эпизоотологический надзор) для того, чтобы правильно оценить эпидемиологическую (эпизоотологическую) обстановку на определенной территории нужна полноценная многоаспектная информация, которую можно получить только в непрерывном цикле. Учитывая характерное для инфекционных болезней явление цикличности, при проведении прерывистого мониторинга, можно будет пропустить как короткие, так и длинные циклы, свойственные экологическим законом биологии микроорганизмов. Учеты численности в зависимости от конкретных задач принимают разные формы: визуальную оценку обилия животных на обширных площадях (дает возможность получить общее представление об уровне плотности поселений носителей, определить места скопления грызунов), разовые учеты в отдельных пунктах территорий (получают сведения о текущем состоянии численности носителей. Второй на сегодня не маловажный вопрос, где проводить учёты переносчиков. В природных биотопах расположенных близко к местам проживания человека и содержания животных, чтобы максимально выявлять риски заражения тех и других, или там, где действительно имеют место природные очаги инфекционных болезней и длительно существуют вне зависимости от человека в результате эволюционно сложившихся межвидовых взаимоотношений биоценозов. Эти учеты на наш взгляд нужно проводить на территориях наиболее частого контакта человека с природными очагами, а также местах вероятного проявления эпизоотий. Учитывая, что животное является причиной инфицирования человека очень важное значение должно быть отдано эпизоотологи52 ческому мониторингу, предусматривающему слежение за эпизоотической ситуацией и ее оценку для формирования оптимальных управленческих решений и прогностических выводов, что играет ведущую роль в системе противоэпизоотических мероприятий и тем самым уменьшает (исключает) риски для населения. Однако, не смотря на имеющиеся успехи в разработке теоретической и практической основы эпизоотологического мониторинга, остаётся очевидной необходимость его совершенствования для конкретных территорий при эпидемически, социально-экономически и эпизоотически значимых болезнях. Так на территориях эндемичных по бешенству вся система сводится в лабораторным исследования на бешенство доставленных в лабораторию клинически подозрительных животных; по туберкулёзу положительные результаты о реагирующих животных (прежде всего дойного поголовья) становятся известны только после контрольной постановки проб с туберкулином спустя 45 дней после получения первого положительного результата. Исследование грызунов на отдельные, имеющие важное эпидемиологическое значение (ГЛПС, лептоспирозы, туляремия) ветеринарной службой не проводятся. В ветеринарии широко распространено научное понятие «эпизоотологическое обследование», предусматривающее одной из главных целей постановку эпизоотологического диагноза. Эпизоотологическое обследование (ЭО) – основной метод эпизоотологии, заключающийся в выяснении положений, фактов характеризующих конкретные благополучные или неблагополучные пункты, хозяйства, районы и т. д., и особенности возникновения, развития и ликвидации в нем конкретной инфекционной болезни [2-4]. Проводится в следующих случаях: в благополучном хозяйстве, с целью подтверждения его благополучия; при подозрении на инфекционную болезнь; перед снятием карантина/ограничений. В последнем случае это даёт преимущества ветеринарной службе перед санитарно-эпидемиологической службой и здравоохранением – лабораторным путём получается результат свидетельствующий об изоляции источника инфекции от восприимчивого поголовья, что на современном этапе развития медицины стало невозможным и прежде всего по экономическим соображением. Так как, в тех случаях, когда нет чёткого выхода в очаге на вероятный источник и, следует провести многочисленные рутинные обследования, которые так же не всегда дают необходимый результат. ЭО – проводится непосредственно в эпизоотическом очаге. В ходе определения эпизоотической ситуации выявляют источники возбудителя болезни, механизм передачи возбудителя, выясняют пути заноса и дальнейшего распространения болезни, определяют границы эпизоотических очагов и угрожаемой зоны, уточняют степень восприимчивости животных, подвергающихся угрозе заражения. Полученная информация является определяющей для эпидемиологического диагноза. Таким образом, в тех случаях, когда мы имеет дело с зоонозными инфекциями эпизоотологический диагноз является первым этапом эпидемиологического. Библиографический список: 1. Демидчик Л.Г. Организационные основы эпидемиолого-эпизоотологического надзора за зоонозами / Л.Г. Демидчик // Ветеринария. Реферативный журнал. - 2000. - № 2. - С.468. 2. Семанина Е.Н. Разработка лабораторных методов диагностики бордетеллеза / Е.Н. Семанина, Е.Г. Семанин, Д.А. Васильев, Ю.Б. Васильева // Аграрная наука и образование на современном этапе развития: опыт, проблемы и пути их решения Материалы Международной научно-практической конференции. – Ульяновск, 2009. - С.132-133. 3. Нафеев А.А. Вопросы эпидемиолого-эпизоотологического надзора за зоонозными инфекциями / А.А. Нафеев, Н.И. Пелевина, Ю.Б. Васильева // Дезинфекционное дело. – 2014. - № 1. - С. 39-43. 4. Яцишина С.Б. Применение мультиплексной ПЦР для идентификации вирулентных форм возбудителя сибирской язвы / С.Б. Яцишина, И.Л. Обухов, Л.С. Саленко, Б.И. Шморгун и др. // Сб. тезисов Генодиагностика инфекционных заболеваний. Всеросс. науч.-практич. Конференция. – 2002. ZOONOTIC INFECTIONS WITH NATURAL FOCI, FROM THE PERSPECTIVE OF EPIDEMIOLOGICAL AND EPIZOOTIOLOGICAL DIAGNOSES A.A. Nafeyev, D.A. Vasiliev, S.N. Zolotukhin, Yu.B. Vasilyeva Keywords: epizootiology, epidemiology, zooanthroponosis, diagnostics The work is devoted to the peculiarities of statement of epidemiological and epizootiological diagnosis in infectious zooanthroponosis with natural foci. 53 УДК: 615, 577. 1 ЛИЗИС КЛЕТОК ВОЗБУДИТЕЛЯ ПСЕВДОМОНОЗОВ PSEUDOMONAS AERUGINOSA ПОД ВЛИЯНИЕМ СЕКРЕТА СЛЮННЫХ КЛЕТОК МЕДИЦИНСКОЙ ПИЯВКИ HIRUDO MEDICINALIS И.Б. Павлова, младший научный сотудник1 Т.Г. Юдина, доктор биологических наук, профессор, доцент 1 И.П. Баскова, доктор биологических наук, профессор 1 Н.А. Феоктистова, кандидат биологических наук, доцент 2 Д.А. Васильев, доктор биологических наук, профессор 2 С.Н. Золотухин, доктор биологических наук, профессор 2 ФГБОУ ВПО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова», г. Москва1 ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина», г. Ульяновск2 8(8244) 55-95-47, feokna@yandex.ru Ключевые слова и их сокращения: гирудотерапия (ГТ); медицинская пиявка (МП); секрет слюнных клеток (ССК); псевдомоноз; трансмиссионная электронная микроскопия (ТЭМ); Pseudomonas aeruginosa; Aeromonas hydrophila; Hirudo medicinalis. Установлено, что симбионт медицинских пиявок – бактерия Aeromonas hydrophila нечувствительна к антимикробному действию секрета слюнных клеток (CCК) своего хозяина медицинской пиявки (МП) Hirudo medicinalis (при определении активности растворов секрета слюнных клеток с концентрацией белков до 100 мкг/мл методом диффузии в агар). Определены МИКи двух растворов ССК МП для возбудителя псевдомонозов Pseudomonas аeruginosa, а также выживаемость клеток этих бактерий после антибиотического влияния на них ССК. Исследование с помощью трансмиссионной электронной микроскопии лизиса клеток P. аeruginosa под действием ССК H. medicinalis показало, что основная причина гибели бактерий - нарушение проницаемости наружной и внутренней цитоплазматических мембран Введение. В настоящее время увеличивается количество заболеваний, вызываемых условно-патогенными микроорганизмами, в частности, синегнойной палочкой Pseudomonas aeruginosa, повсеместно выделяемой из окружающей среды, продуктов питания, живых объектов. Инвазивные штаммы этой бактерии патогенны для множества животных и для человека, вызывают инфекционные заболевания - псевдомонозы. Псевдомонозы у взрослых сельскохозяйственных животных обычно проявляются маститами, вагинитами, эндометритами, а у молодняка - пневмониями, диареей, артритами, и др. P. aeruginosa также часто осложняет многие патологические процессы как инфекционной, так и неинфекционной этиологии. Лечение псевдомонозов проводят с помощью комплекса различных лекарственных средств, в том числе – множества антибиотиков [1]. Однако, известна способность P. aeruginosa к образованию био54 плёнок, при этом увеличивается устойчивость бактерии к воздействию лекарств в десятки и сотни раз. Также установлено расширение резистентности P. aeruginosa к применяемым антибиотикам. Антибиотикорезистентность микроорганизмов стала актуальной проблемой мирового значения. Всемирная Организация Здравоохранения работает в тесном сотрудничестве с Всемирной организацией по охране здоровья животных (МЭБ), Продовольственной и сельскохозяйственной организацией ООН (ФАО) над усовершенствованием методов борьбы с резистентностью к противомикробным препаратам, в том числе – над оптимальным использованием антибиотиков как у людей, так и у животных. ВОЗ разработала проект глобального плана действий по борьбе с устойчивостью микроорганизмов к противомикробным средствам [2]. Таким образом, в настоящее время значительно возросла ответственность при исполь- зовании ветеринарных препаратов, которые должны обеспечивать не только эффективное лечение животных, но и продовольственную безопасность, являться экологически чистыми. В связи с этим актуально расширение применения в ветеринарии ГТ - лечения с помощью медицинских пиявок. ГТ используется на протяжении почти всей истории человечества для лечения множества болезней, травм. В настоящее время признана её высокая эффективность при микрохирургических и ряде других операций, для удаления венозного застоя, при лечении остеопорозов, сердечно-сосудистых, и многих других патологий [3 - 5]. В ветеринарной медицине ГТ всё шире применяют для лечения у сельскохозяйственных животных дисплазий, острых и хронических артритов, воспалений сухожилий, связок, заболеваний позвоночника, скрытого мастита, а также - для лечения широкого спектра заболеваний домашних животных [6 - 8]. При изучении научных основ ГТ получено много важных результатов, объяснивших лечебное действие МП. Описано антикоагулирующее; тромболитическое; противоишемическое; антигипоксическое; дренирующее; антимикробное; иммуностимулирующее действие ГТ, восстановление микроциркуляции, проницаемости сосудистой стенки, нервно-мышечной передачи импульсов, и ряд других эффектов. Установлено, что ССК МП содержит сбалансированный набор соединений пептидной, липидной, углеводной природы. Например, в его состав входит более сотни белков с молекулярной массой 10 – 97 кДа (это ферменты, ингибиторы протеиназ, модуляторы, белки с антимикробной активностью), более 150 низкомолекулярных соединений - нейромедиаторы, стероидные гормоны, гистамин, и другие. Доказано, что при укусе даже одной пиявки в организм человека попадает фармакологически значимая, достаточная для проявления биологической активности концентрация белков и ряда других компонентов секрета. Поэтому ССК МП считают основным гуморальным агентом, обеспечивающим высокую эффективность ГТ. Одним из важных компонентов ССК является полифункциональный фермент дестабилаза-лизоцим (Д-Л), который проявляет гликозидазную, мурамидазную, эндо-изопептидазную и антимикробную активности. Концентрация Д-Л в ССК невелика – примерно 1%. Установлено, что в ССК МП может содержаться несколько изоформ Д-Л, лизоцимы других типов, а также другие литические ферменты. Кроме того, есть данные о множе- стве неописанных в литературе новых белков в составе ССК [3, 9 - 11]. Ранее мы установили, что антимикробная активность нативного ССК МП выше, чем у рекомбинантного фермента дестабилазы-лизоцима (рД-Л), полученного путём ренатурации из телец включений, образуемых в клетках кишечной палочки. Причём, спектр антибиотического действия у ССК шире, чем у этого белка [12, 13]. Однако, антибиотическое влияние ССК МП на P. aeruginosa ранее не изучали. Подобно многим представителям р. Pseudomonas, ряд представителей P. aeruginosa также являются патогенами, чаще всего – рыб и других водных животных, а также признаны факультативными патогенами для людей с ослабленным иммунитетом. Aeromonas spp. и Pseudomonas spp. имеют много сходных признаков, в том числе, у них выявлена широкая резистентность к антибиотикам, тяжёлым металлам, и др. [14]. Бактерия Aeromonas hydrophila известна, как симбионт медицинской пиявки [15]. В связи с этим сравнительное изучение чувствительности P. aeruginosa и A. hydrophila к антибиотическому действию ССК МП представляет несомненный интерес. Важны также исследования основных этапов разрушения клеток в результате антибиотического действия ССК. Мы не обнаружили публикаций об изучении картины гибели клеток микроорганизмов под влиянием пиявочного секрета. Целью нашей работы явилось изучение антибиотического действия ССК МП на возбудителя псевдомоноза P. aeruginosa, а также на симбионта МП A. hydrophila, в том числе - изучение картины гибели бактериальных клеток под влиянием ССК МП. Задачи: 1) Определить величину антибиотического действия ССК МП на бактерий с помощью метода диффузии в агар, а также контроля жизнеспособности клеток после воздействия на них ССК МП. 2) Изучить с помощью трансмиссионной электронной микроскопии (ТЭМ) картину лизиса клеток P.aeruginosa под влиянием ССК МП. Материалы и методы исследования. Отбирали нативный, свободный от примесей, ССК от МП H. medicinalis описанным методом, для чего использовали по 20 особей МП, выращенных на биофабрике и купленных в аптеке. Концентрацию белка в ССК определяли по известному методу Брэдфорд [9]. Работу проводили с культурой P. aeruginosa шт. 47 из Музея культур кафедры микробиоло- 55 Таблица 1 - Минимальные ингибирующие концентрации растворов ССК МП для Pseudomonas aeruginosa Месяц получения ССК от МП Сентябрь Январь Концентрация белков в полученном растворе ССК, мг/мл 0,7 0,9 МИК растворов ССК , для P. aeruginosa мкг/мл 3 20 Таблица 2 - Выживаемость клеток Pseudomonas aeruginosa после влияния на них раствора секрета слюнных клеток медицинской пиявки. Время действия раствора ССК МП на клетки, мин. 10 30 60 120 % выросших колоний P. аeruginosa (по сравнению с контролем) после действия на бактериальные клетки растворов ССК с ранее определёнными МИК: МИК 3 мкг/мл МИК 20 мкг/мл 41,5±1,72 93,7±4,70 12,3±0,39 49,8±1,37 1,7±0,05 10,5±0,29 0 0 гии МГУ (MDMSU), а также Aeromonas hydrophila subsp. hydrophila шт. 8 из Музея культур Научноисследовательского инновационного центра микробиологии и биотехнологии ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина». Бактерий выращивали при 37о С в течение суток на агаризованной питательной среде следующего состава: K2HPO4 – 7,0; KH2PO4 – 2,0; цитрат натрия - 0,4; MgSO4 - 0,05; (NH4)2SO4 – 1,0; H2O дист.; pH 7,1. К среде добавляли 10 г/л триптозного бульона и 10 г/л глюкозы; а также 15 г/л высокоочищенного агара («Sigma, или «Difco», США). На этой же среде проводили определение антимикробной активности ССК методом диффузии в агар. Антибиотическую активность по отношению к исследуемым бактериям раствора ССК с известной концентрацией белков определяли методом диффузии в агар, учитывая размер зоны подавления роста тест-культуры от конца лунки. Минимальную ингибирующую концентрацию (МИК) растворов ССК МП определяли известным способом путем учета антибиотических активностей ряда разведений. МИК выражали в мкг/мл раствора белка, внесенного в лунку. Жизнеспособность бактерий определяли известным способом путём подсчёта колоний, выросших из сохранивших жизнеспособность клеток после влияния на них ССК [13]. Статистическую обработку полученных результатов проводили с использованием программ Microsoft Excel; достоверность различий p<0,05. 56 Исследовали с помощью ТЭМ препараты, полученные методом негативного контрастирования. Для приготовления таких препаратов каплю суспензии клеток P. aeruginosa после их инкубации с ССК МП (в котором определена концентрация белка), а также суспензию - контроль наносили на сеточки с формваровыми пленками. Через одну минуту избыток жидкости удаляли фильтровальной бумагой. Затем наносили на сеточки каплю 2%-ного раствора фосфовольфрамовой кислоты. Через 1 мин избыток жидкости удаляли. Препараты просматривали в трансмиссионном микроскопе Geol JEM 1011 (Япония) при ускоряющем напряжении 80 кВ, с помощью Erlangshen ES 500 W Model 782, gatan, с программой Gatan Digital Micrograph. Результаты и их обсуждение. Бактерии A. hydrophila – симбионты кишечника H. medicinalis, оказались практически устойчивы к влиянию раствора ССК МП в используемых концентрациях (до 100 мкг/мл). Основной причиной такой устойчивости является, по-видимому, эволюционная приспособленность бактерий-симбионтов к обитанию в организме своего хозяина – МП [15]. Поэтому дальнейшие исследования антибактериального действия ССК проводили только по отношению к P. aeruginosa. Мы определили МИКи для P. aeruginosa двух растворов ССК МП, полученных в различное время 2012 года от МП из разных партий (табл.1). Эти МИКи составили: 1) 3 мкг/мл (ССК собран в сентябре, концентрация белков в растворе 0,7 мг/мл) 2) 20 мкг/мл (ССК собран в январе, кон- 1) 2) 3) 4) 5) 6) Рисунок 1 - Вид в ТЭМ лизирующихся под влиянием ССК МП (25 мкг/мл, 37о С) клеток P. аeruginosa: 1) – контроль; 2), 3) – скопление клеток за счёт нарушения заряда их поверхности и проницаемости наружной мембраны у части из них, начало процесса просветления цитоплазмы (фото 1 – 3: через 5 мин. влияния ССК МП); 4) – лизис клеток и остатки лизировавшихся клеток; 5) – разбухание клеток, увеличение количества мембранных везикул, разрушение клеточных стенок; 6) – разбухание и лизис клеток в составе конгломерата (фото 4 – 6: через 10 мин. влияния ССК МП). Последующая картина полного лизиса клеток не представлена. 57 центрация белков в растворе 0,9 мг/мл). Общая концентрация белков в ССК зависит от разбавления его физиологическим раствором при получении от МП. Кроме того, ССК должен быть достаточно разбавлен для возможности определения его антибиотической активности методом диффузии в агар. Известно, что в составе ССК изменяется соотношение белков (прежде всего – количественное) в зависимости от сезонности. Самым активным секрет бывает в тёплый летне-осенний период. Это подтвердили и наши исследования. Кроме того, активность ССК отличается в разных партиях МП - зависит от возраста пиявок, их физиологического состояния, и др. [3, 9, 10]. Определение в двух разных опытах жизнеспособности клеток бактерий после влияния на него растворов ССК одинаковой концентрации (25 мкг/мл) привело к результатам, представленным в таблице 2. Из полученных данных видно, что под влиянием 25 мкг/мл более активного из растворов ССК (с МИК 3 мкг/мл) большинство клеток теряют жизнеспособность и лизируются через полчаса. Потеря жизнеспособности клеток под действием менее активного ССК (с МИК 20 мкг/ мл) полностью завершается примерно через два часа инкубации клеток при 37о С. ССК сохранял при 4о С свою антимикробную активность в течение полугода. На рисунке 1 представлена картина лизиса клеток P. aeruginosa после их инкубации с 25 мкг/ мл раствора ССК МП (МИК 3 мкг/мл) в течение 5 и 10 мин. Таким образом, инкубация ССК МП с клетками возбудителей псевдомоноза приводит к началу лизиса этих клеток уже через несколько мин. при 37о С. Процесс лизиса клеток начинается с образования небольших конгломератов и нарушения проницаемости наружной мембраны, а затем и её разрушения. Также наблюдается увеличение количества мембранных везикул, образование которых характерно для многих грамотрицательных бактерий. Разрушение клеточных стенок проходит наряду с интенсивным разбуханием клеток, просветлением их цитоплазмы, благодаря нарушению проницаемости внутренней мембраны. Процесс завершается лизисом клеток, ещё раньше потерявших жизнеспособность. Выводы. Следовательно, ССК МП способен оказывать антимикробный эффект на возбудителя псевдомонозов P. аeruginosa. Картина гибели клеток демонстрирует разрушение клеточных оболочек и нарушение проницаемости мембран, что проявляется в просветлении цитоплазмы, разбухании клеток и заканчивается лизисом P. аeruginosa. По-видимому, основная причина гибели бактерий - нарушение проницаемости наружной, а затем и внутренней цитоплазматических мембран. Полученные результаты дают основание для дальнейших исследований с целью расширения использования ГТ в борьбе с псевдомонозами у человека и животных. Библиографический список: 1. Пруцаков, С.В. Терапия животных при псевдомонозе. / С.В. Пруцаков, И.А. Болоцкий, В.И. Семенцов, [и др.] // АгроРынок. На стол ветеринарному врачу. - 2013. - №2. - с. 22 - 25. 2. World Health Organization. Antimicrobial resistance: global report on surveillance 2014. Publication details. 257 p. URL: http://www.who.int/drugresistance/documents/surveillancereport/en/ - дата обращения 02.05.2015. 3. Баскова, И.П. Фармация медицинской пиявки. // Сборник «Новые информационные технологии в медицине, биологии, фармакологии и экологии». – Крым. - 2012. - С. 79 – 81. 4. Поспелова, М.Л. Гирудотерапия в неврологии. Применение гирудотерапии в лечении цереброваскулярных заболеваний. / М.Л. Поспелова, О.Д. Барнаулов // Издательство: LAP LAMBERT Academic Publishing. - 2012г. - 224 с. 5. Elyassi, A.R. Medicinal leech therapy on head and neck patients: a review of literature and proposed protocol. / A.R. Elyassi, J. Terres J., H. Rowshan // Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. - 2013. 116(3). - P. 167-172. 6. Попов, Л.К. Способ лечения скрытого мастита у коров. / Л.К. Попов, А.Н. Петров, А.В. Попов. // Патент РФ 2157696. Опубл. 20.10.2000. 7. Лукоянова, Л. А. Патогенетическое обоснование использования гирудотерапии при интоксикационном синдроме у собак. Дис. . канд. вет. наук. Санкт-Петербург. - 2009. - 130 с. 8. Sobczak, N. Hirudotherapy in veterinary medicine. / N. Sobczak N, M.Kantyka // Ann. Parasitol. – 2014.;60(2).С. 89-92. PMID: 25115059. 58 9. Баскова, И.П. Белки и пептиды секрета слюнных желез медицинской пиявки видов Hirudo verbаna, Hirudo medicinalis и Hirudo orientalis. / И.П. Баскова, Е.С. Кострюкова, М.А. Власова [и др.] // Биохимия. - 2008. - №73. - Вып. 3. - С. 388-394. 10. Баскова, И.П. Лизоцимная активность секрета слюнных желез медицинской пиявки видов: H.verbana, H.medicinalis и H.orientalis. / И.П. Баскова, О.В. Харитонова, Л.Л. Завалова // Биомед. Химия.- 2011. – 57.- вып.5. – С. 511-518. 11. Lemke, S. May Salivary Gland Secretory Proteins from Hematophagous Leeches (Hirudo verbana) Reach Pharmacologically Relevant Concentrations in the Vertebrate Host? / S. Lemke, C. Müller, E. Lipke [et al.] // PLoS One. – 2013.- v. 8. - №9. – 1 – 7. 12. Го, Даньян. Сравнение антибиотического действия секрета слюнных клеток медицинской пиявки и фермента дестабилазы-лизоцима, входящего в состав этого секрета. / Го Даньян, И.Б. Павлова // Медицинский академический журнал. – 2012. – №5. - С. 485 – 486. 13. Yudina, T.G. Antibacterial and antifungal functions of medicinal leech recombinant destabilase-lysozyme and its heated-up derivative. / T.G. Yudina , Danyang Guo, N.F. Piskunkova [et al.] // Frontiers of Chemical Science and Engeneering. - 2012. - v. 6. - №2. - p. 203 – 209. 14. Matuar, F. Aeromonas and Pseudomonas: antibiotic and heavy metal resistance species from Iskenderun Bay, Turkey (northeast Mediterranean Sea). / F. Matuar, A. Tamer, U. Yasemin // Environ. Monit. Assess. – 2010. – p. 309 – 320. 15. Maltz, M.A. Metagenomic analysis of the medicinal leech gut microbiota. / M.A. Maltz, L. Bomar, P. Lapierre [et al.] // Front. Microbiol. – 2014. - 5. - 151 – 159. CELL LYSIS OF THE PSEUDOMONOSIS EXCITER PSEUDOMONAS AERUGINOSA UNDER ACTION OF THE CELLS SECRET OF THE SALIVARY FROM MEDICINAL LEECH HIRUDO MEDICINALIS I.B. Pavlova, T.G. Yudina, I.P. Baskova, N. A. Feoktistova, D. A. Vasilyev, S. N. Zolotukhin Keywords: hirudotherapy; medicinal leech (ML); salivary cell secretion (SSC); pseudomonosis, transmission electron microscopy (TEM); Pseudomonas aeruginosa; Aeromonas hydrophila; Hirudo medicinalis. It is found that the leech symbiont A. hydrophila bacterium is insensitive to the antimicrobial action of the secret of the salivary cells (SSC) its host H. medicinalis (when determining the activity of SSC solutions with protein concentration to 100 µg / ml by agar diffusion method). MIC identified for two solutions of SSC for pathogen pseudomonosis P. aeruginosa, and cell survival of these bacteria after antibiotic effect on their of SSC. Antibiotic activity of SSC depends from the season it is higher in the summer. Research by transmission electron microscopy of cell lysis P. aeruginosa under the action of H. medicinalis SSC revealed that the main cause of death of these bacteria - a violation of the permeability of outer and inner cytoplasmic membranes. 59 УДК 579.62+579.22 АНТИКАРНОЗИНОВАЯ И АНТИГЕМОГЛОБИНОВАЯ АКТИВНОСТИ МИКРООРГАНИЗМОВ, ВЫДЕЛЕННЫХ ОТ СОБАК С НАРУЖНЫМИ ОТИТАМИ Т.М. Пашкова, кандидат биологических наук ФГБУН Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН тел. 8(3532)77-44-63, pashkova070782@mail.ru А.С. Акжигитов, аспирант ФГБОУ ВПО Оренбургский ГАУ тел. 8(908)321-57-52, abaj_akz@mail.ru О.Л. Карташова, доктор биологических наук тел. 8(3532)77-44-63, labpersist@mail.ru Л.П. Попова, кандидат медицинских наук ФГБУН Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН тел. 8(3532)77-44-63, ploomy@list.ru Ключевые слова: Malassezia, бактерии, отиты, антикарнозиновая активность, антигемоглобиновая активность Работа посвящена изучению видового состава и факторов персистенции микроорганизмов, выделенных при наружных отитах у собак. Установлено, что наиболее частыми ассоциантами грибов рода Malassezia, выделенных при разных формах течения отита, являлись Staphylococcus spp. Показано, что формирование микробных ассоциаций грибов со стафилококками характеризуется преимущественным повышением их антикарнозиновой и антигемоглобиновой активности. Полученные данные могут быть использованы для дифференциальной диагностики процесса и расшифровки патогенеза заболевания. Введение. Наружные отиты являются одной из самых распространенных патологий у собак [1, 2, 3, 4] и их возбудителями могут быть бактерии, дрожжеподобные и плесневые грибы, а также грибково-бактериальные ассоциации [5]. Нередко заболевание переходит в хроническую форму, длительность заболевания достигает 3 и более лет [1]. Существенный вклад в длительное переживание микроорганизмов в организме хозяина вносят секретируемые факторы персистенции. Известно, что микроорганизмы способны инактивировать механизмы естественной противоинфекционной резистентности макроорганизма, такие как лактоферрин, катионный белок тромбоцитов, лизоцим, карнозин [6]. Однако у микроорганизмов, выделенных при наружных отитах у собак, изучена лишь антилизоцимная активность [7, 8]. Необходимым фактором сохранения жизнеспособности для большинства микроорганизмов является способность усвоения ионов железа из железосодержащих молекул макроорганизма, в частности, гемоглобина [9]. Вместе с тем, у микроорганизмов, выделенных при отитах у собак, не изучены 60 такие факторы персистенции как антикарнозиновая и антигемоглобиновая активности, что и явилось целью данного исследования. Материалы и методы исследований. Материалом для исследования послужили 24 изолята грибов рода Malassezia и 46 штаммов бактерий. Исследуемый материал получали методом смывов с помощью тампона из наружного слухового прохода собак [1], засевали на среду Лиминга-Нотманна и кровяной агар. Чашки со средой Лиминга-Нотманна инкубировали при t 37оС в течение 48 часов, чашки с кровяным агаром - при t 37оС в течение 18-24 часов. Идентификацию грибов осуществляли по морфологическим и культуральным характеристикам [10], бактерии идентифицировали по морфологическим и культуральным свойствам, а также биохимическим характеристикам с использованием тест-систем «СТАФИ-тест», «ЭНТЕРОтест», «НЕФЕРМ-тест» («Lachema», Чехия). Антикарнозиновую активность (АКрА) микроорганизмов определяли фотометрическим методом [6], антигемоглобиновую активность (АнтиHbA) определяли по [11]. Статистическую обработку данных проводили биометрическими методами [12]. Результаты исследований и их обсуждение. Изучение микробиоценоза наружного слухового прохода у собак при отитах выявило ведущее значение микроорганизмов родов Staphylococcus (71,4%) и Malassezia (57%) при более низкой частоте выделения энтеробактерий, неферментирующих бактерий, стрептококков, энтерококков, коринебактерий. Доминирующее положение занимали штаммы Staphylococcus hyicus и Malassezia pachydermatis. Микрофлора, выделенная при остром течении заболевания, была представлена преимущественно монокультурами (56,1%), тогда как при хроническом течении процесса в 80% случаев регистрировали ассоциации микроорганизмов («бактерии-бактерии», «бактерии-грибы»). Показано, что при хроническом течении отита грибы рода Malassezia выделялись в 88,9% случаев, а при остром - в 50% случаев. Причем отмечено, что среди всех выделенных грибов 87,5% штаммов при разных формах течения заболевания были представлены видом M. pachydermatis. M. obtusa выделены в 12,5% случаев только при хроническом течении отита; M. furfur – только при остром течении заболевания (12,5% случаев). Среди бактерий, выделенных при разных формах отита, наиболее частыми ассоциантами грибов рода Malassezia являлись Staphylococcus spp. (S. hyicus, S. xylosus, S. intermedius), также были выделены бактерии рода Enterobacteriaceae spp. (P. vulgaris, E. coli, K. oxytoca, K. terrigena), P. aeruginosa, бактерии родов Corynebacterium spp., Bacillus spp., Streptococcus spp., Enterococcus spp. У всех выделенных грибов рода Malassezia была изучена распространенность и выраженность антикарнозиновой и антигемоглобиновой активности. При остром течении отита 37,5% грибов рода Malassezia обладали антикарнозиновой активностью. Штамм M. furfur, выделенный в монокультуре, обладал АКрА, равной 0,8±0,05 мг/мл, тогда как штамм M. furfur, выделенный в ассоциации с бактериями - 2,9±0,01 мг/мл. АКрА у штаммов M. pachydermatis, выделенных в монокультуре, была равна 0,54±0,5 мг/мл, в ассоциации с бактериями – 0,48±0,3 мг/мл. При хроническом течении отита 12,5% грибов рода Malassezia обладали антикарнозиновой активностью. Штаммы M. obtusa и M. pachydermatis, выделенные в монокультуре, АКрА не обладали, тогда как среднее значение признака у штаммов M. pachydermatis, выделенных в ассоциации с бактериями, составляло 0,23±0,2 мг/мл. При остром течении отита 18,8% грибов рода Malassezia обладали антигемоглобиновой активностью. M. furfur, выделенные как в монокультуре, так и в ассоциации, и M. pachydermatis, выделенные в ассоциации с бактериями, данной активностью не обладали. АнтиHbA штаммов M. pachydermatis, выделенных в монокультуре, составляла 0,9±0,5 г/л. При хроническом течении инфекционного процесса 50% грибов рода Malassezia характеризовались наличием антигемоглобиновой активности. Так, АнтиHbA штамма M. obtusa, выделенного в ассоциации с бактериями, была равна 6,9±3,9 г/л. Штамм M. pachydermatis, выделенный в монокультуре, данной активностью не обладал, а у M. pachydermatis, выделенных в ассоциации, среднее значение АнтиHbA составляло 1,3±0,9 г/л. Далее была изучена распространенность и выраженность антикарнозиновой и антигемоглобиновой активности у Staphylococcus spp., как наиболее часто выделяемых при наружных отитах бактерий. 59,1% стафилококков, выделенных при остром течении инфекционного процесса, характеризовались наличием АКрА. Среднее значение признака у стафилококков, выделенных в монокультуре, составляло 0,4±0,1 мг/мл, в ассоциации с другими бактериями - 0,7±0,3 мг/мл, в ассоциации с грибами рода Malassezia spp. - 1,1±0,4 мг/ мл. Способностью к инактивации карнозина обладали 62,5% стафилококков, выделенных при хроническом течении инфекционного процесса в ассоциации с Malassezia spp., среднее значение признака составляло 1,6±0,4 мг/мл. При изучении АнтиHbA у штаммов стафилококков, выделенных при остром течении отита, наличие признака было выявлено у 81,9% штаммов. У стафилококков, выделенных в монокультуре, среднее значение признака составило 12,8±4 г/л, в ассоциации с бактериями - 3,7±1,8 г/л, в ассоциации с грибами - 18,9±4,6 г/л. Все стафилококки, выделенные при хроническом течении отита, обладали АнтиHbA, среднее значение признака у штаммов, выделенных в ассоциации «бактерии-бактерии» было равно 28,1±1,2 г/л, в ассоциации «бактерии-грибы» - 17±2,5 г/л. Заключение. В результате проведенных исследований показано, что при разных формах течения отита среди грибов рода Malassezia доминировал вид M. pachydermatis, а наиболее частыми ассоциантами грибов являлись Staphylococcus spp. (S. hyicus, S. xylosus). Грибы рода Malassezia в ассоциациях с бактериями при остром течении отита, характеризовались более высокими значениями АКрА по сравнению со штаммами, выделенными в монокультуре, напротив АнтиHbA об- 61 ладали штаммы грибов, выделенные в монокультуре. При хроническом течении отита грибы рода Malassezia spp. характеризовались наличием изученных персистентных свойств (АКрА и АнтиHbA) только в ассоциациях с бактериями. У стафилококков, выделенных в ассоциации с грибами, при остром течении отита, значения изученных персистентных свойств были выше по сравнению с таковыми у штаммов, выделенных в монокультуре и в ассоциации с другими бактериями, а при хроническом течении процесса – по сравнению со штаммами, выделенными в ассоциации «бактерии-бактерии». Таким образом, формирование микробных ассоциаций грибов со стафилококками характеризуется преимущественным повышением их факторов персистенции. Полученные данные о том, что наличие ассоциаций микроорганизмов, выделенных при наружном отите у собак, отражает хронизацию процесса, могут быть использованы для дифференциальной диагностики заболевания. Расшифровке патогенеза наружного отита будут способствовать полученные результаты о повышении факторов персистенции у грибов и бактерий при межмикробных взаимодействиях. Библиографический список: 1. Ершов, П.П. Этиологическая значимость дрожжевых грибов рода Malassezia при кожных заболеваниях животных: дис. … канд. вет. наук. / П.П. Ершов - Москва, 2008. - 165 с. 2. Comparative study of the microbial profile from bilateral canine otitis externa / L.C. Oliveira, C.A. Leite, R.S. Brilhante, C.B. Carvalho // Can Vet J. - 2008. - № 49(8). - P. 785-788. 3. Lehner, G. Reproducibility of ear cytology in dogs with otitis externa / G. Lehner, C.S. Louis, R.S. Mueller // Vet Rec. - 2010. - № 167(1). - P. 23-26. 4. Linek, M. Otitis externa and media in the dog and cat / M. Linek // Tierarztl Prax Ausg K Kleintiere Heimtiere. - 2011. - № 39(6). - P. 451-463. 5. Грибы рода Malassezia в заболеваниях животных: клинические формы, диагностика, терапия / Р.С. Овчинников, М.Г. Маноян, А.Г. Гайнуллина, А.Н. Панин // Vetpharma. - 2013. - № 3. - С. 37-52. 6. Бухарин, О.В. Персистенция патогенных бактерий / О.В. Бухарин. - Изд-во: Медицина Екатеринбург: УрО РАН, 1999. - 366 с. 7. Видовой состав и биологические свойства микроорганизмов, выделенных от животных при гнойно-воспалительных заболеваниях [Электронный ресурс] / С.А. Пензурова, Л.С. Мулюкова, Н.С. Пашинин, Р.М. Нургалиева // Современные проблемы науки и образования. - 2012. - № 6; URL: www.science-education.ru/106-7891. 8. Акжигитов, А.С. Биологические свойства Malassezia pachydermatis, выделенных от собак / А.С. Акжигитов, О.А. Капустина, Н.С. Пашинин // Вестник ветеринарии. - 2013. - № 64. - С. 53-55. 9. Neisseria meningitides produces iron-regulated proteins to the RTX-family of exoproteins / S.A. Thomson, L.L. Wang, A. West // J. Bacteriol 1993. - №175. - P. 811-818. 10. Faergemann, J. Atopic Dermatitis and Fungi / J. Faergemann // Clinical Microbiology Reviews. - 2000. Vol. 15. - № 4. - P. 545–563. 11. Пат. 2262705 Российская Федерация, МПК G01N33/72 Способ определения антигемоглобиновой активности микроорганизмов / О.В. Бухарин, Б.Я. Усвяцов, Е.А. Ханина; заявитель и патентообладатель Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН; заяв. 27.05.2004; опубл. 20.10.2005. 12. Лакин, Г.Ф. Биометрия / Г.Ф. Лакин. - Москва: Изд-во Высшая школа, 1990. - 352 с. ANTICARNOSINE AND ANTIHAEMOGLOBIN ACTIVITIES OF MICROORGANISMS ALLOCATED FROM DOGS WITH EXTERNAL OTITIS Pashkova T.M., Akzhigitov A.S., Kartashova O.L., Popova L.P. Keywords: Malassezia, bacteria, otitis, anticarnosine activity, antihaemoglobin activity Work is devoted to the study of specific structure and persistent factors of microorganisms allocated from dogs with external otitis. It is established that the most frequent associate of Malassezia spp. allocated at different forms of otitis is Staphylococcus spp. It is shown that formation of microbic associations of fungi and staphylococci is characterized by primary increase of their anticarnosine and antihaemoglobin activities. The obtained data can be used for differential diagnostics of otitis and interpretation of its pathogenesis. 62 УДК 619:576 ЛЕЙКОЗ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА: ОЗДОРОВЛЕНИЕ И РЕШЕНИЕ ПРОБЛЕМНЫХ ВОПРОСОВ Н.И. Пелевина, директор Департамента ветеринарии Ульяновской области 432071, г. Ульяновск, пер. Мо­лоч­ный, д. 16., тел. (8422) 44-62-89, veterinaria@inbox.ru С.В. Шоболев, начальник ОГБУ «Чердаклинская райСББЖ» 433400, Ульяновская обл,р.п.Чердаклы, ул.Вр.Попова д.80, тел (84231)2-12-37, vetstan2007@yandex.ru Ключевые слова: лейкоз крупного рогатого скота, инструкция, иммунные стимуляторы. В статье освещены практические вопросы оздоровления хозяйств при лейкозе крупного рогатого скота Актуальность проблемы. Лейкоз крупного рогатого скота уже многие годы продолжает наносить молочно-товарным фермам и племенным хозяйствам огромный ущерб из-за выбраковки и убоя животных, а также затрат на мероприятия по борьбе с этим заболеванием. Долгое время многие владельцы скота и руководители хозяйств относились формально к выполнению оздоровительных и профилактических мероприятий при выявлении лейкоза. Лишь после опубликования Федерального закона «Технический регламент на молоко и молочную продукцию» от 12 июня 2008 года № 88-ФЗ., который запрещает вывозить молоко из хозяйств, неблагополучных, в том числе и по лейкозу без пастеризации, это заболевание вновь привлекло к себе пристальное внимание уже не только со стороны государственных надзорных органов, но и руководителей хозяйств, владельцев животных, перерабатывающих предприятий и торговых организаций. Это связано с тем, что для мелких и личных подсобных хозяйств с небольшим валовым надоем молока установка собственного пастеризатора финансово не оправдано, так как в результате себестоимость молока будет всегда выше цены реализации. В крупных хозяйствах с большим валовым надоем от 10 тонн и более нужно строить целый молокозавод, что в большинстве своем тоже не оправдано, конечно, есть исключения, но они так малы, что не стоит брать их в расчёт как основу ведения такого бизнеса. Отметая пастеризацию, остаётся выполнить действующею инструкцию «Об утверждении правил профилактике и борьбе с лейкозом крупного рогатого ско- та», приказ Министерства сельского хозяйства и продовольствия РФ от 11 мая 1999г №359. Характеристика лейкоза. Лейкоз КРС – хроническая инфекционная болезнь опухолевой природы, которая протекает бессимптомно или проявляется лимфоцитозом и злокачественными образованиями в кроветворных и других органах и тканях Различают две основные формы лейкоза энзоотическую и спорадическую, последняя встречается редко и поражает молодых животных. Энзоотическая форма лейкоза характеризуется длительными периодами, это объясняет многолетние существования лейкоза в хозяйстве, в свою очередь он делится на две группы: одна группа поражает костный мозг и слабо дифференцируется, вторая группа с поражением внутренних органов, увеличением лимфоузлов и болезнь неизменно заканчивается смертью. В хозяйствах наших районов таких случаев не выявлено. Вирус обладает иммунодефицитными свойствами, что является одной из причин применения иммуностимуляторов. По данным группы ученых вирус лейкоза обнаруживается в клетках молозива и молока зараженных животных. Из слюны, носовых истечений, семени, мочи и шерсти его выделить не удалось. В сыворотке крови телят, ягнят, родившихся от больных лейкозом животных имеется высокий уровень специфических антител сохранившихся в течение 5-6 месяцев, после рождения у телят и три месяца у ягнят. Наличие высокого титра колостральных антител способно нейтрали- 63 зовать индукцию вируса лейкоза КРС и предотвратить заражения новорожденных телят при условии их содержания раздельного от больных коров. Данных телят отделять в группу откорма не имеет смысла при условии регулярного переисследования. Внутриутробная передача вируса лейкоза обнаружена только у 8% телят. По последним данным ученые доказывают, что вирус лейкоза КРС отличается низкой контагиозностью и вместе с тем высокой резистентностью макроорганизма, по отношению к вирусу. Молоко серопозитивных коров не является основным фактором передачи вируса. Это можно объяснить двумя основными положениями: невысокой концентрацией вируса лейкоза в сборном молоке зараженного стада и протективными свойствами молозива. Основными факторами передачи вируса является прямой контакт с нарушением целостности кожных покровов, с переносом вируса через лимфоциты больного животного. Как показывает практика, даже в тех хозяйствах, которые долгое время являются неблагополучными, клинически выраженных заболеваний или заболеваний поставленных после ветеринарно-санитарной экспертизы составляют менее 1%. По статистике в хозяйствах Чердаклинского района Ульяновской области, где есть выделения РИД-положительного скота в течение нескольких лет количество реагирующего скота остаётся одинаковым, то есть лейкоз по большому счёту не влияет на отход молодняка, взрослого скота, потерю выхода мяса. Материалы и методы исследований. При работе использовали методы лабораторной диагностики: реакция иммунодиффузии (РИД), в качестве вспомогательного метода - полимеразную цепную реакцию (ПЦР). Принцип метода иммунодиффузии заключается в том, что антиген и антитела помещенные в лунки, дифунцируют в геле агара и при взаимодействии образуют комплекс, который проявляется в виде линии прецеплитации. Когда вирус попадает в организм животного, его иммунная система реагирует на него, как на любой чужеродный агент и в его крови появляются вещества белковой природы — антитела. Антиген находит эти антитела и соединяется в виде линии. «Инструкция по применению набора для серологической диагностики лейкоза крупного рогатого скота», утвержденная Заместителем Руководителя Россельхознадзора 7 мая 2010 64 года с изменениями от 21 июня 2011года. Недостатками данного метода, по нашему мнению имеются следующие: 1. Прошло еще недостаточно времени, антитела вырабатываются только через 2-4 месяца 2. Антитела не вырабатывались в результате индивидуальных особенностей иммунной системы животного. 3. Вирус попал в организм, но не задержался – погиб, но антитела в организме есть. 4. Стельность 30 дней до и 30 дней после отела 5. РИД не способна дифференцировать материнские антитела у молодых животных от активных антител, продуцирующих при вирусной инфекции. И главное, что касается нашего случая, «уставшая» от хронического инфекционного процесса иммунная система может не показать повышенный уровень антител к инфекции. Принцип реакции ПЦР - обнаружение вируса внутри ДНК и считается более точной реакцией, опасение в том, что вирус может не быть в исследуемой пробе. Хотя в развитых странах ПЦР является основной для установки диагноза, у нас инструкции были составлены в основном тогда, когда данный метод еще не имел большого развития. По данным ученых А.Л.Воробьева, В.М.Антюхова РИД-положительный скот может не всегда быть положительным в реакции ПЦР и наоборот все вышеперечисленные причины влияют на качество реакции, на своём опыте мы убедились, что несовпадений около 30%. Результаты проведенных исследований Анализируя все вышесказанное, мы пришли к заключению, что перед тем как проводить массовые диагностические исследования, необходимо подготовить исследуемый объект, для того чтобы результат реакции был максимально достоверным. Для этого нужно обязательно проводить диспансеризацию скота, учет глубокостельных животных, выявление скрытых заболеваний: мастит, копытная гниль и другие. В результате проведенных нами исследований экспресс методом почти 50% животных оказались больными скрытой формой мастита. Лабораторные исследования позволили выявить уже 70% больных животных от числа исследованных. Эти показатели свидетельствуют об «усталости» иммунной системы. Поэтому необходимо повысить иммунный статус животных, дать иммунный толчок организму. Подбирая метод лечения животных мы руководствовались следующими правилами, чтобы при применении лекарственных средстств: 1. Не было ограничений при использовании молока и мяса. 2. Метод должен быть сравнительно дёшев, простым в применении и главное давал бы толчок не только на выздоровление, но и на повышения продуктивности. Для этих целей мы применяли йодинол, препарат приготовленный по методу Филатова, АСД-2. Принцип действия йодинола: под влиянием йода лейкоциты усиливают свою активность, что является основной естественной сопротивляемостью организма. Йод действует на органы и ткани непосредственно, как составная часть гормонов щитовидной железы – тироксин и трийодтиронина, без которых невозможно нормальное функционирование организма. Препарат по методу Филатова: действует общеукрепляющее, повышает тонус организма. АСД-2: высоко молекулярный продукт распада белка являются наиболее мощным физиологическим раздражителем, повышает общий жизненный тонус организма, так как АСД-2 получена методом возгонки, наиболее лучший эффект достигается при приёме внутрь. Опыт проводили в хозяйстве, имеющем поголовье крупного рогатого скота 400 голов, из них 245 голов дойных коров, на которое наложен карантин по лейкозу с 2008 года. Постоянное количество РИД положительного скота составляло около 90 гол. РИД положительным коровам выпаивали фракцию АСД-2 в течение 5 дней в объеме 20 мл растворенном в 100 мл воды. После по истечению трех суток вводили йодинол. В результате повторного исследования сыворотки от 90 РИД положительных коров получили 20 отрицательных результатов. Исследования в ПЦР показали лишь 39 голов положительных результатов, пробы от 51 головы в этой реакции были отрицательны. Предложено хозяйству освободиться от реагирующих по РИД и ПЦР, в первую очередь. Заключение: иммуностимуляторы. По нашему мнению не скрывают иммунологическую реакцию, а наоборот стимулируют ее проявление путем повышения иммунного статуса организма. Расходы на иммуностимуляцию окупаются за счет увеличения продуктивности, и снижению численности РИД положительного скота, учитывая наш пример потрачено 50 тыс. рублей средняя стоимость коровы 50-70 тыс. рублей 20*50000=1000000 рублей. Все вышеизложенные мероприятия бессмысленны если не проводить их регулярно и не вести четкий учёт скота, перегруппировку и подготовку молодняка для дойного гурта. В нашем случае постепенно выводили из стада РИД положительный скот с наведением четкого учета и добились положительного результата. Выводы и предложения 1. Освобождение хозяйства от лейкоза является решаемой проблемой, если планомерно заниматься ее решением с постоянным контролем госветслужбы. Этот вопрос можно снять не затрачивая больших ресурсов, как финансовых, так и кадровых. 2. Необходимо разделение РИДположительного скота в отдельном помещении, но если нет условий достаточно метить РИД положительный скот, самый эффективный метод - разноцветные ошейники, сразу заметно, относительно надежно, и имеет свойство, грубо говоря, мозолить глаза работникам животноводства, конечно это всё возможно, если минимизировать физический контакт. 3. Отдельное содержание телят родившихся от РИД-положительных коров не обязательно, главное также исключать контакт телёнка с матерью, не исключая выпойки молозива. 4. Применение пастеризации молока внутри хозяйства для выпойки телят сказывается положительно, но не является обязательным. 5. Отсутствие искусственного осеменения, так же не сильно влияет на распространения заболевания 6. Профилактика основных заболеваний на ферме (маститы, вагиниты, послеродовые заболевания, копытные воспаления и др.) строго обязательна и влияет на учёт реакций связанных не только с лейкозом. 7. Стимуляция организма животных биогенными стимуляторами, витаминами, макро или микроэлементами влияет на качество реакции и на уменьшения положительного реагирующего скота. 8. Основной акцент необходимо делать на выращивания здорового молодняка с регулярными исследованиями. 9. После освобождения хозяйства от лейкоза необходимо выполнять элементарные зоотехнические требования, это ежегодная 30% замена взрослого поголовья, здоровым молодняком. 65 Библиографический список: 1. Научная статья - ВКГТУ им.Д.Серикбаева А.Л.Воробьев, 2. Научная статья ТОО «Северо-Казахстанский НИИ животноводства и растениеводства» В.М. Антюхов 3. «Инфекционная патология животных» под редакцией: А.Я. Сумуйленко, Б.В. Соловьев, Е.А. Непоклонов, Е.С. Воронин. 4. Правила по профилактике и борьбе с лейкозом крупного рогатого скота , утвержденные Министерством сельского хозяйства и продовольствия Российской Федерации 03.02.1999г № 13-3-2/1509. 5. «Инструкция по применению набора для серологической диагностики лейкоза крупного рогатого скота», утвержденная Заместителем Руководителя Россельхознадзора 7 мая 2010 года с изменениями от 21 июня 2011года. 6. Приказ Министерства сельского хозяйства и продовольствия Российской федерации «Об утверждении правил по профилактике и борьбе с лейкозом крупного рогатого скота» от 11 мая 1999 года № 359. 7. Федеральный закон Технический регламент на молоко и молочную продукцию от 12 июня 2008 года № 88-ФЗ. BOVINE LEUKEMIA: WELLNESS AND SOLVING PROBLEMS N.I. Pelevinа, S.V. Shobolev Keywords: leukemia cattle, instruction, immune stimulants. The article highlights the practical issues of improvement of farms in leukemia cattle УДК 636.5:612.12.014.469 ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА МЯСА ЦЫПЛЯТ-БРОЙЛЕРОВ ПРИ ПРИМЕНЕНИИ В РАЦИОНЕ ПРЕПАРАТОВ БЕЛКОВЫХ ГИДРОЛИЗАТОВ Н.В. Пименов, доктор биологических наук, доцент тел 8(495) 377-85-67, pimenov-nikolai@yandex.ru Ю.В. Петрова, кандидат биологических наук 8(495) 377-41-01, belova_u@mail.ru Е.А. Хромова, студентка-магистрантка 2 курса факультета ветеринарной медицины, kalarimt@mail.ru ФГБОУ ВПО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологий им. К.И. Скрябина» Ключевые слова: Цыплята-бройлеры, Ферропептид, Абиопептид, мясная продуктивность, химический состав, гистологическая структура. Работа посвящена изучению влияния препаратов Ферропептид и Абиопептид на мясную продуктивность, качество и безопасность продуктов убоя цыплят-бройлеров. Установлено влияние препаратов на прирост живой массы и убойный выход, содержание макронутриентов мяса и гистологическую структуру тканей. Введение. Птицеводство – одна из ведущих отраслей сельского хозяйства Российской Федерации. К началу 2013 г. производство мяса 66 птицы насчитывало 550 тыс. т, а к началу 2014 г. (январь-февраль) производство мяса птицы увеличилось на 3,7% и составило 564 тыс. т в убойном Таблица 1 - Схема постановки опыта № группы Кол-во цыплят в группе 1 2 20 20 Средняя масса цыплят-бройлеров, г (M±m) 0,040±0,003 0,042±0,002 3 20 0,043±0,003 Характеристика групп Схема кормления Контрольная, основной рацион без препаратов Опытная, основной рацион + В период от 7-ми до 35-суФерропептид 1,5 мл/кг точного возраста Опытная, основной рацион + Абиопептид 1,5 мл/кг В период от 7-ми до 35-суточного возраста Таблица 2 - Динамика живой массы цыплят-бройлеров, г 1 сутки 7 сутки, перед началом выпойки препаратов подопытным цыплятам 14 сутки 21 сутки 28 сутки 35 сутки, перед завершением выпойки препаратов подопытным цыплятам 42 сутки, перед убоем Группы цыплят-бройлеров,n= 20,M±m 1 группа (контроль) 2 группа (Ферропептид) 3 группа (Абиопептид) 30±0,31 32±0,25 31±0,23 253±2,59 271±2,35 246±1,95 415±5,81 844±1,44 1182,6±32,11 387±2,61 849±2,22 1250±3,35 392±4,19 845±6,35 1213,5±17,9 1530±18,7 1675±4,47 1587±21,1 2274,62±10,7 2349,68±1,67 2333,86±10,58 весе[1].При этом большую часть производимого мяса птицы составляет мясо цыплят-бройлеров. Бройлерное птицеводство – отрасль, позволяющая получить высокую массу мясной продукции в более короткие сроки и с меньшими затратами, чем мясное скотоводство. Современные кроссы цыплят-бройлеров способны в короткий промежуток времени дать до 2 кг высококачественного мяса, которое потребитель ценит за его диетические качества и простоту приготовления. Использование премиксов, содержащих необходимые микронутриенты в определённых количествах, способствует повышению продуктивности, стрессоустойчивости и общей резистентности животных за счёт нормализации обменных процессов. Разработано и исследовано большое количество биологически активных препаратов, применение которых в качестве премикса в процессе выращивания и откорма птицы позволяет получить здоровый, устойчивый к стрессовым воздействиям молодняк и большие количества мяса с высокой пищевой и биологической ценностью. Такими свойствами обладают препараты «Абиопептид» и «Ферропептид», производимые российской фирмой ООО «А-БИО» (Московская обл.)[2, 3]. Абиопептид представляет собой гидролизат соевого белка средней степени расщепления; Ферропептид является комплексным препаратом гидролизата соевого белка и микроэлементов. Оба препарата по результатам исследований рекомендованы к применению в животноводстве и птицеводстве, однако вопрос ветеринарно-санитарной оценки продуктов убоя при использовании этих препаратов остаётся открытым. Материалы и методы исследований. Исследования проводили в виварии ФГБОУ ВПО МГАВМиБ. Для эксперимента были сформированы по принципу аналогов три группы 7-суточных цыплят-бройлеров кросса Кобб-500по 20 голов. Цыплят содержали в клетках при аналогичных параметрах микроклимата, кормлении и поении. Первая группа служила контролем, вторая группа к основному рациону ежедневно получала «Ферропептид» в дозе 1,5 мл/кг, а третья группа получала «Абиопептид» в той же дозировке. Схема постановки опыта представлена в таблице 1: Выпойку препаратов проводили индивидуально;объём препарата, получаемого цыплёнком за одну выпойку, увеличивали в зависимости от прироста живой массы, согласно дозировке. В 67 Таблица 3 - Химический состав мышечной ткани цыплят-бройлеров 1 группа 2 группа 3 группа грудные бедренные грудные бедренные грудные бедренные Вода, % 74,50±0,38 75,23±0,36 72,56±0,80 73,95±0,16 73,06±0,16* 74,09±0,23 Белок, % 23,62±0,20 19,84±1,02 23,98±1,15* 19,99±0,13* 23,94±0,23 19,96±0,84 Жир, % 1,25±0,23 3,82±0,24 1,26±0,21 3,85±0,18 1,26±0,26 3,84±0,16 *р≤0,05 ходе эксперимента через каждые 7 суток контролировали изменение живой массы. Плановый убой всего поголовья производили на 42 сутки. При исследовании продуктов убоя согласно нормативным документам контролировали органолептические, физико-химические показатели. Также было проведено гистологическое исследование проб грудных и бедренных мышц, печени и сердца по общепринятой методике. Результаты и их обсуждение. По результатам ежедневных клинических осмотров цыплят всех групп не было установлено случаев клинического проявления каких-либо патологий. Цыплята были активны, подвижны, живо реагировали на кормление и поение. Динамика живой массы бройлеров представлена в Таблице 2: Анализ динамики живой массы показывает, что цыплята опытных групп развиваются более интенсивно, чем контрольные особи. Наибольшее увеличение живой массы отмечено в группе 2: к завершению эксперимента она составляет 2349,68±1,67 г, что на 8,1% выше, чем в контрольной группе. В группе 3 значение живой массы 2333,86±10,58 г(р≤0,05), что на 5,1% выше такового значения контрольной группы, но ниже значения группы 2 на 2,8%. По всей вероятности,Ферропептид за счёт особенностей химическо68 го состава эффективнее нормализует обменные процессы в организме птицы[4], что позволяет цыплятам-бройлерам стабильно набирать массу. В свою очередь, Абиопептид как источник аминокислот также способствует активному росту и увеличению живой массы. Сниженное по сравнению с контролем значение живой массы цыплят опытных групп, отмеченное на 14 сутки, связано, на наш взгляд, со стрессом при первых выпойках препаратов[5]; в дальнейшем живая масса подопытных цыплят значительно увеличилась. После убоя все тушки цыплят имели признаки хорошего обескровливания и удаления пера и пеньков, чистые, без повреждения кожного покрова. Отложения подкожного жира на тушках наблюдали в области живота и копчиковой железы. Большинство тушек всех групп имели показатели первой категории упитанности. Масса потрошёных тушек группы 2 превышает массу тушек контрольной группы на 8,7%, а группы 3 на 4,6% (Рисунок 1). Имеются различия по химическому составу мышц цыплят опытных и контрольной групп. Химический состав грудных и бедренных мышц цыплят приведён в Таблице 3: Как видно из таблицы, содержание влаги в грудных мышцах цыплят группы 2 ниже, чем в контрольной группе, на 2,06%, количество белка Рисунок 2 - Результаты микроскопии препаратов ткани печени (гематоксилин и эозин, окуляр Х10, объектив Х10) выше на 1,65%, а в мышцах цыплят группы 3 на 1,93% и 1,45% соответственно. Содержание жира в мышцах цыплят опытных групп увеличилось на 0,59-0,70% по сравнению с контролем. В бедренных мышцах цыплят опытных групп содержание влаги ниже таковой у контрольной группы на 1,471,66%, содержание белка выше на 0,81-0,98%, жира – на 0,85-0,93%.В целом, содержание основных веществ мышечной ткани цыплят-бройлеров опытных групп по сравнению с контрольной не снижено, что свидетельствует об отсутствии негативного влияния препаратов Ферропептид и Абиопептид на химический состав мяса. Гистологическое исследование грудных и бедренных мышц показало, что различий в строении тканей образцов опытных и контрольной групп не обнаружено. Мышечные волокна интенсивно и равномерно окрашены, имеют ровный контур, целостность их сохранена; миофибриллярная структура волокон не нарушена, поперечная исчерченность хорошо выражена. Межмышечные прослойки соединительной ткани слабо выражены, содержат небольшое количество фиброцитов и коллагеновых волокон. Диаметр сосудов не увеличен, просвет их пуст. Различий в структуремиокарда также отмечено не было. Миокард на срезах окрашен равномерно, контуры кардиомиоцитов чёткие, цитоплазма мутная и окрашена равномерно. Поперечная исчерченность хорошо выражена. Межмышечная строма слабо развита. Стенки коронарных сосудов – без признаков склероза и гиалиноза. Различий в структуре ткани печени обнаружено не было. Дольчатостьпечени слабо выражена,балочное строение сохранено, печёночные балки короткие, располагаются на небольшом расстоянии друг от друга. Гепатоциты округлой формы с хорошо выраженными границами, имеют неравномерно окрашенную цитоплазму со слабовыраженной зернистостью, большинство их содержит округлые оптические пустоты небольшого размера с ровными краями. Ядра гепатоцитов хорошо просматриваются, располагаются преимущественно в центре клеток, окрашены неравномерно за счёт скопления глыбок хроматина. Лимфоидные узелки хорошо развиты, мелкого и среднего размера. Диаметр центральных вен увеличен, просвет их заполнен густо расположенными эритроцитами и однородной белковой массой, окрашенной слабо эозинофильно. Такая картина свидетельствует о слабо выраженной жировой и зернистой дистрофии гепатоцитов. Изменения данного характера обнаружены в препаратах печени всех трёх групп(Рисунок 2) и, по-видимому, не зависят от приёмацыплятамипрепаратов и связаны с особенностями содержания и кормления (питательные комбикорма, кормление и поение волю, ограничение подвижности при клеточном содержании). При этом препараты Ферропептид и Абиопептид не влияют на развитие дистрофических процессов. Заключение. Результаты наших исследований показали, что препараты Ферропептид и Абиопептид способствуют повышению прироста живой массы цыплят-бройлеров и увеличению убойного выхода. Отмечено незначительное влияние препаратов на содержание макронутриентов в мясе бройлеров с тенденцией к повышению содержания белка и, в меньшей степени, жира. Отсутствует негативное влияние препаратов Ферропептид и Абиопептид на гистологическую картину тканей, в частности основных продуктов убоя – грудных и бедренных мышц, сердца и печени. Наивысшие результаты живой массы и убойного выхода были получены во 2 группе, получавшей Ферропептид. При этом негативные изменения в химическом составе мяса и гистологической картине тканей отсутствуют. 69 Библиографический список: 1. Мировые тенденции в отечественном птицеводстве // Птицеводство, 2014. - №2. –с. 2-6. 2. Егоров, И. Абиопептид в кормлении бройлеров / И. Егоров, Е. Андрианова, Л. Присяжная // Птицеводство, 2009. - №3. – С. 25-26. 3. Андрианова, Е. Ферропептид в кормлении цыплят-бройлеров / Е. Андрианова, Л. Присяжная, А. Френк // Птицеводство, 2009. - №5. – С. 11. 4. Кузнецов, С. Микроэлементы в кормлении животных / С. Кузнецов, А. Кузнецов // Животноводство России, 2003. - №3. – с. 16-19. 5. Кавтарашвили, А. Проблема стресса и пути её решения / А. Кавтарашвили, Т. Колокольникова // Животноводство России, 2010. - №5. – с. 17-20. VETERINARY-SANITARYCHARACTERISTICS OF BROILER MEAT WHEN USED IN THE DIET OF PROTEIN HYDROLYSATES N.V.Pimenov, J.V.Petrova, E.A.Khromova Key words: Broiler chicken, Ferropeptidum, Abiopeptidum, meat productiveness, chemical composition, histological structure. This publication is devoted to study the effect of the drugs Ferropeptidum and Abiopeptidum on meat productiveness, quality and safety of products of slaughter broiler chickens. Proved the effect of drugs on live weight gain and carcass yield, contents of macronutrients meat and histological structure of the tissue. УДК 576.895.122 РАСПРОСТРАНЕНИЕ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ ЦЕРКАРИОЗОВ В ПОПУЛЯЦИЯХ МОЛЛЮСКОВ LYMNAEA STAGNALIS УЛЬЯНОВСКОЙ ОБЛАСТИ Е.М. Романова, доктор биологических наук, профессор Тел. 8 (8422)55-95-38, vvr-emr@yandex.ru Д.С. Игнаткин, кандидат биологических наук, доцент Тел. 8 (8422)55-95-38, ignatkin82@yandex.ru М.А. Видеркер, кандидат биологических наук, доцент Тел. 8 (8422)55-95-38, igwid@yandex.ru Л.А. Шадыева, кандидат биологических наук, доцент Тел. 8 (8422)55-95-38, ludalkoz@mail.ru ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина» Ключевые слова: церкариозы, личинки трематод, Trichobilharzia ocellata, моллюски Lymnaea stagnalis. Исследована спонтанная зараженность моллюсков Lymnaea stagnalis личинками трематод. Выявлены случаи инвазии церкариями T. ocellata (0,16%). Оценены экологические предпосылки заражения людей церкариозами в водоемах Ульяновской области. 70 Шистосоматидозы – широко распространенные трематодозы водоплавающих птиц, возбудителями которых являются трематоды сем. Schistosomatidae. Человек является неспецифическим хозяином шистосоматид. Церкарии шистосоматид способны проникать через кожу, оказывая механическое, токсическое и сенсибилизирующее действие. Это заболевание получило название «церкариальный дерматит» или «церкариоз». Церкариозы человека регистрируются не только в России, но и во многих странах мира [1]. Заболевание проявляется у людей, как правило, после купания. Установлено, что основными видами шистосоматид, вызывающими церкариозы человека на территории РФ, являются Trichobilharzia ocellata. Наиболее частым первым промежуточным хозяином для T. ocellata является массовый вид моллюсков Lymnaea stagnalis, что характерно и для Ульяновской области [2-7]. В связи с этим, целью настоящей работы явилось изучение зараженности моллюсков L. stagnalis личинками трематод сем. Schistosomatidae в водоемах Ульяновской области. Материал и методы. Исследования проводились в 2005-2013 гг. на территории Ульяновской области. Были обследованы популяции моллюсков L. stagnalis в 24 водоемах, включающих 11 рек и 13 озер и прудов. Обследованные водоемы находились в Ульяновском, Чердаклинском, Кузоватовском, Карсунском, Мелекесском, Старомайнском, Сурском и Тереньгульском районах. Компрессорным методом было исследовано более 2400 экз. L. stagnalis. Результаты и их обсуждение. Личинки трематод T. ocellata были отмечены в 0,16% случаев от общего числа исследованных моллюсков. Считается, что этого вполне достаточно для реализации жизненного цикла этих паразитов в водоемах и, соответственно, существования риска заражения людей церкариозами [1]. Наряду с T. ocellata у моллюсков L. stagnalis гораздо чаще встречаются другие трематодные инвазии [5-7], которые занимают преобладающую часть трофической ниши, которой являются данные моллюски. Причем встречаемость T. ocellata среди популяций L. stagnalis в разных водоемах в среднем не превышает 1-2% как на фоне низкого, так и высокого общего уровня инвазии [3-4]. Так, например общая зараженность моллюсков L. stagnalis в прудах, расположенных на юго-западной окраине г. Ульяновска, составила 91,8 %. В структуре трематодофауны моллюсков ведущая роль принадлежала Plagiorchis multiglandularis: личинки трематод этого вида были выявлены у 78,8 % моллюсков. Известно, что этот вид трематод является паразитом преимущественно воробьиных птиц. Второе место в прудах по степени распространения занимала инвазия Diplostomum chromatophorum – 8,2 %. Трематоды рода Diplostomum являются паразитами рыбоядных птиц, преимущественно чайковых. Значительно реже у моллюсков исследованной популяции встречались представители сем. Echinostomatidae (3,0 %), являющиеся в основном паразитами утиных и чайковых птиц. Очевидно, что в этих водоемах между гемипопуляциями церкариев и партенит T. ocellata и другими трематодами неминуемо имеются тесные биотические взаимоотношения. На этот факт может указывать наблюдаемое отсутствие случаев сопаразитирования в моллюсках двух видов трематод, тогда как теоретически ожидаемые варианты сопаразитирования достигают 6,5%, а в комбинацииях с представителями T. ocellata – 1%. Не исключено, что между указанными видами существует антагонизм. Причин отсутствия массового заражения личинками T. ocellata популяций моллюсков L. stagnalis может быть несколько: малая плотность популяций моллюсков, их агрегированный характер распространения, а также межпопуляционные различия в резистентности к инвазии. При этом в ряде случаев основной пул зрелых моллюсков инвазирован другими видами трематод, имеющими более совершенные стратегии реализации жизненного цикла [6-9]. Заключение. Полученные результаты свидетельствуют о сложной и устойчивой реализации жизненного цикла T. ocellata, для которого являются достаточными условия микроочаговости инвазии при относительно малой численности инвазированных особей моллюсков, в том числе в условиях доминирующей паразитарной экспрессии трематод других видов. Поэтому на территории Ульяновской области существует необходимость регионального мониторинга биологических факторов циркуляции возбудителей церкариального дерматита. 71 Библиографический список: 1. Беэр, С. А. Экологические предпосылки обострения ситуации по церкариозам в городах России (на примере Московского региона). / С. А. Беэр, С. М. Герман // Паразитология. – №6. – 1993. – С. 441-449. 2. Романова, Е. М. Распространение пресноводных моллюсков класса Gastropoda на территории Ульяновской области / Е.М. Романова, Д.С. Игнаткин, М.А. Видеркер // Материалы Международной научно-практической конференции, посвященной 65-летию Ульяновской ГСХА «Актуальные вопросы аграрной науки и образования». – Ульяновск: УГСХА, 2008. - С. 171-174. 3. Игнаткин, Д.С. Зараженность моллюсков личинками трематод сем. Schistosomatidae в водоемах Ульяновской области / Д.С. Игнаткин, Т.А. Индирякова // Материалы Всероссийской научно-практической конференции «Аграрная наука и образование в реализации национального проекта «Развитие АПК»». – Ульяновск: УГСХА, 2006. - С. 292-295. 4. Романова, Е.М. Оценка реализации экологической ниши шистосоматид в водоемах Ульяновской области / Е.М. Романова, Д.С. Игнаткин, Т.А. Индирякова, М.А. Видеркер // В сборнике: Аграрная наука в XXI веке: проблемы и перспективы. Материалы VIII Всероссийской научно-практической конференции. - Саратов: ООО «Буква», 2014. - С. 265-268. 5. Игнаткин, Д. С. Роль моллюсков рода LYMNAEA в формировании очагов трематодозной инвазии в Ульяновской области / Д. С. Игнаткин, Е. М. Романова, Т. А. Индирякова, М. А. Видеркер // Вестник Российского университета дружбы народов. Серия: Экология и безопасность жизнедеятельности.–2007.–№ 2.–С. 60–65. 6. Игнаткин, Д. С. Эпизоотологические и экологические аспекты трематодозов в Ульяновской области / Д. С. Игнаткин, Е. М. Романова, Т. А. Индирякова, М. А. Видеркер // Ветеринарный врач.–2008.– № 4.–С. 53–55. 7. Романова, Е. М. Инвазированность моллюсков рода Lymnaea личинками трематод на территории Ульяновской области / Е.М. Романова, Д.С. Игнаткин, Т.А. Индирякова, М.А. Видеркер // Материалы V Международной научно-практической конференции «Аграрная наука и образование на современном этапе развития: опыт, проблемы и пути их решения». – Ульяновск: УГСХА, 2013. - С. 64-68. 8. Игнаткин, Д.С. Сезонная динамика инвазированности моллюсков реки Свияга личинками трематод/ Д.С. Игнаткин, Т.А. Индирякова, М.А. Видеркер//Проблемы экологии и охраны природы. Пути их решения: Мат. III Всеросс. научно-практ. конф. - Ульяновск, 2006. -С. 67-69. 9. Игнаткин, Д.С. Экологическая роль гидро - и амфибионтов в циркуляции трематодозов домашних птиц на территории Ульяновской области / Д.С. Игнаткин, Е.М. Романова, Т.А. Индирякова // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. - 2014. - № 2. - С. 50-55. SWIMMER’S ITCH SPREAD OF PATHOGENS IN LIMPET POPULATION LYMNAEA STAGNALIS ULIYANOVSK REGION Ignatkin D.S. Keywords: Swimmer’s itch, larval trematodes, Trichobilharzia ocellata, molluscs Lymnaea stagnalis. Investigated spontaneous contaminated shellfish Lymnaea stagnalis trematode larvae. Identified cases of infestation cercariae T. ocellata (0,16%). Assess the environmental prerequisites of human infection Swimmer’s itch in the waters of the Ulyanovsk region. 72 УДК 579.62:579.67 АМЕРИКАНСКИЙ ГНИЛЕЦ ПЧЕЛ КАК УГРОЗА УРОЖАЙНОСТИ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ КУЛЬТУР Ю.А. Райчинец, аспирант, М.А. Лыдина, к.б.н., Н.А. Феоктистова, к.б.н., С.Н. Золотухин, д.б.н., профессор, Д.А. Васильев, д.б.н., профессор, ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина», г. Ульяновск 8(8244) 55-95-47, rajchinec@gmail.com Ключевые слова: урожайность, бактерии, возбудитель, пчелы, гибель, американский гнилец, штаммы, методика, тест. В целях повышения эффективности российского растениеводства, необходимо разрабатывать мероприятия по профилактике и ликвидации американского гнильца пчел, которые относятся к особо опасным инфекционным заболеваниям в пчеловодстве многих стран мира. Проблема охраны жизнеспособности пчелосемей обусловлена не только получением конечного продукта (меда и продуктов пчеловодства), но, в первую очередь, агрономическими требованиями к производству растениеводческой продукции. 7 августа 2014 года президент России Владимир Путин выступил с заявлением о введении запрета в течение года ввозить в Россию отдельные виды сельскохозяйственной продукции, сырья и продовольствия из стран, которые ввели санкции в отношении России: США, стран Европейского союза, Норвегии, Австралии, Канады [15]. По данным «Fruit broker» приблизительно две трети всех фруктов, треть овощей, реализуемых на российском рынке, являются импортными. Рынок свежих овощей и фруктов в России неуклонно растет и останавливаться не собирается. Плодовые и ягодные, бахчевые и овощные культуры являются типичными энтомофильными растениями, которым необходимо опыление пчелами. В целях повышения эффективности российского растениеводства, необходимо вести мониторинг и разрабатывать мероприятия по профилактике и ликвидации американского гнильца пчел, которые относятся к особо опасным инфекционным заболеваниям в пчеловодстве многих стран мира [12]. Глобальный вклад насекомых-опылителей в производство продовольственных культур в середине 90-х годов прошлого века оценивался в 117 млрд. долл., а сегодня - в 380 млрд. долл. Пчелы опыляют 87,5 % видов цветковых растений на Земле и 75 % видов главных продовольственных культур. По данным Продовольственной и сельскохозяйственной организации ООН (ФАО), из 100 сельскохозяйственных культур, обеспечивающих 90 % потребностей человечества в продовольствии, 71 культура нуждается в опылении насекомыми. Площади, занятые в мире под этими культурами, за последние 40 лет увеличились в развитых странах на 16,7 %, а в развивающихся странах - на 9,4 % [13]. Проблема охраны жизнеспособности пчелосемей обусловлена не только получением конечного продукта (меда и продуктов пчеловодства), но, в первую очередь, агрономическими требованиями к производству растениеводческой продукции. По данным специалистов британского Университета Ридинга, в настоящее время странам Европы не хватает 13 млн. пчелиных семей для полноценного опыления рапса, подсолнечника, яблонь, клубники и других важнейших сельскохозяйственных культур. За период с 2005 по 2010 годы ситуация в этой области в большинстве европейских стран заметно ухудшилась. Дефицит опылителей оценивается в 33%. Наиболее остро он ощущается в Великобритании, Финляндии и странах Балтии. Положение с опылением сельскохозяйственных культур в США ведущий специалист Лаборатории пчелы при Минсельхозе в Белтсвиле Д. Петтис охарактеризовал как «приближение к краю пропасти». Зависимость следующих овощей, фруктов, орехов и технических культур от опылителей в США составляет (%): миндаль - 100; ябло- 73 ни, аспарагус, авокадо, брокколи, черника, лук, вишня - 90; огурец, сельдерей - 80; слива, арбуз - 65; танджерин - 45; лимон, хлопок - 0; арахис - 2; виноград - 1%. Вклад пчел и других опылителей в экономику США превышает 15 млрд. долл. [14]. Однако пчеловодство ряда европейских и американских стран, в том числе и России, может быть уничтожено особо опасным инфекционным заболеванием пчел – американским и европейским гнильцом. В России американский гнилец встречается повсеместно, за исключением Хабаровского и Приморского краев. На крупных пасеках, если не проводить оздоровительных мероприятий, американский гнилец быстро распространяется и наносит большие потери. Так, экономический ущерб, наносимый американским гнильцом, значительно выше, чем от всех остальных болезней расплода. Больная американским гнильцом семья недобирает в год от 5 до 40 кг меда и 0,5 кг воска, опылительная деятельность снижается на 30 %, а в некоторых случаях до 80 %. Но самое главное то, что американский гнилец нередко приводит к гибели семей вместе с ульями и сотами [13]. В политических кругах многих развитых и развивающихся стран зреет понимание необходимости срочных мер по спасению пчел и пчеловодства как отрасли сельского хозяйства, а решение этих проблем все чаще увязывается с продовольственной безопасностью. В этой связи закономерным выглядит интерес ООН к «здравоохранению» пчел и проблемам опыления. Фундаментальный доклад на эту тему был подготовлен в 2010 году специалистами Программы ООН по окружающей среде (ЮНЕП). Очередной доклад в 2014 - 2015 годах будет готовить Межправительственная платформа по биоразнообразию и экосистемным услугам (IPBES, МПБЭУ). Ассигнования на научные исследования в области «здравоохранения» пчел во многих странах увеличиваются. В США на указанные исследования ежегодно расходуется 20 - 25 млн. долл. Судя по косвенным данным, аналогичные суммы отпускаются на эти цели и в Европейском Союзе. В частности, в 2008 - 2013 годах из бюджета ЕС финансировалась деятельность международного проекта «Предотвращение гибели медоносных пчел – COLOSS», объединившего более 300 ученых, специалистов и исследователей из 60 стран мира [12]. 74 Инфекции американского и европейского гнильцов пчел внесены в список международного эпизоотического бюро (список МЭБ) как наиболее распространенные, высоко контагиозные, карантинные заболевания пчел с большим процентом летального исхода. Наибольшую опасность среди инфекций пчел несут возбудители американского гнильца (Paenibacillus larvae) и европейского гнильца (Strept. рluton, Paenibacillus alvei, Bacillus оrpheus, Strept. apis, Enterococcus faecalis) [9]. Эти бактериальные болезни пчелиных семей, сопровождающиеся гибелью взрослых личинок и предкуколок (печатного расплода), проявляются летом, реже весной. Оптимальный для развития болезни температурный режим колеблется в пределах 2045°С, оптимум 34-37 °С. Споры (Paenibacillus larvae, Paenibacillus alvei, Bacillus оrpheus) очень устойчивы к внешней среде, к различным физико-химическим факторам, что обуславливает высокую сохранность очагов заболевания. Так, они способны выживать многие годы в корме пчел, почве, сухих остатках погибших личинок. Американскими учеными был проведен опыт, характеризующий выживаемость возбудителей американского гнильца. Ученые смогли выделить возбудитель из корочек личинок, которые хранились в лабораториях в запаянных ампулах от 75 до 89 лет [8]. Споры (Paenibacillus larvae, Paenibacillus alvei, Bacillus оrpheus) могут сохраняться в меде более года. При хранении меда на солнечном свету - до 6 недель, а в высохших трупах личинок - несколько лет. Живучесть спор характеризует и следующий факт: при температуре воды 90 °С споры погибают в течение 3 ч, при 95 °С - через 1 ч, при 100 °С - через 13 мин, а в кипящем меде - через 40 мин. При кипячении воска в открытой посуде споры погибают лишь на 5-й день, а в автоклаве при 1,5 МПа - за 2 ч. На зараженных сотах споры можно выделить в течение 35 лет, а на ульях и в вощине через 20 лет. В почве споры возбудителей инфекции могут сохраняться годами, а на растениях в течение всего сезона. Как видно из приведенных данных, опасность уничтожения пчелиных семей американским гнильцом, очень велика [11]. Основной источник инфекции – медоносные растения, почва, содержащая споры инфекционного агента, пыльца растений контаминированная инфекционными агентами, каран- тинные зоны, инфекции трупы личинок, пчел. Инфекционный агент передается через растения из почвы, далее контактным путем через пыльцу и пергу, рамки с расплодом, ульи, соты, вощину, мед, пыльцу и пергу, пчеловодный инвентарь, включая руки самого пчеловода. Обворовывание больных пчелиных семей здоровыми приводит последних к заражению. Возбудитель может распространяться при пересылке пчелиных семей, пакетов и маток с пасек, неблагополучных по гнильцовым заболеваниям, паразитами восковой молью, осами, мухами, муравьями, а также различными клещами, особенно Варроа. На переболевших пасеках, являющихся очагом инфекции, спустя несколько лет может возникнуть вновь заболевание в ослабленных семьях и под воздействием неблагоприятных факторов окружающей среды, нарушениях условий содержания, кормления, влияния ряда других заболеваний (варроатоза, нозематоза, аскосфероза и др.), что указывает на очаговость инфекции характерную для всех бацилл (например, сибирская язва) [10]. К возбудителю американского и европейского гнильцов восприимчивы пчелы практически всех пород одинаково. Внешние признаки болезни не сразу обнаруживаются при осмотре пчелиных семей. Лишь пчелы способны первыми выявить признаки заражения личинок, вытягивать их, пораженных, из ячеек в начале заболевания, а матка, в скорости, на их место вновь закладывает расплод. Возникает типичная для большинства гнильцов картина пестрого расплода, где на участках с преимущественно печатным расплодом обнаруживаются пропуски и пустые ячейки, свежие отложенные яйца, а так же молодой открытый расплод. Пестрый расплод может являться как первым проявлением заболевания, так и несвязанным с заболеванием общим признаком неблагополучия в семье [7]. Видимые клинические признаки пораженного расплода дают основания для постановки предварительного диагноза, который подтверждается бактериологическими исследованиями в лаборатории. Возбудителя американского гнильца необходимо дифференцировать от европейского гнильца, парогнильца, мешотчатого, порошковидного и застуженного расплода. Одной из последних разработок по профилактике инфекции фирмы VITA (Великобритания), предложены серологиче- ские тесты Vita-Test. Они позволяют пчеловоду в течение 20 минут поставить предварительный анализ на вероятность американского и европейского гнильца (в наборе EFA- и AFB-test). Несколько капель суспензии, взятых из исследуемого материала тела погибшей личинки, смешивается с буферным раствором и наносится на стекло камеры, где при наличии возбудителя с ним вступает в реакцию специфические антитела, в результате которых появляется характерно окрашенная полоса [8]. В нашей стране отсутствуют отечественные диагностические тесты на наличие инфекционных агентов данных заболеваний. Пчеловоды занимаются диагностикой и профилактикой инфекций по методикам 50-ти летней давности. Однако, и предлагаемые вышеуказанной фирмой Vita-Test тесты диагностики имеют характерные для всех серологических тестов недостатки - возможные неспецифические реакции на различные присутствующие антигенные детерминанты, что дает ложно положительные реакции. Этим и обусловлена актуальность разработки и внедрения предлагаемых систем тестов по индикации, идентификации возбудителей данных карантинных инфекций с последующей схемой профилактики и лечения. На наш взгляд, целях профилактики и для предупреждения возникновения американского и европейского гнильца на пасеках необходимо строго выполнять санитарные правила. В связи с тем, что основную роль в распространении возбудителя болезни играют больные пчелиные семьи и получаемые от них продукты пчеловодства, особое внимание уделяют профилактической диагностике, мониторингу инфекции, изучению микрофлоры в очагах инфекции, санации очагов, охране пасек от заноса возбудителей извне, также необходимо быть внимательным к первым признакам неблагополучия на пасеке [6]. Кафедра микробиологии, вирусологии, эпизоотологии и ВСЭ ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина» начала активную работу по разработке биопрепаратов на основе фагов бактерий, возбудителей американского гнильца пчел, над созданием бактериологической и молекулярно-генетической схем, которые будут а дальнейшем применяться для мониторинга, профилактики и ликвидации возбудителей гнильцовых карантинных инфекций при возделывании энтомофильных сельскохозяйственных культур [1-5]. 75 Библиографический список: 1. Райчинец, Ю.А. Перспективы применения бактериофагов для биоиндикации возбудителя американского гнильца пчел / Ю.А. Райчинец, Е.И. Климушкин, Н.А. Феоктистова, М.А. Лыдина [и др.] // В сботнике: Материалы Всероссийской научно-практической конференции с международным участием «Экология родного края: проблемы и пути их решения». - Киров, 2014. - С. 344-346. 2. Райчинец, Ю.А. Методика выделения Paenibacillus larvae /.Ю.А. Райчинец, Н.А. Феоктистова,М.А. Лыдина [и др.] // Современные проблемы науки и образования. – 2014. – № 5. – С. 599. 3. Райчинец, Ю.А Разработка антимикробных биопрепаратов на основе специфических бактериофагов/ Ю.А Райчинец, Феоктистова Н.А., Климушкин, Е.И., [и др.] // Проблемы медицинской микологии. - 2014. – Т. 16. № 2 – С. 139-140. 4. Райчинец, Ю.А Методика изучения ареала распространения бактерий Paenibacillus larvae /. Ю.А. Райчинец, Е.И. Климушкин, Н.А. Феоктистова [и др.] //В сборнике: Материалы Международной научно-практической конференции, посвященной 55-летию ВНИИВВиМ «Актуальные вопросы контроля инфекционных болезней животных». – Покров, 2014. - С. 53-58 5. Райчинец, Ю.А Апробация схемы выделения возбудителя американского гнильца пчел / Ю.А. Райчинец, Е.И. Климушкин, М.А. Лыдина [и др.] // В сборнике: VI Международная научно-практическая конференция «Аграрная наука и образование на современном этапе развития: опыт, проблемы и пути их решения». - Ульяновск, 2015. - С.102-106. 6. Саттаров, В.Н. Морфология медоносных пчел APIS MELLIFERA L. и стратегия сохранения их в Республике Башкортостан / автореферат диссертации на соискание ученой степени доктора биологических наук / Башкирский государственный аграрный университет – 2011. – С. 5. 7. Феоктистов, А.А., Бактерии вида Bacillus larvae – возбудители болезни пчел / А.А. Феоктистов, Д.А. Васильев Д.А., Н.А. Феоктистова [и др.]. / В сборнике: Материалы Международной научно-практической конференции «Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения», посвящённой Всемирному году ветеринарии в ознаменование 250-летия профессии ветеринарного врача. - Ульяновск, ГСХА, 2011. – Т. 1. - С. 35-38. 8. Article, Research. Genetic and Biochemical Diversity of Paenibacillus larvae Isolated from Tunisian Infected Honey Bee Broods / Research Article Chadlia Hamdi, Jihиne Essanaa, Luigi Sansonno // BioMed Research International Volume 2013 (2013), Article ID 479893, 9 pages – URL: http://dx.doi. org/10.1155/2013/479893 - дата обращения 13.12.2014. 9. Chagas, Sergio Salla. Characterization of Paenibacillus larvae isolates from Brazil / Sergio Salla Chagas, Rodrigo Almeida Vaucher, Adriano Brandelli // Journal of Cell and Molecular Biology 10(2):79-83, 2012 URL: jcmb.halic.edu.tr - дата обращения 13.12.2014. 10. Forsgren, E. Novel lactic acid bacteria inhibiting Paenibacillus larvae in honey bee larvae / E. Forsgren, T. C. Olofsson, A. Vбsquez, and I. Fries // Sergio Salla Apidologie, vol. 41, no. 1, pp. 99–108, 2010 - URL: apidologie.org›articles/apido/pdf - дата обращения 13.12.2014. 11. Russenova, N. European foulbrood disease-aetiology, diagnostics and control // N. Russenova, Р. Parvanov // Trakia Journal of Sciences, Vol. 3, No. 2, 2005. – Р.10-16. 12. Интернет-ресурс «Мировое пчеловодство» - URL: http://www.apiworld.ru/apimondiya/ - дата обращения 13.12.2014. 13. Интернет-ресурс «Агропрофессионал» - URL: http://www. agprofessional.com - дата обращения 13.12.2014. 14. Интернет-ресурс «Защита растений» - URL: http://www. fsvps.ru- дата обращения 13.12.2014. 15. Интернет-ресурс «Интерфакс» - URL: http:// http://www.interfax.ru/business/390414 - дата обращения 13.12.2014. AMERICAN FOULBROOD AS A THREAT CROP YIELDS Yu.A. Raychinets, M.A. Lydina, N.A. Feoktistova, S.N. Zolotukhin, D.A. Vasil’yev Keywords: productivity , bacteria, pathogen , bees, death , American foulbrood , strains, methods , test. In order to improve the efficiency of the Russian crop , it is necessary to develop measures for the prevention and elimination of American foulbrood , which are especially dangerous infectious diseases in beekeeping in many countries. 76 УДК 579.62:579.67 МЕТОДЫ ЛЕЧЕНИЯ И ПРОФИЛАКТИКИ АМЕРИКАНСКОГО ГНИЛЬЦА ПЧЕЛ Ю.А. Райчинец, аспирант, М.А. Лыдина, к.б.н., С.Н. Золотухин, д.б.н., профессор, Д.А. Васильев, д.б.н., профессор, Н.Г. Барт, к.б.н. ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина», г. Ульяновск 8(8244) 55-95-47, rajchinec@gmail.com Ключевые слова: бактерии, возбудитель, пчелы, гибель, американский гнилец, антибиотики, бактериофаг, штаммы, методика. Ухудшающаяся экологическая обстановка, изменение климатических условий и как следствие, распространение болезнетворных микроорганизмов и паразитов, поставили пчеловодство на грань выживания. Поэтому без помощи человека выжить пчелам в этой борьбе очень сложно, особенно если речь идет о бактериологических заболеваниях пчел. Введение. О том, что пчеловодство во всем мире находится сегодня под угрозой, известно каждому, кто как – то связан с этой отраслью. Пчеловодства страдает от паразитов и хищников пчел: восковой моли, ветчинного кожееда, уховертки. Одним из наиболее опасных паразитов на сегодняшний день является клещ варроа (Vatroa jacobsoni) и другие паразиты. Над пчелиной семьей постоянно нависает угроза со стороны вирусов, риккетсии (мешотчатый расплод, паралич), одноклеточных микробов (нозема, амебы), грибов (известковый расплод, перговая плесень и др.). Страдает пчеловодство от экологических и погодных условий. Однако, в последнее время широкое распространение получили бактериологические заболевания пчел, среди которых на первом месте находятся американский и европейский гнилец. Борьба за выживание, «the struggle for life», как ее называл Чарльз Дарвин, это удел почти всех живых земных организмов. Пчелиная семья – не является исключение. Почти 25 млн. лет пчелы ведут борьбу за выживание. Это выживание стало возможным благодаря безграничной способности адаптироваться к любому жизненному пространству и выработке важных защитных механизмов против любых болезней [1,2]. Тем не менее, ухудшающаяся экологическая обстановка, изменение климатических условий и как следствие, распространение болезнетворных микроорганизмов и паразитов, поставили пчеловодство на грань выживания. Поэтому без помощи человека выжить пчелам в этой борьбе очень сложно, особенно если речь идет о бактериологических заболеваниях пчел. Американский гнилец - инфекционная болезнь пчелиных семей, сопровождающаяся гибелью взрослых личинок и предкуколок, в 8−9-дневном возрасте, ослаблением и нередко полной гибелью пчелиных семей, в печатном пчелином расплоде. Вызывается заболевание бациллой ларве (Paenibacillus larvae), этот микроб образует очень устойчивые споры, которые сохраняются в меду (даже при действии солнечных лучей) в течение 4-6 недель, в кипящей воде 13 минут, в воске, нагретом до 100°, до 5 суток [6]. Существует достаточно много различных методов и методик борьбы с ним. Если болезнь находит свое подтверждение, то на пасеке вводится карантин. Если больны несколько семей, то во избежание распространения инфекции целесообразнее их уничтожить. Пчел закуривают сернистым газом, образуемым при сжигании в дымаре серы. После этого осыпавшихся пчел собирают и вместе с сотами сжигают. Также необходимо весь пчеловодный инвентарь и ульи подвергнуть тщательной дезинфекции [7]. Одним из самых эффективных способов борьбы с американским гнильцом является пересадка больных семей в чистые продезинфицированные ульи на новые рамки сотов и вощину. Его проводят, если зараженных семей много. Если болезнь поразила семьи в период взятка, этот способ очень эффективен, так как пчелам необходимо будет отстроить рамки с во- 77 щиной. Работу по пересадке пчел в чистый улей проводят вечером чтобы предотвратить блуждания пчел. Зараженный улей убирают в сторону, а на его место ставят чистый продезинфицированный улей. Матку из старого улья помещают в клеточку, которую устанавливают между рамками нового улья. Перед входом в чистый улей кладут бумагу и стряхивают на нее всех больных пчел. Пчелы сами заползают в новый улей. Когда семьи перейдут в новый улей матку можно будет выпустить из клеточки. Бумагу, на которую стряхивали больных пчел и зараженные соты при этом уничтожают [8,9]. Оставшиеся в старых ульях рамки с непораженным расплодом, переносят для доращивания в созданные специально для этого семьи инкубаторы из которых предварительно убираются (уничтожаются) матки. После выхода расплода пчел из семей инкубаторов объединяют с семьей, пересаженной в новый улей. После пересадки пчел в новый улей необходимо их подкармливать лечебным сиропом в расчете по 100 - 150 грамм на одну улочку. Можно заливать таким сиропом соты. Если во время взятка пчелы не хотят принимать лечебный сироп, тогда им опрыскивают соты и сидящих на них пчел из пульверизатора или гидропульта до полного их увлажнения в расчете около 100-150 грамм сиропа на одну рамку. Также для профилактики необходимо давать лечебный сироп и оставшимся на пасеке здоровым семьям. Каждые 5-7 дней проводят повторный курс лечения и так до полного излечения пчел [1,10]. Для приготовления лечебного сиропа нужны лекарственные препараты, такие как неомицин, эритромицин, тетрациклин, окситетрациклин в дозах по 400 тыс. ЕД. и биомицин по 500 тыс. ЕД., а также 1 грамм норсульфазолнатрия или 2 грамма сульфантрола [6,12]. Затем любой из перечисленных препаратов смешивают с сахарным сиропом (в пропорции 1 часть сахара на 1 часть воды). Для того, чтобы рассчитать правильную дозировку лекарства необходимо вначале подсчитать сколько сахарного сиропа необходимо для проведения лечебного кормления исходя из количества семей нуждающихся в лечении (примерно по 100150 грамм на одну улочку или при распылении сиропа из пульверизатора по 100-150 грамм на рамку). После определения необходимого объема сиропа на каждый 1 литр добавляется один из указанных препаратов, придерживаясь строго указанной дозировки [3,11]. Если в лечебных целях использовались 78 антибиотики, то лекарственные формы следует чередовать. Чтобы предотвратить дальнейшее распространение болезни, необходимо проводить дезинфекцию ульев и инвентаря. Для дезинфекции употребляют растворы обеззараживающих химических препаратов в жидком виде, в виде аэрозолей, которые готовят в соответствии с действующими инструкциями по дезинфекции объектов пчеловодства. В отдельных случаях для дезинфекции используют газообразные средства [5,12]. Старые ульи и пчеловодный инвентарь сразу относят в камеру для дезинфекции. Халаты, подушки и холстики следует прокипятить не менее 30 минут в 2 % растворе углекислой соды, а мелкий инвентарь (щетки, стамески) промывают 2-3 % раствором зольного щелока. Соты перетапливают, а мерву и ульевой сор сжигают. Ульи и рамки продезинфицируют огнем до равномерного побурения. Стоянки ульев обрабатывают хлорной известью, а землю возле них перекапывают. Для того, чтобы не допустить возникновение болезни необходимо проводить профилактическую дезинфекцию один раз весной после окончания зимовки. Летом ульи, соты, инвентарь дезинфицируют перед их использованием, а спецодежду пчеловодов – по мере ее загрязнения. Для лечения пчелиных семей, больных американским гнильцом, можно также применять ларвейный бактериофаг. Он был разработан еще в советские времена доктором ветеринарных наук Смирновой Н.И. [2,9]. Ларвейный бактериофаг был выделен из погибших и разлагающихся личинок без подсева культуры Paenibacillus larvae. К трупам личинок добав­ляли небольшое количество мясо-пептонного бульона и размельчали до образования кашицы. Кашицу помещенную в колбочки с 50 мл сывороточного мясо-пептонного бульона, приготовленного из конского мяса, pH=7,2 ставили в термостат при температуре 37° на трое суток. После этого содержимое колб фильтровали через асбестовый фильтр и проверяли на присутствие в нем бактериофага методом «дорожки». Если выделенный бактериофаг оказывался слабоактивным, то делают пассажи с лизосенсибильным штаммом Paenibacillus larvae [4,8]. Полученный бактериофаг после смешивания с сахарным сиропом и скармливать пчелам. Как показали практические опыты - это одно из эффективных средств борьбы с американским гнильцом. Библиографический список: 1. Гробов, О.Ф. Болезни и вредители медоносных пчел / О.Ф. Гробов, А.М. Смирнов, Е.Т. Попов. – М.: АГРОПРОМИЗДАТ, 1987. – 333 с. 2. Райчинец, Ю.А. Перспективы применения бактериофагов для биоиндикации возбудителя американского гнильца пчел / Ю.А. Райчинец, Е.И. Климушкин, Н.А. Феоктистова [и др.] // В сборнике: Материалы Всероссийской научно-практической конференции с международным участием «Экология родного края: проблемы и пути их решения». - Киров, 2014. - С. 344-346. 3. Райчинец, Ю.А. Методика выделения Paenibacillus larvae /.Ю.А. Райчинец, Н.А. Феоктистова, М.А. Лыдина [и др.] // Современные проблемы науки и образования. – 2014. – № 5. – С. 599. 4. Райчинец, Ю.А Разработка антимикробных биопрепаратов на основе специфических бактериофагов/ Ю.А Райчинец, Н.А. Феоктистова, Е.И. Климушкин [и др.] // Проблемы медицинской микологии. - 2014. – Т. 16. № 2 – С. 139-140. 5. Райчинец, Ю.А Методика изучения ареала распространения бактерий Paenibacillus larvae / Ю.А. Райчинец, Е.И. Климушкин, Н.А. Феоктистова [и др.] //В сборнике: Материалы Международной научно-практической конференции, посвященной 55-летию ВНИИВВиМ «Актуальные вопросы контроля инфекционных болезней животных». – Покров, 2014. - С. 53-58 6. Райчинец, Ю.А Апробация схемы выделения возбудителя американского гнильца пчел / Ю.А. Райчинец, Е.И. Климушкин, М.А. Лыдина [и др.] // В сборнике: VI Международная научно-практическая конференция «Аграрная наука и образование на современном этапе развития: опыт, проблемы и пути их решения». - Ульяновск, 2015. - С.102-106. 7. Саттаров, В.Н. Морфология медоносных пчел APIS MELLIFERA L. и стратегия сохранения их в Республике Башкортостан / автореферат диссертации на соискание ученой степени доктора биологических наук / Башкирский государственный аграрный университет – 2011. – С. 5. 8. Феоктистов, А.А., Бактерии вида Bacillus larvae – возбудители болезни пчел / А.А. Феоктистов, Д.А. Васильев Д.А., Н.А. Феоктистова [и др.]. / В сборнике: Материалы Международной научно-практической конференции «Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения», посвящённой Всемирному году ветеринарии в ознаменование 250-летия профессии ветеринарного врача. - Ульяновск, ГСХА, 2011. – Т. 1. - С. 35-38. 9. Интернет-ресурс «Мировое пчеловодство» - URL: http://www.apiworld.ru/apimondiya/ - дата обращения 13.12.2014. 10. Интернет-ресурс «Агропрофессионал» - URL: http://www. agprofessional.com - дата обращения 13.12.2014. 11. Интернет-ресурс «Защита растений» - URL: http://www. fsvps.ru- дата обращения 13.12.2014. 12. Интернет-ресурс «Интерфакс» - URL: http:// http://www.interfax.ru/business/390414 - дата обращения 13.12.2014. TREATMENT AND PREVENTION OF AMERICAN FOULBROOD Yu.A. Raychinets, M.A. Lydina, S.N. Zolotukhin, D.A. Vasil’yev, N.G. Bart Keywords : bacteria, pathogen , bees, death , American foulbrood , antibiotics, bacteriophage strains technique . Deteriorating environmental conditions, changing climatic conditions and as a result , the spread of pathogens and parasites , put beekeeping on the brink of survival . Therefore, without the help of human bees survive in this fight is very difficult , especially when it comes to bacterial diseases of bees. 79 УДК 004.78 ГИС - МОНИТОРИНГ НЕМАТОДОЗОВ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА НА ТЕРРИТОРИИ УЛЬЯНОВСКОЙ ОБЛАСТИ Е.М. Романова, доктор биологических наук, профессор Тел. 8 (8422)55-95-38, vvr-emr@yandex.ru Т.Г. Баева, аспирант, Тел. 8 (8422)55-95-38, tgb77@mail.ru В.В.Романов кандидат технических наук, доцент Тел. 8 (8422)55-95-38, vvr-emr@yandex.ru Т.М. Шленкина, кандидат биологических наук, доцент Тел. 8 (8422)55-95-38, t-shlenkina@yandex.ru ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина» Ключевые слова: Экологический мониторинг, Гис-технологии, нематодозы. Разработаны картографические модели зон циркуляции нематодозов, дан текущий и перспективный прогноз развития эпизоотической ситуации в популяциях крупного рогатого скота на территории Ульяновской области. Заболеваемость гельминтозами существенно влияет на качество животноводческой продукции и экономические показатели отрасли. Из года в год популяции сельскохозяйственных животных во всех регионах России, несмотря на плановые профилактические мероприятия, подвержены гельминтоинвазиям. Современные информационные технологии позволяют по новому взглянуть на проблему, визуализировав ее [1, 2, 4,5]. Гельминтоинвазии, как правило, приурочены и взаимоувязаны с конкретными территориями. В большей мере это характерно для геогельминтов, в онтогенезе которых стадии их развития связаны в той или иной степени с почвой. Применение ГИС технологий позволяет создать картографические модели территорий распространения гельминтоинвазий оценить динамику, сформировать прогноз их развития для научно-обоснованного планирования профилактических мероприятий [1-10]. Цель работы. Исследование зон заражения популяций крупного рогатого скота нематодофауной, разработка картографических моделей с ранжированием по уровню заболеваемости. Материалы и методы. Исследования проводились в хозяйствах Ульяновской области, занимающихся разведением крупного рогатого скота в 2012-2015г. При построении картографических моделей были использованы архивные материалы кафедры биологии, вет. генетики, паразитологии и экологии Ульяновской ГСХА. Для постороения картографических моделей использовалась система Мапинфо. 80 Результаты исследований. Многолетний мониторинг, проводимый нашей кафедрой [110], свидетельствует, что нематодозными инвазиями поражена значительная часть популяций крупного рогатого скота в Ульяновской области. Заболеваемость во временном аспекте характеризовалась вспышками и спадами, но всегда имела территориальную приуроченность[1, 3, 5, 6,7]. Результаты исследований были получены с использованием геоинформационных технологий, в частности, системы Мапинфо [8-10]. Было установлено, что на административных территориях Ульяновской области существуют группы районов с высоким, выше среднего, средним и ниже среднего и уровнями заболеваемости крупного рогатого скота гельминтоинвазиями. К районам с высоким уровнем нематодозов, где заболеваемость превышала 43% относятся: Ульяновский (58%), Мелекесский (51%), Чердаклинский (47%) и Сурский (43%) (рис.1). Эти показатели получены в результате анализа среднемноголетней динамики гельминтоинвазий (1999 по 2014 гг.). На территории области не было выявлено районов со среднемноголетней заболеваемостью «выше среднего уровня» - 29-43%. Более 30 % аграрных районов области попали в категорию заболеваемости среднего уровня. К числу таких районов можно отнести: Вешкаймский - 20%, Старо-Кулаткинский - 16,8%, Кузоватовский 12,3%, Цильнинский - 12,1%, Базарно-Сызганский - 11,9%, Майнский - 6,2%, Новомалыклинский 4,3% и Ст. Майнский - 3,9%. 1- г.Ульяновск; 2- г. Димитровград; 3- Базарно-Сызганский; 4- Барышский; 5- Вешкаймский; 6- Инзенский; 7- Карсунский; 8- Кузоватовский; 9- Майнский; 10- Мелекесский; 11- Николаевский; 12- Новомалыклинский; 13- Новоспасский; 14- Павловский; 15- Радищевский; 16- Сенгилеевский; 17- Ст. Кулаткинский; 18- Ст. Майнский; 19- Сурский; 20- Теренгульский; 21- Ульяновский; 22- Цильнинский; 23- Чердаклинский. Рисунок 1 - Усредненные данные заболеваемости крупного рогатого скота нематодозами в Ульяновской области (1999-2014 гг.). Заболеваемость крупного рогатого скота нематодозами «ниже среднего уровня» - >3,8% была выявлена в популяциях крупного рогатого скота большей части аграрных районов области. В эту группу районов попали: Сенгилеевский 3,6%, Новоспасский - 2,9%, Теренгульский - 2,8%, Барышский - 2,6%, Карсунский - 2,5%, Радищевский - 2,0%, Инзенский - 1,9%, Павловский - 1,8%, и Барышский - 1,6%, Николаевский - 1,3%. В городах - Димитровград и г. Ульяновск уровень заболеваемости составил соответственно 2,6 и 2,2%. Полученные результаты свидетельствуют, что нематодозами поражено значительное количество популяций крупного рогатого скота на территориях области. Наибольший вклад в общую заболеваемость нематодозами вносят стронгилоидоз и аскариоз [7, 9-10]. Полученные нами среднемноголетние результаты наблюдений показали, что на территории аграрных районов области сформировались устойчивые очаги нематодозных инвазий, динамика которых варьирует во времени. В ряде районов эпизоотическая ситуация складывается неблагоприятно и требует пристального внимания и корректировки. Поэтому важно было выявить территории с выраженной тенденции роста показателей гельминтоинвазий. Использование ГИС технологий позволило установить, что к числу районов с высоким уровнем заболеваемости можно отнести большую часть районов Заволжской и Центральной агроклиматических зон. Заключение. Согласно полученным результатам, за последние 15 лет большая часть зон разведения крупного рогатого скота в 81 1- г.Ульяновск; 2- г. Димитровград; 3- Базарно-Сызганский; 4- Барышский; 5- Вешкаймский; 6- Инзенский; 7- Карсунский; 8- Кузоватовский; 9- Майнский; 10- Мелекесский; 11- Николаевский; 12- Новомалыклинский; 13- Новоспасский; 14- Павловский; 15- Радищевский; 16- Сенгилеевский; 17- Ст. Кулаткинский; 18- Ст. Майнский; 19- Сурский; 20- Теренгульский; 21- Ульяновский; 22- Цильнинский; 23- Чердаклинский Рисунок 2 - Территории Ульяновской области с тенденцией роста уровня заболеваемости крупного рогатого скота нематодозами. Ульяновской области обнаруживала тенденции роста заболеваемости нематодозами. Это про- исходило на фоне спада в отрасли и снижения общей численности поголовья. Библиографический список: 1. Романов, В.В. Использование Гис-технологий в региональном мониторинге паразитарных инвазий/ В.В. Романов, Т.Г.Баева, А.Н. Мишонкова // Материалы II Всероссийской научно-практической конференции с международным участием «Современные достижения ветеринарной медицины и биологии – в сельскохозяйственное производство», 2014. С. 102-106. 2. Романов, В.В. Нозологическое картографирование основных гельминтоинвазий лошадей в Ульяновской области / В.В. Романов, Т.Г Баева, А.Н. Мишонкова // Материалы VIII Всероссийской научно-практической конференции « Аграрная наука в XXI веке: проблемы и перспективы», 2014. - С. 262-265. 3. Щеголенкова, А.Е. Структура и экстенсивность гельминтоинвазий в популяции бродячих собак на территории Ульяновской области/ А.Е. Щеголенкова , Д.Ю. Акимов Д.Ю., Т.А. Индирякова, Романов В.В.// Материалы VIII Всероссийской научно-практической конференции «Аграрная наука в XXI веке: проблемы и перспективы», 2014.- С. 294-298. 82 4. Романова Е.М. Оценка экологического состояния почв /Е.М. Романова Е.М., В.Н. Любомирова, В.В.Романов, Д.С. Игнаткин // Материалы II Всероссийской научно-практической конференции с международным участием «Современные достижения ветеринарной медицины и биологии – в сельскохозяйственное производство», 2014. - С. 309-312. 5. Романов, В.В. Нозогеографическое картографирование паразитозов с использованием геоинформационной системы map-info /Романов В.В., Мишонкова А.Н.// Известия Самарского научного центра Российской академии наук. 2011. Т. 13. № 1-1. - С. 109-113. 6. Романов, В.В. Исследование региональных эпидемиологических тенденций аскариоза с пользованием геоинформационных систем / В.В.Романов, А.Н. Мишонкова // Материалы II-ой Международной научно-практической конференции «Аграрная наука и образование на современном этапе развития: опыт, проблемы и пути их решения. 2010. - С. 130-134. 7. Романов, В.В. Компьютерное моделирование зон распространения атропозоонозов с участием сельскохозяйственных животных на территориях Ульяновской области/ Романов, В.В., Мишонкова А.Н.// Материалы III-й Международной научно-практической конференции молодых ученых «Молодежь и наука XXI века». 2010. - С. 234-236. 8. Романов, В.В. Система mapinfo в геоинформационном прогнозировании и картографировании зон распространения стронгилоидоза в Средневолжском регионе / Романов В.В., Мишонкова А.Н.// Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. 2010. № 1. - С. 75-81. 9. Романова, Е.М. Направление развития научных исследований на кафедре биологии, ветеринарной генетики, паразитологии и экологии/ Е.М. Романова// Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. 2008. № 2. - С. 82-86. 10. Романова, Е.М. Паразитарные системы как индикатор состояния биоценоза / Романова Е.М., Индирякова Т.А., Матвеева Е.А.// Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. 2009. № 2. С. 79-81. GIS MONITORING OF NEMATODES OF CATTLE IN THE TERRITORY OF THE ULYANOVSK REGION E.M. Romanovа, T.G. Baeva, B.B. Romanov, T.M. Shlenkinа Keywords: Environmental monitoring, GIS technology, nematodosis. Developed a mapping model zones of nematodes, given the current and future forecast of development of the epizootic situation in the cattle populations in the territory of the Ulyanovsk region. 83 УДК 619:616.993+636.7 ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ И ЭКОЛОГИЯ БАБЕЗИОЗА СОБАК В УЛЬЯНОВСКОЙ ОБЛАСТИ Е.М. Романова, доктор биологических наук, профессор Тел. 8 (8422)55-95-38, vvr-emr@yandex.ru Л.А. Шадыева, кандидат биологических наук, доцент Тел. 8 (8422)55-95-38, ludalkoz@mail.ru Д.Ю. Акимов, аспирант Тел. 8 (8422)55-95-38, akimov.dmitri2014@mail.ru Т.М. Шленкина, кандидат биологических наук, доцент Тел. 8 (8422)55-95-38, t-shlenkina@yandex.ru ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина» Ключевые слова: экология, эпизоотология бабезиоза, иксодовые клещи. В работе рассматриваются вопросы эпизоотологии и экологии бабезиоза собак на территории Ульяновской области. В ходе проведенных исследований установлено, что заболеваемость собак бабезиозом на урбанизированных территориях выше, чем в сельской местности, определены пики инвазированности собак бабезиозом. Бабезиоз собак в настоящее время приобретает все более массовый характер и наносит существенный ущерб, как физический - здоровью животных, так моральный и материальный - их владельцам. Повышение уровня заболеваемости собак бабезиозом связано с недостаточной просвещенностью населения в вопросах профилактики болезни, низким санитарным состоянием территорий выгулов собак, широким распространением переносчиков возбудителей заболевания – иксодовых клещей на территории Ульяновской области. Экологические условия Среднего Поволжья благоприятны для распространения и циркуляции бабезиоза [3, 6]. Целью работы было исследование эпизоотологических особенностей бабезиоза собак, реализующихся в экологических условиях территории Ульяновской области. Исследования проводились с марта 2012 по декабрь 2014. За исследуемый период было Рисунок 1 - Распространение бабезиоза собак в различных агроклиматических зонах и в городах Ульяновск и Димитровград Рисунок 2 - Летальность собак при поражении их бабезиозом в условиях Ульяновской области 84 450 n 408 400 392 350 300 256 250 200 150 100 50 0 0 Зима Весна Лето Осень Рисунок 3 - Сезонная динамика бабезиоза собак в Ульяновской области за 2012 год 700 n 646 601 600 500 380 400 300 200 100 0 0 Зима Весна Лето Осень Рисунок 4 - Сезонная динамика бабезиоза собак в Ульяновской области за 2013 год 1200 n 977 1000 800 680 774 600 400 200 0 0 Зима Весна Лето Осень Рисунок 5 - Сезонная динамика бабезиоза собак в Ульяновской области за 2014 год 85 0% 34% 39% 27% Зима Весна Лето Осень Рисунок 6 - Сезонная динамика бабезиоза собак в Ульяновской области 3000 n 2500 2000 1500 1000 500 0 2012 2013 2014 Рисунок 7 - Динамика заболеваемости собак бабезиозом по годам поставлено 5114 диагнозов «бабезиоз собак». Нами был проведен сравнительный анализ заболеваемости бабезиозом собак урбанизированных территорий и сельской местности. По результатам исследований, заболеваемость собак бабезиозом на урбанизированных территориях выше, чем в сельской местности (рис. 1). Это обусловлено «факелами» тепла, выделяемыми урбанизированными территориями, что расширяет период активности клещей и способствует наращиванию их популяции. Всего за период исследования в различных половозрастных группах от бабезиоза пало 796 особей, что составило около 16% от общего числа пораженных животных (рис. 2). На следующем этапе исследований мы на основе трехлетнего мониторинга проанализировали сезонную динамику бабезиоза собак в весенне-летний и осенний периоды. Было установлено, что количество заболевших зависело 86 не только от сезона, но и от температуры среды в этот период. Результаты изучения сезонной динамики заболеваемости собак бабезиозом в городе Ульяновске и Ульяновской области за период 2012 - 2014г.г. представлены на рисунках 3-5. Первые зараженные бабезиозом собаки поступают в клиники, как правило, в начале второй декады апреля. В единичных случаях бабезиоз регистрировали в последних числах марта. Летом наблюдался спад заболеваемости [3, 6, 7]. К началу третьей декады августа число случаев бабезиоза увеличивалось, и в сентябре мы отмечали второй пик заболеваемости животных. Зимой в связи с нежизнеспособностью клещей-переносчиков бабезиоз регистрируется крайне редко. Активность клещей в этот период наблюдалась только вдоль теплотрасс на прогретых полосах непромерзающей почвы. Таким образом, для Ульяновской области характерно два сезонных пика заболеваемости собак бабезиозом. Максимальный - в весенние и летние месяцы и менее выраженный – в осенний и предзимний период (рис. 6). Мониторинг заболеваемости бабезиозом за последние три года говорит о нарастающей динамике (рис. 7). При анализе половозрастной динамики бабезиоза мы пришли к выводу, что во всех половозрастных группах заболеваемость бабезиозом среди самок превышала соответствующие показатели среди самцов, что, возможно, связано со смещением полового соотношения в сторону самок в популяции бездомных собак на территории населенных пунктов [1, 2, 4, 5]. Самки менее агрессивны, чем самцы, и жители отдают им предпочтение, стараясь накормить и позаботиться. На территории области борьба с клещами не ведется, участились случаи их нападения и на людей, и на животных. Проведенные исследования показали, что территория области – это зона повышенной биологической опасности по бабезиозу. На сегодня ситуация достигла такого развития, когда бабезиоз стал актуальной проблемой региональной ветеринарии с выраженной сезонной динамикой. Библиографический список: 1. Акимов, Д.Ю. Возрастные особенности зараженности безнадзорных собак P. сanis и P. gibsoni в г. Ульяновске / Д.Ю. Акимов, А.Е. Щеголенкова, Л.А. Шадыева // Материалы IV Международной научно-практической конференции «Молодежь и наука», 2014. - С. 3-7. 2. Акимов, Д.Ю. Мониторинг половозрастной структуры летальных исходов при поражении собак Р. canis и Р. gibsoni в г. Ульяновске / Д.Ю. Акимов, Л.А. Шадыева, А.Е. Щеголенкова, Т.А. Индирякова // Материалы IV Международной научно-практической конференции «Молодежь и наука», 2014. - С. 8-12. 3. Акимов, Д.Ю. Экологическая обусловленность сезонной динамики пироплазмоза собак на урбанизированных территориях / Д.Ю. Акимов, Л.А. Шадыева, Т.А. Индирякова, А.Е. Щеголенкова // Материалы Всероссийской научно-практической конференции «Аграрная наука в XXI веке: проблемы, перспективы». Саратов: Саратовский ГАУ им. Н.И. Вавилова, 2014, С. 145-148. 4. Акимов, Д.Ю. Формы проявления пироплазмоза у домашних собак на разных этапах онтогенеза / Д.Ю. Акимов, Л.А. Шадыева, А.Е. Щеголенкова, Т.А. Индирякова // Международный научно-исследовательский журнал, 2014. - № 2-3 (21). - С. 101-102. 5. Романова, Е.М. Половозрастная динамика пироплазмоза собак в г. Ульяновске / Е.М. Романова, Д.Ю. Акимов, Л.А. Шадыева // Материалы II Всероссийской научно-практической конференции «Современные достижения ветеринарной медицины и биологии», 2014. - С. 106-109. 6. Акимов, Д.Ю. Некоторые аспекты эпизоотологии пироплазмоза собак в городе Ульяновске / Д.Ю. Акимов, Е.М. Романова, Л.А. Шадыева, С.Г. Кармаева // Материалы VI Международной научно-практической конференции «Аграрная наука и образование на современном этапе развития: опыт, проблемы и пути их решения», 3-5 февраля 2015 года: сборник научных трудов. Том III. – Ульяновск: УГСХА им. П.А. Столыпина, 2015, С. 3-5. 7. Романова, Е.М. Биохимическое исследование крови как один из дополнительных методов диагностики бабезиоза собак / Е.М. Романова, Л.А. Шадыева, Д.Ю. Акимов // Национальная ассоциация ученых (НАУ) Ежемесячный научный журнал № 2 (7) / 2015. Часть 8. С. 166-167. EHPIZOOTOLOGICHESKAJA FEATURES AND ECOLOGY BABESIOSIS DOG IN THE ULYANOVSK REGION E.M. Romanovа, L.A. Shadyeva, D.Y. Akimov, TM Shlenkinа Keywords: ecology, еpizootology babesiosis, ticks. The problems of ecology and epizootiology of babesiosis of dogs in the Ulyanovsk region. In the course of the research found that the incidence of babesiosis of dogs in urban areas than in rural areas, defined peaks invazirovannosti dogs babesiosis. 87 УДК 619 ЭФФЕКТИВНОСТЬ КОМПЛЕКСНОЙ ИНСЕКТИЦИДНОЙ ПРОГРАММЫ ПРОТИВ ИМАГО ЖУКА-ХРУЩАКА И ЕГО ЛИЧИНОК В УСЛОВИЯХ ПТИЦЕФАБРИКИ ПРИ НАПОЛЬНОМ СОДЕРЖАНИИ ЦЫПЛЯТ – БРОЙЛЕРОВ Р.Т. Сафиуллин, д.в.н., профессор, заведующий лабораторией П.В. Новиков, к.в.н. научный сотрудник ФГБНУ Всероссийский научно-исследовательский институт фундаментальной и прикладной паразитологии животных и растений им. К.И. Скрябина, тел. (499) 124-86-66 Т.А. Нуртдинова, менеджер по ключевым клиентам птицеводства, ветеринарный врач, ЗАО «Байер», тел. (495)134-20-55 (65) О.В. Леонтьева, главный ветеринарный врач, тел. (495) 514-15-60 Е.Е. Кудревич, старший ветеринарный врач В.А. Купырева, ветеринарный врач ЗАО «Петелинская птицефабрика» Ключевые слова: цыплята-бройлеры, птичники, напольное содержание, жук-хрущак, личинки жуков, фоновое количество, инсектицидная программа, инсектицид Сольфак® МЭ 5%, ларвицид Байцидал® ВП 25%, обработка птичников, динамика изменения количества насекомых, интенсэффективность. Результаты, полученные в ходе научно-производственного испытания в условиях птицеводческого хозяйства Московской области показали, что предлагаемая комплексная инсектицидная программа «Байер» в разные сроки после применения обеспечила высокую интенсэффективность, как против имаго жука-чернотелки (Сольфак®МЭ 5%) ИЭ 94,9-100%, так и его личинок (Байцидал® ВП 25%) ИЭ 97,8-100%. Среди большого количества эктопаразитов, негативно влияющих на продуктивность куриных, особо следует отметить жуков-чернотелок, которыешироко распространены во многих птицеводческих предприятиях. Они практически всеядны,являются серьезными вредителями сельскохозяйственных продуктов, их личинки наиболее приспособлены к питанию в птичнике [1,2,5,10,16,19,24,25]. Жуки-чернотелки и их личинки активно поедают комбикорм на подстилке и в кормушках, конкурируя с птицей, тем самым способствуют повышению кормозатрат. Выращиваемая птица склевывает большое количество хрущака и личинок из подстилки, что снижает питательность рациона и ухудшает показатели откорма. Более чем у 15% поголовья отмечается задержка роста. Весьма часто наблюдают гибель цыплят в результате закупорки зоба и кишечника по причине отсутствия у птицы фермента хитиназы, позволяющего переваривать твердые хитиновые покровы жуков и личинок. 88 Исследованиями установлено, что жук-чернотелка является переносчиком многих патогенных микроорганизмов, возбудителей инфекционных заболеваний, в том числе вирусных (Лейкоз, болезнь Марека, Гамборо, Ньюкаслская болезнь, Грипп птиц, Астро- и Реовирус, Энтеровирус, Оспа птиц, Короновирус индеек), бактериальных(Salmonella spp., E. coli, Aspergillus spp., Staphylococcus spp., Campylobacter spp.), протозойных (Кокцидиоз), является промежуточным хозяином нематод, цистод. Популяция жука может обеспечивать выживание патогенов в период между вспышками заболеваний, являться резервуаром инфекции и способствовать ее передаче от одного стада к другому, что может представлять реальную угрозу и для здоровья человека [3,5,11,12,13,18,22,23]. Наряду с биологической угрозой, хрущак наносит и существенный механический вред помещениям, разрушая сендвич-панели, пенополистирол, пенополиуретан, стекловолокно, деревянные конструкции и даже бетон. В поисках мест для окукливания личинки проедают многокилометровые ходы в изоляционных материалах стен птичников, нарушая теплоизоляцию, что влечет за собой ощутимое повышение затрат на обогрев помещений в зимний период и охлаждение в летний. Исследованиями установлено, что затраты на обогрев помещения, пораженного хрущаком, на 67% выше, чем на обогрев аналогичного, но свободного от этого насекомого птичника. Большинство производителей сталкиваются со сложностью, а иногда – и невозможностью эффективного контроля численности жуков-чернотелок в птицеводческих помещениях. Это связано с тем, что при назначении инсектицидных обработок не учитываются особенности жизненного цикла хрущака. Широко применяются инсектициды - адалтициды, механизм действия которых направлен только против взрослых особей и не работает против яиц и личинок жука. К тому же,жуки-чернотелки приобретают устойчивость к длительно используемым инсектицидам, эффективность которых снижается и не всегда устраивает практиков [4,6-9,14,15,20,21,27]. Для успешного решения проблемы необходимо понимание связи жизненного цикла насекомого с производственным циклом выращивания птицы. Наиболее массовые скопления жука и его личинок обнаруживаются в подстилке под кормушками и поилками через 3 - 4 недели после посадки птицы. Начиная с этого момента и до убоя птицы,хрущак откладывает максимальное количество яиц, которые трансформируются в личинки и благополучно переживают инсектицидные обработки адалтицидами, проводящиеся в периоды санразрывов. Личинки сформировываются во взрослые особи и откладывают еще большее количество яиц в последующих циклах выращивания птицы, таким образом, наращивая популяцию жуков-чернотелок из тура в тур. Исходя из всего отмеченного, мы поставили задачу испытать эффективность комплексной инсектицидной программы «Байер» для системной защиты от жука-чернотелки в условиях птицефабрики при напольном содержании цыплят-бройлеров. Программа основана на сочетании препаратов разного механизма действия - адалтицида Сольфак® МЭ 5% (против взрослых особей) и ларвицида Байцидал® ВП 25% (против яиц и личинок). Материалы и методы. Исследования проведены с июля по сентябрь 2014 года на базе ЗАО «Петелинская птицефабрика» Московской области. Для опыта были взяты 2 стандартных бетонных птичника напольного содержания бройлеров. Оба птичника, задействованные в испытании, имели аналогичные параметры строения, микроклимата, кормления и содержания цыплят-бройлеров. Трещины в бетонных полах обоих корпусов являлись убежищем для жуков-чернотелок, их яиц и личинок. Предварительно было определено фоновое количество жука-хрущака и его личинок в этих птичниках за две недели до завершения предыдущего технологического цикла и начала проведения опыта. Опытный птичник обработали последовательно двумя инсектицидными препаратами адалтицидом Сольфак® МЭ 5% (против взрослых особей) и ларвицидом Байцидал® ВП 25% (против яиц и личинок) в период общей санитарной подготовки птицеводческих помещений. Учитывая высокое фоновое количество жука-чернотелки, обработку опытного птичника препаратом Сольфак® МЭ 5% провели по-грязному и по-чистому. По-грязному применили Сольфак® МЭ 5% снаружи помещения на высоту 2 м для предотвращения наземной и воздушной миграции взрослых особей жуков между птичниками, внутри помещения на высоту 1 м сразу после вывоза птицы, до удаления подстилки, с целью уничтожения потревоженных и разбегающихся по щелям взрослых жуков. По-чистому обработку препаратом ® Сольфак МЭ 5% провели после дезинфекции и побелки, внутри птичника на высоту 2 м, отступая 0,5 м от пола. Рабочий раствор препарата Сольфак® МЭ 5% нанесли с помощью ранцевого опрыскивателя типа Дезвак, используя форсунки с расходом 0,8-1 л в минуту, при давлении 2-3 бар, из расчета 100 мл раствора на 1 м2 площади бетонных стен, при расходе 1 мл препарата на 1 м2. Для уничтожения яиц и личинок хрущака применили Байцидал® ВП 25% по-чистому внутри опытного птичника, в дозировке 2 г препарата на 1 м2поверхности пола, сразу после обработки препаратом Сольфак® МЭ 5%. Рабочий раствор нанесли с помощью установки ДУК. Использовали крупнокапельный спрей из расчета 300 мл/м2бетонного пола. Через 10-20 мин, по высыханию пола,постелили подстилку. Учитывая высокое фоновое количество жука-хрущака и его личинок в предыдущем туре, Байцидал® ВП 25% дополнительно распылили спреером на поверхность подстилки под кор- 89 мушками и поилками, так как эти места наиболее благоприятны для активного развития личинок. Контрольный птичник обработали методом газового обжига пола и нижней части стен, инсектицидные препараты не применяли. Результаты исследования в опытном и контрольном птичниках оценивали по количеству жуков-чернотелок и их личинок. Для этого брали по 10 соскобов, из разных участков пола,размером 10 х 10 см, через каждые 7 дней, в течение всего периода выращивания бройлеров. Отбор соскобов проводили совместно с ветслужбой хозяйства. Подсчет проводили в условиях проблемной лаборатории Всероссийского научно-исследовательского института фундаментальной и прикладной паразитологии животных и растений (ФГБНУ ВНИИП им.К.И.Скрябина). Полученные в ходе испытания экспериментальные данные, как по количеству взрослых жуков, так и по их личинкам были подвергнуты статистическому анализу по методу Н.А.Плохинского (1978) и определена их значимость. Результаты исследований. Результаты исследований показали значительную исходную численность или фоновое количество жуков и их личинок в соскобах, взятых из разных участков пола за две недели до завершения предыдущего технологического цикла и начала опыта.(Таблица 1) Среднее количество взрослых жуков в одной пробе составило в опытном птичнике 70,3 экземпляров, в контрольном - 67;среднее количество личинок, соответственно 65,2 и49,5 экз. С учетом показателей двух обследованных птичников, среднее фоновое количество имаго жуков и личинок в расчете на 1 м2 составило 1260 экз. В литературе показатели численности жука-хрущака в птичниках свыше 1000 экз. на 1 м2 отмечают как высокие [17,26]. Данные исследования в процессе технологического цикла напольного выращивания бройлеров показали высокую численность жуков-чернотелок, несмотря на то, что при подготовке птичников проводились инсектицидные обработки адалтицидными препаратами. Для оценки эффективности испытуемой комплексной инсектицидной программы «Байер» и определения продолжительности действия препаратов Сольфак® МЭ 5% (против имаго жуков) и Байцидал® ВП 25% (против личинок) провели мониторинг популяции жука-чернотелки. Для этого,исследовали динамику количества жука-чернотелки и его личинок в опытном и контрольном птичникена протяжении всего цикла выращивания бройлеров.(Таблицы 2 и 3) 90 При исследовании проб, взятых после обработки опытного корпуса препаратом Сольфак® МЭ 5%, установили существенное снижение численности имаго жуков по сравнению с фоновым значением. Тем не менее, часть жуков выжила, укрывшись в щелях и трещинах пола. Их количество в средней пробе составило 2,8экз, в сравнении с фоновыми –70,3 экз. В контрольном птичнике подсчеты показали высокую численность жуков, количество в средней пробе составило 55,2 экз, что не намного меньше фонового показателя- 67 экз.(Таблица 2) Через две недели после посадки цыплят в опытном птичнике,взрослых жуков находили только в двух пробах из десяти,что в средней пробе составило 0,4экз. В контрольном корпусе - 49 экз. Через три, четыре и пять недель все взятые пробы в опытном птичнике при исследовании были свободны от взрослых жуков. В контрольном корпусе в каждой пробе присутствовали хрущаки,среднее их количество в одной пробе составило 32,5–24 экземпляра. При заключительном осмотре, перед завершением технологического цикла выращивания бройлеров, все взятые в опытном птичнике пробы были свободны от насекомых. Следует отметить, что не значительное количество взрослых жуков было замечено при уборке подстилки из опытного птичника после убоя птицы. Многочисленные убежища в трещинах пола способствовали их сохранению. В контрольном птичнике жуков находили во всех пробах в количестве от 18 до 45 экз, а среднее их количество в одной пробе в конце тура составило 29,1 экз. Количественный анализ данных, полученных в ходе испытания адалтицида Сольфак® МЭ 5%, показал высокую эффективность против имаго жука-хрущака в течение всего периода выращивания бройлеров. Среднее фоновое количество личинок жука-хрущака за две недели до проведения опыта и завершения цикла выращивания бройлеров составило 57,4 экз. (Таблица 1) После обработки всей поверхности пола ларвицидом Байцидал® ВП 25% в опытном птичнике, при исследовании десяти проб, только в трех были обнаружены личинки. Через неделю после заселения птицы, личинок нашли только в двух пробах. В дальнейшем, через 2, 3, 4, 5 недель после посадки бройлеров и в заключительный период перед убоем птицы, личинок жуков не находили. (Таблица 3). Таблица 1 - Фоновое количество жука-хрущака и личинок в птичниках за две недели до завершения предыдущего технологического цикла и до начала опыта Птичник, возраст цыплят Опытный птичник, 22 дня Контрольный птичник, 24 дня Среднее кол-во в 1-й пробе, экз. жуков личинок Среднее фоновое кол-во в птичнике, экз. жуков личинок 70,3 65,2 703 652 67 49,5 670 495 Средний фоновый показатель по 2-м птичникам (численность на 1 м2) жуков Личинок Всего 686 574 1260 Таблица 2 - Количество взрослых жуков в птичниках в период испытании эффективности инсектицидной программы «Байер» при напольном содержании цыплят-бройлеров Птичники Опытный птичник, Сольфак®, Байцидал®, в среднем M±m Контрольный птичник, в среднем M±m Количество имаго жуков в 1-й пробе в разные сроки после обработки и посадки птицы После Через 1 Через 2 Через 3 Через 4 Через 5 Заключиобработок неделю недели недели недели недель тельный 2,8±0,77 0,3±0,21 0,4±0,22 0 0 0 0 55,2±7,14 43,5±11,6 49,0±10,91 32,5±6,27 21,4±3,44 24,0±1,38 29,1±2,81 Таблица 3 - Количество личинок жука-хрущака в птичниках в период испытании эффективности инсектицидной программы «Байер» при напольном содержании цыплятбройлеров Птичники Опытный птичник, Сольфак®, Байцидал®, в среднем M±m Контрольный птичник, в среднем M±m Количество личинок жука в 1-й пробе в разные сроки после обработки и посадки птицы После Через 1 Через 2 Через 3 Через 4 Через 5 Заключиобработок неделю недели недели недели недель тельный 0,41±0,19 0,23±0,12 0 0 0 0 0 18,9±3,77 23,1±2,44 25,3±2,27 72,8±18,75 97,9±16,13 72,5±21,19 49,3±13,88 Совсем другая ситуация была в контрольном птичнике. В те же сроки, во всех 10 пробах находили личинок жуков. Среднее количество личинок в одной пробе еженедельно нарастало. Через четыре недели после посадки бройлеров установлено самое большое среднее количество личинок жуков в одной пробе – 97,9экз, при ко- лебаниях от 39 до 156 экз. При заключительном исследовании количество личинок в пробе было от 12 до 134 экз, при их среднем количестве 49,3 экз. Количественный анализ данных, полученных в ходе испытания ларвицида Байцидал® ВП 25%, показал высокую эффективность против ли- 91 чинок жука в течение всего периода выращивания бройлеров. По результатам исследований рассчитали интенсэффективность (ИЭ) инсектицидной программы– снижение интенсивности инвазии после проведенных мероприятий. ИЭ определяли исходя из процента снижения количества взрослых жуков и их личинок в разные сроки после обработки. ИЭ инсектицидной программы против взрослых жуков составила 94,9% после обработки и 100% в конце цикла выращивания. ИЭ инсектицидной программы против личинок жуков составила 97,8% после обработки и100% в конце цикла выращивания птицы. Выводы. Нами была испытана максимальная комплексная инсектицидная программа «Байер»для системной защиты от жука-чернотелки. Она предусмотрена для использования при высокой численности насекомых (более 1000 экз на 1 м2), в нашем случае средний суммарный показатель взрослых жуков и их личинок составил 1260 экз на 1 м2. Другие программы - оптимальная и минимальная предусмотрены при средней (от 100 до 1000 экз на м²) численности и низкой (до 100 экз на м²) численности жуков чернотелок. Отмеченная высокая интенсэффективность рассматриваемой программы против имаго жуков обеспечена первым ее составляющим – адалтицидом Сольфак® МЭ 5%, поскольку именно этот препарат уничтожил абсолютное большинство взрослых хрущаков в период подготовки и обеспечил дальнейшее их истребление на протяжении всего технологического цикла выращивания бройлеров за счет своего пролонгированного действия. На основании количественного анализа полученных результатов следует отметить, что предлагаемая программа имеет высокую сдерживающую эффективность в отношении взрослых жуков-чернотелок ещё и за счет второго ее составляющего – ларвицида Байцидал® ВП 25%. Этот препарат воздействовал на яйца и личинки жука на протяжении всего технологического цикла, не давая им трансформироваться во взрослые особи, таким образом, не позволял жуку-хрущаку наращивать свою популяцию. Это свидетельствует о том, что сильной стороной данной комплексной инсектицидной программы является ларвицид Байцидал® ВП 25%, который обеспечил высокую стабильную эффективность в течение всего технологического цикла выращивания бройлеров при напольном содержании. Результаты, полученные нами в ходе научно-производственного испытания в условиях ЗАО «Петелинская птицефабрика» Московской области показали, что предлагаемая комплексная инсектицидная программа «Байер», в разные сроки после применения,показала высокую интенсэффективность и обеспечила надежную системную защиту, как от имаго жука-хрущака ИЭ 94,9 -100%, так и его личинок ИЭ 97,8 - 100%. Библиографический список: 1. Балашов Ю.С. Паразито-хозяинные отношения членистоногих с наземными животными.Л., 1982.320с. 2. Беклемишов Ю.С. Биоценотические основы сравнительной паразитологии. – М., Наука., 1970. – 501 с. 3. Гафуров А.К. Роль жуков чернотелок в жизненных циклах цестод, скребней, нематод. Вопросы экологии и морфологии гельминтов человека, животных и растений: Тр.гельминтол.лабор., 1969. Т. 20. С. 46-54. 4. Каталог пестицидов, предназначенных для борьбы с эктопаразитами животных. – М., 1977. – С. 54-57. 5. Кербабаев Э.Б. и др. Арахноэнтомозы сельскохозяйственных животных. – М., 2000. – 137 с. 6. Костина М.Н. Микрокапсулированные инсектициды и персективы их применения // Дездело. – М.,2013. -№1. –С.35-37. 7. Кудрявцев Е.И. Инсектицидное действие аэрозольных форм перитроидов // Труды ВНИИВС. –М., 1986. -№4. –С.23-25. 8. Машковский М.Д. Лекарственные средства. – М., 1993. – 685 с. 9. Мельников Н.Н. и др. Справочник по пестицидам. – М., 1982. – 352 с. 10. Определитель насекомых Европейской части СССР. В пяти томах. – Л., 1969. – Т. 5. Двукрылые. – 807 с. 11. Прудникова М.А. О невозможности применения жука-чернотелки Alphitobiusdiaperinus как агента 92 12. 13. 14. 15. 16. 17. 18. 19. 20. 21. 22. 23. 24. 25. 26. 27. биологического метода борьбы с куриным клещом Dermanyssusgallinae // Энтомологическое обозрение, LXX, 1, 1991. С. 53-56. Сваджян П.К. и др. Жесткокрылые – промежуточные хозяева гельминтов, имеющих медицинское и ветеринарное значение: Тр. Самаркандского унив., 1964. Т. 147. С. 5-73. Теренина Н.Б. и др. Исследования поведения мучного хрущака Tenebriomolitor, зараженного цистициркоидами Hymenolepisdiminuta // Успехи общей паразитологии, Труды института паразитологии, Т. XLIV. – М., 2004. – С. 403-409. Тимофеевская Л.А. Пиретроиды МРПТХВ. – М., 1990. Циперметрин. Здоровье и рекомендации по безопасности. – Женева, 1989. Adams Jesse. Vector Abatement Plan – Darkling Beetles. CAMM Poultry, 2003. Chapter 10. Axtell R.C. Arthropods pests of poultry. In: Livestock Entomology. Chapter 16, 1985. P. 269-295. Blankespoor C.L., Pappas P.W., Eiser T. Impairment of the chemical defense of the beetle Tenebrio molitor, by metacestodes (cysticercoids) of the tapeworm Hymenolepis diminuta // Parasitology. 1997. Vol. 115. P. 105-110. Celebeo, Dawn Renee. Abstract. Role and Mitigation of Two vectors of Turkey Coronavirus, Musca domestica L. and Alphitobius diaperinus Panzer., 2002. Chernaki-Leffer A.M., Sosa-Gomez D.R.I., Almeida L.M. Selection for entomopathogenic fungi and LD50 of Metarhizium anisopliae Sorok. For the Lesser Mealworm Alfitobius diaperinus (Panzer) (Coleoptera: Tenebrionidae). Rev. Bras. Cienc. Avic. V. 9. N. 3. Campinas jul./sep., 2007. Geden C.Y., Arends Y.Y., Rutz D.A., Steinkraus D.C. Laboratory evaluation of Beauveria bassiana against the lesser mealworm Alfitobius diaperinus (Coleoptera: Tenebrionidae), in poultry litter, soil, and a pupal trap // Biological Control, 1998. 13:71-77. Goodwin M.A. & Waltman W.D. Transmission of Eimeria, viruses, and bacteria to chicks: darkling beetles (Alfitobius diaperinus) as vector of pathogens // J. of Applied Poultry Research 5 (1), 1996. P. 51-55. James J. Arends. External parasites and poultry pests. Diseases of Poultry . 11th Edition. Chapter 27. P. 913. James C. Dunford and Phillip E. Kaufman. Lesser Mealworm, Litter Beetle, Alfitobius diaperinus (Panzer) (Coleoptera: Tenebrionidae). Rebecca Baldwin and Thomas R. Fusalo, Entomology and Nematology Department, Institute of Food and Agricultural Sciences, University of Florida. Confused Flour Beetle, Tribolium confusum Jacquelin du Val (Coleoptera: Tenebrionidae) and Red Flour Beetle, Tribolium castaneum (Herbst) (Coleoptera: Tenebrionidae). Publication # EENY-289, 2008. Skewes P.A.& Munroe J.L. Research note: The effects of darkling beetles on broiler performance. Poultry Science. 70, 1991. P. 1034-1036. Trevor Lambkin. Australian Poultry CRC Fact sheet: Darkling Beetles, 2006. EFFECTIVENESS OF COMPLEX INSECTICIDAL PROGRAM AGAINST ADULT LITTER BEETLE AND BEETLE LARVAE IN POULTRY HOUSES AT THE FLOOR MAINTENANCE OF BROILER CHICKENS R.T. Safiullin, P.V. Novikov, T.A. Nurtdinova, O.V. Leontiev, E.E. Kudrevich, V.A. Kupyreva Keywords: broiler chickens, poultry houses, floor maintenance, beetle, beetle larvae, the number of background, insektoakaritsidnaya program, insecticide-Solfak®, larvicide-Baytsidal®processing poultry houses, changes in the number of insects, intens. The results obtained in there search and production tests in a poultry farm, Moscow Region, showed that the proposed insektoakaritсid program”Bayer”at different times after the application has provided highintens against both adults beetles(Solfak®) IE-94,9-100%, so and their larvae(Baytsidal®) IE-97,8-100%. 93 УДК 619:618:676.2 ЭКОНОМИЧЕСКАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ ПРИМЕНЕНИЯ ПРОБИОТИКОВ ДЛЯ ПРОФИЛАКТИКИ ЖЕЛУДОЧНОКИШЕЧНЫХ БОЛЕЗНЕЙ ТЕЛЯТ Л.Ю. Топурия, доктор биологических наук, профессор тел. 8(3532)68-97-10, golaso@rambler.ru Н.Ш. Сингариева, кандидат ветеринарных наук, доцент тел. 8(3532)68-97-10, golaso@rambler.ru ФГБОУ ВПО «Оренбургский государственный аграрный университет» Ключевые слова: пробиотик, олин, телята, желудочно-кишечные болезни. Установлено, что применение новорожденным телятам олина для профилактики желудочно-кишечных заболеваний экономически выгодно. Количество заболевших телят сократилось. Профилактическая эффективность применения олина при острых желудочно-кишечных болезнях новорожденных телят составила 80–90 %. Введение. Специфическая профилактика диарей молодняка далеко не всегда оказывается эффективной вследствие их полиэтиологичности и многофакторности [1, 2]. В последние годы хорошо зарекомендовали себя в плане лечения и профилактики болезней животных пробиотические препараты – живые антагонистические активные культуры микроорганизмов. Пробиотики обладают биостимулирующими, иммуномодулирующими свойствами, зачастую по лечебной эффективности не уступают многим химиотерапевтическим средствам. Кроме того, они оказывают положительное влияние на микрофлору пищеварительного тракта животных, не загрязняют окружающую среду, способствуют нормализации метаболических процессов в организме [3-10]. Указанными биологическими свойствами обладает пробиотический препарат олин, в связи с этим нами изучалась его лечебно-профилактическая активность при желудочно-кишечной патологии новорожденных телят. Цель исследования - изучить профилактическую и экономическую эффективность пробиотика олин при желудочно-кишечных заболеваниях телят. Пробиотик олин - порошок бежевого цвета, содержащий в своем составе лиофилизированную биомассу штаммов Bacillus subtilis (DSM 21097), Bacillus licheniformis (DSM 21098) и наполнитель. Представляет собой концентрат для разбавления водой и применения внутрь. Материал и методы исследований. По методу пар-аналогов было сформировано три 94 группы новорожденных телят красной степной породы по 20 гол. в каждой. Телята контрольной группы препарат не получали. Молодняку первой опытной группы задавали внутрь 0,5 мл пробиотика олин в течение 7 дней. Животные второй опытной группы получали олин в дозе 1,0 мл на 1 гол. в сутки на протяжении 7 дней. Учитывали случаи падежа телят, количество выздоровевших животных, продолжительность болезни. Результаты исследований и их обсуждение. Исследования показали, что олин способствовал снижению заболеваемости и падежа телят (таблица 1). У четырех телят первой опытной группы наблюдали признаки диареи, что в 4 раза меньше, чем в контроле. Во второй опытной группе заболело два теленка (10,0%). Первые клинические признаки желудочно-кишечных заболеваний регистрировались у молодняка опытных групп на 4-6-й и 6-7-й день жизни, а у контрольных – на 2-4-й день. Тяжелая степень заболевания отмечалась у 9 телят контрольной группы, в опытных группах – легкая и средняя степень. Длительность болезни составила в группе интактных животных 7,91, в опытных – 3,69-5,13 дня. Из 20 телят контрольной группы, несмотря на проведенное лечение, пало 6 голов, в первой опытной группе погиб один теленок, во второй – падеж отсутствовал. Профилактическая эффективность применения олина при острых желудочно-кишечных болезнях новорожденных телят составила 80–90 %. Таблица 1 – Профилактическая эффективность олина Показатель Заболело телят, гол. % Пало телят, гол. Начало заболевания: в среднем, дни колебания, дни Степень тяжести: легкая, гол. средняя, гол. тяжелая, гол. Длительность болезни: в среднем, дни колебания, дни Профилактическая эффективность, % контрольная 16 80 6 Группа первая опытная 4 20 1 вторая опытная 2 10 – 2,64 2-4 5,90 4-6 6,36 6-7 3 4 9 2 2 - 2 – – 7,91 5–10 5,13 4–6 3,69 3–4 20 80 90 Экономическую эффективность пробиотического препарата олин для профилактики болезней телят оценивали на основе данных, полученных в ходе исследований. Ι. Определение ущерба У от падежа телят: У1 = M (Cп + ВпТЦ) – Сф, где М – количество павших животных; Cп – стоимость приплода при рождении, руб.; Вп – среднесуточный прирост живой массы молодняка сельскохозяйственных животных, кг; Т – возраст павшего животного, дни; Ц – цена реализации единицы продукции, руб.; Сф – денежная выручка от реализации продуктов убоя, руб. Cп = 3,61Ц, где 3,61 – количество молока, ц, которое можно получить за счет кормов, расходуемых на образование 1 гол. приплода; Ц – закупочная цена 1 ц молока базисной жирности, руб. Cп = 3,61∙1200 = 4332,0 руб. У1 контроль = 6 (4332,0 + 0,623 ∙ 3 ∙ 25) – 0 = = 26 272,35 руб. У1 Опыт 1 = 1 (4332,0 + 0,697∙ 3 ∙ 25) – 0 = = 4 384,20 руб. У1 Опыт 2 = 0 руб. ΙΙ. Определение ущерба от снижения продуктивности телят: У2 = Мз (Вз – Вб)ТЦ, где Мз – количество заболевших животных, гол.; Вз, Вб – среднесуточная продуктивность здоровых и больных животных соответственно, кг; Т – средняя продолжительность наблюдения за изменением продуктивности животных, дни; Ц – цена реализации единицы продукции, руб. У2 контроль = 16 (0,7 – 0,5) ∙ 30 ∙ 25 = = 2400,0 руб. У2 Опыт 1 = 4 (0,7 – 0,5) ∙ 30 ∙ 25 = 600,0 руб. У2 Опыт 2 = 2 (0,7 – 0,5) ∙ 30 ∙ 25 = 300,0 руб. ΙΙΙ. Общий ущерб: У3 = У 1 + У 2 У3 контроль = 26 272,35 + 2400,0 = = 28 672,35 руб. У3 опыт 1 = 4384,20 + 600,0 = 4984,20 руб. У3 опыт 2 = 0 + 300,0 = 300,0 руб. ΙV. Ущерб на 1 гол.: У4 контроль = 28672,35 : 20 =1433,62 руб. У4 опыт 1 = 4984,20 : 20 = 249,21 руб. У4 опыт 2 = 300,0 : 20 = 15 руб. V. Затраты: Контроль – 0 руб. Опыт 1 – 70,0 руб. Опыт 2 – 140,0 руб. VΙ. Экономическая эффективность: Эк = (Сб + Уб) – (Сн + Ун) Ан, где Сб, Сн – текущие производственные затраты на ветеринарные мероприятия соответственно в базовом и новом вариантах в расчете на одно обработанное животное, руб.; Уб, Ун – удельный экономический ущерб на единицу работы соответственно в базовом и новом вариантах, руб.; Ан – объем ветеринарной работы, производимой с использованием новых ветеринарных препаратов, гол. Эк опыт 1 = (0 + 1433,62) – – (70,0 + 249,21) 20 = 22 288,20 руб. Эк опыт 2 = (0 + 1433,62) – – (140,0 + 15,0) 20 = 25 572,40 руб. 95 VΙΙ. Экономическая эффективность на 1 гол. Данный показатель рассчитывали как отношение общей экономической эффективности к количеству обработанных голов. Опыт 1 = 22 288,20 : 20 = 1114,41 руб. Опыт 2 = 25 572,40 : 20 = 1278,62 руб. VΙΙΙ. Экономическая эффективность на 1 руб. затрат. Указанный показатель рассчитывали как отношение общей экономической эффективности к общим затратам. Опыт 1 = 22 288,20 : 1400 = 15,92 руб. Опыт 2 = 25 572,40 : 800 = 9,31 руб. Представленные расчеты показали, что применение новорожденным телятам олина для профилактики желудочно-кишечных заболеваний экономически выгодно. Экономическая эффективность на 1 руб. затрат при использовании олина в дозе 0,5 мл в течение 7 дней составила 15,92 руб., а при дозе 1,0 мл – 9,13 руб. Заключение. Таким образом, профилактика желудочно-кишечных заболеваний телят с использованием пробиотика олин экономически целесообразна. Библиографический список: 1. Мосейчук В. В. Комплексная профилактика диареи новорожденных телят // Современное состояние и перспективы исследований по инфекционной и протозойной патологии животных, рыб и пчел: материалы Междунар. науч.-практ. конф. М., 2006. С. 165–166. 2. Топурия Л.Ю. Иммуномодуляторы в системе лечебно-профилактических мероприятий при болезнях молодняка сельскохозяйственных животных // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2006. Т. 2. № 10-1. С. 166-169. 3. Топурия Л.Ю. Влияние рибава на физиологическое состояние и воспроизводительную способность свиноматок // Вестник ветеринарии. 2007. № 4 (43). С. 49-52. 4. Порваткин И.В., Топурия Л.Ю. Влияние пробиотика олин на биологические особенности телят // Вестник мясного скотоводства. 2013. Т. 2. № 80. С. 75-79. 5. Донник И.М., Шкуратова И.А., Топурия Л.Ю., Топурия Г.М. Коррекция иммунобиохимического статуса у утят // Ветеринария Кубани. 2013. № 6. С. 6-8. 6. Григорьева Е.В., Топурия Л.Ю. Состояние минерального обмена у цыплят-бройлеров под действием пробиотика олин // Вестник ветеринарии. 2011. № 4 (59). С. 128-129. 7. Григорьева Е.В., Топурия Л.Ю. Влияние олина на иммунологические показатели цыплят-бройлеров // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2011. Т. 3. № 31-1. С. 357358. 8. Топурия Г.М., Топурия Л.Ю., Ребезов М.Б., Богатова О.В., Стадникова С.В. Влияние гермивита на мясную продуктивность и качество мяса утят // Вестник мясного скотоводства. 2013. Т. 5. № 83. С. 98-102. 9. Данилевская Н.В. Фармакологические аспекты применения пробиотиков // Ветеринария. 2005. № 11. С. 6-10. 10. Панин А.Н., Малик Н.И. Пробиотики – неотъемлемый компонент рационального кормления животных // Ветеринария. 2006. № 7. С. 3–6. ECONOMIC EFFICIENCY OF APPLICATION OF PROBIOTICS FOR PROPHYLAXIS OF GASTROINTESTINAL DISEASES OF CALFS L.Yu.Topuriya, N. Sh. Singariyeva Key words: probiotic, олин, calves, gastrointestinal diseases. It is established that application to newborn calves of an olin for prophylaxis of gastrointestinal diseases economically. The quantity of sick calves was reduced. Preventive effectiveness of application of an olin at sharp gastrointestinal diseases of newborn calves made 80–90%. 96 УДК 579.62 ОСОБЕННОСТИ ВЫДЕЛЕНИЯ ФАГОВ БАКТЕРИЙ BACILLUS ANTHRACIS Н.А. Феоктистова, кандидат биологических наук, доцент Д.А. Васильев, доктор биологических наук, профессор С.Н. Золотухин, доктор биологических наук, профессор А.И. Калдыркаев, кандидат биологических наук М.А. Лыдина, кандидат биологических наук Е.И. Климушкин, аспирант К.В. Белова, студент ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина» 8(8244) 55-95-47, feokna@yandex.ru Ключевые слова: бактерий Bacillus anthracis, бактериофаги, почва, выделение, лизогения. Описаны методы, направленные на выделение фагов бактерий Bacillus anthracis. В результате их применения удалось выделить 1 специфический бактериофаг, используя методику выделения бактериофага из объектов окружающей среды. Введение. Несмотря на значительное снижение уровней заболеваемости сибирской язвой в Российской Федерации, современная ситуация не расценивается исследователями как благополучная. На фоне действия разнообразных факторов риска по-прежнему регистрируются эпизоотии среди животных и эпидемические очаги среди населения. Сохранению нестабильности способствует наличие стационарно неблагополучных по сибирской язве пунктов, число которых, как показали проведенные ранее исследования, превышает 35 тысяч. Практически каждый пятый населенный пункт страны является неблагополучным, а на их территориях имеются многочисленные захоронения трупов животных, павших от сибирской язвы, относящиеся в соответствии с действующей классификацией предприятий и сооружений к объектам I класса опасности [6]. Известно, что постановка диагноза на сибирскую язву базируется на эпизоотологических, клинических данных и результатах бактериологического исследования. Вскрытие недопустимо, а методы прижизненной диагностики (серологические и аллергические) пока не вошли в практику, отчасти и из-за скоротечной гибели животных. Согласно методическим указаниям по лабораторной диагностике сибирской язвы у животных и людей, а также для обнаружения данного возбудителя в сырье животного происхождения и объектах внешней среды использовали ветеринарные бактериофаги «К-ВИЕВ», «Гамма-МВА» и ныне нарабатываемый «FahВНИИВВиМ» [1]. Выделение новых бактериофагов, специфичных к возбудителю сибирской язвы, и изучение их биологических свойств позволит расширить знания в области биологии фагов, в дальнейшем сконструировать биопрепараты, имеющие практическое значение. Цель - выделить новые бактериофаги Bacillus anthracis. Для решения поставленной цели необходимо было решить следующие задачи: - провести эксперименты по выделению бактериофагов методом индукции штаммов Bacillus anthracis; - провести эксперименты по выделению бактериофагов из объектов окружающей среды. Материалы и методы исследований. Вакцинные штаммы Bacillus anthracis-СТИ и Bacillus anthracis 55-ВНИИВВиМ, авирулентные штаммы Bacillus anthracis –Шуя-15 и Bacillus anthracis 34 F2, полученные из музея НИИЦМиБ ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина». Выделение бактериофагов проводили с использованием методик, опробированных сотрудниками кафедры микробиологии, вирусологии, эпизоотологии и ВСЭ ФГБОУ ВПО 97 «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина» [2-5, 7-10]. Результаты и их обсуждение. В первой серии опытов на культуры Bacillus anthracis –Шуя15 и Bacillus anthracis 34 F2, исследуемые как «лизогенные», мы воздействовали индуцирующим фактором (применялось воздействие на бактерии ультрафиолетовых лучей). По литературным данным при обработке лизогенных культур индуцирующими факторами продукция фага в значительной степени возрастает, потому с помощью этого метода удается выявить фаг в значительно большем проценте случаев, чем при изучении только спонтанной его продукции [8]. В качестве источника ультрафиолетовых лучей применялась бактерицидная лампа, 80 % энергии которой приходится на длину волны 2537 Ǻ. Исследуемые культуры (Bacillus anthracis –Шуя-15 и Bacillus anthracis 34 F2) находились в экспоненциальной фазе роста, разводилась в соотношении 1:100 в фосфатном буфере с рН 7,6. 2 мл взвеси помещали в чашку Петри и облучали в течение 20 (25, 30, 35, 40) секунд на расстояние 40 (45, 50, 55, 60) см. Облученные культуры засевались на мясо-пептонный бульон комнатной температуры (20-22 0С) в соотношении 1:100. Все процедуры производились в полузатемненном помещении с учетом предохранения облученных бактерий от фотореактивации. Все посевы инкубировали при 37 0С 5 часов, после чего делали высев методом агаровых слоев. В наших исследованиях не удалось выделить фаги Bacillus anthracis – Шуя-15 и Bacillus anthracis - 34 F2, то есть мы не обнаружили перехода профага в свободный фаг у имеющихся штаммов антракса по вышеизложенной методике, поэтому дальнейшие исследования были посвящены выделению бактериофагов из объектов внешней среды. На возможность сохранения возбудителя сибирской язвы в почве влияют детально изученные природно-климатические факторы, такие как особенности гидрогеологии, ландшафтно-географические зоны, характер почв и т.д. [6]. Для проведения исследований мы брали пробы почвы различных территорий Ульяновской, Самарской областей и Республики Татарстан лесной, лесо-степной и степной, почвы различного хозяйственного назначения (огород, грунтовая дорога - улица, двор частного дома). Всего было использовано 69 проб. 98 Первоначально готовили разведения почвы в мясо-пептонном бульоне в соотношении 1:10, добавляли в концентрации 104 КОЕ /мл по 1,0 мл штаммов бактерий Bacillus anthracis – Шуя-15, Bacillus anthracis - 34 F2, Bacillus anthracis-СТИ и Bacillus anthracis 55-ВНИИВВиМ. Колбы с пробами почв ставили в термостат на 24 часа при температуре 37 0С. Затем пробы фильтровали через ватно-марлевый фильтр для освобождения от механических примесей. После этого содержимое колбы разливали в стерильные пробирки, центрифугировали при 3000 об./мин в течение 30 минут, далее прогревали в водяной бане при 60 0С в течение 45 минут с целью подавления роста грамотрицательных бактерий. Исследуемые фильтраты исследовали на наличие фага методом нанесения «дорожки» на газон культуры, который был предварительно нанесен на мясо-пептонный агар в чашках Петри и «подсушен» в термостате в течение 35-40 минут. В качестве контроля на газон культуры наносили стерильный мясо-пептонный бульон с целью получения достоверного результата по выявлению присутствия фага в исследуемом субстрате. Выводы. В результате проведенных исследований нами были выделены 4 бактериофага, специфичные для штаммов Bacillus anthracis – Шуя-15, Bacillus anthracis - 34 F2, Bacillus anthracis-СТИ и Bacillus anthracis 55-ВНИИВВиМ из одной и той же пробы. При дальнейшей работе с выделенными бактериофагами нами установлено, что это один и тот же бактериофаг, специфичный для всех культур, используемых как индикаторные. Результаты исследований свидетельствуют, что бактерии Bacillus anthracis не распространены в окружающей среде. Методику выделения бактериофагов из объектов внешней среды мы считаем наиболее перспективной для получения вирулентных фагов с целью создания специфичных бактериофагов. На современном этапе возникла необходимость разработки критериев и алгоритма действий для оценки эпизоотолого-эпидемиологической опасности сибиреязвенных захоронений, находящихся на территории Российской Федерации. Применение бактериофагов в методологии оценки риска позволит в будущем выявить степень опасности каждого такого захоронения, реализовать дифференцированный подход к планированию мероприятий, направленных на ее снижение, а также использовать полученные результаты для прогнозирования дальнейшего развития ситуации. Библиографический список: 1. Бакулов, И.А. Сибирская язва (антракс). Новые страницы в изучении «старой» болезни / И.А. Бакулов, В.А. Гаврилов, В.В. Селиверстов. – Владимир, Изд.-во «Посад», 2001. – С. 141-142. 2. Васильев, Д.А. Характеристика биологических свойств бактериофагов вида Bacillus subtilis / Д.А. Васильев Д.А., Н.А. Феоктистова М.А. Юдина [и др.] // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. - 2011. - № 1. - С. 79-83. 3. Золотухин, С.Н. Выделение и селекция клонов бактериофагов патогенных энтеробактерий / С.Н. Золотухин, Д.А. Васильев, Л.С. Каврук [и др.] // В сборнике: Профилактика, диагностика и лечение инфекционных болезней, общих для людей и животных. - 2006. - С. 227-230. 4. Калдыркаев, А.И. Разработка системы фаговаров бактерий Bacillus cereus для идентификации и мониторинга данного микроорганизма / А.И. Калдыркаев, Н.А. Феоктистова, А.В. Алешкин // В книге: «Бактериофаги микроорганизмов значимых для животных, растений и человека». - Ульяновск, 2013. - С. 211-225. 5. Капырина, Н.А. Идентификация возбудителя листериоза с помощью бактериофага. / Н.А. Капырина, И.А. Бакулов // Симпозиум «Профилактика и меры борьбы с лептоспирозом и листериозом с/х животных». Новочеркасск, 1972. - С. 76-78. 6. Картавая, С.В. Оценка эпизоотолого-эпидемиологической опасности сибиреязвенных захоронений на территории Российской Федерации / автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук / ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека. – Москва, 2015. – С. 3-4. 7. Садеева, Н.Т. Выделение фагов бактерий вида Bacillus cereus / Н.Т. Садеева, Н.А. Феоктистова, М.А. Юдина [и др.] // В сборнике: Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии: материалы V-й Всероссийской (с международным участием) студенческой научной конференции. – Ульяновск: ГСХА, 2012. - С. 14-17. 8. Феоктистова, Н.А. Методы выделения бактериофагов рода Bacillus / Н.А. Феоктистова, В.А. Макеев, М.А. Юдина [и др.] // Вестник ветеринарии. - 2011. - Т. 59. - № 4. - С. 88-89. 9. Феоктистова, Н.А. Выделение и изучение биологических свойств бактериофагов рода Proteus, конструирование на их основе биопрепарата и разработка параметров практического применения / автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук / Саратовский государственный аграрный университет им. Н.И. Вавилова. - Саратов, 2006. – С. 9-12. 10. Феоктистова, Н.А. Выделение и изучение основных биологических свойств бактериофагов бактерий Bacillus subtilis / Н.А. Феоктистова // В книге: «Бактериофаги микроорганизмов значимых для животных, растений и человека». - Ульяновск, 2013. - С. 186-197. FEATURES OF ALLOCATION OF PHAGES OF BACTERIA OF BACILLUS ANTHRACIS N. A. Feoktistova, D. A. Vasilyev, S. N. Zolotukhin, А.I. Kaldirkaev, M. A. Lydina, E.I. Klimushkin, K.V. Belova Keywords: bacteria Bacillus anthracis, bacteriophages, soil, allocation, lizogeniye. Summary: the methods directed on allocation of phages of bacteria of Bacillus anthracis are described. As a result of their application it was succeeded to allocate 1 specific bacteriophage, using a technique of allocation of a bacteriophage from objects of environment. 99 УДК 578:579.672 ПОДБОР МЕТОДИКИ ВЫДЕЛЕНИЯ БАКТЕРИОФАГОВ BACILLUS COAGULANS Н.А. Феоктистова, кандидат биологических наук, доцент Д.А. Васильев, доктор биологических наук, профессор С.Н. Золотухин, доктор биологических наук, профессор М.А. Лыдина, кандидат биологических наук К.В. Белова, студент, К.В. Шокина, студент ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина» 8(8244) 55-95-47, feokna@yandex.ru Ключевые слова: бактерий Bacillus coagulans, бактериофаги, почва, выделение, лизогения. Аннотация: описаны методы, направленные на выделение фагов бактерий Bacillus coagulans. В результате их применения удалось выделить 8 специфических бактериофагов, используя методику выделения бактериофага из объектов окружающей среды. Введение. Известно, что «плоско-кислую» порчу продуктов питания вызывают термофильные бациллы. Наиболее часто выделяемым возбудителем этого порока, чаще всего встречающегося у плодоовощных консервов, являются представители вида Вacillus coagulans. Вышеназванные бактерии являются факультативными анаэробами почвенного происхождения. Например, в томатном соке они растут лучше всего при температуре 54,4-60,0° С. Термоустойчивость спор микроорганизма, вызывающего эту порчу, очень различается в зависимости от штамма бактерий [6]. Выделение новых бактериофагов, специфичных к возбудителю плоско-кислой порчи, и изучение их биологических свойств позволит расширить знания в области биологии фагов, в дальнейшем сконструировать биопрепараты, имеющие практическое значение для индикации и идентификации Вacillus coagulans в пищевом сырье и готовых к употреблению продуктов питания [7]. Цель - выделить новые бактериофаги Bacillus coagulans. Для решения поставленной цели необходимо было решить следующие задачи: - провести эксперименты по выделению бактериофагов методом индукции штаммов Bacillus coagulans; - провести эксперименты по выделению бактериофагов из объектов окружающей среды. Материалы и методы исследований. Штаммы Bacillus coagulans 566, Bacillus coagulans 10468, Bacillus coagulans 10473 получены из му100 зея НИИЦМиБ ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина». Выделение бактериофагов проводили с использованием методик, опробированных сотрудниками кафедры микробиологии, вирусологии, эпизоотологии и ВСЭ ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина» [1-4, 8-13]. Результаты и их обсуждение. В первой серии опытов на культуры Bacillus coagulans, исследуемые как «лизогенные», мы воздействовали индуцирующим фактором (применялось воздействие на бактерии ультрафиолетовых лучей). По литературным данным при обработке лизогенных культур индуцирующими факторами продукция фага в значительной степени возрастает, потому с помощью этого метода удается выявить фаг в значительно большем проценте случаев, чем при изучении только спонтанной его продукции [10]. В качестве источника ультрафиолетовых лучей применялась бактерицидная лампа, 80 % энергии которой приходится на длину волны 2537 Ǻ. Исследуемые культуры (Bacillus coagulans) находились в экспоненциальной фазе роста, разводилась в соотношении 1:100 в фосфатном буфере с рН 7,6. 2 мл взвеси помещали в чашку Петри и облучали в течение 20 (25, 30, 35, 40) секунд на расстояние 40 (45, 50, 55, 60) см. Облученные культуры засевались на мясо-пептонный бульон комнатной температуры (20-22 0 С) в соотношении 1:100 [5]. Все процедуры производились в полузатемненном помещении с учетом предохранения облученных бактерий от фотореактивации. Все посевы инкубировали при 37 0С 5 часов, после чего делали высев методом агаровых слоев. В наших исследованиях не удалось выделить фаги Bacillus coagulans, то есть мы не обнаружили перехода профага в свободный фаг у имеющихся в коллекции НИИЦМиБ штаммов по вышеизложенной методике, поэтому дальнейшие исследования были посвящены выделению бактериофагов из объектов внешней среды. Для проведения исследований мы брали пробы почвы различных территорий Ульяновской, Самарской областей и Республики Татарстан лесной, лесо-степной и степной, почвы различного хозяйственного назначения (огород, грунтовая дорога - улица, двор частного дома), продукты питания (специи, пряности, пробы муки пшеничной, сок томатный, консервы рыбные в томатном соусе и т.п.), водопроводная вода. Всего было использовано 114 проб. Первоначально готовили разведения объекта исследований в мясо-пептонном бульоне в соотношении 1:10, добавляли в концентрации 104 КОЕ /мл по 1,0 мл штаммов бактерий Bacillus coagulans. Колбы с объектами исследований ставили в термостат на 24 часа при температуре 37 0 С. Затем пробы фильтровали через ватно-марлевый фильтр для освобождения от механических примесей. После этого содержимое колбы разливали в стерильные пробирки, центрифу- гировали при 3000 об./мин в течение 30 минут, далее прогревали в водяной бане при 60-62 0С в течение 45 минут с целью подавления роста грамотрицательных бактерий. Исследуемые фильтраты исследовали на наличие фага методом нанесения «дорожки» на газон культуры, который был предварительно нанесен на мясо-пептонный агар в чашках Петри и «подсушен» в термостате в течение 35-40 минут. В качестве контроля на газон культуры наносили стерильный мясо-пептонный бульон с целью получения достоверного результата по выявлению присутствия фага в исследуемом субстрате. Выводы. В результате проведенных исследований нами были выделены 8 бактериофагов, специфичных для штаммов Bacillus coagulans. Анализ результатов исследований свидетельствуют, что бактериофаги Bacillus coagulans не широко распространены в окружающей среде: 114 проб было выделено 8 бактериофагов, 4 из которых из проб почвы, 1 – из томатного сока, 1 - из пробы пшеничной муки и 1 – из пробы водопроводной воды. Методику выделения бактериофагов из объектов внешней среды мы считаем наиболее перспективной для получения вирулентных фагов с целью создания специфичных фаговых биопрепаратов широкого спектра действия в пределах вида. Библиографический список: 1. Васильев, Д.А. Разработка параметров постановки реакции нарастания титра фага для индикации бактерий Bacillus mesentericus в объектах санитарного надзора / Д.А. Васильев, С.Н. Золотухин, Н.А. Феоктистова [и др.] // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. – 2012. – № 3 (19). – С.69–73. 2. Васильев, Д.А. Характеристика биологических свойств бактериофагов вида Bacillus subtilis / Д.А. Васильев Д.А., Н.А. Феоктистова М.А. Юдина [и др.] //Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. - 2011. - № 1. - С. 79-83. 3. Васильев, Д.А. Биосенсорная детекция бактерий рода Bacillus в молоке и молочных продуктах для предупреждения их порчи / Д.А. Васильев, С.Н. Золотухин, Н.А. Феоктистова [и др.] // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. - 2013. - № 4 (24). - С. 36-43. 4. Калдыркаев, А.И. Разработка системы фаговаров бактерий Bacillus cereus для идентификации и мониторинга данного микроорганизма / А.И. Калдыркаев, Н.А. Феоктистова, А.В. Алешкин // В книге: «Бактериофаги микроорганизмов значимых для животных, растений и человека». - Ульяновск, 2013. - С. 211-225. 5. Капырина, Н.А. Идентификация возбудителя листериоза с помощью бактериофага / Н.А. Капырина, И.А. Бакулов // Симпозиум «Профилактика и меры борьбы с лептоспирозом и листериозом с/х животных». Новочеркасск, 1972. - С. 76-78. 6. Климушкин, Е.И. Биоиндикация содержания бактерий Bacillus coagulans в пищевых продуктах / Е.И. Климушкин, Н.А. Феоктистова, Д.А. Васильев [и др.] // Материалы Всероссийской научно-практической конференции с международным участием «Экология родного края: проблемы и пути их решения». – Киров: Вятский ГАУ, 2014. – С. 377-379. 101 7. Кудряшова, К.В. Выделение фагов бактерий Bacillus coagulans // К.В. Кудряшова, Н.А. Феоктистова, Д.А. Васильев [и др.] // В сборнике: Материалы Международной научно-практической конференции «Биотехнология: перспективы и реальность». – Саратов: Издательский центр «Наука», 2014. – С. 26-28. 8. Садеева, Н.Т. Выделение фагов бактерий вида Bacillus cereus / Н.Т. Садеева, Н.А. Феоктистова, М.А. Юдина [и др.] // В сборнике: Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии: материалы V-й Всероссийской (с международным участием) студенческой научной конференции. – Ульяновск: ГСХА, 2012. - С. 14-17. 9. Феоктистова, Н.А. Перспективы применения бактериофагов рода Bacillus / Н.А. Феоктистова, Д.А. Васильев, М.А. Юдина [и др.] // В сборнике: Настоящее и будущее биотехнологии в решении проблем экологии, медицины, сельского, лесного хозяйства и промышленности Научно-практический семинар с международным участием. – Ульяновск: УлГУ, 2011. - С. 136-139. 10. Феоктистова, Н.А. Выделение и изучение биологических свойств бактериофагов рода Proteus, конструирование на их основе биопрепарата и разработка параметров практического применения / автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук / Саратовский государственный аграрный университет им. Н.И. Вавилова. - Саратов, 2006. – С. 13. 11. Феоктистова, Н.А. Методы выделения бактериофагов рода Bacillus / Н.А. Феоктистова, В.А. Макеев, М.А. Юдина [и др.] // Вестник ветеринарии. - 2011. - Т. 59. - № 4. - С. 88-89. 12. Феоктистова, Н.А. Выделение и изучение основных биологических свойств бактериофагов бактерий Bacillus subtilis / Н.А. Феоктистова // В книге: «Бактериофаги микроорганизмов значимых для животных, растений и человека». - Ульяновск, 2013. - С. 186-197. 13. Юдина, М.А. Разработка фагового препарата Bacillus mesentericus и область его практического применения / автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук / Саратовский государственный аграрный университет им. Н.И. Вавилова. - Саратов, 2013. – С. 8. SELECTION OF THE TECHNIQUE OF ALLOCATION OF BACTERIOPHAGES OF BACILLUS COAGULANS N. A. Feoktistova, D. A. Vasilyev, S. N. Zolotukhin, M. A. Lydina, K.V. Belova, K.V. Shokina Keywords: bacteria Bacillus coagulans, bacteriophages, soil, allocation, lizogeniye. Summary: the methods directed on allocation of phages of bacteria of Bacillus coagulans are described. As a result of their application it was succeeded to allocate 8 specific bacteriophages, using a technique of allocation of a bacteriophage from objects of environment. 102 УДК 602.3:579.8 ВЫЯВЛЕНИЕ БАЦИЛЛ, ВЫЗЫВАЮЩИХ ПОРЧУ ПРОДУКТОВ ПИТАНИЯ (БВППП) БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКИМИ МЕТОДАМИ Н.А. Феоктистова, кандидат биологических наук, доцент1 Д.А. Васильев, доктор биологических наук,, профессор 1 Т.А. Юдина, доктор биологических наук, доцент2 С.Н. Золотухин, доктор биологических наук,, профессор 1 ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина»1 ФГБОУ ВПО «Московский государственный университет имени М.В.Ломоносова»2 Ключевые слова: какао-порошок, порча продуктов питания, бациллы, Bacillus cereus, Bacillus mycoides, Bacullis subtilis, Bacillus mesentericus (pumilus), Bacillus megaterium, бактериофаги, методика, культура. В статье представлены результаты исследований по подбору оптимальной методики для изучения качественного и количественного состава бацилл, вызывающих порчу продуктов питания на основе какао-порошка, как одного из основных компонентов рецептуры кондитерских изделий. Микробиологическая оценка качества какао-порошка, проведенная нами по 11 партиям, показала, что количество бактерий рода Bacillus в исследованных пробах какао-порошка изменяется в пределах от 5,1х102КОЕ/г до 6,2х105КОЕ/г. Изученные биологические свойства выделенных культур позволили отнести их к видам Bacillus cereus, Bacillus subtilis, Bacillus pumilus (mesentericus), Bacillus mycoides, Bacillus megaterium. Показано, что срок бактериологического исследования по традиционной схеме выделения и дифференциации бацилл первой морфологической группы (Gordon, 1973), составляет 107 часов при значительных экономических затратах. Применение «Ключа для первичной дифференциации бактерий рода Bacillus» занимает 77 часов. Схема фагоидентификации составляет 29 часов. Эффективность применения трех методик аналогичная. Считалось, что кондитерские изделия изза большой концентрации сахара (осмотического давления), применяемого при производстве, могут не вызывать опасений на предмет бактериологической опасности. Однако, в последнее десятилетие экспертами Всемирной организации здравоохранения в рамках Комиссии Кодекс Алиментариус создана классификация пищевых продуктов – причин пищевых отравлений бактериальной этиологии, которая отнесла какао-порошок, шоколад, шоколадные изделия, какао-продукты и шоколадные конфеты ко второй категории, т.е. они являются оптимальной средой для культивирования возбудителей токсикоинфекций и токсикозов [5, 12]. Безопасность пищевых продуктов, в частности кондитерских изделий и полуфабрикатов, в настоящее время оценивается по 4 группам микроорганизмов, куда входят санитарно-показательные (КМАФАнМ (количество мезофильных аэробных и факультативно анаэробных микроорганизмов) и БГКП (бактерий группы кишечной палочки)), патогенные (в том числе Salmonella), плесени и дрожжи и условно-патогенные (Staph. aureus, Bacillus cereus и др.) [9]. Из литературных данных известно, что спорообразующие аэробные бактерии, к которым относятся бактерии Bacillus cereus, Bacillus subtilis, Bacillus pumilus (mesentericus), Bacillus mycoides, Bacillus megaterium, являются активными продуцентами разнообразных гидролитических ферментов и используют в качестве питательных вещества белки, жиры, углеводы, глюкозиды, спирты и органические кислоты [4-7]. Повышенное содержание бацилл, вызывающих порчу продуктов питания (БВППП) является причиной изменения органолептических свойств сырья, полуфабрикатов и готовых кондитерских изделий, основным рецептурным компонентом которых является какао-порошок, что сказывается на сроках годности и доброкачественности готовой продукции. Цель и задачи исследований. Цель наших исследований - изучение качественного (видовой 103 состав бактерий) и количественного состава БВППП какао-порошка различных партий. Задачи: - подобрать оптимальную методику (по временным и экономическим показателям) для изучения качественного и количественного состава БВППП какао-порошка; - определить количество БВППП какао-порошка; - изучить видовое разнообразие БВППП какао-порошка, включая патогенный для человека вид Bacillus cereus. Материалы и методы исследований. В соответствии с рекомендациями Международной комиссии по микробиологическим спецификациям пищевых продуктов ICMSF оценка качества какао-порошка проводилась по 11 партиям, из средней пробы каждой партии брались 3 навески, которые высевались в двух повторностях. 1-7 партия – какао-порошок производства Россия; 8-11 – импортного производства. Для выделения БВППП использовали две схемы дифференциации бактерий рода Bacillus (по методикам Gordon R. [14] и R.A. Slepecky, H.T. Hemphill [13]), которые включали обширный список биохимических свойств (табл. 3 и рис. 2). Фагодентификацию бактерий рода Bacillus осуществляли по методикам, модифицированным Васильевым Д.А., Золотухиным С.Н. с соавтр. [3-4, 8,10]. Статистическую обработку результатов опытов проводили с применением пакета прикладных программ Statistica 6.0. (for Windows; «Stat Soft Ins.», США), Microsoft Exsel 2003 (for Windows XP). В исследовании применяли разработанные нами фаговые биопрепараты на основе Phagum Bacillus megaterium Bm – 10 УГСХА-Деп и Phagum Bacillus megaterium Bm – 1 УГСХА-Деп для идентификации Bacillus megaterium; Phagum Bacillus subtilis Bs – 13 УГСХА-Деп и Phagum Bacillus subtilis Bs – 16 УГСХА-Деп для идентификации Bacillus subtilis; Phagum Bacillus mycoides B. myc – 3 УГСХА-Деп и Phagum Bacillus mycoides B.myc–5 УГСХА-Деп Bacillus mycoides для идентификации Bacillus mycoides; Phagum Bacillus mesentericus (pumilus) Bm – 3 УГСХА-Деп и Phagum Bacillus mesentericus (pumilus) Bm – 8 УГСХА-Деп для идентификации Bacillus mesentericus (pumilus), выделены и изучены нами. При подготовке культур для исследования с помощью просвечивающей электронной микроскопии клетки и эндоспоры фиксировали 2 ч. в 0,1 М фосфатном буферном растворе, рН 7,2 с 2,5%-ным глутаровым альдегидом. Затем 104 образцы отмывали 2 раза в этом же буфере и помещали на 3 ч. в 1%-ный раствор OsO4. После этого препараты отмывали 3 раза в 50%-ном этаноле (пока раствор не становился прозрачным). Образцы оставляли на ночь при 4ºС в 2%-ном растворе уранилацетата в 70%-ном этаноле. Проводку в спиртах заканчивали: в 70%-ном – 2 раза по 30 мин.; в 96%-ном – 1 раз 1ч.; в абсолютном спирте (100%-ном) – 1 ч. Затем обезвоживание проводили в абсолютном (абс.) ацетоне – 2 раза по 30 мин. Заливку и пропитку препаратов в смолах Эпон проводили одним из общепринятых способов [6]. Срезы на формваровых пленках просматривали в ТЭМ «Geol 1011», (Япония) при ускоряющем напряжении 80 kV, после их контрастирования уранилацетатом и реактивом Рейнольса. Результаты исследований. Известно, что технология производства какао-порошка требует охлаждения жмыха до 200С и отделения крупных частиц в воздушно-инерционных классификаторах, что «заставляет» бактериальную клетку образовывать спору, с последующей длительной лаг-фазой для прорастания. Поэтому, первоначально каждая навеска была подвергнута термостатированию при 370С в течение 10-18 часов для перехода споровой формы искомых бактерий в вегетативную (соотношение 1:10 в среде обогащения ((Claus, 1955)). В 100 см3 дистиллированной воды растворяли 10 г KNO3, 5 г пептона, 3 г мясного экстракта. Устанавливали рН 7,0, разливали в пробирки по 9 мл. стерилизовали при 120°С 15 минут. Далее из предварительно «подрощенного» материала делали ряд последовательных десятикратных разведений: 10-1, 10-2, 10-3, 10-4. 1 мл разведения высевался на чашку Петри при добавлении 9 мл мясо-пептонного агара с глюкозой и дрожжевым экстрактом температурой 38-420С и производили посев штрихом на среду Донована, которую готовили без добавления полимиксина. Посевы культивировали в условиях термостата в течение 18 часов. Результаты исследований представлены в таблице 1 и показывают, что количество БВППП в исследованных пробах какао-порошка изменяется в пределах от 5,1х102КОЕ/г до 6,2х105КОЕ/г. С чашек Петри было взято для дальнейших исследований по 1-2 типичных для изучаемых бактерий колонии. Выделение «чистой культуры» проводили по методу Дригальского. У выделенных культур были изучены тинкториальные свойства. Установлено, что все выделенные бактерии – это крупные грамположительные Таблица 1 – Количество бактерий, выделенных из проб какао-порошка Номер пробы Количество БВППП, КОЕ/г Номер пробы Количество БВППП, КОЕ/г 1 4 3,6х10 ±0,6х10 7 1,6х104±0,4х104 2 6,2х105±1,1х105 8 7,4х102±1,6х102 3 0,8х10 ±0,1х10 9 4,0х103±0,8х103 4 1,9х104±0,5х104 10 5,1х102±1,3х102 5 4,9х103±1,2х103 11 6,4х102±1,5х102 6 6,7х103±0,9х103 4 5 5 1) 2а) 2б) 2в) Рисунок 1 - Вид срезов клеток и эндоспор Bacillus cereus (1) и Bacillus mycoides (2 а, б, в) в просвечивающем электронном микроскопе (ТЭМ): – общая картина спорулирующей культуры B. cereus;видны клетки начала стационарной фазы роста, клетки с образующимися внутри эндоспорами, а также свободные эндоспоры; а) – клетки B. mycoides конца экспоненциальной – начала стационарной фазы роста; б) - клетка .B. mycoides с образующейся проспорой, остатки лизировавшихся клеток; в) – срез эндоспоры, клеток и остатков лизировавшихся клеток B. mycoides. палочки, расположенные цепочками или попарно, кислотоустойчивые. Изучение срезов клеток и эндоспор двух видов выделенных культур с помощью трансмиссионного электронного микроскопа (ТЭМ) подтвердило, что морфология и размеры их клеток и эндоспор типичны для этих видов (рис. 1). На рис. 1 приведен вид в просвечивающем электронном микроскопе (ТЭМ) срезов клеток и эндоспор Bacillus cereus (1) и Bacillus mycoides (2 а, б, в). Культуры фиксированы в начале стационарной фазы роста, на стадии спорообразования. Затем изучаемые культуры были сгруппированы по культуральным свойствам (рост на жидкой и плотной питательных средах) в условные группы, описанные в таблице 2. Следующий этап исследований был посвящен изучению биохимических свойств выделенных культур. Для типирования мы применяли ключ R.A. Slepecky, H.T. Hemphill [14], разработанный для первичной дифференциации бактерий родов Bacillus и Paenibacillus (табл.3). 105 Таблица 2 – Культуральные свойства выделенных бактерий рода Bacillus тип колоний Характерные культуральные свойства Количество выделенных культур особенности роста на мясо-пептонном одного типа бульоне особенности роста на мясо-пептонном агаре с глюкозой и дрожжевым экстрактом тип 1 (условная груп- Колонии плотной консиСреда мутная, осадок трудноразбивапа B. cereus) стенции, белые, восковид- емый, крошковатый, прочные пленка ные, круглые и пристеночное кольцо. При образовании пленки среда просветляется/ 2 тип 2 (условная группа B.megaterium) Колонии слизистые, желтовато-белые Растет в виде осадка на дне пробирки с помутнением среды 2 тип 3 (условная группа B.pumilus) Толстые матово-белые морщинистые колонии Бульон остается почти прозрачным, на поверхности среды морщинистая пленка 1 тип 4 (условная группа B.mycoides) Войлоковидные наложения, ползущие по поверхности среды Помутнения среды нет, на дне ватообразный осадок, пленки не образует 2 тип 5 (условная группа B.subtilis) Колонии белые или серо- Бульон мутный, при образовании пленватые, морщинистые ки среда просветляется Алгоритм применения ключа: при положительном или результате определения какого-либо биохимического свойства следующий этап, рекомендованный авторами, обозначен арабской цифрой по горизонтали и отражен буквенным обозначением по вертикали. Заключительным этапом дифференциации по ключу служит название вида микроорганизма. Параллельно мы проводили исследования по дифференциации выделенных бактерий по схеме выделения и дифференциации бацилл первой морфологической группы (рис. 2) по классической методике, составляющей основу идентификационных тестов для бактерий рода Bacillus в «Определителе бактерий Берджи». На основе изученных нами биологических свойств выделенные культуры отнесли к видам Bacillus cereus, Bacillus subtilis, Bacillus pumilus (mesentericus), Bacillus mycoides, Bacillus megaterium. Время исследования с применением «Ключа для первичной дифференциации бактерий рода Bacillus» составило 77 часов. Исследования по схеме выделения и дифференциации бацилл первой морфологической группы [13] составляет 107 часов. Значительные временные и материальные затраты не позволяют применять данные методики в производственных лабораториях, в виду невозможности останав106 1 ливать технологический процесс производства кондитерских изделий до получения результата бактериологического исследования с ККТ (критической контрольной точки) системы обеспечения безопасности пищевой продукции НАССР. С целью оптимизации процесса идентификации бацилл, вызывающих порчу продуктов питания, мы использовали специфические бактериофаги, выделенные и селекционированные нами ранее по отработанной методике фагоидентификации [1-2, 7, 11]. На поверхность подсушенного мясопептонного агара в чашках Петри пастеровской пипеткой наносили 3-4 капли бульонной 10 часовой культуры исследуемых микроорганизмов. Нанесённую культуру равномерно распределяли по поверхности среды стерильным шпателем. Чашки ставили в термостат для подсушивания газона культуры на 20-30 минут при 37 0С. Чашку делили бактериологическим карандашом на шесть секторов. На поверхность засеянной среды, в зоне первого-пятого секторов, пастеровской пипеткой легким прикосновением капли наносили фаги, на шестой сектор в качестве контроля наносили стерильный мясопептонный. Наклоняли чашку, чтобы капли стекли в виде дорожки. Чашки оставляли для подсушивания в боксе на 20-30 минут и помещали в термостат на 18 часов при 37 0С. Таблица 3 – Ключ для первичной дифференциации бактерий родов Bacillus и Paenibacillus 1. Каталаза: положительный отрицательный 2. Voges-Proskauer: положительный отрицательный 3. Рост в анаэробном агаре: положительный отрицательный. 4. Рост при50°C: положительный отрицательный 5. Рост в7% NaCl: положительный отрицательный 6. Кислота и газ из глюкозы (неорганический N): положительный отрицательный 7. РедукцияNO3 доNO3: положительный отрицательный 8. Параспоральное тело в спорангии: положительный отрицательный 9. Гидролиз крахмала: положительный отрицательный 10. Рост при 65°C: положительный отрицательный 11. Гидролиз крахмала: положительный отрицательный 12. Кислота и газ из глюкозы (неорганический N): положительный отрицательный 13. Ширина палочки 1.0μm или больше: положительный отрицательный 14. Рост при pH < 6.0: положительный отрицательный 15.Рост в анаэробных условиях: положительный отрицательный 16.Образование кислоты из глюкозы (неорганический азот) отрицательный 17. Рост при 65°C: положительный: отрицательный 18. Разложение казеина: положительный отрицательный 19. Параспоральное тело в спорангии: положительный отрицательный 2 17 3 10 4 9 5 6 B.licheniformis B. coagulans B. polymyxa 7 8 Paenibacillus alvei B. thuringiensis B. cereus B. subtilis B. pumilus B. stearothermophilus 11 12 15 B. macerans 13 B. megaterium 14 B. circulans B. firmus B. laterosporus 16 B. brevis B. sphaericus B. stearothermophilus 18 Р. larvae 19 Р. popilliae B. lentimorbus Таблица 4 – Эффективность методов идентификации бактерий рода Bacillus Методы идентификации бактерий Фагоидентификация «Ключ для первичной дифференциации бактерий рода Bacillus» Схема выделения и дифференциации бацилл первой морфологической группы Время исследования, час 29 77 107 B. cereus Вид бактерий B.megaterium B.pumilus B.mycoides B.subtilis 2 2 2 2 1 1 2 2 1 1 2 2 1 2 1 107 Рисунок 2 - Схема ускоренной идентификации БВППП с помощью селекционированных нами бактериофагов (I) в сравнении со схемой выделения и дифференциации бацилл первой морфологической группы (III) и «Ключом для первичной дифференциации бактерий рода Bacillus» (II) 108 Результат исследований считали положительным, если на месте нанесения фагов на газоне сплошного роста культуры образовывалась прозрачная зона лизиса с возможно вторичным ростом фагорезистентных микроорганизмов или без него, а также рост негативных колоний фага. Отрицательным считали результат – отсутствие лизиса на газоне роста исследуемой культуры микроорганизмов и отсутствие лизиса в контроле. При положительном результате культуру относили к тому виду бактерий, для которого специфичен «сработавший» бактериофаг. В таблице 4 представлены результаты фагоидентификации выделенных нами бактерий в сравнении с двумя ранее применямыми нами методиками. Полученные результаты свидетельствуют об эффективности применения специфических бактериофаговых препаратов с целью типирования бактерий рода Bacillus, так как сокращение время исследования и снижение трудозатрат на фоне экономии дорогостоящих питательных сред и реактивов, не снижает качества исследования, что было продемонстрировано нами в данном эксперименте. Заключение. Оценка микробиологических показателей качества какао-порошка проведенная нами по образцам 11 партий, показала, что количество БВППП в исследованных пробах какао-порошка изменяется в пределах от 5,1х102КОЕ/г до 6,2х105КОЕ/г. Повышенная контаминация отечественного какао-порошка в сравнении с импортным может, на наш взгляд, объясняться рядом причин. Во-первых, такие технологические операции, как обжарка и последующее отделение какаовеллы – это неотьемлемая часть производства какао-порошка вне зависимости от географического положения, температурные параметры которых недостаточны для инактивации выделенных нами бактерий видов Bacillus cereus, Bacillus subtilis, Bacillus pumilus (mesentericus), Bacillus mycoides, Bacillus megaterium, как следствие, речь может идти о наличии в объектах исследований дебактеризаторов. Во-вторых, контаминация оборудования при дроблении и размоле и сложность санитарной обработки технологической линии приводит к экзогенному загрязнению сырья, полуфабриката и готового продукта БВППП. Нами доказано, что срок бактериологического исследования по традиционной схеме выделения и дифференциации бацилл первой морфологической группы (Gordon, 1973), составляет 107 часов при значительных экономических затратах. Модифицированная схема ускоренной идентификации БВППП с применением «Ключа для первичной дифференциации бактерий рода Bacillus» составляет 77 часов. Схема предлагаемой нами фагоидентификации составляет 29 часов. На рисунке 2 показана сравнительная характеристика трех методов исследований по идентификации бацилл, вызывающих порчу продуктов питания (БВППП), к которым относятся виды Bacillus cereus, Bacillus subtilis, Bacillus pumilus (mesentericus), Bacillus mycoides, Bacillus megaterium. Также мы предлагаем использовать «Ключ…» в симбиозе с методом фагоидентификации при отрицательном результате фаготипирования выделенной культуры без приостановления исследований. Библиографический список: 1. Васильев, Д.А. Разработка параметров постановки реакции нарастания титра фага для индикации бактерий Bacillus mesentericus в объектах санитарного надзора / Д.А. Васильев, С.Н. Золотухин, Н.А. Феоктистова [и др.] // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. - 2012. - № 3. - С. 69-73. 2. Васильев, Д.А. Биосенсорная детекция бактерий рода Bacillus в молоке и молочных продуктах для предупреждения их порчи / Д.А. Васильев, С.Н. Золотухин, Н.А. Феоктистова [и др.] // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. - 2013. - № 4 (24). - С. 36-43. 3. Васильев, Д.А. Характеристика биологических свойств бактериофагов вида Bacillus subtilis / Д.А. Васильев, С.Н. Золотухин, Н.А. Феоктистова [и др.] // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. - 2011. - № 1. - С. 79-83. 4. Калдыркаев, А.И. Разработка системы фаговаров бактерий Bacillus cereus для идентификации и мониторинга данного микроорганизма / А.И. Калдыркаев, Н.А. Феоктистова, А.В. Алешкин // В книге: «Бактериофаги микроорганизмов значимых для животных, растений и человека». - Ульяновск, 2013. - С. 211-225. 5. Леонова И.Б. Характеристика качества шоколада и какао-порошка по микробиологическим критериям / автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата технических наук / Россий- 109 ская экономическая академия им. Г. В. Плеханова. - Москва, 1993. – С. 3-5. 6. Нетрусов, А.И. Практикум по микробиологии. Учебн. пособие для студ. Вузов / А.И. Нетрусов. - М.: Издат. центр «Академия», 2005. - С. 83 – 93. 7. Петрукова, Н.А. Биоиндикация содержания бактерий Bacillus megaterium в молоке и молочных продуктах / Н.А. Петрукова, Н.А. Феоктистова, Д.А. Васильев [и др.] // «Экология родного края: проблемы и пути их решения»: материалы Всероссийской научно-практической конференции с международным участием. – Киров, 2014. - С. 375-377. 8. Романова, Н.А. Сравнительная эффективность методов выделения фагов бактерий Bacillus megaterium / Н.А. Романова, Н.А. Феоктистова, С.Н. Золотухин [и др.] // Вестник ветеринарии. - 2013. - № 1 (64). - С. 26-27. 9. Скокан, Л.Г. Технологические аспекты обеспечения качества кондитерских изделий / автореферат диссертации на соискание ученой степени доктора технических наук /Московский государственный институт пищевых производств. - Москва, 2004. – С. 4-8. 10. Феоктистова, Н.А. Методы выделения бактериофагов рода Bacillus / Н.А. Феоктистова, В.А. Макеев, М.А. Юдина [и др.] // Вестник ветеринарии. - 2011. - Т. 59. - № 4. - С. 88-89. 11. Феоктистова, Н.А. Разработка схемы исследования материала с целью выделения и ускоренной идентификации бактерий видов Bacillus subtilis и Bacillus cereus / Н.А. Феоктистова, А.И. Калдыркаев, А.Х. Мустафин // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. - 2011. - Т. 4. - № 32-1. - С. 288-290. 12. Codex alimentarius. Мед, сахара, какао-продукты и шоколад. – М.: «Весь мир», 2007. – с. 31-37. 13. Gordon, R. The genus Bacillus / R. Gordon // In: Handb. Microbiol. Cleveland (Ohio), 1973. V.1. P.71–88. 14. Slepecky, R.A. The Genus Bacillus-Nonmedical / R.A. Slepecky, H.T. Hemphill // Prokaryotes. – 2006. - № 4. – Р. 530–562. IDENTIFICATION OF THE BACILLI CAUSING DAMAGE OF FOOD (BVPPP) BY BACTERIOLOGICAL METHODS N. A. Feoktistova, D. A. Vasilyev, T.A. Yudina, S. N. Zolotukhin Keywords: cocoa powder, damage of food, bacilli, Bacillus cereus, Bacillus mycoides, Bacullis subtilis, Bacillus mesentericus (pumilus), Bacillus megaterium, bacteriophages, technique, culture. Results of researches on selection of an optimum technique for studying of qualitative and quantitative structure of the bacilli causing damage of food on the basis of cocoa powder as one of the main components of a compounding of confectionery are presented in article. The microbiological assessment of quality of cocoa powder which is carried out by us on 11 parties showed that the quantity of bacteria of the sort Bacillus in the studied tests of cocoa powder changes ranging from 5,1x102KOE/g to 6,2x105KOE/g. The studied biological properties of the allocated cultures allowed to carry them to types of Bacillus cereus, Bacillus subtilis, Bacillus pumilus (mesentericus), Bacillus mycoides, Bacillus megaterium. It is shown that the term of bacteriological research on the traditional scheme of allocation and differentiation of bacilli of the first morphological group (Gordon, 1973), makes 107 hours at considerable economic expenses. Application of “A key for primary differentiation of bacteria of the sort Bacillus” takes 77 hours. The scheme of a fagoidentifikation makes 29 hours. Efficiency of application of three techniques the similar. 110 УДК 578:579.67 ИЗУЧЕНИЕ АНТИБИОТИКОЧУВСТВИТЕЛЬНОСТИ ШТАММОВ БАКТЕРИЙ, ВЫДЕЛЕННЫХ ИЗ ТРУПОВ ПЧЕЛ Н.А. Феоктистова, кандидат биологических наук, доцент М.А. Лыдина, кандидат биологических наук Д.А. Васильев, доктор биологических наук, профессор С.Н. Золотухин, доктор биологических наук, профессор К.В. Белова, студент К.В. Шокина, студент ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина» 8(8244) 55-95-47, feokna@yandex.ru Ключевые слова: бактерииPaenibacillisи Bacillus, антибиотики, метод диффузии. Описаны результаты изучения антибиотикорезистентности штаммов бактерий Paenibacillisи Bacillus, выделенных из трупов пчел.Максимально широкие зоны лизиса были зафиксированы при применении дисков с эритромицином. Установлено, что выделенные микроорганизмы чувствительны в разной степени ко всем исследованным антибиотикам (тетрациклину, цефотаксиму, левомицетину, гентамицину, линкомицину, ампициллину, цефалексину, бензилпенициллину, тобрамицину, оксациллину, эритромицину, ампициллину). Введение. В России американский и европейский гнильцы встречаются повсеместно, за исключением Хабаровского и Приморского краев. На крупных пасеках, если не проводить оздоровительных мероприятий,американский и европейский гнильцы быстро распространяются и наносят большие потери. Так, экономический ущерб, наносимый гнильцами, значительно выше, чем от всех остальных болезней расплода. Больная гнильцами семья не добирает в год от 5 до 40 кг меда и 0,5 кг воска, опылительная деятельность снижается на 30 %, а в некоторых случаях до 80%. Но самое главное то, что американский и европейский гнильцы нередко приводит к гибели семей вместе с ульями и сотами [6-11]. Проеденные нами ранее исследования показали, что из 7 исследованных проб трупов пчел, полученных на частных пасеках Приволжского Федерального округа, было выделено 7 штаммов микроорганизмов, которые при изучении их биологических свойств были отнесены к родам Paenibacillisи Bacillus[2, 4-5] Цель исследований - определение чувствительности выделенных микроорганизмов к антимикробным препаратам. Степень чувствительности выделенных культур возбудителей к антимикробным препаратам необходимо знать для рационального подбора средств эффективной антимикробной терапии и профилактики возникновения и распространения гнильцовых инфекций среди пчел. Другой стороной этих исследований является получение данных (резистограмм), которые могут служить удобным инструментом-маркером в эпизоотологических исследованиях. Материалы и методы исследований. Диски с антибиотиками (тетрациклином, цефотаксимом, левомицетином, гентамицином, линкомицином, ампициллином, цефалексином, бензилпенициллином, тобрамицином, оксациллином, эритромицином, ампициллином), изготовлены НИЦФ (г. Санкт-Петербург). Для определения чувствительности к воздействию антибиотиков использовали культуры бактерий в 16-ти часовой временной экспозиции. Результаты и их обсуждение. Метод диффузии в мясо-пептонный агар с применением стандартных дисков, пропитанных различными антибиотиками в определенных концентрациях (зависят от терапевтической дозы и соответствуют рекомендациям ВОЗ), основан на использовании стандартных питательных сред, дисков и методов. Оценка результатов связана с существованием зависимости между размером зоны подавления роста исследуемых культур вокруг дисков и значениями минимальных подавляющих концентраций (МПК)соответствующих антибиотиков (чувствительностью микроорганизмов). 111 Таблица 1 – Результаты исследований Название антибиотиков Ампициллин (АМП) Бензилпеницилин (ПЕН) Гентамицин (ГЕН) Левомицетин (ЛЕВ) Линкомицин (ЛИН) Оксациллин (ОКС) Тетрациклин (ТЕТ) Тобрамицин (ТОБ) Цефазолин (ЦЗ) Цефалексин (ЦФЛ) Цефотаксим (ЦТК) Эритромицин (ЭРИ) 1 11 11 2 9 3.1 - 13 25 20 10 23 20 20 25 18 27 27 15 8 22 22 10 26 15 32 27 29 23 20 19 24 24 13 30 Через 20 минут после нанесения газона исследуемой культуры на поверхность питательной среды наносили диски с антибиотиками. Аппликацию дисков проводили с помощью стерильного пинцета. Расстояние от диска до края чашки и между дисками было 15-20 мм. На одну чашку помещали по 6 дисков. Диски должны равномерно контактировать с поверхностью мясо-пептонного агара, для чего их аккуратно прижимали пинцетом. Непосредственно после аппликации дисков чашки Петри помещали в термостат кверху дном и инкубировали при температуре 37 0С в течение 24 ч. После окончания инкубации чашки помещали кверху дном на темную матовую поверхность так, чтобы свет падал на них под углом в 45-50 0 (учет в отраженном свете). Диаметр зон задержки роста измеряли с точностью до 1 мм штангенциркулем. В таблице 1 представлены результаты изучения антибиотикочувствительности7 культур бактерий родов Paenibacillisи Bacillus, выделенных из трупов пчел, полученных на частных пасеках Приволжского Федерального округа. Установлено, что выделенные микроорганизмы чувствительны в разной степени ко всем исследованным антибиотикам (тетрациклину, цефотаксиму, левомицетину, гентамицину, линкомицину, ампициллину, цефалексину, бензилпенициллину, тобрамицину, оксациллину, эритромицину, ампициллину). Однако,максимально широкие зоны лизиса были зафиксированы при применении дисков с эритромицином. Только в отношении четырех антибиотиков была выяв112 Зона лизиса, мм Номера культур 3.2 4 16 8 15 9 23 27 16 10 20 16 24 23 12 26 23 22 20 8 23 15 25 24 17 32 23 11 12 У-5 13 19 И-1 10 - 27 30 26 10 12 20 8 17 9 27 28 25 11 21 18 18 15 19 23 11 19 17 27 18 16 18 20 11 лена резистентность изучаемых культур – ампициллина, бензилпенициллина, оксаллицина и левомицетина. Заключение. Установлено, что штаммы родов Paenibacillisи Bacillus, выделенные нами из трупов пчел и типированные по двум схемам дифференциации бактерий (по методикам GordonR. и R.A.Slepecky, H.T. Hemphill), показали высокие показатели антибитикочувствительности в отношении широкого спектра данных лекарственных препаратов. Диск-диффузионный метод достаточно информативен; полученные с его помощью результаты могут служить основой для выбора адекватного лекарственного средства при лечении гнильцовых заболеваний пчел. Известно, что в отечественном мёде зарубежные лаборатории обнаруживают остатки антибиотиков - следы лечения пчел от патогенных микроорганизмов. Кафедра микробиологии, вирусологии, эпизоотологии и ВСЭ ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина» начала активную работу по разработке биопрепаратов на основе фагов бактерий, возбудителей американского и европейского гнильцов пчел, над созданием бактериологической и молекулярно-генетической схем, которые будут в дальнейшем применяться для мониторинга, профилактики и ликвидации возбудителей гнильцовых карантинных инфекций [1-5]. Библиографический список: 1. Райчинец, Ю.А. Перспективы применения бактериофагов для биоиндикации возбудителя американского гнильца пчел / Ю.А. Райчинец, Е.И. Климушкин, Н.А. Феоктистова,М.А. Лыдина [и др.] //В сборнике: Материалы Всероссийской научно-практической конференции с международным участием «Экология родного края: проблемы и пути их решения». - Киров, 2014. -С. 344-346. 2. Райчинец, Ю.А. Методика выделения Paenibacilluslarvae/.Ю.А. Райчинец, Н.А. Феоктистова,М.А. Лыдина [и др.] //Современные проблемы науки и образования. – 2014. – № 5. – С. 599. 3. Райчинец, Ю.А Разработка антимикробных биопрепаратов на основе специфических бактериофагов/ Ю.А Райчинец, Феоктистова Н.А., Климушкин, Е.И., [и др.] // Проблемы медицинской микологии.- 2014. – Т. 16. № 2 – С. 139-140. 4. Райчинец, Ю.А Методика изучения ареала распространения бактерий Paenibacilluslarvae/. Ю.А. Райчинец, Е.И. Климушкин, Н.А. Феоктистова [и др.] //В сборнике: Материалы Международной научно-практической конференции, посвященной 55-летию ВНИИВВиМ«Актуальные вопросы контроля инфекционных болезней животных». – Покров, 2014.- С. 53-58. 5. Райчинец, Ю.А Апробация схемы выделения возбудителя американского гнильца пчел/ Ю.А. Райчинец, Е.И. Климушкин, М.А. Лыдина [и др.] // В сборнике: VI Международная научно-практическая конференция «Аграрная наука и образование на современном этапе развития: опыт, проблемы и пути их решения». - Ульяновск, 2015.-С.102-106. 6. Феоктистов, А.А., Бактерии вида Bacilluslarvae – возбудители болезни пчел / А.А. Феоктистов, Д.А. Васильев Д.А., Н.А. Феоктистова[и др.]. / В сборнике: Материалы Международной научно-практической конференции «Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения», посвящённой Всемирному году ветеринарии в ознаменование 250-летия профессии ветеринарного врача. - Ульяновск, ГСХА, 2011.– Т. 1. - С. 35-38. 7. Интернет-ресурс «Мировое пчеловодство» - URL:http://www.apiworld.ru/apimondiya/ - дата обращения 13.12.2014. 8. Интернет-ресурс «Агропрофессионал» - URL: www. agprofessional.com - дата обращения 13.12.2014. 9. Интернет-ресурс «Защита растений» - URL: www. fsvps.ru- дата обращения 13.12.2014. 10. Интернет-ресурс «Интерфакс» - URL: http://www.interfax.ru/business/390414 - дата обращения 13.12.2014. 11. Интернет-ресурс «Общественная электрогазета.рф» - URL: http://igazeta.com/news/nauka - дата обращения 13.12.2014. ANTIBIOTIKOCHUVSTVITELNOSTI’S STUDYING STRAINS OF THE BACTERIA ALLOCATED FROM CORPSES OF BEES N. A. Feoktistova, M. A. Lydina, D. A. Vasilyev, S. N. Zolotukhin, K.V. Belova, K.V. Shokina Keywords: bacteria of Paenibacillis and Bacillus, antibiotics, diffusion method. Summary: results of studying of an antibiotikorezistentnost of strains of bacteria of Paenibacillis and Bacillus allocated from corpses of bees are described. The widest zones of a lizis were recorded at application of disks with erythromycin. It is established that the allocated microorganisms are sensitive in different degree to all studied antibiotics (tetratsiklin, tsefotaksim, levomitsetin, gentamycin, lincomycin, ampicillin, cefalexin, benzilpenitsillin, tobramitsin, oksatsillin, erythromycin, ampicillin). 113 УДК 619:576 ПРОЯВЛЕНИЕ АНТАГОНИСТИЧЕСКИХ СВОЙСТВ БАКТЕРИЙ LACTOBACILLUS ACIDOPHILUS В ОТНОШЕНИИ БАКТЕРИЙ SERRATIA MARCESCENS И KLEBSIELLA PNEUMONIA А.Г.Шестаков, кандидат биологических наук, ст.преподаватель, 8(8422) 55-95-47, andrewsh@newmail.ru Н.И. Молофеева, кандидат биологических наук, доцент 8(8422) 55-95-47, nadezhda.molofeeva.67@mail.ru Л.П.Пульчеровская, кандидат биологических наук, доцент 8(8422) 55-95-47, pulcherovskaya.lidia@yandex.ru С.В.Мерчина, кандидат биологических наук, доцент, 8(8422) 55-95-47, dav_ul@mail.ru А.И.Калдыркаев, кандидат биологических наук, ст.преподаватель, 8(8422) 55-95-47, usxa@ya.ru Д.А. Васильев, доктор биологических наук, профессор 8(8422) 55-95-47, dav_ul@mail.ru ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А.Столыпина» Ключевые слова: Lactobacillus acidophilus, антагонизм, Serratia marcescens, Klebsiella pneumonia, пробиотик. В статье представлены результаты исследования по определению антагонистического воздействия пробиотического штамма Lactobacillus acidophilus к бактериям видов Serratia marcescens и Klebsiella pneumonia. Введение. Пробиотики - живые микроорганизмы: молочнокислые бактерии, чаще бифидо - или лактобактерии, иногда дрожжи, которые относятся к нормальным обитателям желудочно-кишечного тракта животных. Термин «пробиотики», в буквальном переводе, означает «для жизни» (в отличие от термина «антибиотики» - «против жизни») по отношению к чувствительным микрорганизмам. Применение пробиотиков приводит к увеличению числа молочнокислых бактерий, естественных обитателей кишечника [1]. Молочнокислые бактерии, такие как Lactobacillus acidophilus, являются важными компонентами нормальной микрофлоры кишечника человека и животных . Пробиотики это микроорганизмы, которые помогают в восстановлении и поддержании здорового кишечника, обеспечивают баланс нормофлоры, что очень важно для поддержания хорошего здоровья, и включают в себя молочнокислые бактерии и биологически активные белки, такие как иммуноглобулин А и лактоферрин. Выбор Lactobacillus acidophilus как пробиотического агента вполне очевиден, поскольку нормальный желудочно-кишечный микробиоценоз человека и животных богат бак114 териями данного вида. Lactobacillus acidophilus, как пробиотики в макроорганизме обладают некоторыми важными свойствами. Они включают в себя сродство к клеткам-хозяевам, чтобы исключить или снизить титр патогенных бактерий, и вырабатывают кислоты, перекись водорода и бактериоцины антагонистические к росту патогенной микрофлоры [2]. В клинической практике, как правило, пробиотики применяются без лабораторного определения их антагонистической активности. Однако имеются данные, что антагонизм пробиотиков в отношении разных микроорганизмов проявляется неодинаково. Возможно, с этим связано в некоторых случаях отсутствие их положительного действия. Материалы и методы. В работе использовали среды: МПА (Оболенск), среда для культивирования Lactobacillus acidophilus следующего состава: дистиллированная вода 1000гр; пептон 20гр; дрожж экстракт 5,0гр; глюкоза 20гр; твин 80 1гр; сульфат магния 0,5гр; KH2PO4 2гр; натрия цитрат 2,0гр; натрия ацетат 5,0гр. Объектами исследования служили бактерии следующих видов Lactobacillus acidophilus В-1909 – 1штамм, Serratia marcescens – 5штам- Рисунок 1 - Антагонистическая активность Lactobacillus acidophilus В-1909 в отношении штаммов Serratia marcescens Рисунок 2 -Отсутствие антогонистической активности в отношении штаммов Klebsiella pneumonia. Рисунок 3 - Контроль Таблица 1 - Антагонистическая активность Lactobacillus acidophilus В-1909 в отношении Serratia marcescens и Klebsiella pneumonia Тест-штамм Serratia marcescens №1 Serratia marcescens № 12 Serratia marcescens № 14 Serratia marcescens № 24 Serratia marcescens № 43 Klebsiella pneumonia№ 5 Klebsiella pneumonia№ 8 Klebsiella pneumonia№ 32 Степень антагонистической активности Lactobacillus acidophilus В-1909 Низкая Высокая 100% 100% 100% 100% 100% 0% 0% 0% - мов [3,5] и Klebsiella pneumonia - 3 штамма [4]. Суточные культуры штаммов бактерий Serratia marcescens и Klebsiella pneumonia получали путем культивирования в ГРМ-бульоне при 37°C. Антагонистическая активность по отношению к тестовым культурам изучалась с использованием метода отсроченного антагонизма. Степень антагонистической активности выражали в процентах. Результаты исследования. Среди методов выявления антагонизма in vitro наибольшее распространение получил метод отсроченного антагонизма на плотной питательной среде, основанный на культивировании испытуемых и индикаторных микроорганизмов. Для воспроизводства данного метода мы провели его модификацию. В плотной питательной среде после затвердевания агара пробойником делали лунки 115 для жидкой среды. Диаметр лунки 5мм. В одной чашке Петри располагали пять лунок. Далее на поверхность МПА наносили штамм тестируемой бактерии сплошным газоном с использованием шпателя. Для каждого штамма тестируемых бактерий использовали две чашки, одна из которых служила контролем. В первой чашке в лунки вносили суспензию бактерий Lactobacillus acidophilus В-1909 с титром не менее 1*108, а во вторую чашку стерильную питательную среду для культивирования Lactobacillus acidophilus и ГРМ – бульон. Среды во вторую чашку вносили для того, что бы исключить ингибирующее влияние компонентов среды для культивирования Lactobacillus acidophilus на тестируемые штаммы, а так же в качестве контроля (рис. 1,2,3). Об антагонистической активности судили по зоне отсутствия роста тест-штаммов вокруг колонии испытуемого штамма Lactobacillus acidophilus В-1909. Результаты представлены в таблице 1. Так, изученная культура Lactobacillus acidophilus В-1909 обладает высокой антагонистической активностью к S. marcescens— 100%. Наиболее устойчивыми к действию Lactobacillus acidophilus В-1909 оказались штаммы K. pneumonia,возможно это связано с наличием капсулы указанных бактерий, которая выступает в роли защитного фактора. Заключение. Таким образом, полученные результаты показали отличия в антагонистической активности Lactobacillus acidophilus В-1909 в отношении штаммов Serratia marcescens и Klebsiella pneumonia. Мы считаем, что для включения лактобактерий в комплекс пробиотиков необходимо предварительное определение индивидуальной чувствительности к патогенной и условно-патогенной микрофлоре. Библиографический список: 1. Fuller R. , Gibson G.R. Scandinavian J Gastroenterol. —32: Suppl 22: - 1997. - р.28-31. 2. Аlves, M. S. Identification of clinical isolates of indole-positive and indole negative Klebsiella. / M. S. Alves, R. C. Dias, A. C. DeCastro, L. W. Riely, B. M. Moreira, //J. Clin. Microbiol. 44, - 2006. – р.3640-3646. 3. Ефрейторова, Е.О. Разработка биотехнологических параметров для обнаружения бактерий вида Serratia marcescens в пищевых продуктах и объектах окружающей среды. /Е.О. Ефрейторова, Л.П. Пульчеровская, Д.А. Васильев Д.А., Н.И.Молофеева. //В сборнике: Биотехнология: реальность и перспективы. Международная научно-практическая конференция. - 2014. - С. 14-17. 4. Сатртдинова, Г.Р. Биохимические тесты для ускоренной внутриродовой детекции бактерий Klebsiella./Г.Р.Сатртдинова, Д.А.Васильев.//Электронный периодический научный журнал «SCIARTICLE.RU», №17, - 2015. – С.11-15. 5. Пульчеровская, Л.П. Изучение биологических свойств бактерий вида Serratia marcescens /Л.П.Пульчеровская, О.В.Кузнецова, Е.О.Бахаровская.//Материалы Международной научно-практической конференции «Ветеринарная медицина ХХI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения», Том 1, - Ульяновск, - 2011, -С. 154-155. MANIFESTATION BACTERIA ANTAGONISTIC PROPERTIES AGAINST LACTOBACILLUS ACIDOPHILUS BACTERIA SERRATIA MARCESCENS AND KLEBSIELLA PNEUMONIA A.G.Shestakov, N.I. Molofeeva, L.P.Pulcherovskaya, S.V.Merchina, A.I.Kaldyrkaev, D.A. Vasilyev Keywords: Lactobacillus acidophilus, antagonism, Serratia marcescens, Klebsiella pneumonia, probiotic. The article presents the results of a study to determine the antagonistic effects of the probiotic strain Lactobacillus acidophilus bacteria species Serratia marcescens and Klebsiella pneumonia 116 УДК: 619:612.123:166.36-003.826 ЖИРОВАЯ ДИСТРОФИЯ ПЕЧЕНИ И ГИПЕРЛИПИДЕМИЯ СОБАК. НОВЫЙ ПОДХОД К ЛЕЧЕНИЮ В.В. Анников, доктор ветеринарных наук, профессор тел. 8(917)024-64-05, vetdoc-annikov@mail.ru М.В.Беляева, аспирант тел. 8(987)3682309, mariabeljaeva1@bk.ru ФГБОУ ВПО «Саратовский государственный аграрный университет» им. Н.И.Вавилова Ключевые слова: собаки, жировая дистрофия печени, стеатоз, гиперлипидемия, бета-ситостерин, полипренилфосфаты, гепатопротектор Авторами установлено, что через 2 недели терапии собак контрольной группы , больных жировой дистрофией печени в сыворотке крови отмечено снижение уровня холестерола, триглицеридов, аланинаминотрансферазы. Через 2 месяца терапии уровень холестерола находился на верхней границе нормы, что создает предпосылки к рецидиву стеатоза печени. В сыворотке крови опытной группы животных по окончанию эксперимента содержание холестерола и триглицеридов обнаружено в рамках физиологической нормы. Введение. Жировая дистрофия печени (стеатоз печени) - это хроническое заболевание печени, обусловленное избыточным накоплением липидов внутри гепатоцитов. [7] Считается, что в основе патогенеза стеатоза печени лежит нарушение метаболизма жиров, который может быть вызван в том числе дисбалансом их накопления и потребления энергии организмом. [3] Жировая дистрофия печени у собак не редкость. И заболевание это не такое уж безобидное. Избыточное накопление жира в гепатоцитах со временем может привести к некрозу печени и воспалению - развивается так называемый стеатогепатит. Поэтому очень важным на сегодняшний день является устранение предрасполагающих факторов, таких как гиперлипидемия (в частности гипертриглицеридемия). Гиперлипидемия – наследственные или приобретенные состояния, характеризующиеся повышением уровня липидов (триглицеридов и/ или холестерина в крови), являющиеся следствием нарушения метаболизма жиров. [5] По литературным данным, гиперлипидемия (в частности гипертриглицеридемия) у собак встречается довольно часто (в 14% случаев). [1,2,8] Определенные породы собак наиболее предрасположены к развитию гиперлипидемии (миниатюрные шнауцеры). [9] В гуманитарной медицине разработан алгоритм мероприятий по лечению и профилактике стеатоза печени. В частности, с этой целью реко- мендовано применение препаратов, относящихся к сульфоаминокислотам, а также диетотерапия. [4] В ветеринарной медицине этой проблеме не уделяется должного внимания, если не считать диетического кормления в период реконвалесценции эссенциальных фосфолипидов. Последние, безусловно, способствуют восстановлению гепатоцитов, но никак не влияют на стеатоз. Следует заметить, что все препараты, рекомендуемые на сегодняшний день с целью снижения или устранения гиперлипидемии, не являются ветеринарными. В тоже время компания ГамаВетФарм разработала для лечения больных гиперлипидемией мелких животных комплексный лекарственный препарат на основе бета-ситостерина и полипренилфосфатов. Известно, что полипренолы и их фосфаты снижают уровень холестерина в крови, а также стимулируют восстановление клеток печени, оказывая гепатопротекторное действие. Второй компонент препарата – бета-ситостерин – активно конкурирует с холестерином за всасывание в кишечнике, что также способствует коррекции дислипидемии. Таким образом, комбинация полипренилфосфатов и бета-ситостерина работает сразу в трех направлениях – подавляет синтез эндогенного холестерина в печени, снимает воспаление в эндотелии сосудов и снижает всасывание холестерина в кишечнике. Однако, на сегодняшний день отсутствуют данные о клинико- гемо-биохимических изме- 117 нениях при использовании данного препарата в практических условиях. Исходя из этого, целью нашего исследования явилась оценка терапевтической эффективности препарата на основе бета-ситостерина и полипренилфосфатов (БСПФ) при терапии больных стеатозом печени собак с сопутствующей гиперлипидемией по результатам клинико-гемо-биохимических изменений. Для реализации поставленной цели определены следующие задачи: - анализ клинических изменений при включении в схему терапии больных стеатозом печени собак с сопутствующей гиперлипидемией БСПФ; - анализ гематологических изменений при включении в схему терапии больных стеатозом печени с сопутствующей гиперлипидемией БСПФ; - анализ биохимических изменений в крови при включении БСПФ в схему терапии больных стеатозом печени собак с сопутствующей гиперлипидемией. Материалы и методы исследования. Исследования проводились на базе ветринарной клиники доктора Анникова В.В. (г. Саратов), а также кафедры «Болезни животных и ВСЭ» ФГБОУ ВПО «Саратовский ГАУ» им. Н.И.Вавилова. Предметом для исследования явились клинико-гемо-биохимические изменения при включении в схему терапии животных комплексного лекарственного средства на основе полипренилфосфатов и бета-ситостерина. Материалом для исследования послужили 20 больных собак с диагнозом жировая дистрофия печени и гиперлипидемия. Методы исследования: -клинический; -гематологический; -биохимический; -ультрасонографический; -статистический. За период работы нами было исследовано 286 собак, доставленных на первичный прием, из них у 20 животных была выявлена жировая дистрофия печени и гиперлипидемия. Собаки были разделены по принципу аналогов на 2 группы по 10 голов в каждой. Терапия животных 1 группы включала в себя введение гепатопротекторного средства гептрал в дозе 10 мг/ кг массы тела внутривенно 1 раз в сутки на протяжении 2 недель, затем перорально по 20 мг/кг массы тела 1 раз в сутки на протяжении 6 недель. Животным 2 группы дополнительно вводили 118 БСПФ в дозе 3-6 мг/кг веса внутрь 2 раза в сутки на протяжении 2 месяцев. Контроль терапии осуществлялся до начала лечения, через 2 недели и 2 месяца после начала терапии. Животные обеих групп на протяжении всего эксперимента употребляли диетический рацион супер-премиум класса Hill’s L/D по нормам, рекомендованным производителем. Этот корм создан специально для поддержания функций печени в период терапии. Гематологические исследования (количество лейкоцитов, эритроцитов, уровень гемоглобина, гематокрита) проводили на аппарате «MindrayBC-2300» (Китай) c использованием оригинальных реагентов, СОЭ определялась на аппарате Панченкова, а подсчет лейкограммы проводили исследованием мазка крови, окрашенного набором Лейкодиф-200. Биохимические исследования сыворотки крови выполняли на аппарате BS-3000 P (Sinnowa, Китай) с использованием реактивов фирмы Диакон ДДС. При этом определяли концентрацию билирубина, аланинаминотрансферазы (АЛТ), аспартатаминотрансферазы (АСТ), холестерола, триглицеридов, холинэстеразы, альбумина, а также проводили расчёт коэффициента де Ритиса (АСТ/АЛТ). Ультрасонографические исследования проводили до начала терапии на аппарате Esaote MyLab 20 (Голландия). Статистическую обработку полученных данных проводили в программе Statistica 6. Результаты и их обсуждение. При клиническом осмотре до начала терапии у животных обеих групп наблюдали: вялость, отсутствие/ослабление аппетита, галитоз, периодическую рвоту (8 собак 1 группы, 9 собак 2 группы), диарею (5 собак 1 группы, 6 собак 2 группы), экземы и аллопеции (6 собак в 1 группе и 9 во 2). Пальпация печени не вызывала беспокойства животного , отмечали незначительное увеличение границ печени. У 1 собаки (1 группа) наблюдалась небольшая иктеричность слизистых оболочек. Через 2 недели терапии собаки стали более подвижны, появился аппетит, наличие рвоты отмечали у 3 собак в 1 группе и 1 собаки во 2, диареи у 1 собаки 2 группы. Мокнущие экземы перешли в сухие, аллопеции по-прежнему оставались ярко выражены. У собаки, имевшей незначительную иктеричность до начала терапии, на данном этапе слизистые оболочки имели естественный бледно-розовый цвет. Через 2 месяца терапии у всех собак отмечали хороший аппетит и активность, отсутствие Таблица 1 - Динамика гематологических показателей при терапии больных жировой дистрофией печени и гиперлипидемией собак (n=10, M±m, *Р≥0,05, **Р≥0,01, ***Р≥0,001) До начала лечения Группы животных 1 2 14 суток терапии Группы животных 1 2 5,5-8,5 6,2±0,7 7,1±0,8*** 6,9±0,6 7,2±1,1* 6,7± 0,5 7,9±0,7*** 6,0-17,0 12,3± 2,1 10,8± 2,7*** 13,7±2,7 12,9± 1,9** 14,3±1,8 11,1± 1,6*** Эозинофилы,% 2-10 4,9±1,3 5,8±1,7*** 5,3±1,6 8,7±1,9*** Юные,% Базофилы, % Палочкоядерные нейтрофилы, % Сегметоядерные нейтрофилы, % 0 0-1 0 0 0 0,1±0,1* 0 0 0 0 3,7± 0,9 0 0 0-3 1,1±0,1 0* 0 0,3±0,1** 0 0 60-70 62,8± 1,8 65,3± 1,9*** 67,2±1,1 62,9± 1,3*** 64,3±1,6 68,4± 1,7*** Моноциты, % 3-10 2,9±0,1 4,3±0,2*** 3,5±0,2 4,6±0,2*** 5,8± 0,6 4,1±0,2*** Лимфоциты, % 12-30 18,8± 2,1 19,7± 1,9** 16,8±1,8 21,1± 1,3*** 19,9±1,8 25,2± 1,4*** Показатели Норма Гемоглобин, г/л 115-180 Гематокрит, % 37-54 СОЭ, мм/ч 0-22 Общее количество эритроцитов, 1012/л Общее количество лейкоцитов, 109/л 2 месяца терапии Группы животных 1 2 169,3±2,1 138,3±3,8 141,5±2,9** 141,7±2,7 149,4±3,1*** 158,7±2,6 *** 48,3± 51,1± 49,3± 48,7± 41,5±1,9 45,8±2,2 2,4 1,7* 2,1** 2,3** 13,9± 6,9± 7,8±0,7 5,2±1,3 8,8±1,4*** 9,7±1,1*** 1,1*** 1,5 рвоты и диареи, на месте аллопеций и экзем начал появляться новый волос. При гематологическом исследовании у животных обеих групп существенных изменений на протяжении всего лечения выявлено не было (табл.1). При биохимическом исследовании, получены данные, представленные в таблице 2. До начала терапии у животных обеих групп отмечали повышенное содержание в сыворотке крови АЛТ (80,6±2,5 U/L и 94,3±1,9 U/L у собак 1 и 2 группы), АСТ (53,6±1,8 U/L в 1 группе и 56,1±1,3 U/L во 2 группе), коэффициент де Ритиса был несколько снижен (0,7±0,1 и 0,6±0,1 в 1 и 2 группах соответственно), что свидетельствует о поражении печени. Уровень билирубина отмечен на верхней границе референсных величин (10,6±0,2 мкмоль/л в 1 группе и 10,0±0,3 мкмоль/л во 2 группе). Все это указывает на цитолитические процессы при повреждении гепатоцитов. Повышение концентрации холестерола (12,3±0,4 ммоль/л у животных 1 группы и 10,9±0,5 ммоль/л у животных 2 группы), 5,8±1,2*** 0 0 а также триглицеридов (3,8±0,2 ммоль/л и 3,3±0,2 ммоль/л у животных 1 и 2 группы соответственно) указывает на нарушения липидного обмена в организме больных собак. Отмечали снижение активности секреторного фермента холинэстеразы (1143,2±105,8 U/L в 1 группе и 1238,8±88,3 U/L во 2 группе животных), а также снижение альбумина (17,5±1,9 г/л и 13,8±1,1 г/л в 1 и 2 группах животных), что указывает на снижение протеосинтетической способности печени. Через 2 недели терапии уровень АЛТ снизился у животных обеих групп, но остался выше референсных величин (65,3±1,9 U/L в 1 группе и 60,9±2,1 U/L во 2), уровень билирубина и АСТ находились в рамках нормальных величин, коэффициент де Ритиса по-прежнему оставался несколько снижен (0,7±0,1 и 0,8±0,1 в 1 и 2 группе соответственно). У животных 1 группы уровень холестерола и триглицеридов оставались повышены (8,2±0,2 ммоль/л и 2,3±0,1 соответственно). В сыворотке крови 2 группы животных произошло значительное снижение концентрации холесте- 119 Таблица 2 - Динамика биохимических показателей при терапии больных жировой дистрофией печени и гиперлипидемией собак (n=10, M±m, *Р≥0,05, **Р≥0,01, ***Р≥0,001) Показатели Норма До начала лечения Группы животных 1 2 Билирубин, мкмоль/л 0,1-10,3 10,6±0,2 10,0±0,3* АЛТ, U/L 8,0-57,0 80,6±2,5 94,3±1,9*** АСТ, U/L 9,0-48,5 53,6±1,8 56,1±1,3*** Коэффициент 0,9-1,7 0,7±0,1 0,6±0,1* де Ритиса Холестерол, 2,9-6,0 12,3±0,4 10,9±0,5** ммоль/л Триглицериды, 0,2-1,0 3,8±0,2 3,3±0,2** ммоль/л Холинэстераза, от 2200 1143,2±105,8 1238,8±88,3** U/L Альбумин, г/л 25,0-39,7 17,5±1,9 13,8±1,1*** рола и триглицеридов (6,2±0,3 ммоль/л и 1,1±0,1 ммоль/л соответственно), достигнув верхней границе нормальных величин. Уровни холинэстеразы (1987,4±65,4 U/L в 1 группе и 2042,7±51,2 U/L во 2 группе) и альбумина (21,3±1,3 г/л и 24,5±0,9 г/л в 1 и 2 группе соответственно) несколько повысились, но в рамки физиологических величин так и не вернулись. Через 2 месяца терапии уровни АЛТ, АСТ, билирубина, а также коэффициент де Ритиса у собак обеих групп находились в пределах физиологической нормы, что свидетельствует о восстановлении структуры клеток печени. Концентрация холестерола и триглицеридов в 1 группе находилась на верхней границе референсных величин (5,9±0,1 ммоль/л и 0,8±0,1 ммоль/л соответственно), что может являться предрасполагающим фактором к рецидиву заболевания. Во второй же группе эти показатели находились в пределах нормы (4,3±0,1 ммоль/л и 0,4±0,1 ммоль/л соответственно). Уровни холинэстеразы и альбумина находились в рамках физиологических величин, что свидетельствует о восстановлении протеосинтетической функции печени. 14 суток терапии Группы животных 1 2 8,7±0,4 2 месяца терапии Группы животных 1 2 7,3±0,5** 5,8±0,3 6,4±0,2** 60,9±2,1*** 52,3±1,1 48,7±1,7*** 41,9±1,3*** 37,8±1,3 40,2±0,9** 0,7±0,1 0,8±0,1* 1,1±0,1 1,1±0,1* 8,2±0,2 6,2±0,3** 5,9±0,1 4,3±0,1** 2,3±0,1 1,1±0,1** 0,8±0,1 0,4±0,1* 1987,4±65,4 2042,7±51,2*** 4543,2±129,8 21,3±1,3 24,5±0,9** 33,8±1,2 65,3± 1,9 45,6±1,2 5128,3±197,2 *** 35,2±1,3** При ультрасонографическом исследовании до начала терапии у животных обеих групп отмечали незначительное увеличение размеров печени, а также участки повышенной эхогенности. При контрольном ультрасонографическом исследовании через 2 месяца терапии существенных отклонений у животных обеих групп выявлено не было. Выводы. 1. Монотерапия гептралом при жировой дистрофии печени позволяет восстановить функциональные способности печени, но этого недостаточно для более быстрого и стойкого снижения уровня холестерола и триглицеридов, что сохраняет риск развития рецидива заболевания. 2. Дополнительное включение в схему терапии при жировой дистрофии печени препарата на основе бета-ситостерина и полипренилфосфатов позволяет добиться существенного снижения в сыворотке крови уровня холестерола и триглицеридов уже через 2 недели терапии и профилактировать рецидив болезни. Библиографический список: 1. Анников В.В. Этиологические факторы гиперлипидемии собак/В.В.Анников, М.В.Беляева, Е.О.Лапина//Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии:СПбГавм-№2,2014-С 30-33. 2. Беляева М.В. Дислипидемии собак, вероятность их появления и клинико-биохимические изменения/М.В.Беляева, Ю.А.Фролова//Материалы международной научно-практической конференции «Молодые ученые в решении актуальных проблем науки»: Сб. науч. тр.-Троицк:УГАВМ,2013.-С 132-135 3. Богомолов П.О.Многофакторный генез жировой болезни печени/П.О.Богомолов, А.О.Буеверов// Гепатол.форум,2006 120 4. Горбаков В.В., Калинин А.В., Галик В.П., Каршиева А.В. Гептрал - новое средство лечения диффузных заболеваний печени. Росс. Ж. Гастроэнтерол. Гепатол. Колопроктол. 1998; 4: 98-101. 5. Йорг М. Лаборатория изучения желудочно-кишечного тракта Техасского университета A&M, Колледж Стейшн, Техас, США. Журнал: №6-2012. 6. Логинов А.С.Клиническая морфология печени/А.С.Логинов, А.И.Аруин.-М.:Медицина, 1985-240 с. 7. Подымова С.Д. Болезни печени. М.: Медицина, 2005. 768 с. 8. Comazzi S, Pieralisi C, Bertazzolo W. Haematological and biochemical abnormalities in canine blood: frequency and associations in 1022 samples. J SmAnimPract 2004; 45:343-349. 9. Xenoulis PG, Steiner JM. Lipid metabolism and hyperlipidemia in dogs. Vet J 2010; 183:12-21. FATTY LIVER AND HYPERLIPIDEMIA DOGS. A NEW APPROACH TO TREATMENT V.V.Annikov, M.V.Beljaeva Keywords: fatty liver, hyperlipidemia, beta-sitosterol, polyprenyl, hepatoprotector. In this article, the authors found that after 2 weeks therapy in decreased serum levels of cholesterol, triglycerides, ALT. After 2 months of treatment cholesterol level was at the upper limit of normal, which creates prerequisites for the recurrence of hepatic steatosis. In the experimental group of animals at the end of the experiment the content of cholesterol and triglycerides found within the physiological range. УДК 619:591.22:616.23 ЭТИОЛОГИЧЕСКИЕ АСПЕКТЫ И КЛИНИКОЭЛЕКТРОКАРДИОГРАФИЧЕСКИЕ ИЗМЕНЕНИЯ ПРИ ОБСТРУКТИВНОМ БРОНХИТЕ СОБАК В.В. Анников, доктор ветеринарных наук, профессор тел. 89170246405, vetdoc-annikov@mail.ru Д.А. Широбокова, аспирант тел. 89371444277, DashaShirobokova9@mail.ru ФГБОУ ВПО «Саратовский государственный аграрный университет имени Н.И. Вавилова» Ключевые слова: собаки, обструктивный бронхит, легкие, кашель, патогенез обструкции, ЭКГ при обструктивном бронхите, мониторинг этиологии при обструктивном бронхите. В работе рассматривается вопросы этиопатогенеза и электрокардиографические изменения при обструктивном бронхите собак. Основными причинами данной патологии, по мнению авторов, стали: хроническая сердечная недостаточность, хламидиоз, хроническая почечная недостаточность, инфекционный трахеобронхит. Реже обструктивный бронхит собак вызывали: микоплазмоз, бронхопневмония и дирофиляриоз. Авторы утверждают, что электрокардиографические изменения при обструктивном бронхите заключаются в изменении электрической оси сердца ++, признаках ишемии ++, наличии патологического интервала Q ++. 121 Введение: Хронический обструктивный бронхит – это хроническое воспалительное заболевание бронхиального дерева, сопровождающееся обструкцией (сужением) бронхов. [6] Из данных гуманитарной медицины известно, что развитие бронхиальной обструкции обусловлено сложной морфофункциональной перестройкой стенки бронхиального дерева на всем протяжении под воздействием преимущественно вирусных и бактериальных агентов, а так же токсических и химических с развитием в ней персистирующего воспаления (основные клетки – нейтрофилы, эозинофилы, макрофаги, тучные клетки). Провоцирующее действие указанных патологических факторов приводит к утолщению (вначале обратимому) стенки бронхов вследствие отека подслизистого слоя и гиперплазии расположенных в нем бронхиальных желез, гладкой мускулатуры, фиброзным изменениям. Уже на ранних этапах развития патологического процесса определяется усиление секреторной активности бокаловидных клеток, увеличение их количества, что сопровождается повышением продукции слизистого секрета с большой молекулярной массой. Указанные изменения сопровождаются снижением функциональной активности микроворсинок мерцательного эпителия, нарушениями в системе суфрактанта. [2] Следствием всех вышеуказанных изменений является мукоцилиарная недостаточность, сужение просвета воздухоносных путей и увеличение бронхиального сопротивления. Нужно отметить, что бронхиальная обструкция и мукоцилиарная недостаточность являются стадиями одного патологического процесса. В первой стадии преобладает мукоцилиарная недостаточность, а во второй – бронхиальная обструкция. Авторы утверждают, что бронхиальной обструкции не может быть без мукоцилиарной недостаточности. [2] Процессы, происходящие в бронхах и бронхиолах, переходят на альвеолы, и развивается хроническая обструктивная болезнь легких (ХОБЛ) (без астматического компонента). [4] В существующей классификации гуманитарной медицины обструктивный бронхит входит в группу хронических обструктивных болезней легких, куда относятся так же острый и хронический обструктивный бронхит, бронхолитиаз, бронхоэктазия.[6] В ветеринарной медицине тоже есть такие нозологические единицы, но информация по ним недостаточна. [5] 122 Известно лишь, что различают следующие факторы риска развития обструктивного бронхита: а) повторяющиеся бактериальные инфекции (сальмонеллез, стафилококкоз, стрептококкоз, колибактериоз (эшерихиоз), бруцеллез, бордетеллиоз, иерсиниоз, гемофилез и др.); б) воздействие на дыхательные пути любых раздражителей (химические, токсикологические, нахождение животного в запыленном, сыром, не проветриваемом помещении, курение владельца рядом с животным); в) ожирение; г) воспалительные заболевания ротовой полости и гортани. [3] Хронический обструктивный бронхит - это полиэтиологичное заболевание с разнообразием клинического проявления, среди которых основным считается кашель. [3] Более расширенной информации по манифестации этиологии, гемо-биохимическим, газовому составу крови и рентгенологическим изменениям у больных хроническим обструктивным бронхитом животных, мы не нашли. Существующая печатная и интернет информация ограничивается лишь констатацией терминов на вышеозвученную тему. Учитывая актуальность и проблематику данного заболевания, целью нашего исследования явилось определение основных этиологических аспектов и клинико-электрокардиографических изменений при хроническом обструктивном бронхите собак. Материалы для исследования: кровь, электрокардиографические записи, рентгеновские снимки. Методы исследования: Клинический, гематологический, биохимический, ультрасонографический, рентгенологический, электрокардиографический, статистический. Результаты исследований и их обсуждение: Работа выполнялась на базе ФГБОУ ВПО «Саратовский государственный аграрный университет им Н.И. Вавилова» и ветеринарной клиники доктора Анникова (г.Саратов). В основу исследования легли данные, полученные с сентября 2011 по сентябрь 2014 г.г. Для исключения других заболеваний, характеризующихся сходными клиническими признаками, мы проводили клинический осмотр каждого поступившего животного с подозрением на обструктивный бронхит, собирали анамнез, обязательно проводилась термометрия, измерение пульса и дыхательных движе- Диаграмма 1 - Причины возникновения обструктивного бронхита собак Таблица 1 - Некоторые биохимические показатели собак при обструктивном бронхите, развившемся на фоне хронической сердечной недостаточности. (n=36, M±m) Показатели АСТ, U/L К, мкмоль/л ЛДГ, U/L Креатинин, мкмоль/л Норма 9,0-48,5 4,3-6,2 22-210 44,3-138,4 ний, гематологический (MindrayBC-2300) и биохимический (BioSystemsBTS-350) анализ крови животных. Полимеразная цепная реакция (ПЦР) использовалась для исследования смывов со слизистых носа на предмет исключения герпесвирусной инфекции, аденовироза (респираторный), гриппа. Отмечено несколько положительных результатов по инфекционному трахеобронхиту (7 собак). Иммуноферментный анализ (ИФА) венозной крови позволил нам подтвердить у 13 собак хламидиоз и у 6 собак микоплазмоз. Ультразвуковое исследование органов брюшной полости(аппарат MyLab 40), проводили для определения оптической плотности, границ и топографии органов. Запись электрокардиограммы проводилась на аппарате Геолинк. Дешифровку электрокардиограмм осуществляла штатный кардиолог. Из 5076 пациентов, доставленных в ветеринарную клинику, обструктивный бронхит диагностировали у 87 пациентов (1,7 %). При анализе причин возникновения обструктивного Результаты 84,5±6,9 6,8±0,5 360±55 378±21,6 бронхита у собак установлено, что в 41,3 % случаев первопричиной стала хроническая сердечная недостаточность (ХСН), в 17,2 % случаев - хламидиоз, в 11,4 % - инфекционный трахеобронхит, в 10,3 % - хроническая почечная недостаточность (ХПН). Помимо этого, в этиологической структуре обструктивного бронхита играли важную роль: бронхопневмония (8,04%), микоплазмоз (5,7%), дирофиляриоз (5,7%). (Диаграмма №1) При гематологическом исследовании нами у больных обструктивным бронхитом выявлены: эритропения (4,96±0,84), анемия (131±4,85) и снижение гематокрита (28,9±3,6). При биохимическом отмечали незначительное повышение аланинаминотрансферазы (61,7±3,8), аспартатаминотрансферазы (84,5±6,9) и щелочной фосфатазы (139±8,5). У некоторых животных была повышена концентрация креатинина (378±21,6) и мочевины (16,7±3,4), как показатель почечной недостаточности, что,возможно,явилось причиной обструктивного бронхита. (Таблица № 1) Породная и половая предрасположенность к обструктивному бронхиту у собак не была вы- 123 явлена, чаще обструктивный бронхит регистрировался у собак с излишним весом (74%), что подчеркивает взаимосвязь ХСН, обструктивного бронхита и ожирения. Результаты исследований: У больных обструктивным бронхитом при ХСН клинически отмечали быструю утомляемость, и даже вялость, анемичность слизистых оболочек, положительный трахеальный рефлекс, «мягкий» кашель вместе с одышкой, тахикардия. Рентгенологически — венозный легочный застой и кардиомегалию. При расшифровке электрокардиограмм отмечали перегрузку предсердий ++, расширение зубцов QRS ++, увеличенный интервал Р – Q, желудочковые нарушения ритма ++++, блокада левой ножки пучка Гисса +++ - QRS пролонгированные, QRS широкие и положительные в отведениях I, II, III, и aVF, и иногда мерцательную аритмию ++++. [1] У больных обструктивным бронхитом хламидиозной этиологии клинически выявляли гнойные конъюнктивиты, риниты, «мягкий» кашель, аборты, рождение нежизнеспособного приплода. Рентгенологическая выявляли обструкцию бронхов. На электрокардиограмме – тахикардию, смещение сегмента RS-Т вверх от изоэлектрической линии¸ уменьшение амплитуды зубцов P и R. У больных инфекционным трахеобронхитом выявлено повышение температуры, угнетение, сухой кашель, положительный кашлевой рефлекс. На рентгенограммах отмечались серые пятна в дистальных отделах бронхов. В ЭКГ отклонений обнаружено не было. У больных обструктивным бронхитом, инициированным хронической почечной недостаточностью, выявили анорексию, повышенную жажду, потерю веса, депрессию, в некоторых случаях были отмечены понос и рвота, бледность слизистых. Рентгенологически — венозный легочной застой, склерозированиепочечной лоханки. По ЭКГ отмечено рандомное (случайное) увеличение и уменьшение интервала R-R. У больных обструктивным бронхитом при бронхопневмонии отмечали резкое угнетение, вялость, слабость, отказ от корма, жажду, лихорадку, кашель, жесткое дыхание и влажные хрипы в легких. На рентгенограммах было видно усиление бронхиального дерева и обструкция бронхов, кроме того отмечено, что альвеолы были заполнены соединительной тканью. На ЭКГ регистрировали снижение зубцов ком124 плекса QRS (QRS становился шире и деформировался), зубец Т приобретал большую ширину, удлинялись интервалы PQ и QT, сегмент ST смещался. У больных обструктивным бронхитом микоплазмозной этиологии также выявлено поражение верхних дыхательных путей. В частности, отмечались носовые истечения. Температура тела не поднималась, угнетения не наблюдалось. На рентгенограмме отмечено усиление легочного рисунка, в частности долевые, и многодолевые инфильтрации легочной паренхимы, в бронхах и бронхиолах замечено обструктивное наслоение. Электрокардиограмма не претерпевала существенных изменений. У больных обструктивным бронхитом дирофиляриозной этиологии установили снижение веса, слабость и быструю утомляемость, летаргию. У них отмечалась хроническая одышка, сухой кашель, цианоз кожи, хрипы в легких. При кашле иногда отмечали выделение мокроты с кровью. На рентгенограмме - увеличение правого желудочка и легочной артерии. На ЭКГ отмечали брадикардию/брадиаритмию (увеличение интервала R-R), увеличение интервала PQ вследствие нарушений обменных процессов в миокарде. Вывод: Таким образом, обструктивный бронхит собак регистрировался в 1,7% случаев от общего количества больных собак (87 голов из 5076). Основными этиологическими факторами стали: хроническая сердечная недостаточность (41,3%), хламидиоз (17,2%), инфекционный трахеобронхит(11,4%), хроническая почечная недостаточность (10,3%), бронхопневмония (8,0%), микоплазмоз (5,7%), дирофиляриоз (5,7%). Клинически обструктивный бронхит характеризуется снижением активности пациентов, слабостью, потерей массы тела, кашлем при незначительной нагрузке. Из-за повышенной чувствительности трахеи иногда при пальпации отмечается положительный трахеальный рефлекс. При аускультации - свистящее дыхание. Рентгенологически отмечаются усиленный или измененный легочной рисунок, утолщение стенок бронхов («трамвайные рельсы»), нечеткость контуров, повышение прозрачности легочного фона, гипертензия в малом круге кровообращения. На ЭКГ изменение электрической оси сердца ++, признаки ишемии ++, патологический интервал Q ++. Библиографический список: 1. Диагностика ХСН / А. Г. Комолов // Материалы Х Московского Международного ветеринарного конгресса г. Москва. 2004. 7 с. 2. Исследовано в России / Пульмонология и фтизиатрия: электронный журнал. 2011. Режим доступа к журналу. URL: http://pulmonolog.com (дата обращения: 18.12.2014) 3. Коваленко В. Л., Кононов А. В., Казачков Е. Л. Хронический бронхит: патогенез, диагностика, клинико-анатомическая характеристика. Новосибирск: 1998.320 с. 4. Корнеева A.B. Проблема классификации и ультразвуковая диагностика хронических обструктивных болезней бронхов и легких у лошадей: автореферат диссертации кандидата ветеринарных наук. Москва, 2011. с 9. 5. Применение препарата «Ронколейкин» при хронических обструктивных заболеваниях легких у лошадей: метод. Рекомендации / сост. О.В Крячко, О.В. Романова. СПб, 2004. 27с. 6. Уша Б.В., Беляков И.М., Пушкарев Р.П. Клиническая диагностика внутренних незаразных болезней животных.Москва: КолосС, 2003.с 341. ETIOLOGIC ASPECTS AND CLINIC-ELECTROCARDIOGRAPHIC CHANGES WITH OBSTRUCTIVE BRONCHITIS DOGS. V.V.Annikov, D.A.Shirobokova, L.V.Annikova Key words: dogs, obstructive bronchitis, lungs, cough, pathogenesis obstruction. electrocardiography with obstructive bronchitis, monitoring epizootology with obstructive bronchitis. In the work examine questions ethiopathogenesisand electrocardiographic changes with obstructive bronchitis dogs. The authors on the basis of the conducted work is installed, that obstructive bronchitis dogs meet in the 1,7 percent cases from common quantity animals. Principal causes given pathology, by the according to the authors, were: chronic heart failure, chlamydial infection, infectious tracheobronchitis, chronic renal failure. Less obstructive bronchitis in dogs caused: mycoplasmosis, bronchopneumonia and dirofilaria. The authors argue that electrocardiographic changes with obstructive bronchitis are the change in the electrical axis of the heart ++, signs of ischemia++, the presence of pathological interval Q ++. 125 УДК 639.2.05+597.5 ВЛИЯНИЕ УСЛОВИЙ ОБИТАНИЯ НА МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ ПОКАЗАТЕЛИ КРОВИ КАРПА В.В. Ахметова, кандидат биологических наук, доцент Тел 89063930491, verenka1111@mail.ru С.Б. Васина, кандидат биологических наук, доцент Тел 890278200761, ulsveta73@mail.ru ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина» Ключевые слова: рыба, кровь, биохимия, гематология, белок Работа посвящена изучению влияния условий обитания на организм карпа, выращиваемого в ООО «Рыбхоз», расположенного в п. Большие Ключищи Ульяновского района Ульяновской области. Были проведены гематологические и биохимические исследования крови карпа, была выявлена зависимость физико-химического состава воды и морфофункционального состояния организма мальков карпа. Введение. В связи с повышением затрат на производство мясной продукции внимание науки и практики обращено на получение товарной рыбы. Прудовое рыбоводство является отраслью, ориентированной на воспроизводство быстрорастущих видов рыбы в специально оборудованных прудах. С переходом рыбоводства на промышленную основу приобрела актуальность проблема оценки воздействия на рыб неблагоприятных условий выращивания [1,2,3,4,6,8]. Внешние факторы оказывают громадное влияние на обмен веществ рыбы. Из колоссального разнообразия внешних факторов, каждый из которых может при определенной интенсивности оказать то или иное влияние на обмен веществ рыбы, мы возьмем только такие, которые рыба встречает в естественной обстановке. К этим факторам рыба должна быть приспособлена, и в какой - то мере они являются необходимыми условиями существования рыбы. Эти факторы играют особую роль в жизни рыбы, ибо к ним приспособлены физиологические, биохимические и биологические процессы в организме, и без них указанные процессы не могут осуществляться нормально. В течение жизни внешнее становится внутренним, а внутреннее переходит во внешнее. Чтобы раскрыть все эти связи и опосредования, необходимо рассмотреть влияние ряда факторов внешней среды на обмен веществ вообще и на газообмен в частности [1,2,3,4,5,7]. Внешняя среда влияет на все жизненные процессы, происходящие в организме у рыбы: 126 дыхание, питание, кроветворение и кровообращение, нервную деятельность, размножение, рост и развитие [1,4,6,8]. Многообразие функций крови ставит ее в ряд ценных индикаторов состояния отдельной особи и популяции особей данного вида. Функциональные и структурные изменения форменных элементов крови под действием различных экзогенных и эндогенных факторов могут быть причиной нарушения кроветворения на разных этапах онтогенеза рыб, однако исследования в этой области немногочисленны [1,2,3,4,5,7]. Материалы и методы исследований. Исследования проводились в условиях прудового хозяйства «ООО Рыбхоз», расположенного в п. Большие Ключищи Ульяновского района Ульяновской области. Для решения поставленных задач с июня по сентябрь 2013 года и в 2014 году проведены ряд исследований. Ежедневно определялась температура воды на поверхности, на глубине 1 м. ежемесячно определялись гидрохимические показатели по стандартным методикам. Пробы отбирали согласно унифицированным правилам отбора проб сельскохозяйственной продукции, продуктов питания и объектов окружающей среды для лабораторных исследований (ГОСТ 7731-85). Пробы крови брали ежемесячно у молоди карпа в достаточном количестве. Определение биохимических показателей в пробах сыворотки крови рыб проведено с помощью биохимического фотометра СТАТ ФАКС 1904® ПЛЮС и набо- Таблица 1 - Физико – химические показатели воды Показатель Периоды исследования Июль Август + 20 +17-18 3,7 3,5 20 20 10,0 9,0 8,7 8,7 7,5 7,5 0,45 0,4 Июнь + 16 3,5 25 6,2 8,8 7,6 0,4 Температура воды, °C Общая жесткость экв/л Цветность, град. Содержание кислорода, мг/л Свободная углекислота, мг/л рН Азот аммонийный, мг/л Сентябрь +15-17 3,6 25 8,0 8,7 7,5 0,45 Таблица 2- Гематологические показатели крови мальков рыб Показатель Норма Эритроциты, * 10¹² Т в л Лейкоциты, * 109 в л Гемоглобин, г/л СГЭ, пг 0,5-2,0 4,9-8,1 30-100 50-80 Июнь 0,59±0,027 5,6±0,173 47,0±1,225 79,66 Периоды исследования Июль Август 0,66±0,029 0,60±0,032 5,6±0,374 5,7±0,23 53,0±1,414 48,0±2,324 80,3 80,0 Сентябрь 0,52±0,015 5,4±0,21 45,6±1,432 91,0 Таблица 3 - Гематологические показатели крови карпа Показатель Эритроциты, * 10¹² Т в л Лейкоциты, * 109 в л Гемоглобин, г/л СГЭ, пг ров производства ООО «Эйлитон» по заказу ЗАО «А/О ЮНИМЕД». Физические свойства воды (мутность, цветность) были проведены по общепринятым методикам. Химический состав воды был проведен прибором «Эксперт - 001». В хозяйстве зарыбляют пруды собственным рыбопосадочным материалом весом 25 … 40г. Пересадку из зимовальных прудов в нагульные проводят в ночные часы, чтобы во время перевозки не нагревалась вода. Кормление было двухразовое на кормовых дорожках. Для определения правильности кормления рыбы, кроме всех выше перечисленных проб, необходимо проводить каждые 15 дней контрольные отловы. При этом отлов проводился из разных участков пруда, отлавливали 1% от общего количества рыбы. Отловленную рыбу взвешивали, определяли ее физиологическое состояние, наличие заболеваний. Результаты контрольных отловов записывали в Норма 0,5-2,0 4,9-8,1 30-100 50-80 2-х летний карп 0,62±0,022 5,338±0,372 52,4±3,5 84,52 специальный журнал. Установленную среднюю массу сравнивали с плановой массой. Также проводился расчет средних значений каждого показателя, минимальное и максимальное значение, а так же ошибки среднего значения. Вычисления проводились с помощью стандартных статистических методов. Результаты исследований и их обсуждение. Для разведения карпа вода должна соответствовать ОСТ 15.372 - 87, который предусматривает качество воды для прудов данной категории. Результаты исследований представлены в таблице 1. Проведенные исследования говорят о том, что качество воды соответствует ОСТ 15.372-87 и пригодна для выращивания карповых рыб. В результате многолетних исследований воды наблюдались годовые отклонения в различных показателях в рамках допустимых значений. Вода в ООО «Рыбхоз» соответствует нор- 127 Таблица 4- Биохимические показатели крови мальков карпа с июня по сентябрь 2013 Показатель Общий белок, г/л Глюкоза, ммоль/л Мочевина, ммоль/л Креатинин, мкмоль/л Билирубин, мкмоль/л Холестерин, ммоль/л Фосфор, ммоль/л Норма 10-30 1,5-4,0 1,83- 6,2 Июнь 9,06±0,06 1,56±0,006 5,2±0,3 Июль 14,5±0,31 1,57±0,021 5,13±0,03 Август 24,2±0,32 2,18±0,002 5,2±0,03 Сентябрь 28,90±0,40 2,29±0,013 5,20±0,005 0,27-0,8 0,34±0, 01 0,42±0,012 0,59±0,07 0,59±0,071 12,0-36,0 24,4±0,2 24,08±5,5 25,9±0,78 26,20±0,60 1,94-3,9 2,8±0,1 2,5±0,08 3,4±0,24 2,70±0,02 0,4- 9,6 4,26±0,14 5,4±0,09 5,5±0,02 5,80±0,01 Таблица 5- Биохимические показатели крови карпа Показатель Общий белок, г/л Глюкоза, ммоль/л Мочевина, ммоль/л Креатинин, мкмоль/л Билирубин, мкмоль/л Холестерин, ммоль/л Фосфор, ммоль/л Норма 10-30 1,5-4,0 1,83- 6,2 0,27-0,8 12,0-36,0 1,94-3,9 0,4- 9,6 мативным актам и пригодна для выращивания карповых рыб. Незначительные изменения состава водоема связанные с естественными причинами не оказало существенного влияния на содержание в крови количества гемоглобина и числа эритроцитов, так как карпы отличаются достаточно высокой приспособляемостью к снижению содержания кислорода в воде (таблица 2, 3). До конца исследования количество гемоглобина, число эритроцитов и лейкоцитов было в пределах физиологических норм. Наблюдаемые изменения были связаны со сменой сезона года, то есть температурного режима водоема, длиной светового дня. Фактор сезонности и определяющие его температурные колебания тесно связаны с активными физиологическими процессами: интенсивностью питания, половым созреванием и др. Они оказывают заметное влияние на активность гемопоэза, а, следовательно, и на динамику показателей крови [1,2,3,4,5,7]. Гемограммы молоди карпа показали, что повышенный темп их роста в выростном пруду сопровождался более низким содержанием ге128 2-х летний карп 26,18±3,57 1,740±0,152 3,25±0,68 0,260±0, 017 24,4±0,2 1,985±0,096 10,99±0,195 моглобина (45,5-53,0 г/л), числом эритроцитов (0,52-0,66 * 10¹² в л). Прослеживается тенденция между концентрацией гемоглобина, числом эритроцитов и оснащенностью их гемоглобином. Колебания концентрация гемоглобина и числа эритроцитов не значительны, но содержание гемоглобина в эритроците (СГЭ) остается достаточно высоким на всем протяжении исследований. Понижение количества гемоглобина и эритроцитов может зависеть от воздействия многих токсических факторов, к этому может приводить также нехватка кислорода в воде. Насыщение эритроцита гемоглобином (СГЭ, пг) во все периоды исследования соответствовало норме. Динамика этих показателей свидетельствует о проявлении адаптивных механизмов крови к условиям содержания, интенсивным обменом веществ. Полученные гемограммы целесообразно использовать в качестве технологической нормы при индустриальном выращивании карповых. «Белая» кровь исследуемых особей карпа носила ярко выраженный лимфоидный харак- тер. Абсолютное количество лейкоцитов в крови рыб было в пределах нормы. Изученные морфофизиологические показатели мальков карпа при выращивании в прудах выявили умеренную концентрацию гемоглобина, повышенным содержанием лейкоцитов. К осени отмечается снижение количества гемоглобина. Величина концентрации гемоглобина крови карпа летом и осенью связана с условиями обитания, определяется различиями в затратах энергии на адаптацию к химическому составу воды, к негативному влиянию метаболитов рыб [4,5,7]. У двухлеток карпа концентрация гемоглобина (52,4 г/л), количество эритроцитов (0,62 * 10¹² в л) и лейкоцитов (5,338 * 109 в л) находилось ближе к нижней границе нормы, а насыщение эритроцита гемоглобином (СГЭ – 84,52 пг) было, наоборот, свыше нормативных показателей. Подобная картина характерна в связи с достижением половозрелого возраста и со снижением по отношению к потребностям организма рыбы кислорода в воде [1,4,5,7]. Содержание белка и его фракций в сыворотке крови наиболее часто используется в качестве индикатора общего состояния здоровья рыб. По морфофункциональным и биохимическим показателям крови рыб можно получить информацию о состоянии водной экосистемы. Такие показатели как концентрация глюкозы, холестерина, мочевины являются информативными биомаркерами для оценки состояния рыб [1,4,5,7]. Анализ этих параметров позволяет охарактеризовать устойчивость рыб к действию различных экологических факторов и их адаптационные возможности. Исследования содержания белка в крови рыб показывают, что его количество колеблется в значительных размерах не только среди всего класса рыб, но и в пределах одного вида. Эти колебания связаны с обменом веществ и определяются интенсивностью и характером питания. Высокое содержание белка в пределах установленных норм является благоприятным признаком; значительные потери белка связаны со снижением жизнестойкости и могут сопровождаться гибелью рыб. Низкие значения указывают на истощение, инфекционные болезни, повреждение почек [1,4,5,7]. Проведенные исследования показали, что на момент посадки мальков карпа в выростной пруд отмечается низкая концентрация общего белка в сыворотке крови (9,06 г/л) и фосфора (0,26 ммоль/л). Как показали проведенные исследования, содержание белка и фосфора в сыворотке крови изученных рыб была ниже физиологической нормы, так как в течение первого месяца жизни происходит наиболее интенсивное формирование фракционной структуры гемоглобина и сывороточных белков у молоди рыб [1,4,5,7]. В дальнейшем, по мере увеличения возраста и накопления массы тела, нормализуются обменные процессы, протекающие в организме, и увеличивается концентрация общего белка, глюкозы, фосфора и незначительно холестерина в сыворотке крови. Результаты наших исследований подтвердили эти данные. У мальков в ходе исследования отмечено повышение концентрации общего белка с 9,06 до 28,9 г/л в сыворотке крови, глюкозы с 1,56 до 2,29 ммоль/л. Кроме того, увеличивается и уровень фосфора с 4,26 до 5,8 ммоль/л. Высокая оснащенность организма белками глюкозой является благоприятной предпосылкой для оптимизации обменных процессов и гарантии высокой неспецифической резистентности [1,4,5,7]. Одним из информативных биохимических показателей физиологического состояния живых организмов является содержание сахара (глюкозы) в крови. Проведенные исследования позволили выявить, что у мальков карпа уровень сахара в крови с возрастом увеличивается. У рыб этот показатель находится в пределах от 1,56 до 2,29 ммоль/л (табл. 4,5). Уровень глюкозы был в пределах физиологических норм, хотя динамично увеличивался. Эти колебания связаны с обменом веществ и определяются интенсивностью и характером питания. При этом резкий скачок концентрации глюкозы указывает на состояние острого или хронического стресса у рыб. У половозрелых карпов количество глюкозы установилось в пределах 1,74 ммоль/л [1,4,5,7]. Содержание холестерина в сыворотке крови мальков находилось в пределах от 2,5 до 3,4 ммоль/л, т.е. в диапазоне физиологической нормы. При этом уровень билирубина (косвенно связанный с холестерином), в пределах физиологических норм, и концентрация его существенно не возросла с 24,4 до 26,2 мкмоль/л. Концентрация креатинина, а точнее его тенденция к увеличению с 0,3417 до 0,5941 мкмоль/л, дает возможность нам предположить, что в связи с интенсивным ростом мальков повышается их двигательная активность (поиск корма). 129 При достижении товарной массы карпа уровень общего белка, глюкозы, холестерина и других показателей находился в пределах физиологических норм для данного возрастного периода и характеристик среды обитания в исследуемый сезон года. Настоящий уровень показателей физиолого – биохимического статуса организма половозрелых рыб объясняется мобилизацией пластических и энергетических резервов их организма для достижения соответствующей массы тела в данном возрасте для данного сезона года [1, 4, 5, 7]. Заключение. Сравнение гематологических и биохимических показателей крови рыб, выловленных из выростного пруда ООО «Рыбхоз» ука- зывает на отсутствие неблагоприятных факторов в этом районе. Следовательно, выростной пруд ООО «Рыбхоз» может служить в качестве контрольного полигона при мониторинге состояния популяций рыб в других регионах. В результате проведенных исследований была выявлена зависимость гематологических и физиолого - биохимических показателей крови карпа от места его обитания и высокую приспособляемость его крови к изменениям физико - химических свойств окружающей среды. Динамика изучаемых показателей констатирует о нормальном росте и развитии мальков карпа в выростном пруду ООО «Рыбхоз» и подготовке его к зимовке. Библиографический список: 1. Бичарева О. Н. Возрастная динамика микроэлементарного состава и некоторых биохимических показателей крови рыб водоемов Астраханской области: автореферат дис.… доктора биологических наук/ О.Н. Бичарева. - Астрахань, 2011.- 20с. 2. Головина Н. А. Гематология прудовых рыб: учебник/ Н.А. Головина, И.Д. Тромбицкий. - Кишинев: Штинница, 1989. - 155 с. 3. Житенева Л.Д. Эколого- гематологические характеристики некоторых видов рыб: справочник/ Л.Д. Житенева, О.А. Рудницкая, Т.И. Калюжная. -Ростов – на-Дону,1997.- 149 с. 4. Сементина Е. В. Ихтиогематологические показатели как критерий условий выращивания и обитания рыб: дис. ... кандидата биологических наук: 03.02.06 / Сементина Евгения Владимировна - Калининград, 2011.- 241 с. 5. Бурыкин, А.В. Влияние изменения химического состава воды пруда с. Полдомасово на гематологические показатели рыб/ А.В. Буркин, В.В. Ахметова, С.Б. Васина //Сборник материалов всероссийской студенческой научно – практической конференции «В мире научных открытий».- Ульяновск: УГСХА, 2012. –с. 125-128. 6. Макшанова, К. А. Выращивание молоди карпа в условиях выростного пруда ООО «Рыбхоз» Ульяновского района Ульяновской области /К.А. Макшанова, С.Б. Васина //Сборник материалов всероссийской студенческой научно – практической конференции «В мире научных открытий».- Ульяновск: УГСХА, 2013. –С. 34-37. 7. Егорова А.Р. Влияние изменения химического состава воды пруда ООО «Рыбхоз» на приспособительные качества организма рыб/ А.Р. Егорова, С.Б. Васина//Сборник материалов всероссийской студенческой научно – практической конференции «В мире научных открытий». - Ульяновск: Том 6. УГСХА, 2014. –С. 42-45. 8. Гасанов, Л. Ш. Природно - климатические условия и физико - химические показатели прудов рыбхоза «ИП Гасанов» Сенгилеевского района Ульяновской области / Л.Ш. Гасанов, В.В. Наумова, С.Б. Васина// Материалы Международной научно - практической конференции «Аграрная наука и образование на современном этапе развития: опыт, проблемы и пути их решения» 22 - 24 ноября 2012 года: сборник научных трудов. Том I. - Ульяновск: УГСХА, 2012. –С. 84-89. INFLUENCE OF HABITAT ON THE PARAMETERS OF BLOOD MORPHOFUNCTIONAL CARP V.V.Akhmetova, S.B.Vasina Key words: fish, blood biochemistry, hematology, protein The paper studies the influence of environmental conditions on the body of carp grown in LLC “Rybhoz”, located in Sec. Large Klyuchischi Ulyanovsk region Ulyanovsk region. Were hematological and biochemical blood tests carp was revealed the dependence of physical - chemical composition of the water and morpho - functional state of the organism carp fry. 130 УДК: 619:616.071:636.7 К ВОПРОСУ О РЕНТГЕНОЛОГИЧЕСКОЙ ДИАГНОСТИКЕ ЗАБОЛЕВАНИЙ ЖЕЛУДКА У МЕЛКИХ ДОМАШНИХ ЖИВОТНЫХ А.В. Бурмистрова, врач рентгенолог УНИЛ «Лучевой диагностики» ФГОУ ВПО «Саратовский государственный аграрный университет им. Н.И. Вавилова» тел. +79173219438, veterinarniy-vrach@ya.ru Ключевые слова: гастрит, собаки, рентгенология, рентгенодиагностика Работа посвящена уточнению клинико-рентгенологической диагностики гастритов у собак. В статье приводятся основные сравнительные данные клинических и рентгенологических исследований животных больных заболеваниями желудка. Выполнен анализ основных рентгенологических признаков различных видов гастритов у собак. Введение. Заболевания желудочно-кишечного тракта у мелких домашних животных имеют широкое распространение, остаются актуальной проблемой современной ветеринарной медицины и заслуживают особое внимание [2,3]. В общей структуре гастроэнтерологической патологии, как у человека, так и у мелких домашних животных наиболее часто встречаются гастриты [1,10]. К сожалению, диагностика гастритов у собак и кошек практикующими ветеринарными врачами ограничивается общими методами исследования, однако они являются неточными и лишь позволяют сделать предположение о наличии у животного гастрита [4,6]. Общеизвестно, что острые гастриты, в случае несвоевременной диагностики переходят в хронические, осложняются эрозивными процессами и изъязвлениями, что нередко ведет к гибели или выбраковке животного [8]. Таким образом, актуальность своевременной и достоверной диагностики гастритов у мелких домашних животных, с применением инструментальных методов исследования, становится совершенно очевидной. Материалы и методы исследований. Для уточнения клинико-рентгенологических изменений различных, возникающих при различных формах гастритов, нами было проведено комплексное обследование 52 собак с различными патологиями передних отделов пищеварительной системы, среди которых у 37 (71,2%), были выявлены признаки гастрита. Диагноз устанавливали комплексно, учитывали анализ анамнестических данных, клиническую симптоматику, лабораторные показатели, а так же данные рентгенологического, эндоскопического и морфологического обследования. При рентгенологическом исследовании желудка проводили оценку тонуса, перистальтики, деятельности привратника, эвакуации содержимого желудка. Особое значение придавали тщательному изучению рельефа слизистой оболочки: определяли количество складок, их направление, толщину, высоту, прерывистость и эластичность. Для рентгенологического исследования желудка у собак использовали передвижной рентгеновский аппарат 12П6. В качестве рентген-контрастного вещества применяли взвесь бария, приготовленную из расчёта 100-150 грамм на 200 мл, воды. Введение контрастного вещества проводили при помощи универсального зевника [8]. Следует отметить, информативность рентгенологического исследования желудка зависит от чёткого соблюдения существующих методик рентгенологического исследования [5,7]. Результаты исследований и их обсуждение. По итогам проведённой работы было установлено, что диапазон клинических симптомов, обусловленных гастритом, очень широк и различные патологические состояния желудка могут иметь схожие симптомы. Несмотря на то, что при гастритах непременно снижается функциональное состояние пищеварительной системы, с помощью традиционных общих клинических и лабораторных методов исследования подтвердить эти нарушения не всегда представляется невозможным. У животных нами выявлялись те или иные симптомы, связанные с гастритом, но в некоторых случаях, клиническая картина была весьма неспецифична, и соответственно, не могла являться надежным диагностическим критерием. Рентгенологическое исследование позволило выявить две группы признаков характерных 131 для гастритов - изменение рельефа слизистой оболочки желудка и нарушение функции желудка. При остром катаральном гастрите (27 наблюдений) определялось повышение тонуса желудка, усиление перистальтики, набухание складок слизистой оболочки и нечеткость контуров из-за наличия слизи. При хроническом гастрите характер рентгенологических изменений зависит от его типа: при хроническом поверхностном гастрите (11 животных) перестройка рельефа слизистой имела схожие с острым катаральным гастритом изменения, но отмечалось более выраженное утолщение складок слизистой, а также большое количество жидкости и слизи натощак. При атрофическом гастрите (7 животных) наблюдали уплощение складок слизистой оболочки вплоть до полного их исчезновения - поверхность слизистой оболочки становилась почти гладкой. Отдельные складки слизистой желудка не прослеживаются, контуры желудка имеют гладкую или мелкобугристую конфигурацию. Функциональные нарушения проявлялись в виде понижения тонуса и снижением секреции натощак. Для гипертрофического гастрита (5 наблюдений) характерно утолщение и уплотнение складок слизистой оболочки желудка. Диаметр деформи- рованных складок от 3 до 5 мм. При тугом наполнении контрастным веществом определяется резко выраженная зазубренность большой кривизны тела желудка. Гастрит, сопутствующий язвенной болезни (наблюдали у 2 животных), рентгенологически выражается в утолщении складок слизистой желудка - они извиты, беспорядочно расположены и принимают вид полипообразных дефектов наполнения. Из прямых признаков язвенной болезни нами выявлялся симптом ниши, имеющий вид выступа или конуса на контуре тени желудка. Излюбленная локализация язвенных дефектов малая кривизна и пилорический отдел желудка. Заключение. Среди всех патологий передних отделов пищеварительной системы у плотоядных гастриты являются наиболее распространенным заболеванием и составляют 71,2%. Рентгенологическое исследование позволяет выявить основные группы признаки характерные для гастритов: изменение рельефа слизистой оболочки желудка и нарушение функции желудка. Благодаря рентгенологическому методу исследования представляется возможным диагностировать следующие виды гастритов: катаральный (острый и хронический), атрофический, гипертрофический гастрит. Библиографический список: 1. Антонович В.Б. Рентгенодиагностика заболеваний пищевода, желудка и кишечника. – М.: Медицина, 1987.-С. 64-72. 2. Белов, А. Д., Болезни собак / А. Д. Белов, Е. П. Данилов, И. И. Дукур, В.Н. Митин [и др.]. – 3-е изд., перераб., доп. – М.: «Че-РО»,«TREADE PUBLISHER», 1994. – 368 с.: ил. 3. Волков А.А. Морфологические критерии, клинико-диагностическая тактика обследования и лечение собак с эзофагеальной и гастродуоденальной патологией: диссертация на соискание ученой степени доктора ветеринарных наук/Донской государственный аграрный университет. Б.м., 2009. 4. Волков А.А. Нарушения функций желудка в рентгеновском изображении // Аграрный научный журнал. 2008. № 1. С. 10-11. 5. Волков А.А. Совершенствование методики рентгенологического исследования передних отделов пищеварительной системы у собак // Аграрный научный журнал. 2008. № 4. С. 16-17. 6. Волков А.А. Уточнение нормальной рентгенологической картины пищевода, желудка и двенадцатиперстной кишки у собак // Аграрный научный журнал. 2008. № 5. С. 11-12. 7. Волков А.А., Салаутин В.В., Дмитриева М.В. Рентгенологическое исследование передних отделов пищеварительной системы у собак и анализ ошибок, допускаемых ветврачами // Аграрный научный журнал. 2008. № 6. С. 13-16. 8. Ермолаев В.А., Липатов А.М., Шишков Н.К., Золотухин С.Н., Липатова О.А . Способы введения лекарственных веществ различным видам животных/ Учебно-методическое пособие // Ульяновск, 1995. 9. Степанов В.С., Волков А.А., Козлов С.В., Староверов С.А., Волкова А.П., Субботин А.М. Морфобиохимические показатели крови у животных при некоторых заболеваниях пищеварительной системы // Ученые записки учреждения образования «Витебская ордена «Знак почета» государственная академия ветеринарной медицины». 2011. Т. 47. № 2-1. С. 207-211. 10. Шумилин Ю.А., Никулин И.А. Мегаэзофагус у собак и кошек // Вестник Воронежского государственного аграрного университета. 2013. № 4. С. 176-179. 132 TO THE QUESTION OF RADIOLOGICAL DIAGNOSISDISEASES OF THE STOMACH HAVE SMALL PETS A.V.Burmistrova Key words: gastritis, dog, radiology, diagnostic radiology The work is devoted to the refinement of clinical and radiological diagnosis of gastritis in dogs. The article presents the basic comparatives data from clinical and radiological examinations of animals with diseases of the stomach . The analysis of the main radiological signs of different types of gastritis in dogs. УДК 619:616-07 УТОЧНЕНИЕ РЕНТГЕНОЛОГИЧЕСКИХ ПРИЗНАКОВ ЯЗВЕННОЙ БОЛЕЗНИ ЖЕЛУДКА И ДВЕНАДЦАТИПЕРСТНОЙ КИШКИ У СОБАК А.П. Волкова, врач рентгенолог УНИЛ «Лучевой диагностики» +79173131101, volkova-anuta@yandex.ru Э.С. Давтян, аспирант +79173027443, freefauna@yandex.ru ФГОУ ВПО «Саратовский государственный аграрный университет им. Н.И. Вавилова» Ключевые слова: язвенная болезнь, гастрит, собаки, рентгенология, рентгенодиагностика Работа посвящена уточнению рентгенологических признаков язвенной болезни желудка и двенадцатиперстной кишки у собак. Изучены основные клинико-рентгенологические признаки язвенной болезни желудка и двенадцатиперстной кишки у собак. Описаны стадии формирования язвенного дефекта. Введение. Язвенной болезни желудка и двенадцатиперстной кишки у мелких домашних животных, в частности собак, до недавнего времени не уделялось должного внимания [3,4]. И, несмотря на возросшую за последние десятилетия популярность собаководства, этиология, патогенез, диагностика, лечение и профилактика язвенной болезни желудка и двенадцатиперстной кишки у собак, до сих пор остаются недостаточно изученными [8,9]. Язвенная болезнь нередко приводит к кровотечению и прободение стенки желудка или двенадцатиперстной кишки, а так же вызывает рубцовую деформацию органа [1,2]. Язвенная болезнь желудка и двенадцатиперстной кишки у животных, несомненно, является клинико-анатомическим понятием. В основе данного хронического заболевания с полици- клическим течением лежат сложные этиологические и патогенетические механизмы. Особая роль в диагностике язвенной болезни отводится рентгенологическому исследованию. Задача врача рентгенолога заключается не только в обнаружении язвенного дефекта, определении его положения, величины, формы, и состояния окружающей слизистой оболочки, но и в оценке функций желудка и двенадцатиперстной кишки, поскольку распознание специфических функциональных расстройств, позволяет выявить ряд косвенных симптомов язвенной болезни [5]. Традиционно, в течении язвенной болезни выделяют стадию предъязвенного состояния, начальную стадию, стадию сформировавшегося язвенного дефекта, стадию осложнений. В нашей работе нами были изучена рентгенологическая семиотика предъязвенно- 133 го состояния желудка и двенадцатиперстной кишки у собак. Материалы и методы исследований. Для уточнения основных клинико-рентгенологические признаков начальной стадии язвенной болезни желудка и двенадцатиперстной кишки у собак, нами было проведено комплексное обследование 12 собак различных пород и возрастов, у которых было выявлено язвенная болезнь в начальной стадии. Диагноз устанавливали комплексно: на основании анамнестических данных, клинической картины, данных лабораторных исследований желудочного содержимого, а так же учитывая результаты рентгенологического, эндоскопического и морфологического обследования. Для рентгенологического исследования желудка у собак использовали передвижной рентгеновский аппарат 12П6. В качестве рентген-контрастного вещества применяли взвесь сульфата бария, приготовленную из расчёта 100-150 грамм на 200 мл. воды. Введение контрастного вещества проводили при помощи специального зевника. Учитывая, что информативность рентгенологического исследования желудка зависит от чёткого соблюдения существующих методик рентгенологического исследования [7], нами использовалась поэтапная методика введения контрастного вещества [6,8]. Результаты исследований и их обсуждение. У больных животных наблюдали клиническую картину, ведущими симптомами которой являются - рвота, в т.ч. с кровью, анорексия или изменчивый аппетит. Наблюдался болевой синдром, который характеризовался периодичностью, нарастающим характером, тесной связью с приемом корма, исчезновением или уменьшением после рвоты. Болезненность при пальпации локализовалась чаще всего в эпигастрии. Так же частыми симптомами являлись отрыжка, срыгивание и саливация. Рентгенологические признаки: в желудке натощак наблюдали значительное количество гиперсекреторной жидкости и слизи, которое у некоторых животных увеличивалось в процессе исследования. Бариевая взвесь вначале тонет в жидкости, оседая на комках слизи в виде хлопьев, складки слизистой оболочки в этот момент не видны, и только после эвакуации значительного количества содержимого под действием 134 пальпации бариевая взвесь смешивается с ним, после чего становится возможным изучение рельефа слизистой оболочки. Рельеф слизистой оболочки представлен крупными, извитыми, часто поперечно расположенными складками слизистой оболочки. У 3 животных, поступление первых порций бариевой взвеси привело в движение содержимое желудка, в результате бариевая взвесь в виде крупных комков совершала беспорядочные движения, создавая впечатление, что содержимое желудка «бурлит». Тонус желудка несколько снижен, перистальтика вялая, желудок умеренно растянут. У 4 животных наблюдался начальный кратковременный спазм пилоруса, после чего тонус желудка повышался, наблюдалась глубокая перистальтика и ускоренная эвакуация бариевой взвеси из желудка в двенадцатиперстную кишку. Пилорический отдел раздражён, содержит слизь, быстро освобождается от контрастного вещества, ввиду чего определить его истинную форму не представилось возможным, складки слизистой оболочки также не видны. У 3 животных наблюдали дуоденогастральный рефлюкс: после поступления бариевой взвеси в нисходящий отдел двенадцатиперстной кишки она вновь забрасывалась в желудок. Так же отмечались функциональные расстройства в петлях тонкой кишки. У 2 больных животных наблюдалась недостаточность кардиального сфинктера. У всех исследуемых животных, предъязвенное состояние сопровождалось хроническим катаральным гастритом и гастродуоденитом, которые предшествовали образованию язвы в пилородуоденальной зоне. В 3 случаях выявляли эрозивный гастрит, а также эрозивный дуоденит. В данных случаях наблюдали активную перистальтику, беспорядочную эвакуацию, спазм пилоруса. Заключение. Начальная стадия язвенной болезни имеет достаточно характерные клинико-рентгенологические симптомы. Предъязвенное состояние желудка и двенадцатиперстной кишки характеризуется отсутствием симптома ниши (язвенного дефекта) но как правило сопровождается хроническим катаральным гастритом и гастродуоденитом, предшествующие образованию язвы в пилородуоденальной зоне. Библиографический список: 1. Алипов В.В., Тараскин А.Ф., Челнокова Н.О., Лебедев М.С. Новые способы эндоскопической коррекции гастродуоденальной перфорации в экспериментальной хирургии // Вопросы реконструктивной и пластической хирургии. 2007. № 3-4. С. 22-24. 2. Баширов С.Р., Баширов Р.С., Селезнев Ю.А. Способ формирования экспериментальной модели гигантской пенетрирующей язвы желудка и двенадцатиперстной кишки //патент на изобретение RUS 2338266 30.05.2007 3. Белов, А. Д., Болезни собак / А. Д. Белов, Е. П. Данилов, И. И. Дукур, В.Н. Митин [и др.]. – 3-е изд., перераб., доп. – М.: «Че-РО»,«TREADE PUBLISHER», 1994. – 368 с.: ил. 4. Волков А.А. Морфологические критерии, клинико-диагностическая тактика обследования и лечение собак с эзофагеальной и гастродуоденальной патологией: диссертация на соискание ученой степени доктора ветеринарных наук/Донской государственный аграрный университет. Б.м., 2009. 5. Волков А.А. Нарушения функций желудка в рентгеновском изображении // Аграрный научный журнал. 2008. № 1. С. 10-11. 6. Волков А.А. Совершенствование методики рентгенологического исследования передних отделов пищеварительной системы у собак // Аграрный научный журнал. 2008. № 4. С. 16-17. 7. Волков А.А., Салаутин В.В., Дмитриева М.В. Рентгенологическое исследование передних отделов пищеварительной системы у собак и анализ ошибок, допускаемых ветврачами // Аграрный научный журнал. 2008. № 6. С. 13-16. 8. Ермолаев В.А., Липатов А.М., Шишков Н.К., Золотухин С.Н., Липатова О.А . Способы введения лекарственных веществ различным видам животных/ Учебно-методическое пособие // Ульяновск, 1995. 9. Степанов В.С., Волков А.А., Козлов С.В., Староверов С.А., Волкова А.П., Субботин А.М. Морфобиохимические показатели крови у животных при некоторых заболеваниях пищеварительной системы // Ученые записки учреждения образования «Витебская ордена «Знак почета» государственная академия ветеринарной медицины». 2011. Т. 47. № 2-1. С. 207-211. 10. Шумилин Ю.А., Никулин И.А. Мегаэзофагус у собак и кошек // Вестник Воронежского государственного аграрного университета. 2013. № 4. С. 176-179. REFINEMENT OF RADIOLOGICAL SIGNS OF GASTRIC ULCER AND DUODENAL ULCERS IN DOGS A.P.Volkova, E.S.Davtyan Key words: peptic ulcer, gastritis, dog, radiology, diagnostic radiology The work is devoted to the refinement of radiological signs of gastric ulcer and duodenal ulcers in dogs. Examined key clinical and radiological signs of gastric ulcer and duodenal ulcers in dogs. Are described the formative stage of the ulcer. 135 УДК 619:616-07 ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ РАССТРОЙСТВА ЖЕЛУДКА У МЕЛКИХ ДОМАШНИХ ЖИВОТНЫХ В РЕНТГЕНОЛОГИЧЕСКОМ ИЗОБРАЖЕНИИ А.П. Волкова, врач рентгенолог УНИЛ «Лучевой диагностики» +79173131101, volkova-anuta@yandex.ru Э.С. Давтян, аспирант +79173027443, freefauna@yandex.ru ФГОУ ВПО «Саратовский государственный аграрный университет им. Н.И. Вавилова» Ключевые слова: Функциональные расстройства желудка, ФРЖ, гастрит, собаки, рентгенология, рентгенодиагностика Данная статья посвящена анализу и уточнению рентгенологических признаков функциональных расстройств желудка у мелких домашних животных. Изучены основные клинико-рентгенологические признаки функциональных расстройств желудка у мелких домашних животных. Введение. Функциональные расстройства желудка - это нарушение секреторной и двигательной функции желудка с симптомокомплексом желудочной диспепсии и болевым синдромом без четко определяемых структурных изменений слизистой оболочки [1]. Данное понятие объединяет неоднородную группу заболеваний, в которую принято включать функциональные расстройства желудка как самостоятельную нозологическую форму и вторичные нарушения секреторной и моторной деятельности желудка при других заболеваниях [1,6]. Материалы и методы исследований. Материалом для исследования послужили домашние животные (собаки и кошки) с функциональными расстройствами желудка. Диагноз заболевания устанавливали на основании комплексного обследования включающего анализ анамнестических данных, клинической симптоматики, лабораторных показателей, рентгенологического, эндоскопического и морфологического обследования. Изучение клинического состояния животных проводили общепринятыми методами. Для проведения общего анализа крови и исследования желудочного содержимого использовалось стандартное лабораторное оборудование [7]. Рентгенологическое исследование моторной функции желудка включало оценку тонуса, перистальтики, деятельности привратника и эвакуации содержимого желудка [3,6]. Для рентгенологического исследования желудка у собак использовались стационарный рентгенов136 ский аппарат РУМ-20М и передвижной рентгеновский аппарат 12П6, оснащенные электронно-оптическими преобразователем. Проявление рентгеновских пленок производили обычным, принятым в рентгенологии методом. В качестве рентгеноконтрастного вещества применяли бариевую взвесь, приготовленную из расчёта 100150 грамм на 200 мл. воды [5] . Результаты исследования и их обсуждение. Как показали наши исследования, следует различать расстройства тонической, двигательной и секреторной функций желудка. К расстройствам тонической функций желудка относят понижение тонуса (гипотония), повышение тонуса (гипертония) желудка и регионарные спазмы. Рентгенологические изменения при гипотонии желудка: бариевая взвесь быстро скапливается преимущественно в области дна, увеличивая поперечный размер желудка. Желудок несколько смещён каудально, тонус понижен, рельеф слизистой оболочки и контур большой кривизны сглажен, стенки эластичные. Газовый пузырь вытянут в длину, имеет овальную форму. Просвет желудка расширен, средняя часть его тела сужена. Пилорус зияет, двенадцатиперстная кишка расширена и содержит газ. Перистальтика ослаблена или полностью отсутствует, эвакуация бария замедленна. При повышении тонуса (гипертонии) размеры желудка уменьшены, перистальтика усилена, газовый пузырь имеет шаровидную форму. Контрастное вещество задерживается в верхних отделах желудка. При тугом заполнении желудок приобретает клиновидную форму: узкая пилорическая часть непропорциональна верхней. В некоторых случаях желудок напоминает по своей форме раскрытый парашют. Из-за равномерного утолщения складок слизистой оболочки по большой кривизне желудка, обусловленного сокращением мускулатуры, наблюдается фестончатость контура. Пилорическое отверстие спазмировано. Размер и форма желудка в процессе исследования могут изменяться под влиянием снижающих тонус гладкой мускулатуры препаратов. Ограниченные (регионарных) нарушения тонуса желудка. Рентгенологически спазм антрального отдела проявлялся его деформацией – удлинением в виде конуса. При выраженном спазме антрального отдела перистальтика отсутствует. Пилороспазм наоборот сопровождается усилением перистальтической деятельности желудка. Во всех случаях визуализировали нарушение (задержку эвакуации) контраста в просвет двенадцатиперстной кишки. Характер нарушения эвакуаторной функции желудка зависит от состояния тонуса, перистальтики, функции пилоруса и кислотности желудочного сока. При повышенном тонусе желудка наблюдалось ускоренное опорожнение, при пониженном - замедленное. Повышенная кислотность желудочного сока замедляла эвакуацию содержимого желудка, а при пониженной, напротив, наблюдалось ускорение. Учитывая, что при длительной деформации желудка и (или) непроходимости, обусловленной закрытием привратника необходимо исключить органическое поражение язвенным или опухолевым процессом. Для дифференциации патологических процессов следует применять фармакорадиографию. Данное исследование имеет решающее значение для подтверждения функциональной природы деформации желудка при спазмах различной локализации. Исчезновение деформаций (спазмов), а также появление перистальтики после применения соответствующих медикаментозных средств позволяет с уверенностью исключить органическую природу деформации желудка или сужений пилоруса. Наибольшую диагностическую ценность при диагностике пилороспазма получил 0,1% раствор атропина, применяемый нами подкожно из расчёта 1 мл на 40-50 кг. живого веса. Заключение. Рентгенологический метод исследования позволяет распознать характер и степень выраженности функциональных расстройств желудка, а так же выявить такие двигательные расстройства, как спастические сокращения или атония желудка, усиление или ослабление перистальтики, заброс желудочного содержимого в пищевод и дуоденального содержимого в желудок, кардиоспазм и недостаточность кардиального сфинктера, пилороспазм и атонию привратника. Библиографический список: 1. Волков А.А. Морфологические критерии, клинико-диагностическая тактика обследования и лечение собак с эзофагеальной и гастродуоденальной патологией: диссертация на соискание ученой степени доктора ветеринарных наук/Донской государственный аграрный университет. Б.м., 2009. 2. Волков А.А. Нарушения функций желудка в рентгеновском изображении // Аграрный научный журнал. 2008. № 1. С. 10-11. 3. Волков А.А. Совершенствование методики рентгенологического исследования передних отделов пищеварительной системы у собак // Аграрный научный журнал. 2008. № 4. С. 16-17. 4. Волков А.А., Салаутин В.В., Дмитриева М.В. Рентгенологическое исследование передних отделов пищеварительной системы у собак и анализ ошибок, допускаемых ветврачами // Аграрный научный журнал. 2008. № 6. С. 13-16. 5. Ермолаев В.А., Липатов А.М., Шишков Н.К., Золотухин С.Н., Липатова О.А . Способы введения лекарственных веществ различным видам животных/ Учебно-методическое пособие // Ульяновск, 1995. 6. Никулин И.А., Шумилин Ю.А. Выбор оптимальных условий рентгенографического процесса Воронеж, 2014. 7. Степанов В.С., Волков А.А., Козлов С.В., Староверов С.А., Волкова А.П., Субботин А.М. Морфобиохимические показатели крови у животных при некоторых заболеваниях пищеварительной системы // Ученые записки учреждения образования «Витебская ордена «Знак почета» государственная академия ветеринарной медицины». 2011. Т. 47. № 2-1. С. 207-211. 137 8. Шумилин Ю.А., Никулин И.А. Мегаэзофагус у собак и кошек // Вестник Воронежского государственного аграрного университета. 2013. № 4. С. 176-179. FUNCTIONAL DISORDERS OF THE STOMACH AT SMALL PETS IN RADIOLOGIC IMAGING A.P.Volkova, E.S.Davtyan Key words: Functional disorders of the stomach, gastritis, dog, radiology, diagnostic radiology This article is devoted to the analysis and refinement of radiological signs of functional disorders of stomach at small animals. Were studied the basic clinical and radiological signs of functional disorders of the stomach in small animals. УДК: 577.1:616.61:636.7 ИЗМЕНЕНИЯ ЛАБОРАТОРНО-КЛИНИЧЕСКИХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ МОЧИ СОБАК С ПРИЗНАКАМИ ХРОНИЧЕСКОЙ ПОЧЕЧНОЙ НЕДОСТАТОЧНОСТИ ПОД ВЛИЯНИЕМ ГИПОХЛОРИТА НАТРИЯ В.Н. Гапонова, ассистент С.П. Ковалёв, доктор ветеринарных наук, профессор ФГБОУ ВПО «Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины», тел.: (812)388-55-26, viktoriya240@mail.ru Ключевые слова: собаки, хроническая почечная недостаточность, гипохлорит натрия, лабраторно-клинические показатели мочи, электролизер «Ключ». В данной работе приводятся результаты исследованиямочи собак, больных пиелонефритом и гломерулонефритом с признаками хронической почечной недостаточности. Применение 0,06% раствора гипохлорита натрия для лечения собак с хронической почечной недостаточностью сокращает сроки лечения и увеличивает период ремиссии данной патологии. Внутривенные инфузии 0,06% активного физиологического раствора целесообразно использовать в качестве антибактериального средства, нормализующего очистительную функцию почек у собак. Введение. Хроническая почечная недостаточность это комплекс синдромов, вызывающий ухудшение почечных функций, а вследствие изменение внутренней среды организма. В результате задержки в организме мочевины и других продуктов азотистого обмена, повышения их уровня в сыворотке крови нарушаются все почечные процессы: клубочковая фильтрация, проксимальная реабсорбция глюкозы, канальцевый транспорт натрия, осмотическое концентрирование и разведение мочи.Данный синдромокомплекс часто наблюдается в случа138 ях связанных с приобретенными заболеваниями почек, чаще из которых бывают пиелонефрит и гломерулонефрит[1-6]. Изменения, связанные с хронической почечной недостаточностью, приводят к интоксикации организма. Животным с признаками хронической почечной недостаточности требуется применение средств, нормализующих функционирование почек, нейтрализующих и выводящих из организма чужеродные вещества, а также способствующих повышению защитных сил организма. Для проведения детоксикации организма наиболее эффективна, Таблица 1 - Лабораторно-клинические показатели мочи у собак (М±m) Показатели Относит. плотность Р Р1 Лейкоциты Р Р1 Эритроциты Р Р1 Эпителий плоский Р Р1 Эпителий переходный Р Р1 Эпителий почечный Р Р1 Ед. изм. 1 подопытная группа (n=10) кг/л 1,022±0,001 клет. в пзм 1,3±0,34 клет. в пзм 0,2±0,13 клет. в пзм 3,3±0,4 клет. в пзм 0,7±0,26 клет. в пзм 0,1±0,1 2 подопытная группа (n=10) на 30-й до лечения день 1,012± 1,022± 0,001 0,001 >0,05 <0,05 8,5±1,70 1,5±0,34 3 подопытная группа (n=10) до лечения на 30-й день 1,012± 0,001 1,019± 0,001 <0,01 8,1±1,07 0,9±0,28 >0,05 >0,05 3,0±1,00 1,1±0,32 >0,05 3,5±1,11 <0,01 >0,05 5,0±0,76 1,8±0,36 >0,05 7,1±0,62 <0,01 >0,05 5,1±0,48 1,5±0,40 0,9±0,22 <0,01 <0,05 1,7±0,40 <0,01 5,4±0,45 >0,05 >0,05 3,2±0,25 0,6±0,22 1,1±0,28 >0,05 3,6±0,40 1,3±0,28 <0,001 Примечание: степень достоверности (Р) выведена при сравнении результатов здоровых собак и результатов, полученных в первой и второй подопытных группах животных; (Р1) выведена при сравнении результатов полученных в первой и второй подопытных группах животных в процессе лечения. физиологична и технически выполнима система электрохимического окисления [1, 2]. В связи с этим, целью нашей работы явилось определение влияния гипохлорита натрия на лабораторно-клинические показатели мочи у собак с хронической почечной недостаточностью. Цель исследования. Целью исследования было выявить результаты влияния гипохлорита натрия на восстановление функциональных способностей почек, а также отследить динамику показателей метаболизма и функции почек у собак с признаками хронической почечной недостаточности при сравнении их с традиционными методами по лабораторно-клиническим показателям мочи. Материалы и методы. В работе был использован раствор гипохлорита натрия, полученный электрохимическим путём при помощи аппарата «Ключ». Суть метода лечения больных животных заключалась в виде непрямого электрохимического окисления крови раствором гипохлорита натрия. Опыты проводились на служебных собаках в возрасте от 5 до 13 лет, весом от 30 до 60 кг. Для изучения терапевтической эффективности гипохлорита натрия было сформировано 3 группы по 10 животных в каждой (n=30). Первая группа – собаки без признаков хронической почечной недостаточности, т.е. здоровые животные. Вторая и третья группы – собаки, больные пиелонефритом и гломерулонефритом с признаками хронической почечной недостаточности, в рацион которых входили корма с низким уровнем протеина и фосфора. Для лечения животных второй группы использовали 0,06% раствор гипохлорита натрия, в дозе 1,5 139 мл на кг массы тела животного 1 раз в сутки, а третьей – раствор Рингера-лактата из расчёта 30 мл раствора на кг массы тела животного в сутки, внутривенно разделённое на 2 введения; как сопутствующую терапию использовали аскорбиновую кислоту из расчёта 1мл/30кг и эссенциале Н 2,5мл/30кг. Данная схема лечения применялась в течение 10 дней. Условия содержания и кормление животных было одинаковым во всех группах животных, находящихся в опыте. Для выяснения метаболических процессов в организме животных проводили лабораторно-клинические исследования мочи где определяли реакцию мочи или pH, удельный вес (относительную плотность), наличие белка, гемоглобина, эритроцитов, эпителиальных клетки, цилиндров. Результаты исследования. Моча собак с признаками хронической почечной недостаточности по физическим свойствам мало отличалась от мочи здоровых животных. Однако у некоторых животных регистрировалось помутнение и вспенивание при встряхивании мочи. У 40% собак отмечались частые мочеиспускания (поллакиурия), в том числе малыми порциями, затруднённый или болезненный акт мочеиспускания с длительной подготовкой животного (частая смена места, принятие кобелями позы, свойственной для сук) мочеиспускание слабой либо прерывистой струёй мочи. У обследованных собак рН мочи, как правило, была слабо кислой – 6,5-7,0. В случаях выраженной бактериурии и сочетания пиелонефрита с застойнымуроциститом рН мочи сдвигалась в щелочную сторону - 7,0-8,0. Изменения мочи в виде протеинурии обнаруживались у всех пациентов с той лишь разницей, что у 20% собак выделение белка с мочой определялось в виде «следов», а в 80% случаев протеинурия была определена на уровне от «+» до «++». В результате опыта выявлено, что к 30 дню от начала лечения протеинурия, оцениваемая в виде «следов», была обнаружена у 30 % животных второй группы, и на «+» белок в моче обнаруживался у 40% животных третьей группы собак. Концентрационная способность почек на момент окончания исследования у собак второй подопытной группы, где в состав лечения входил гипохлорит натрия, составляла 1,022±0,001 кг/л, что достоверно отличалось как от исходного показателя 1,012±0,001 кг/л, так и от данного показателя у животных в третьей группе 1,019±0,001 кг/л (Р1<0,05) (табл. 1). 140 При сравнении лейкоцитурии и эритроцитурии между второй и третьей групп собак на 30-й день опыта, статистически различий не отмечалось (Р1>0,05 и Р1>0,05). В свою очередь при сравнении данных показателей с первоначальными значениями выявляется достоверная разница. Так лейкоциты в моче второй и третьей подопытных группах собак на 30 й день лечения составляли 1,5±0,34 и 0,9±0,28 клеток в пзм соответственно, что было достоверно ниже первоначальных значений в данных группах. Количество эритроцитов, в свою очередь, вовторой подопытной группе животных достигало отметки 1,1±0,32 клеток в пзм, в третьей - 0,6±0,22 клеток в пзм. На 30-й день от начала лечения у собак обеих подопытных групп в моче отмечалось снижение количества клеток плоского, переходного и почечного эпителия, но достоверное снижение у животных первой подопытной группы выявлялось только в количестве почечного эпителия и составляло0,9±0,23 клеток в пзм (Р1<0,05). При сравнении данных показателей с первоначальными значениями выявлялось достоверное отличие в обеих группах. При сравнении лабораторно-клинических показателей мочи у здоровых собак и животных второй подопытной группы на 30-й день проведения терапевтических мероприятий выявляется отсутствие достоверных отличий в таких показателях как относительная плотность, уровень лейкоцитов и клетки переходного эпителия (Р>0,05). Остальные показатели укладываются в пределы нормативных значений. У собак третьей подопытной группы, лечение которых проводили традиционными методами, наблюдали отсутствие достоверных отличий в сравнении со здоровыми животными в таких показателях как количество лейкоцитов, эритроцитов и клеток переходного эпителия в моче (Р>0,05). Приведённые результаты лабораторно-клинического исследования мочи собак показывают не типичность клинических признаков хронической почечной недостаточности, что требует от врача проведения дополнительных методов исследования животных. Несмотря на то, что на 30 день лечения животных в некоторых лабораторно-клинических показателях мочи собак с признаками хронической почечной недостаточности не выявлялись достоверные изменения при сравнении второй и третьей подопытных групп, все-таки можно отметить общую положительную тенденцию. Заключение. Таким образом, применение 0,06 % раствора гипохлорита натрия в комплексном лечении служебных собак больных пиелонефритом и гломерулонефритом с признаками хронической почечной недостаточности сокращает сроки лечения и увеличивает период ремиссии данной патологиив сравнении с использованием раствора рингера-лактата. Внутривенные инфузии 0,06% активного физиологического раствора повышают концентрацию осмотически активных веществ в моче, что приводит к повышению ее относительной плотности, обладают антибактериальными свойствами, нормализуют очистительную функцию почек у собак. Библиографический список: 1. Бикхардт К. Клиническая ветеринарная патофизиология /К. Бикхардт// М.: Аквариум ЛТД,2001. 400с. 2. Коллиар Л. Хроническая почечная недостаточность / Л. Коллиар, Ж.К.Десфонти,К. Медаль// Ветеринар. 2008. № 5. С. 44-48. 3. Лопаткин Н.А. Целесообразность применения раствора гипохлорита натрия в лечении хронической почечной недостаточности в урологической клинике / Н.А.Лопаткин, А.П. Данилков, В.В. Иващенко, С.А. Голованов, В.В. Дрожжева, Т. А. Бойко //Сб. науч. трудов Почечная недостаточность и методы детоксикации в урологии (под общ.ред. Академика РАМН, проф. Н.А. Лопаткина) // М. 1998. С.36-42. 4. Любарская О.А. Почечная недостаточность у кошек и собак/ О.А. Любарская, А.Б. Любарская// Владивосток, 2003. 112 с. 5. Наточин, В.Ю. Инкреторная функция почки / В.Ю. Наточин, A.A. Кузнецова // Успехи физиологических наук, 2010. Т. 41. № 3. С. 28-43. CHANGES IN LABORATORY AND CLINICAL INDICATORS OF URINE OF DOGS WITH SIGNS OF CHRONIC RENAL FAILURE UNDER THE INFLUENCE OF SODIUM HYPOCHLORITE V.N.Gaponova, S.P.Kovalev Keywords: dogs, chronic renal failure, sodium hypochlorite, laboratorio-clinical indicators of urine, device «Key». Chronic renal failure leads to intoxication. To detoxify the body system is used for indirect electrochemical oxidation. The work was used sodium hypochlorite solution, obtained by electrochemical using the “Key”. Intravenous infusion of 0.06% solution of sodium hypochlorite lead to an increase in the relative density of urine, have antibacterial properties, normalize cleansing function of the kidneys in dogs. 141 УДК: 577.1:616.61 ДИАГНОСТИКА КАРДИОМИОПАТИЙ У СОБАК С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ БИОМАРКЕРА ТРОПОНИНА Э.С.Давтян, аспирантка ФГБОУ ВПО «Саратовский ГАУ»им.Н.И.Вавилова тел. 8(917)3027443, freefauna@yandex.ru Ключевые слова: Тропонин, кардиомиопатия, биомаркер Работа посвящена обзору методов диагностики кардиомиопатий у собак, в частности использование биомаркератропонина.Тропонин - обладающий высокой специфичностью и чувствительностью, позволяет определить наличие повреждения миокарда при таких редких и сложно диагностируемых у животных патологиях, как миокардит и инфаркт миокарда. Введение. Кардиомиопатии представляют собой группу заболеваний миокарда, которые были описаны сравнительно недавно – в конце пятидесятых годов двадцатого века в медицинской литературе и в семидесятых годах в ветеринарных публикациях. С тех пор данная группа патологий сердечной мышцы вызывает неослабевающий интерес клиницистов, морфологов и генетиков. За последние 20 лет в изучении кардиомиопатий у животных и человека были достигнуты значительные успехи, например, была описана такая отдельная форма патологии, как аритмогенная дисплазия правого желудочка у человека и у собак породы боксер, выделена редкая форма рестриктивной кардиомиопатии у человека и у кошек, определены генетические факторы возникновения различных форм патологии у человека и отдельных пород собак и кошек. За последние двадцать лет произошел настоящий прорыв в возможностях диагностики и лечения кардиомиопатий у домашних животных, но, несмотря на очевидный прогресс, многие клинические вопросы далеки от разрешения. Термин «кардиомиопатия» был предложен W. Brigden в 1956 году. Согласно классификации ВОЗ от 1980 года кардиомиопатией называют болезнь миокарда неизвестной этиологии. На основании структурных, гемодинамических и клинических особенностей выделяют три основные формы патологии: дилатационную, гипертрофическую и рестриктивную. Ветеринарная и медицинская классификации совпадают. Диагностика кардиомиопатий. Поскольку кардиомиопатии достаточно трудно диагностировать, для установления точного типа патоло142 гии применяется комплексный подход: электрокардиография, рентгенография, эхокардиография, нагрузочные тесты. В настоящее время ветеринарная кардиология нуждается в более чувствительных методах оценки поражения миокарда и на данном этапе этими показателями могут стать биомаркеры сердца. Биомаркеры — это вещества которые вырабатываются определенными клетками и могут быть обнаружены в крови. Чтобы биомаркер был применим в клинической практике, необходимо, чтобы его количество изменялось пропорционально развитию патологических процессов, характеризующих заболевание, и врач мог определить наличие, тяжесть и прогнозы болезни. Первыми биомаркерами сердца были: аспартатаминотрансфераза, лактатдегидрогеназа и креатинфосфокиназа, но они не показали своей диагностической ценности в связи с наличием большого количества изоферментов в скелетной мускулатуре. На сегодняшний день хорошую чувствительность дают сердечный тропонин и натрийуретические пептиды. Натрийуретические пептиды - это группа структурно сходных, но генетических обособленных пептидов, оказывающих влияние на сердечно-сосудистую, мочевую и эндокринную системы. Различают ANP (синтезируется главным образом в предсердия и в значительно меньшей степени в желудочках, также можно обнаружить в головном мозге, в передних долях гипофиза, легких и почках), BNP (синтезируется в желудочках), а также CNP (секретируется сосудистым эндотелием и эпителиальными клет- ками канальцев и собирательных трубок почек). Кроме этих основных пептидов существует еще и DNP, который обнаружен в яде Восточной зеленой мамбы. Основные нартрийуритические гормоны — предсердный (ANP) и мозговой (BNP) являются регуляторами водно-солевого обмена в организме и важны для регуляции кровяного давления. Основным стимулом к секреции BNP является увеличение давления в левом желудочке сердца. Являясь антагонистом альдестерона/ ренин-ангиотензиновой системы, уменьшает реабсорбцию натрия в дистальных канальцах почек и усиливает его выведение с мочой. ANP и BNP – молекулы-предшественники, которые расщепляются протеолитическим ферментом на одинаковое количество активных C-фрагментов и неактивных N-фрагментов. N-фрагменты имеют более длительный период полувыведения, поэтому именно концевой фрагмент BNP (NT-proBNP) имеет диагностическое значение. Тропонин – это белок, являющийся одним из компонентов сократительного контрактильного аппарата поперечно-полосатых мышц, позволяющий мышечным волокнам актина и миозина скользить относительно друг друга. В саркомере белковые молекулы тропонина образуют комплекс, состоящий из трёх взаимосвязанных единиц: тропонина Т, тропонина С и тропонина I в соотношении 2:1:1. Тропонин Т (молекулярный вес 39,7 кД) обеспечивает связь тропонинового комплекса с волокнами тропомиозина. Тропонин С (молекулярный вес 18кД) связывается с ионами кальция, концентрация которых повышается в клетках после деполяризации клеточной мембраны, вызывая сокращение мышечных волокон. Тропонин I (молекулярный вес 22,5 кД) подавляет сократительный акт во время восстановительной фазы. Различные кинетические свойства тропонина Т и тропонина I обусловлены скорее всего различием в их молекулярном весе. Тропонины Т и I существуют в трёх изоформах: сердечно-мышечный тип, медленный скелетно-мышечный тип и быстрый скелетно-мышечный тип. Изоформатропонина Т, специфическая для сердечных мышц, в эмбриональный период развития присутствует также в скелетных мышцах. Сердечная изоформатропонина I до сих пор была обнаружена только в сердечных мышцах, что говорит о её абсолютной кардиоспецифичности. Тропонин Т и тропонин I носят также название сердечных тропонинов. При ишемическом или каком-либо другом повреждении клеток миокарда тропониновый комплекс распадается, и молекулы тропонина попадают в кровь. На медицинском рынке тропониновые тесты присутствуют уже около 10 лет. За это время они прошли значительную доработку и стали неотъемлемой частью диагностики инфаркта миокарда. Существенным преимуществом использования тропонинов в диагностике инфаркта является высокая специфичность и чувствительность современных методов измерения. Для определения концентрации тропонина в лабораториях используют сыворотку крови или гепаринизированную плазму. При этом нужно учитывать, что концентрация тропонина у одного и того же пациента в гепариновой плазме на 10-15 % ниже, чем в сыворотке крови. Поэтому при проведении серии исследований на протяжении всего времени необходимо использовать один и тот же вид материала для анализа. Во взятой пробе крови тропонин остаётся стабильным на протяжении 1 недели при хранении в холодильнике и только в течение 1 дня при комнатной температуре. Заключение. Высокий уровень сердечных тропонинов позволяет определить наличие повреждения миокарда при таких редких и сложно диагностируемых у животных патологиях, как миокардит и инфаркт миокарда. Кроме того, данный тест выявляет повреждение сердечной мышцы в ходе химиотерапии, а так же при прогрессировании хронической сердечной недостаточности. Само по себе определение кардиомаркеров не заменяет комплекс кардиологических исследований, но может дать врачу дополнительную и часто бесценную диагностическую информацию. Тропонин обладает высокой специфической чувствительностью, изменяется пропорционально степени поражения миокарда, относительно не дорог, доступен в России. Однако требует более подробных инструкций и детального изучения (по возрастным группам, породам, диагнозам и т. д.). Цель нашей дальнейшей работы является создание диагностической системы для определения тропонина при кардимиопатии собак, что, в свою очередь, повысит достоверность диагностики в ветеринарной кардиологии. 143 Библиографический список: 1. Меженный П.В., Староверов С.А., Волков А.А., Козлов С.В., Ласкавый В.Н., Дыкман Л.А., Исаева А.Ю. Конструирование конъюгатов коллоидного селена и коллоидного золота с белком вируса гриппа и изучение их иммуногенных свойств // Аграрный научный журнал. 2013. № 2. С. 29-32. 2. Староверов С.А., Фомин А.С., Волков А.А., Козлов С.В., Хлебцов Б.Н., Ларионов С.В., Василенко О.А., Меженный П.В., Винников Н.Т., Дыкман Л.А. Использование фаговых мини-антител для определения концентрации ферритина в сыворотке крови животных // Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные. 2012. № 4. С. 30-33. 3. Фомин А.С., Малинин М.Л., Василенко О.А., Габалов К.П., Козлов С.В., Ласкавый В.Н., Волков А.А., Староверов С.А., Богатырев В.А., Дыкман Л.А. Изучение механизмов токсического воздействия туберкулина ppdна клетки иммунной системы лабораторных животных // Ветеринарная патология. 2011. № 3. С. 78-84. 4. Шалаев С.В., Семухин М.В., Панин А.В. // Кардиология. - 2001. — № 3. – С. 84-89. 5. Швец О.И., Мазур Н.А., Танхилевич Б.М. и др. // Кардиология. - 1999. — № 9. – С. 53-56. 6. Cardiac panel for rapid quantification of CK-MB, myoglobin and troponin I. Product insert, 2004. 7. Korff S., Katus H.A., Giannitsis E. // Heart. — 2006. – V. 92. – Р. 987 — 993. DIAGNOSIS OF CARDIOMYOPATHY IN DOGS WITH THE USE OF BIOMARKERS TROPONIN E.S.Davtyan Key words:troponin, cardiomyopathy, biomarker The work presents a review of methods for diagnosis of cardiomyopathy in dogs, in particular the use of biomarker troponin. Troponin - with high specificity and sensitivity, to determine the presence of myocardial damage in these rare and difficult diagnosed pathologies in animals, as myocarditis and myocardial infarction. 144 УДК 619:617.57/58+636.22 ГЕМОСТАЗИОЛОГИЧЕСКИЕ АСПЕКТЫ ПРИ БОЛЕЗНЯХ ПАЛЬЦЕВ У КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА В.А. Ермолаев, доктор ветеринарных наук, профессор Тел. +79278273809, ermwa@mail.ru П.М. Ляшенко, кандидат ветеринарных наук, доцент Тел. +79278295525, pavel-l76@mail.ru Е.М. Марьин, кандидат ветеринарных наук, доцент Тел. +79272712659, evgenimari@yandex.ru А.В. Сапожников, кандидат ветеринарных наук, доцент Тел. +79176149301, alex_ul_vet77@mail.ru ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина» А.К. Днекешев, кандидат ветеринарных наук, доцент К.Е. Мурзабаев, кандидат ветеринарных наук, доцент А.К. Киреев, доктор философии (PhD), старший преподаватель РГП на ПХВ «Западно-Казахстанский аграрно-технический университет имени Жангир хана» Ключевые слова: копытца, система гемостаза, фибриноген, фибринолиз, время свертывания, силиконовое время, пртромбиновое время, гипофаевип. В данной статье рассматриваются изменения исследование состояния системы гемостаза и коррекция его состояния при гнойно-некротических поражениях мягких тканей копытец у крупного рогатого скота на фоне комплексного хирургического лечения. Полученные результаты исследований рекомендуем учитывать при организации лечебных мероприятий при гнойно-некротических патологиях пальцев у животных. Введение. Гнойно-некротические болезни дистального отдела пальцев у крупного рогатого скота остаются распространённым и, несмотря на, применение, в последние годы, несмотря на внедрение новых и совершенствование существующих методов лечения, частота высокой и составляет 30-40% от числа хирургических заболеваний. Основным методом лечения гнойно-некротических заболеваний мягких тканей копытец остается хирургический. При этом особое значение придается санирующим операциям с широким вскрытием очагов гнойной инфекции, тщательным иссечением некротизированных тканей и адекватным дренированием, с целью профилактики регионарных и системных инфекционных осложнений. В современной литературе нами не обнаружены сведения об изменении системы гемостаза у больных с гнойно-некротическими заболеваниями мягких тканей копытец крупного рогатого скота на фоне используемых схем лечения, а также систематизированной характеристики прокоагулянтной, антикоагулянтной и фибринолитической активности крови в ответ на хирур- гическую обработку некротизированных тканей. Имеются лишь отдельные публикации посвящённые данной проблеме. Недостаточное количество информации по этим важным вопросам, послужили основанием для проведения, данного исследования. Целью данной работы явилось исследование системы гемостаза и его коррекции при гнойно-некротических поражениях мягких тканей копытец у крупного рогатого скота на фоне комплексного хирургического лечения. Материалы и методы исследований. Экспериментальные исследования проводились в условиях производства в животноводческих хозяйствах Ульяновской области. Из числа обследованных колов были подобраны три группы животных по 50 голов в каждой массой 450-500 кг, в возрасте 4…5 лет, с молочной продуктивностью от 1,5 до 5,0 тыс. кг на голову, имеющие характерные клинические признаки для болезней копытец. Для определения фоновых (исходных) показателей гемостаза были исследовали клинически здоровые коровы в количестве 5-ти голов. 145 У животных всех групп проводили расчистку копыт, делали циркулярную блокаду пораженной конечности 0,5% раствором новокаина. Копытца очищали от грязи и навоза, промывали раствором калия перманганата 1:100, удаляли некротизированные ткани и останавливали кровотечение, далее раневую поверхность обрабатывали с учетом принятой схемы лечения. Первая группа служила контролем: лечение - местное наложение марлевой салфетки, пропитанной фракцией АСД – 3. Вторая группа (I–опытная): лечение - местное наложение марлевой салфетки пропитанной гидрофильной мазью «гипофаевип» + внутривенное введение 10% раствора кальция хлорида в дозе 0,5 мл/кг на 1 кг массы животного утром и вечером пять дней подряд. Третья группа (II–опытная): лечение местное наложение марлевой салфетки пропитанной гидрофильной мазью «гипофаевип» + внутривенное введение гепарина 100 ЕД на 1 кг массы животного утром и вечером пять дней подряд. Всем животным после местного применения соответствующего лекарственного средства накладывали легкую бинтовую повязку и на конечность надевали брезентовый башмак. Смену повязок производили через день до полного выздоровления животных. Исследования проводили с периодичностью по отношению к фоновым показателям на 5, 12, 20 сутки по единым методикам во всех группах. В плазме крови определяли время свертывания крови в силиконированных и несиликонированных условиях, время рекальцификации, показатели протромбинового времени, силиконовое время, количество фибриногена, активность фактора XIII, содержание свободного гепарина в крови и активность фибринолиза. Полученный цифровой материал подвергали статистической обработки на компьютерной программе «Statistika 6». Результаты собственных исследований и их обсуждение. Исследования системы гемостаза перед началом лечения выявили следующие изменения. Время свёртывания крови в несиликонированных условиях удлиняется по сравнению с клинически здоровыми животными на 20,2%, в силиконированных условиях на 43% . Время рекальцификации плазмы также удлиняется по сравнению с исходными данными на 32,4%. Показатели протромбинового времени удлиняются на 15,6%. Силиконовое время удлиняется на 12,8%. Количество фибриногена во 146 всех группах увеличивается на 41,9%, активность фактора XIII на 8,5%. Содержание свободного гепарина крови увеличено на 18,5%. Активность фибринолиза повышается на 12,5%. В результате проведенной комплексной хирургической терапии гнойно-некротических процессов мягких тканей в состоянии системы гемостаза были выявлены следующие измененения. В первую фазу – фазу гидратации ( на 5 и 12 сутки) воспалительного процесса в области мягких тканей копытец в системе гемостаза существенных изменений нами не обнаружено. Основные изменения в системе гемостаза при разных способах хирургического лечения выявлены в фазу дегидратации на 20 сутки. У животных контрольной группы, время свёртывания крови в несиликонированных условиях уменьшилось на 10,53%, в силиконированных условиях на 36,12%. Время рекальцификации плазмы уменьшилось на 16,2%. Силиконовое время уменьшилось на 6,35%. Протромбиновое время уменьшилость на 8,3%. Фактор XIII снизился на 1,16%. Фибриноген плазмы уменьшился на 29,7%. Уровень фибринолиза снизился на 5,8%. Толерантность плазмы к гепарину снизилась на 0,85%. У животных первой опытной группы, на фоне в/в 10% раствора кальция хлорида время свёртывания крови в несиликонированных условиях уменьшилось на 0,9%, в силиконированных условиях на 28,62%. Время рекальцификации плазмы уменьшилось на 33%, силиконовое время уменьшилось на 9,58%. Протромбиновое время уменьшилось на 14,5%, фактор XIII снизился на 7,11%, фибриноген плазмы на 30,6%. Уровень фибринолиза уменьшился на 13,06%, толерантность плазмы к гепарину уменьшилась на 17,08%. У животных второй опытной группы, на фоне в/в гепарина время свёртывания крови в несиликонированных условиях на 18,8%, в силиконированных условиях уменьшилось на 40%, Время рекальцификации плазмы уменьшилось 22,4%, силиконовое время уменьшилось на 9,76%, протромбиновое время на 11,8%. Фактор XIII снизился на 1,60%, фибриноген плазмы на 26%. Уровень фибринолиза понизился на 8,11%. Толерантность плазмы к гепарину уменьшилась на 29,79%. Заключение. Проведенные нами исследования свидетельствуют о том, что у больных коров с гнойно-некротическими процессами мягких тканей копытец происходят изменения в коагуляционном звене системы гемостаза, связанные с увеличением прокоагулянтной активности крови, угнетением антикоагулянтной и фибринолитической активности. Хирургическое вмешательство, независимо от предпринятой схемы лечения, усугубляет развитие тромботического синдрома, что под- тверждается сдвигом показателей системы гемостаза в сторону гиперкоагуляции. Библиографический список: 1. Гимранов, В.В. Классификация болезней в области пальцев у крупного рогатого скота / В.В. Гимранов, С.В. Тимофеев // Ветеринария. - 2006. - № 7. - С. 48-49. 2. Гимранов, В.В. Этиология, характер распространенности и особенности патологий в области пальцев у коров голштино-фризской породы / В.В. Гимранов, Р.А. Утеев, А.Ф. Гилязов // Аграрный вестник Урала.- 2010. - Т. 69. № 3. - С. 77-79. 3. Ермолаев, В.А. Биологически активные дренирующие сорбенты при гнойных пододерматитах у коров / В.А. Ермолаев, Е.М. Марьин, В.В. Идогов, А.В.Сапожников // Международный вестник ветеринарии. - 2009. - № 4. - С. 13-16. 4. Ермолаев, В.А. Этиология, распространение заболеваний копытец крупного рогатого скота в зимне-стойловый период/ В.А.Ермолаев, Е.М. Марьин, Ю.В.Савельева // Аграрная наука и образование на современном этапе развития: опыт, проблемы и пути их решения: матер. Междунар. науч.-практ. конф. -Ульяновск: Ульяновская ГСХА, 2009. -Т. 3. -С. 49-52. 5. Кирилов, А.А. Сравнительная оценка методов лечения гнойного пододерматита / А.А. Кириллов, А.А. Стекольников // Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. - 2007. - № 5. - С. 66-67. 147 6. Кутлукаев, И.И. Лечение гнойно-некротических заболеваний пальцев крупного рогатого скота / И. И. Кутлукаев, М.Ш. Шакуров, И.Г. Галимзянов // Ветеринарный врач. - 2003. - № 3. - С. 35. 7. Ляшенко, П.М. Лечение гнойно-некротических поражений пальцев у коров препаратом «гипофаевип» и корректорами системы гемостаза / П.М. Ляшенко // Экспериментально-клиническое исследование : диссертация на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук / Оренбург, 2006. 8. Марьин, Е.М. Характеристика ортопедических патологий у крупного рогатого скота / Е.М. Марьин, В.А. Ермолаев, О.Н. Марьина, И.С. Раксина // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. - 2012. - № 4. - С. 66-69. 9. Марьин, Е.М. Болезни копытец у коров различных пород / Е.М. Марьин, В.А. Ермолаев // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. - 2011. - Т. 2. № 30-1. - С. 104-105. 10. Никулина, Е.Н. Динамика изменения гемостазиологических показателей при лечении гнойных ран у телят / Е.Н. Никулина, В.А. Ермолаев, П.М. Ляшенко // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. - 2012. - Т. 4. № 36-1. - С. 78-79. 11. Симонова, В.Н. Динамика ортопедической патологии у коров / В.Н. Симонова, П.М. Ляшенко, В.А. Ермолаев, Е.Н. Никулина // Ветеринарный врач. - 2009. - № 5. - С. 38-40. 12. Шнякин, А.В. Гнойно-некротические заболевания пальцев у крупного рогатого скота в зоне Южного Урала / А.В. Шнякин, Т.Н. Шнякина, Н.П. Щербаков // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2012. - Т. 96. № 10.- С. 108-110. 13. Стекольников, А.А. Комплексный метод лечения гнойного пододерматита/ А.А. Стекольников, А.А. Кириллов// Ветеринарная практика. - 2007. - № 2. - С. 42-45. 14. Стекольников, А.А. О технологических условиях ветеринарного обслуживания молочных комплексов/ А.А. Стекольников, Б.С. Семенов, Э.И. Веремей// Международный вестник ветеринарии. 2009. - № 4. - С. 8-11. 15. Руколь, В.М. Профилактика и лечение коров при болезнях конечностей / В.М. Руколь, А.А. Стекольников//Ветеринария. - 2011. - № 11. - С. 50-53. GEMOSTAZIOLOGICHESKIE ASPECTS IN DISEASES OF THE FINGERS CATTLE V.A. Ermolayev, P.M. Lyashenko, E.M. Marin, A.V. Sapozhnikov, A.K. Dnekeshev, K.E. Murzabaev, A.K. Kireev Keywords: claw, hemostasis system, fibrinogen, fibrinolysis, coagulation time, the silicone time prtrombinovoe time, gipofaevip. In this article changes are considered research of a condition of system of a hemostasis and correction of its state at is purulent - necrotic defeats of soft fabrics of hooves at cattle against complex surgical treatment. We recommend to consider the received results of researches at the organization of medical actions at it is purulent - necrotic pathologies of fingers at animals. 148 УДК 619:615.083 КЛИНИКО-МОРФОЛОГИЧЕСКАЯ КАРТИНА КОЖНО-МЫШЕЧНЫХ РАН У СОБАК ПОД ВОЗДЕЙСТВИЕМ СВЕТОДИОДНОГО ИЗЛУЧЕНИЯ КРАСНОГО ДИАПАЗОНА (СДИКД) В.А. Ермолаев, доктор ветеринарных наук, профессор Тел. +79278273809, ermwa@mail.ru А.В. Сапожников, кандидат ветеринарных наук, доцент Тел. +79176149301, alex_ul_vet77@mail.ru Е.М. Марьин, кандидат ветеринарных наук, доцент Тел. +79272712659, evgenimari@yandex.ru П.М. Ляшенко, кандидат ветеринарных наук, доцент Тел. +79278295525, pavel-l76@mail.ru ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина» А.К. Днекешев, кандидат ветеринарных наук, доцент К.Е. Мурзабаев, кандидат ветеринарных наук, доцент А.К. Киреев, доктор философии (PhD), старший преподаватель РГП на ПХВ «Западно-Казахстанский аграрно-технический университет имени Жангир хана» Ключевые слова: рана, экссудат, гистология раны, собака, красный свет. В статье говорится о положительной динамике гематологических, цитологических и гистологических показателей при лечении инфицированных кожно-мышечных ран у собак комплексным способом – фотофорезом с 10% метилурациловой мази светодиодным излучением красного диапазона. Введение. Перспективным направлением в клинической медицине является метод фототерапии, истоки которого лежат на рубеже ХIХ и ХХ веков. В медицинских источниках появилось ряд работ [1, 2], об использовании светодиодного излучения красного диапазона, которое является альтернативным лазерному, но более щадящим для организма и оказывает противоспалительное, противоотечное, обезболивающее действие, повышает иммунный статус, не вызывая структурно-функциональных нарушений в микроциркуляторном русле [3, 4]. Целью нашего исследования явилось экспериментальное изучение влияния светодиодного излучения красного диапазона на морфологическую картину тканей при лечении инфицированных кожно-мышечных ран собак. Материал и методы исследований. Эксперимент проводили на беспородных собаках в возрасте от 6 до 12 месяцев, весом от 5 до 15 кг. Животные были разбиты на 3 группы по 11 голов. Всем экспериментальным животным наносились кожно-мышечные раны, в вертикальном направлении, в центре левого массетера, размером: кожная рана - 4 см дли- ной, мышечная -3 см длиной и общей глубиной – 1,5 см. Фоновыми считались показатели, снятые за 2-3 дня до нанесения ран. Дальнейшее снятие результатов проводили на: первые, третьи, пятые, седьмые, одиннадцатые, 19-е сутки и после выздоровления – заживления ран. Лечение осуществляли через сутки после нанесения ран ежедневно. Предварительно раны механически очищали стерильными ватно-марлевыми тампонами, смоченными стерильным физиологическим раствором. Первая группа – «контрольная» подвергалась лечению ран 10% метилурациловой мазью; вторая группа – «первая опытная» - лечению светодиодным излучением красного диапазона экспозицией 2 мин, с размещением прибора на 2-3 мм от поверхности раны; третья группа – «вторая опытная» - фотофорезом 10% метилурациловой мази светодиодным излучением красного диапазона экспозицией 2 мин., с размещением излучателя на 2-3 мм от поверхности раны. Лечение было закончено после полного заживления ран. Описание раневой и около раневой поверхности. Внешний осмотр ран оценивали по 149 Рисунок 1 - Раневая поверхность у собаки № 14 контрольной группы, спустя трое суток. А – подсохший экссудат. Рисунок 2 - Рана собаки № 3 первой опытной группы на пятые сутки. После удаления экссудата: 1 - неравномерная, неоднородная грануляция; 2 - изъязвление кожи около раневой поверхности. состоянию их краёв (ровные, неровные, отёчные, неотёчные); наличию корочек и экссудата на раневой поверхности (его цвет, консистенция, количество, степень отделяемости); выраженности эпителиального ободка (его цвет, величина в мм); появлению грануляционной ткани в ранах, её характеру (ровная, неровная, бледно-розовая, ярко-красная, мелкозернистая, крупнозернистая). Для гистологических исследований и изучения метаболических процессов в ране проводили биопсию тканей на первые, третьи, пятые, седьмые, одиннадцатые и 19 сутки течения раневого процесса. Для этого на расстоянии 1 см от углов раны и из её середины иссекали кусочки тканей, и фиксировали их в 10%-ом растворе нейтрального формалина. Проводили проводку через спирты с повышением концентрации. 150 Заливку материала проводили парафином, срезы толщиной 6-8 мкм окрашивали гематоксилином и эозином, реактивом - ШИФФ-йодная кислота с докраской гематоксилином, толуидиновым синим (Елисеев В.Г., 1959; Меркулов Г.А., 1969). Результаты исследований. Проведённые нами исследования показали, что во всех трёх группах у животных в течение первых суток место ранения характеризовалось классическими признаками воспаление – отёк, гиперемия, болезненность, что соответствует стадии сосудистых изменений. В это время происходит чёткая воспалительная демаркация очага поражения, нежизнеспособных тканей, наступает стадия отторжения. Воспаление характеризовалось расплавлением мёртвых тканей с накоплением в них Рисунок 3 - Кобель, 6 мес. контрольной группы, морфология воспалительного процесса в кожно-мышечных тканях области массе тера на первые сутки после нанесения травмы. (Окр. гематоксилин-эозином. Ув. х 25). 1 – фибринозно-гнойный экссудат; 2 – гемососуды; 3 – серозно-геморагический отёк. гнойного экссудата. Характер экссудата имел свои особенности. Так, в контрольной группе на протяжении всего лечения обильно выделялся серо-желтый экссудат от слизистой до сливкообразной консистенции, количество которого уменьшалось к 15-м суткам; в первой опытной группе до одиннадцатых суток в большом количестве наблюдался серо-зелёный экссудат, сметанообразной консистенции, с резким неприятным запахом; во второй опытной группе экссудат имел серо-жёлтый цвет и слизистую консистенцию, его уменьшение отмечалось к седьмым суткам. Некроз тканей был ярко выражен у животных первой опытной группы. Околораневой дерматит с изъязвлением кожи у животных контрольной и первой опытной групп развивался на протяжении всего лечения, а у животных второй опытной группы это явление было единичным и менее выраженным. Грануляция ран выраженно и равномерно проходила у животных второй опытной группы, начиная с пятых суток. В контрольной и первой опытной группах данное явление носило менее выраженный характер и начиналось с седьмых и пятых суток, соответственно и характеризовалось лишь зачатками грануляционной ткани. Заполнение полости ран равномерной, мелкозернистой грануляцией произошло в контрольной группе на 19-е сутки, в первой и второй опытных группах - на 15-е и одиннадцатые сутки соответственно. Эпителизация ран начиналась в контрольной группе на 15-е сутки, в первой и второй опытных группах - на одиннадцатые. Гистологическая картина ран в результате исследований оказалась следующей. В контрольной группе значительно выражена экссудация, которая затрагивает подкожную клетчатку и скелетную мускулатуру. К концу первой недели происходит исчезновение воспалительной инфильтрации в глубоких отделах раны и сохранение её грануляции. На седьмые сутки на фоне хороших процессов пролиферации и неокапиллярогенеза, отмечалось наличие щелевидных язв, распространяющихся в глубь раны с участками пролиферации фибробластов и незрелого коллагена. На третьи сутки в сосудах микроциркуляции выраженные явления пареза с эритростазами и лейкостазами, и исчезновение указанных явлений к концу первой недели. Появление первых очаговых пролиферативных изменений с третьих суток и неокапиллярогенеза с пятых суток, который носит незрелый характер без образования чётких сосудистых просветов. На одиннадцатые сутки отмечалось неполное созревание грануляционной ткани с неполным её замещением незрелыми коллагеновыми волокнами. На 19 сутки происходит усиление воспалительной инфильтрации в поверхностных отделах рубцовой ткани. Во второй группе в первые трое суток наблюдали резкое прогрессирующее воспаление серозно-гнойного характера с распространением в поперечно-полосатую скелетную мускулатуру, резко выраженный отёк с геморрагиями. На третьи сутки происходит резкое уменьшение отёчных явлений, к пятым суткам – купирование воспалительных инфильтратов в глубоких отде- 151 Рисунок 4 - Сука, 14 мес. первой опытной группы, стадия реорганизации соединительной ткани на 19-е сутки после нанесения кожно-мышечной травмы в области массетера. (Окр. гематоксилин-эозином). А – эпителизация раневой поверхности: 1 – эпидермис; 2 – сосочковый слой дермы. (Ув. х 100). Б – полнокровие сосудов (3). (Ув. х 400). лах раны и в пограничной поверхностной зоне на одиннадцатый день. В острой стадии (первые – третьи сутки) отмечается резко выраженная гиперемия и парез сосудов микроциркуляции, набухание базальных мембран и эндотелия. В капиллярном русле - сладжи и эритростазы. В венулах в большом количестве – фибриновые и фибринозно-эритроцитарные тромбы, их исчезновение происходит к пятому дню. В первые трое суток пролиферация незрелых мезенхимальных и эндотелиальных клеток слабо выражена, новообразование капилляров не наблюдается. С пятого дня происходит усиление пролиферативных процес152 сов с появлением большого количества новообразованных капилляров и значительное их увеличение с седьмых суток, с хорошо развитыми сосудистыми просветами, и одновременное дифференцирование незрелых мезенхимальных клеток в фибробласты в глубоких отделах раны. На одиннадцатые сутки имеются значительные склеротические изменения в глубоких слоях раны. На 19 день на фоне склероза глубоких отделов, имеется эпителизация раны, при сохранении кое-где под эпителием молодой грануляционной ткани. В третьей группе воспалительная инфильтрация полиморфоклеточного состава, с преоб- Рисунок 5 - Кобель, 18 мес. второй опытной группы, стадия реорганизации соедини-тельной ткани в зоне раневого дефекта на 19-е сутки после нанесения кожно-мышечной травмы в области массетера. (Окр. гематоксилин-эозином. Ув. х 100). 1 – эпидермис; 2 – сосочковый слой дермы; 3 – гемососуды; 4 - соединительная ткань. ладанием нейтрофилов, распространяющаяся до подкожной клетчатки. В поверхностных отделах раневой поверхности в первые дни (до пятых суток) отмечается формирование микроабсцессов (острое гнойное воспаление). Исчезновение воспалительной инфильтрации в глубоких отделах раны происходит к пятому дню, а в поверхностных к одиннадцатому дню. В острой стадии (третьи - пятые сутки) в сосудах микроциркуляции – выраженные явления пареза и гиперемии с усиленным тромбообразованием и тромболизисом к седьмому дню. Пролиферативные изменения хорошо выражены с третьего дня, с формированием эндотелиальных почек и новообразованных капилляров во всех отделах раны и имеющие характер пролиферативных нодулей, со слиянием их к пятым суткам. Созревание грануляций и появление более дифференцированных сосудов с базальными мембранами начинается с седьмых суток, сопровождающихся очаговым склерозированием в глубоких отделах. На 19 сутки отмечается усиление регенеративного процесса, благодаря чему происходит очищение большей части раневой поверхности, ускоряется эпителизация, с частичным восстановлением цитоархитектоники тканей, при наличии умеренного склероза. Заключение. Следовательно, лечение СДИКД (светодиодным излучением красного диапазона) в сочетании с 10% метилурациловой мазью эффективнее обеспечивает заживление инфицированных кожно-мышечных ран и стимулирует регенеративные процессы. Библиографический список: 1. Колесникова, С.З. Красный свет поднимает иммунитет / С.З. Колесникова. – А.: Мир.-1997. -№ 4. С. 63. 2. Янтарёва, Л.И. Сравнительное изучение влияний лазерного и светодиодного излучений красного диапазона на клиническое течение заболеваний пародонта и процессов микроциркуляции в эксперименте / Л.И. Янтарёва, Л.А. Ермолаева, Л.И. Воробьева и др. // Стоматология.- Материалы III общероссийского съезда стоматологической ассоциации. - М., 1996. - С. 95-96. 3. Сапожников, А.В. Клинико-морфологические показатели крови при лечении ран светодиодным 153 излучением красного диапазона/А.В. Сапожников, И.С. Сухина, В.А. Ермолаев//«Молодёжь и наука XXI века»: Материалы II Открытой Всероссийской научно-практической конференции молодых учёных. - Ульяновск: УГСХА, 2007. -Часть 1. -С.148-151. Сапожников, А.В. Лечение инфицированных кожно-мышечных ран у собак светодиодным излучением красного диапазона / А.В. Сапожников: автореф. . . . к.в.н. . – Оренбург: ОГАУ, 2007. – 24 с. 4. KLINIKO-MORFOLOGICHESKAYA THE PICTURE OF THE SKIN AND MUSCULAR RUSSIAN ACADEMIES OF SCIENCES AT DOGS UNDER THE INFLUENCE OF THE LED RADIATION OF RED RANGE (SDIKD) V.A. Ermolayev, A.V. Sapozhnikov, E.M. Marin, P.M. Lyashenko, A.K. Dnekeshev, K.E. Murzabaev, A.K. Kireev Keywords: wound, exudate, wound histology, dog, red light In article it is told about positive dynamics of hematologic, cytologic and histologic indicators at treatment of the infected skin and muscular wounds at dogs in the complex way – photoodds-zom from 10% of metiluratsilovy ointment by the LED radiation of red range. УДК 619:617 615 ДИНАМИКА ОФТАЛЬМОЛОГИЧЕСКОЙ ПАТОЛОГИИ У КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА В.А. Ермолаев, доктор ветеринарных наук, профессор Тел. +79278273809, ermwa@mail.ru Е.М. Марьин, кандидат ветеринарных наук, доцент Тел. +79272712659, evgenimari@yandex.ru П.М. Ляшенко, кандидат ветеринарных наук, доцент Тел. +79278295525, pavel-l76@mail.ru А.В. Сапожников, кандидат ветеринарных наук, доцент Тел. +79176149301, alex_ul_vet77@mail.ru ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина» А.К. Днекешев, кандидат ветеринарных наук, доцент К.Е. Мурзабаев, кандидат ветеринарных наук, доцент А.К. Киреев, доктор философии (PhD), старший преподаватель РГП на ПХВ «Западно-Казахстанский аграрно-технический университет имени Жангир хана» Ключевые слова: конъюнктивиты, кератиты, болезни глаз, экссудат. Массовые заболевания глаз у крупного рогатого скота охватывают восприимчивое поголовье. Сопровождается воспалением конъюнктивы, гнойным и язвенным процессом в глазах. В этиологии заболевания глаз большое значение имеет контакт с больными животными, а также грызунами, живущими в животноводческих помещениях, являющихся разносчиками инфекции. Большие потери в животноводстве связаны с различными инфекционными болезнями, в том числе и патологией глаз. Болезни глаз различной этиологии до настоящего времени не привлекают 154 должного внимания ветеринарных и зооинженерных работников, так как они не всегда приводят больных к гибели, а ущерб, связанный с производственной выбраковкой, снижением прироста массы тела и удоев, на общем фоне потерь представляется не столь большим и определяющим. Массовые заболевания глаз среди животных известны давно. Тенденция возникновения, распространения, охвата восприимчивого поголовья, тяжести и продолжительности течения, исход - изучены недостаточно. Они сопровождаются серозно-катаральным воспалением конъюнктивы, а затем гнойным и язвенным процессом в роговице и представляют серьезную проблему. Факторами передачи могут быть молоко, вода, мясо, шерсть, инфицированные корма, воздух помещений, где содержатся больные и условно здоровые животные, мухи и другие. Болезнь регистрируется круглогодично, этому способствует снижение общей резистентности животных. В этиологии конъюнктиво-кератита имеет большое значение контакт с больными животными, а также мышами, крысами, живущими в животноводческих помещениях, являющихся разносчиками инфекции. На организм животных в зимний период неблагоприятно влияет микроклимат помещений, где они содержатся. Повышение содержание углекислого газа, аммиака и сероводорода, высокой температуры воздуха, влажности способствуют распространению заболевания. При заболевании глаз изменяется состав слезы, роль которой состоит в омывании конъюнктивы глаза и роговицы. Подострые и хронические конъюнктивиты сопровождаются интенсивной гиперплазией лимфоидной ткани, в том числе и фолликулов при отсутствии признаков выраженного фолликулярного конъюнктивита. Изменения считают, как проявление клеточного иммунитета замедленного типа обусловленного гиперчувствительностью в ответ на сенсибилизацию продуктами микробного распада. Клинические признаки характеризуются воспалительными изменениями роговицы и конъюнктивы. В начале заболеваний наблюдается более или менее сильное слезотечение, которое связано с катаральным конъюнктивитом. Это говорит о начале воспалительных процессов в результате воздействий внешних факторов. Наблюдается гиперемия и отек конъюнктивы век и склеры, светобоязнь и блефароспазм. При дальнейшем развитии воспалительного процесса изменяется характер воспаления. Секреция из конъюктивального мешка сначала серозная, серозно-слизистая, гнойная. Гнойный секрет склеивает ресницы, они собраны в пучки. На 3…4 день после Рисунок 1 – Керато-конъюктивит появления симптомов в центре роговицы появляется эрозия. Затем роговица теряет блеск и становится мутной. Строма роговицы набухает и разрыхляется. На 5…10 день она диффузно инфильтрирована, белого цвета. На периферии, вблизи лимба возникает поверхностная васкуляризация. Центральная зона роговицы остается бело-желтой. Глазное яблоко болезненное. Вследствие дегенерации эпителия или вскрытия абсцесса на роговице возникают язвы. Они заполняются грануляцией, уплотняются и превращаются в рубцовую ткань. Зрение восстанавливается полностью или частично. При проникающих язвах развивается панофтальмит с выраженной васкуляризацией (красный глаз). Кератиты могут возникнуть самостоятельно, из поверхностного катарального конъюнктиво-кератита при осложнении микрофлорой или вместе с гнойным конъюнктивитом. В последние годы наметилась тенденция к распространению гнойного конъюнктиво-кератита у крупного рогатого скота. У животных в условиях животноводческого комплекса Ульяновской области регистрировались различные формы конъюнктиво-кератитов. Возникало повреждение глубоких слоев путем перехода воспаления с поверхностных 155 Таблица 1 - Распространение конъюнктиво-кератитов у крупного рогатого скота Вид животных, возраст Коровы Телята до 4 месяцев Телята 4-6 месяцев Телята от 6 месяцев до года Итого: Количество исследованных животных (голов) 482 93 133 209 917 слоев с остро протекающими процессами (с характерным истечением из глаз, блефароспазмом, болезненностью, перикорнеальной инъекцией сосудов, васкуляризацией роговицы, помутнением роговицы различной интенсивности цвета, изъязвлениями в виде точек). Характер истечений изменялся в процессе лечения. Изменения характера жидкости свидетельствовали о защитной реакции организма на удаление раздражителя, отторжением и выведением посредством гнойно-демаркационного воспаления. Васкуляризация роговицы тоже проявлялась по-разному. В одних случаях в роговицу врастали сосуды из конъюнктивы склеры (у телят с поверхностным конъюнктиво-кератитом). Роговица становилась шероховатой. Сосуды в нее врастали со стороны конъюнктивы и склеры, часто доходили до центра и захватывали всю роговицу, делая ее непроходимой для света. Зрение нарушалось. Многие авторы не исключают заражение путем бактерий и микробов через корма, инвентарь, лечение. Устойчивость организма к заболеваниям зависит и от возраста, взрослые животные более устойчивы, чем молодые. В весенне-летнее время способствует распространению конъюнктиво-кератитов повышенная солнечная радиация и увеличение числа мух, но и в зимнее время года при стойловом содержании с высокой концентрацией животных, при контакте с больными животными не уменьшается количество животных с заболеванием глаз. Заболеванию особо подвержены телята в возрасте 5-6 месяцев до года. Взрослые, как правило, болеют реже, и воспалительный процесс у них протекает, более, доброкачественно. Заболевания гнойным конъюнктиво-кератитом разной степени и тяжести у крупного рогатого скота, регистрировались в учебно-опытном хозяйстве и хозяйствах Ульяновской области. Проводимые лечебные мероприятия давали временные положительные эф156 Животных с конъюнктиво-кератитами (голов) 12 99 117 228 Процент больных животных (%) 2,49 74,44 55,98 27,91 фекты. Регистрировался конъюнктиво-кератит круглогодично. Однако в весенне-летний распространение заболеваний глаз увеличивалось, из-за контакта с больными животными. При тщательном обследовании поголовья, нами были выявлены больные с различными поражениями глаз. Характерным признаком вовлечения в процесс поражение одного или обоих глаз, степени выраженности были различными. Всех животных с поражением глаз исследовали на телязиоз: для этого промывали глаза 2 - 3% раствором борной кислоты. Промывание конъюнктивы повторяли через 5 - 6 дней. Исследование не дало положительных результатов. Основные клинические признаки, характеризующие воспалительные изменения в роговице и конъюнктиве изменялись. В начале заболевания наблюдалось более или менее сильное слезотечение, которое связано с катаральным конъюнктивитом одного или обоих глаз. Это говорит о начале воспалительного процесса, затем наблюдали гиперемию и отек век конъюнктивы и склеры. Светобоязнь и блефароспазм. При дальнейшем развитии процесса характер воспаления изменяется. Секреция из конъюнктивального мешка вначале заболевания серозная, затем серозно-слизистая и гнойная. При остром асептическом конъюнктивите у телят наблюдался блефароспазм, истечения из внутреннего угла глаза слизистое или густое истечение, конъюнктива отечна, наблюдалась светобоязнь. Секрет склеивает ресницы, и они собраны в пучки. На 3-4 день после появления симптомов в центре роговицы появлялась эрозия, роговица теряет блеск и становится мутной. Строма роговицы набухала, разрыхлялась. На 5-10 день она была диффузно инфильтрирована, белого цвета. На периферии, вблизи лимба возникала поверхностная васкуляризация с обширным количеством анастамозов, а центральная Таблица 2 - Офтальмологическое обследование всех половозрелых групп крупного рогатого скота № п/п 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 Сроки исследований Январь Февраль Март Апрель Май Июнь Июль Август Сентябрь Октябрь Ноябрь Декабрь Итого: Коровы гол. 305 315 264 202 145 119 132 114 77 123 196 219 2211 % 18,4 12,4 1,5 11,8 7,1 3,7 2,6 1,2 3,1 2,7 14,9 15 - Молодняк крупного рогатого скота 5-6 мес. 6 мес до 1 года гол. % гол. % 84 63,1 103 50,7 89 66,9 107 52,7 99 74,4 117 57,6 76 57,1 101 49,7 83 62,4 96 47,2 82 61,6 97 47,7 91 45,8 103 50,7 76 57,1 86 42,3 72 54,1 93 45,8 68 57,1 99 48,7 87 65,4 101 49,7 81 63,1 106 52,2 988 1209 - Таблица 3 - Структура поражения глаз у телят, больных конъюнктиво-кератитом № п/п 1 2 3 4 Характер поражения Правый глаз Левый глаз Оба глаза Всего зона роговицы остается бело-желтой. Глазное яблоко очень болезненное. При кератитах начинали расти кровеносные сосуды с периферии в роговицу, края ее приподнимались. Наблюдалось помутнение роговицы, поверхность ее становилось шероховатой. В отдельных случаях после гнойно-некротического отторжения роговицы и на его месте образовались язвы, покрытые грануляциями. После продолжительного лечения их оставался рубец-бельмо. Язвы имели неправильную форму, очищались они быстро, что не успевали заполнить дефект роговицы. Абсцесс роговицы наблюдался в виде ограниченного жёлтого участка с просяное зерно или с горошину. Абсцессы рассасывались или вскрывались наружу и переднюю камеру глаза. Под местной анестезией прокалывали их инъекционной иглой (блокадой) по мере созревание абсцесса. Роговица становилась шероховатой. Вследствие дегенерации эпителия или вскрытия абсцесса на роговице возникали язвы. В период вскрытия абсцесса воспаление достигает кульминационной точки, после чего воспаление за- Итого (голов) 108 65 43 216 Процент поражения от количества больных (%) 50 30,1 19,9 100,0 тухает. Уменьшается выделение гноя, болезненность и блефароспазм. Язва постепенно заполняется грануляциями, роговица по периферии просветляется. Сосуды облитерируются и на роговице в большинстве случаев остаются рубцовые помутнения. Зрение восстанавливается полностью или частично. При кератоконусе и кератоглобусе наблюдались изменения формы роговицы в виде конического выпячивания её. Центральная часть роговицы выпячивалась и мутнела, что объясняется пропитыванием ее камерной влагой. Зрение нарушалось. Заключение. Обобщая исследования по распространению конъюнктиво-кератитов в опытном хозяйстве, можно сделать следующие обобщения: • конъюнктиво-кератит регистрируется круглогодично; • заболевание регистрируется у животных от 5-6 месяцев до 1 года, реже у взрослого поголовья и преимущественно у животных поражается один глаз реже оба; 157 • большую роль играют предрасполагающие факторы, главный из них это снижение резистентности организма, а также активность мух, пыль, загазованность, наличие возможности контактов с больными животными, собаками, крысами и другие факторы. Библиографический список: 1. Лебедев А.В., Лукьяновский В.А., Семенов Б.С. и др. Общая ветеринарная хирургия. - М.: Колос, 2000. - С. 468 - 469. 2. Черванев В. А., Алтухов Б. Н. Массовые болезни глаз у крупного рогатого скота и их диагностика. // Итоги перспективы научных исследований по проблемам патологии животных и разработке средств и методов терапии и профилактике. Воронеж: ВГАУ, 1995. - С. 186 – 188. 3. Даричева Н.Н. Ветеринарная офтальмология: учебно-методическое пособие к самостоятельной работе студентов факультета ветеринарной медицины/ Н.Н. Даричева, В.А. Ермолаев.- Ульяновск: Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия. - Ульяновск, 2006. - 79 с. 4. Даричева Н.Н. Массовые заболевания глаз у телят/ Н.Н. Даричева, В.А.Ермолаев // Материалы Международной научно-практической конференции «Аграрная наука и образование на современном этапе развития: опыт, проблемы и пути их решения. ФГОУ ВПО, Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия. - Ульяновск: УГСХА, 2009. С. 36-42. 5. Сотникова Л.Ф. Клиническое состояние организма, местные и общие показатели естественной резистентности при кератоконъюнктивите молодняка крупного рогатого скота, вызываемого Мoraxella bovis/ Л.Ф. Сотникова: автореф. Дис. … канд. вет. наук. – Москва, 1992. – 18 с. 6. Копенкин Е.П. Болезни глаз мелких домашних животных: учебное пособие для студентов высших учебных заведений, обучающихся по специальности 110800-Ветеринария / Е. П. Копенкин, Л. Ф. Сотникова. – М.: КМК, 2008. – 268 с. 7. Даричева Н.Н. Распространенность и этиология коньюнктиво-кератитов у крупного рогатого скота / Н.Н. Даричева, В.А. Ермолаев// Материалы Международной научной конференции. - Оренбург, 2004.-С. 47-50. THE SPREAD OF EYE DISEASES IN CATTLE V.A. Ermolayev, E.M. Marin, P.M. Lyashenko, A.V. Sapozhnikov, A.K. Dnekeshev, K.E. Murzabaev, A.K. Kireev Keywords: conjunctivitis, keratita, diseases of eyes, exudat. Mass eye diseases in cattle take place in animals susceptible to them. The diseases are accompanied by the inflammation of the conjunctiva, the purulent and ulcer process in eyes. In etiology of eye diseases, contact with an ill anival is of great importance, as well as with mice, rats living in cattle-breeding premises that are carriers of infection. 158 УДК: 619.617.57/58+636.2 ДИНАМИКА ПЛАНИМЕТРИЧЕСКИХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ ЗАЖИВЛЕНИЯ ЯЗВЕННЫХ ДЕФЕКТОВ В ОБЛАСТИ КОПЫТЕЦ У КОРОВ, ПРИ КОМПЛЕКСНОМ ИХ ЛЕЧЕНИИ В.А. Ермолаев, доктор ветеринарных наук, профессор Тел. +79278273809, ermwa@mail.ru Е.М. Марьин, кандидат ветеринарных наук, доцент Тел. +79272712659, evgenimari@yandex.ru П.М. Ляшенко, кандидат ветеринарных наук, доцент Тел. +79278295525, pavel-l76@mail.ru А.В. Сапожников, кандидат ветеринарных наук, доцент Тел. +79176149301, alex_ul_vet77@mail.ru ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина» В.К. Якоб, ветеринарный врач, ветеринарная клиника «Доктор Зоо», Тел. +79539810558, yakob-90@mail.ru Ключевые слова: целофанограмма, площадь раны, язвенные дефекты, корова, сорбенты. В данной работе представлены результаты планиметрических показателей язвенных поражений мягких тканей копытец у коров в период их лечения с использованием сорбционно-антисептических препаратов. Введение. Ортопедические болезни у коров наносят значительный экономический ущерб хозяйствам за счет снижения продуктивности (установлено, что при первых признаках деформации копытец от каждой дойной коровы не дополучают 4% молока), выбраковки большого количества больных животных, причем чаще высокопродуктивных [1, 2, 3, 4, 5, 6]. Вопросы этиологии, профилактики, диагностики и своевременного экономически оправданного лечения заболеваний дистального отдела конечностей остаётся на сегодняшний день открытым и актуальным, заключающим в себе разработку и внедрение новых более эффективных методов профилактики и лечения заболеваний конечностей, которые позволили бы продлить срок хозяйственного использования крупного рогатого скота и повысить рентабельность отрасли [7]. Целью данной работы явилось изучение скорости заживлении язвенных поражений в области дистальных отделов конечностей у крупного рогатого скота при их лечении препаратами сорбционно-антисептического действия. Материал и метод исследований. Экспериментально-клинические исследование проводилось на кафедре хирургии, акушерства, фармакологии и терапии, факультета ветеринарной медицины ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина» и в племенном хозяйстве ООО ПСК «Красная Звезда» с. Большие Ключищи, Ульяновского района, Ульяновской области. Животных подобранных для эксперимента по принципу парных аналогов раздели на 3 группы по 10 животных в каждой, возрасте 4…6 лет, массой 450…500 кг., с язвенными поражениями в области копытец: Животным первой группы (далее в работе – контрольная) – после хирургической обработки накладывалась стерильная салфетка с порошком Островского, после чего проводилось наложение бинтовой повязки, с последующей её заменой через каждые 3 дня, до исчезновения гнойных выделений и образования крупнозернистой грануляции. Во второй фазе, на стерильную салфетку наносили 3% тетрациклиновую мазь, вплоть до выздоровления животного. Лечение проводилось до полного клинического выздоровления животного. Во второй группе (далее в работе первая опытная) – также, после хирургической обработки, накладывалась стерильная салфетка с опытным порошком, состоящим из природного сорбента – диатомита, сульфата цинка, стрептоцида и борной кислоты, далее накладывалась бинтовая повязка. Осмотр проводился, через каждые 3 дня, после осмотра происходила смена повязок, после окончания фазы гидратации приме- 159 Рисунок 1 – Язвенные поражения копытец у под-опытных животных нялась мазь Левомеколь. Перевязки проводились до полного клинического выздоровления животного. В третьей группе (далее в работе вторая опытная) – после хирургической обработки, накладывалась стерильная салфетка с опытным порошком, состоящим из природного сорбента – диатомита, сульфата меди, перманганата калия и фурациллин, далее накладывалась бинтовая повязка. Осмотр проводился, через каждые 3 дня, после осмотра происходила смена повязок, после окончания фазы гидратации применялась мазь Левомеколь. Перевязки проводились до полного клинического выздоровления животного. Планиметрические исследования проводили по методу О.А. Навакатиняна [8], применяемого для определения площади и скорости уменьшения плоскостных ран, измеряли площадь раны. Динамику уменьшения площади раны в ходе заживления оценивали в процентах по формуле: Yt=100*(So-St)/So, где So – начальная площадь раны, St – её площадь на день t. На основании полученных значений Yt вычисляли индекс скорости заживления раны (Iv), который отражает поэтапное изменение площади раны в процентах, по сравнению с предудущем сроком наблюдения [10]. Измерялись язвенные дефекты на протяжении всего лечения, для этого использовалась методика Л. Н. Поповой (1942). Её суть заключается в следующем, на рану накладывалась сте160 рильная пластинка целлофана и на нее наносились контуры раны. Далее рисунок переводился на миллиметровую бумагу и подсчиты­валась площадь раны. Измерение проводили на 1-е, 3-е, 7-е, 11е, и 14-е и вычисляли процент, уменьшения площади раневой поверхности за сутки по отношению к предыдущему результату по формуле: ∆ ; где: S- величина площади раны при предыдущем измерении; Sn - величина площади раны при данном измерении; t – число дней между измерениями. При нормальном течении заживления суточное уменьшение площади раны составляет 4% [9]. Индекс скорости заживления рассчитывали по формуле: Iv=Yt-Yt-1, где Yt – процент уменьшения площади раны от исходного размера в наблюдаемый срок, Yt-1 – процент уменьшения площади раны от исходного размера в предыдущий срок наблюдения [10]. Полученный цифровой материал подвергали статистической обработки на компьютерной программе «Statistika 6». Результаты исследований. У всех подопытных животных площадь язвенных поверхностей варьировала в пределах 15,74…23,07 см2 (рис. 1). Таблица 1 - Динамика площади язвенных дефектов у ортопедически больных коров в процессе лечения ( Сутки исследований 1 сутки % к первоначальному 3 сутки % к первоначальному 7 сутки % к первоначальному 11 сутки % к первоначальному 14 сутки % к первоначальному Контрольная группа S, см2 Yt ∆S 18,13±2,51 0 0 ; n=10) Первая опытная группа S, см2 Yt ∆S 23,07±4,52 0 0 Вторая опытная группа S, см2 Yt ∆S 15,74±2,95 0 0 100,0 - - 100,0 - - 100,0 - - 10,02±1,21 55,3 44,7 - 14,9 - 5,75±1,37 * 24,9 75,1 - 25,0 - 8,78±1,57 55,8 44,2 - 14,7 - 4,82±1,33 26,5 73,4 - 13,0 - 2,44±1,04 10,6 89,4 - 14,4 - 2,58±0,64 16,4 83,6 - 17,7 - 1,86±0,87 89,8 15,3 1,79±0,97 92,2 6,7 1,55±1,01 90,1 10,0 10,2 - - 7,8 - - 9,9 - - 0,3±0,3 1,7 98,3 - 28,0 - 0,19±0,19 0,8 99,2 - 29,8 - 0,21±0,21 1,3 98,7 - 28,8 - Примечание: * (Р<0,05) относительно контрольной группы. Рисунок 1 – Индекс заживления язвенных поражений копытец у коров, % Нами установлено, что в первые трое суток лечения язвенных поражений в области копытец наиболее интенсивное сокращение площади ран отмечали в первой опытной группе на 75,1%, во второй и контрольной группе % сокращения составил соответственно 44,2% и 44,7%. Спустя неделю выявлено существенное сокращение язвенных дефектов в обеих опытных группах, % сокращения составил – первой опытной – 89,4%, во второй опытной – 83,6%, а в контрольной группе на 73,1%. За 2 недели лечения площадь язвенных поражений в области копытец сократилась в контрольной группе на 98,3%, а в первой опыт- 161 ной группе на 99,2% и второй опытной на 98,7%, что визуально соответствовало заживлению ран в области копытец (таблица 1). Индекс Поповой (∆S) у всех ортопедически больных животных спустя 3 суток после начала лечения повышался, наиболее выраженное увеличение нами отмечено в первой опытной группе – 25,0%. В дальнейшем нами отмечено снижение данного показателя во всех группах относительно исходных значений, с одновременным его повышением в окончательные сроки экспериментального лечения, соответственно в контрольной группе – 28,0%, в первой опытной – 29,8% и во второй опытной - 28,8%. Интенсивное сокращение площади язвенных поражений нами отмечено в фазу гидратации во всех группах, соответственно в контроле уменьшение отмечалось на 73,4%, в первой опытной группе на 89,4% и во второй опытной группе на 83,6%. Значительное уменьшение площади ран в фазу гидратации в опытных группах по-нашему мнению связано с использование местно порошка сорбционно-антисептического действия. В фазу дегидратации (на 11 сутки) у всех животных отмечали снижение активности сокращения площади язвенных дефектов, в контрольной группе в 2,7 раза, в первой опытной группе в 26,8 раза, во второй опытной группе в 6,8 раза. К 14 суткам скорость заживления в контроле увеличивалась в 5,3 раза, в первой опытной группе в 10,7 раза и во второй опытной группе 5,1 раза. Таким образом, в наиболее ранние сроки полное заживление отмечается при комплесном лечении больных коров, в среднем в опытных группах полное выздоровление животных наступало на 3 суток раньше, чем в контрольной группе. Библиографический список: 1. Веремей, Э.И. Болезни рога – хлопот много / Э. Веремей [и др.] // Белорусское сельское хозяйство. – 2011. - №11. – С. 54-56 2. Ховайло, Е.В. Влияние двигательной активности на качество копытцевого рога у коров / Е.В. Ховайло, А.Л. Лях, В.А. Ховайло // Сборник научных работ «Сельское хозяйство: перспективы и проблемы», Гродно, ГГАУ. – Т.20. - С. 273-280. 3. Ермолаев, В.А. Биологически активные сорбенты при гнойных пододерматитах у коров / В.А.Ермолаев, Е.М.Марьин, В.В. Идогов, А.В.Сапожников // Международный вестник ветеринарии. -2009. -№ 4. - С. 13-16. 4. Марьин, Е.М. Болезни копытец у коров различных пород / Е.М. Марьин, В.А. Ермолаев // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. - 2011. - Т. 2. - № 30-1. - С. 104-105. 5. Марьин, Е.М. Клинико-гематологические показатели при болезнях копытец у крупного рогатого скота / Е.М. Марьин, О.Н. Марьина // Наука в современных условиях. – Ульяновск. - 2013. - № 1. - С. 52-56. 6. Веремей, Э.И. Лечение коров при гнойно-некротических процессах в области копытцев и пальцев / Э.И. Веремей, В.А. Журба, В.А. Лапина // Ветеринария. – 2004. – № 3. – С. 39 – 41. 7. Стекольников, А.А. Заболевания конечностей у крупного рогатого скота при интенсивном ведении животноводства, пути профилактики и лечения / А.А. Стекольников // Материалы Международной конференции «Актуальные проблемы ветеринарной хирургии», Ульяновск, 2011. – С. 3-7. 8. Фенчин, К.М. Заживление ран / К.М. Фенчин. - Киев: Здоровье, 1979. – 167 с. 9. Марьин, Е.М. Планиметрические показатели раневого процесса у собак при использовании природных сорбентов /Марьин Е.М. [и др.] // Материалы ΙΙ-й Открытой Всероссийской научно-практической конференции молодых учёных «Молодёжь и наука ХХΙ». – Ульяновск: УГСХА, 2007. - С. 103-105. 10. Васильева, Л.С. Изменения планиметрических показателей инфицированной хронической раны при ее лечении препаратами, содержащими биологически активные вещества / Л.С. Васильева, Л.К. Куликов, С.С. Казанков [и др.] // Сибирский медицинский журнал. – Иркутск, 2009. – Т. 90, No 7. – С. 46–49. 162 DYNAMICS OF PLANIMETRIC INDICATORS OF HEALING OF ULCER DEFECTS IN THE FIELD OF HOOVES AT COWS, AT THEIR COMPLEX TREATMENT V. A. Ermolaev, E. M. Marin,P. M. Lyashenko, A. V. Sapozhnikov, V. K. Jakob Keywords: tselofanogramma, area of a wound, ulcer defects, cow, sorbents. In this work results of planimetric indicators of ulcer defeats of soft fabrics of hooves at cows during their treatment with use of sorption and antiseptic preparations are presented. УДК: 612.172.4:636.7 РЕЗУЛЬТАТЫ ЭЛЕКТРОКАРДИОГРАФИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ У ЗДОРОВЫХ СОБАК С.П. Ковалев, доктор ветеринарных наук, профессор, 8-812-388-55-26, spkov111@mail.ru; В.А.Трушкин, кандидат ветеринарных наук, 8-812-388-55-26, trushkin84@yandex.ru П.С. Киселенко, кандидат ветеринарных наук, доцент, 8-812-388-55-26, pkiselenko@yandex.ru ФГБОУ ВПО «Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины » Ключевые слова: собаки, электрокардиография, зубцы, интервалы, сердце. Резюме. Заболевания сердечно-сосудистой системы у собак занимают одно из лидирующих мест, среди болезней незаразной этиологии. В ходе работы определяли влияние положения тела животных на изменения показателей электрокардиограммы.На основании проведенных исследований можно утверждать, что продолжительность интервалов на электрокардиограмме не зависит от положения тела животного. Среди амплитудных показателей менялись те, которые отражают деполяризацию предсердий и возбуждение желудочков, что необходимо учитывать при регистрации. Введение. Среди незаразных заболеваний собак превалируют болезни сердечно-сосудистой системы. Они являются основной причиной смертности животных (43 %) в результате необратимых изменений в сердце и сосудах [4]. В отечественной ветеринарной литературе вопрос о заболеваниях сердца собак освещен, к сожалению, недостаточно. Существующие публикации по поводу сердечно-сосудистой патологии в основном касаются продуктивных животных и лишь отчасти затрагивают мелких домашних животных, в частности собак [1,2,3]. Электрокардиографическая диагностика мелких животных также затруднена, так как отсутствуют общепринятые нормативы для собак по величине, направленности зубцов, продолжи- тельности интервалов. Нет определенного мнения о позе животных во время снятия ЭКГ. Все вышесказанное послужило поводом для проведения электрокардиографических исследований у здоровых собак для выведения нормативных показателей. Материалы и методы исследования. Исследования проводились в период с 2001 по 2014 год на собаках различных пород. Всего было исследовано 620 собак, поступивших с подозрением на патологию сердечно-сосудистой системы. Возрастной состав исследованных животных представлен собаками от одного года до пятнадцати лет. Животные содержались в домашних условиях. Рацион имел незначительные отличия. В 163 Таблица 1 - Показатели амплитуды зубцов ЭКГ у собак по II отведению (М ±m). Амплитуда волны I группа II группа собаки, весом менее 15 кг собаки, весом более 15 кг (мВ) (мВ) Зубца Р Зубца Q Зубца R Зубца S ЗубцаТ 0,25 ± 0,03 0,26 ± 0,04 1,80 ± 0,13 0,17 ± 0,02 0,36 ± 0,03 0,27 ± 0,03 0,40 ± 0,06 2,40 ± 0,16 ** 0,21 ± 0,04 0,40 ± 0,03 Средние показатели по двум группам (мВ) 0,26 ± 0,03 0,32 ± 0,06 2,10 ± 0,14 0,19 ± 0,03 0,38 ± 0,03 Примечание: уровень достоверности (р) при сравнении показателей I и II группы *** (р< 0,001); **(р < 0,01); *(р < 0,05) Таблица 2 - Показатели продолжительности интервалов на ЭКГ собак по II отведению (М ±m). Показатели Длительность волны Р Интервал РQ Длительность QRS Длительность QT I группа собаки, весом менее 15 кг (сек.) 0,033 ± 0,002 0,095 ± 0,009 0,037 ± 0,002 0,192 ± 0,006 II группа собаки, весом более 15 кг (сек.) 0,036 ± 0,002 0,115 ± 0,005 0,045 ± 0,002** 0,20 ± 0,005 Средние показатели по двум группам (сек.) 0,034 ± 0,002 0,110 ± 0,006 0,042 ± 0,002 0,197 ± 0,005 Примечание: уровень достоверности (р) при сравнении показателей I и II группы *** (р< 0,001); **(р < 0,01); *(р < 0,05) целом у всех животных потребность в основных питательных веществах обеспечивалась. Для сравнения показателей ЭКГ у собак с различной массой тела были сформированы две контрольные группы животных, по 10 собак в каждой, в которые вошли клинически здоровые животные. В первую группу входили собаки мелких пород (масса тела до 15 кг), во вторую группу входили собаки средних и крупных пород (массой свыше 15 кг).Кроме того, во время исследования определяли влияние положения тела животных на изменения показателей ЭКГ. Для этого ЭКГ у собак первой и второй групп снимали в трех положениях: стоя, лежа на груди и лежа на правом боку с вытянутыми вперед конечностями. Результаты и их обсуждение. Результаты исследований представлены в таблице 1. Как видно из таблицы амплитуда зубца R у собак во второй группе достоверно повышена (р< 0,001) по сравнению с первой группой и составляла 2,4 ± 0,16 мВ против 1,80 ± 0,13 мВ. Амплитуды остальных зубцов P, Q, S, T в зависимости от размера собаки менялись не достоверно. Так величина зубца Р у животных первой и второй группы составляла соответственно 0,25 ± 164 0,03 и 0,27 ± 0,03 мВ (р > 0,05); амплитуда зубца Q – составляла 0,26 ± 0,04 и 0,40 ± 0,06 мВ соответственно (р > 0,05); амплитуда зубца S – 0,17 ± 0,02 и 0,21 ± 0,04 мВ (р > 0,05) и амплитуда зубца Т – 0,36 ± 0,03 и 0,40 ± 0,03 мВ (р > 0,05). При анализе продолжительности элементов ЭКГ у животных, находящихся в опыте были получены результаты, представленные в таблице 2. Из данной таблицы видно, что длительность зубца Р у собак первой группы составила 0,033 ± 0,002 сек., а у собак второй группы – 0,036 ± 0,002 секунды (р > 0,05). Интервал РQ у животных первой и второй группы составил 0,090 ± 0,005 и 0,120 ± 0,006 секунды соответственно (р> 0,05). В первой группе интервал QT равен 0,192 ± 0,006 секунды, а во второй – 0,20 ± 0,005 секунды (р> 0,05). Продолжительность комплекса QRSдостоверно различалась и составила в группах 0,042 ± 0,001 и 0,045 ± 0,001 секунд соответственно (р< 0,01). В целом интервалы у собак первой группы менее продолжительны, чем у животных во второй группе. При определении частоты сердечных сокращений (ЧСС) было установлено, что у круп- Таблица 3 - Средние амплитудные показатели и продолжительность интервалов (М ±m) Показатели Длительность волны Р(мВ) Амплитуда Р (мВ) Интервал PQ (сек.) Длительность QRS (сек.) Амплитуда Q (мВ) Амплитуда R (мВ) Интервал QT (сек.) Амплитуда Т (мВ) Средняя электрическая ось сердца В положении лежа В положении лежа на правом боку на груди 0,035 ± 0,002 0,037 ± 0,002 0,15 ± 0,01 0,20 ± 0,01** 0,11 ± 0,002 0,11 ± 0,002 0,045 ± 0,002 0,045 ± 0,002 0,33 ± 0,04 0,35 ± 0,04 1,90 ± 0,14 2,10 ± 0,12 0,21 ± 0,005 0,21 ± 0,005 0,23 ± 0,02 0,21 ± 0,02 + 69,0о ± 4,3 + 75,5 о ± 7,4 Стоя 0,035 ± 0,002 0,22 ± 0,01*** 0,11 ± 0,002 0,046 ± 0,002 0,37 ± 0,06 2,5 ± 0,1*** 0,20 ± 0,005 0,21 ± 0,02 +55,0о ± 6,3 Примечание: уровень достоверности (р) при сравнении показателей II, III с I группой *** (р< 0,001); **(р < 0,01); *(р < 0,05) ных собак составляет 104 ± 6 ударов в минуту, у мелких – 143 ± 5 ударов в минуту (р< 0,001). ЧСС у мелких собак достоверно выше, чем у крупных собак. При расчете средней электрической оси сердца она составила у собак в первой группе + 69 ± 7°, а во второй – + 74 ± 8° (р> 0,05). При проведении электрокардиографических исследований у здоровых собак отмечали позитивный, негативный и двух фазный зубец Т. Чаще (в 50% случаев) встречался зубец Т имеющий отрицательную фазу во II и в III отведениях. Двухфазный зубец Твстречался в 10% случаев (у 2 собак). Позитивный зубец Т отмечали у 8 собак (в 40% случаев). В 35% случаев (у 7 собак) сегмент S–T находился на изолинии. Смещение сегмента S–T напрямую было связано с наличием инверсии зубца Т и было выражено у всех исследуемых животных не более чем на 0,15 ± 0,02 мВ. Смещение сегмента S–T более чем на 0,15 мВ должно рассматриваться как патологический признак, характеризующий нарушение процесса реполяризации. Средняя амплитуда зубца Т у собак обеих групп составила 0,38 ± 0,03 мВ. Изменение показателей ЭКГ в зависимости от положения тела животного. Для определения зависимости изучаемых показателей от положения тела в пространстве ЭКГ у здоровых собак регистрировали в трех положениях: Результаты исследование представлены в таблице 3. Сравнивая данные, представленные в таблице, можно отметить, длительность волны Р, интервалов PQ, QRS и QT оставались постоянными и составляли 0,035 ± 0,002, 0,11 ± 0,01, 0,045 ± 0,01, 0,21 ± 0,01 сек. соответственно. Средние амплитудные показатели некоторых зубцов менялись в зависимости от положения тела собаки. Так в положении стоя амплитуда зубца Р составила 0,22 ± 0,01 мВ, а в положении лежа на правом боку – лишь 0,15 ± 0,01 мВ (р < 0,001). Амплитуда зубца Q меняется не значительно (разница не более 10%), в первой группе 0,33 ± 0,04, а во второй – 0,35 ± 0,04 мВ (р> 0,05). Амплитуда зубца R в третьей группе достоверно повышена по сравнению с первой группой и достигает 2,5 ± 0,1 мВ (р< 0,001). Во второй группе амплитуда зубца R повышена незначительно и составляла 2,10 ± 0,12 мВ (р> 0,05). Амплитуда зубца Т во всех положениях практически не изменялась и составила соответственно 0,23± 0,02; 0,21 ± 0,02; 0,21 ± 0,02 мВ (р> 0,05). При расчете положения средней электрической оси отмечали не существенные отличия, так ЭОС в первой группе составила + 69,0о ± 4,3, а во второй – + 75,5 о ± 7,4 (р> 0,05). Заключение. На основании проведенных исследований можно утверждать, что продолжительность интервалов на ЭКГ не зависит от положения тела животного. Среди амплитудных показателей менялись показатели, отражающие деполяризацию предсердий и возбуждение желудочков, что следует учитывать при регистрации. 165 Библиографический список: Комолов А.Г., Мендоса-Истратов С.Л. Лечение хронической сердечной недостаточности у собак. Вестник ветеринарной медицины 2003 № 2 С. 7 –13. 1. Малкова Н.В. Патология сердечно-сосудистой системы собак и возможности ЭКГ в ее исследовании. Автореф. дис. … канд. вет. Наук. Москва 2000г., -20 с 2. Рощевский М.П. Униполярные электрографии миокарда из полостей сердца, магистральных сосудов и от поверхности тела у собак, кошек и поросят. Физиологические основы электрокардиографии животных. Из-во «Наука». 1965., С.5 –18. 3. Трапезов Е.В. Электрокардиография собак. // Ветеринар 2003. №5, С. 33 – 44, №6, С. 8 – 21, 2004, №2 С. 24 – 44. RESULTS OF ELECTROCARDIOGRAPHIC RESEARCHES OF HEALTHY DOGS S.P. Kovalev, V.A. Trushkin, KiselenkoP.S. Key words: dogs, electrocardiography, deflection, intervals, heart Diseases of the cardiovascular system of dogs occupy a leading position among disease of noninfectious etiology. During the work was determined the influence of the animals’ body position on changes electrocardiogram indicators. Based on these studies it can be argued that the duration of the intervals of the electrocardiogram is not dependent on the position of the animal’s body. Among the amplitude indicators there were changing those, that reflect the depolarization of the atria and the excitement of ventricles, that should be considered at the registration. УДК 636.2.053:612.017.1 ПРОФИЛАКТИКА ИММУННЫХ ДЕФИЦИТОВ И БОЛЕЗНЕЙ ЖЕЛУДОЧНО-КИШЕЧНОГО ТРАКТА ТЕЛЯТ С. В. Петровский, кандидат ветеринарных наук, доцент И. Н. Борисёнок, студентка 5 курса факультета ветеринарной медицины, С. С. Линник, студент 5 курса факультета ветеринарной медицины ветеринарной медицины», + 375 212 53-80-71, uovgavm@vitebsk.by УО «Витебская ордена «Знак Почёта» государственная академия Ключевые слова: телята, иммунные дефициты, диспепсия, абомазоэнтерит, дренчер, иммунные стимуляторы Выпаивание 1-й порции молозива через зонд (дренчер) и инъекции иммуностимулятора тималина снижают заболеваемость телят диспепсией и абомазоэнтеритом. Эти эффекты сопровождаются повышением в крови телят концентрации иммуноглобулинов класса G и фагоцитарной активности лейкоцитов. Введение. У телят в ранний постанатальный период широко распространены болезни, характеризующиеся развитием морфологических и функциональных изменений в же166 лудочно-кишечном тракте. У телят в возрасте до 10 дней эти болезни обозначаются термином «диспепсия», после 10 дней – «абомазоэнтерит». Возникновение данных болезней Таблица 1 – Заболеваемость телят диспепсией и абомазоэнтеритом Заболело диспепсией Животных % 6 30 18 90 - Группа 1 2 3 4 Заболело абомазоэнтеритом Животных % 9 90% 2 20% Таблица 2 – Содержание иммуноглобулинов в крови телят (Х±σ) Группа Ig G, мг/л 1-я 2-я 865,1±95,36 662,3±98,24* Ig G, % от всех иммунных глобулинов 95,8 94,6 * - р<0,05 по отношению к контрольной группе Таблица 3 - Фагоцитарная активность и нейтрофильные индексы крови телят Группа 3 4 ФАЛК, % 71,60±8,890 59,20±14,675 имеет тесную связь с возникновением у телят возрастных иммунных дефицитов – первого (сразу после рождения) и второго, связанного с разрушением факторов колострального иммунитета [1, 2]. Профилактика иммунодефицитов и болезней желудочно-кишечного тракта у телят исключительно важны, поскольку животные, болевшие в неонатальный период, плохо реализуют свой генетический потенциал и не достигают ожидаемой от них продуктивности [4]. В этой связи целью наших исследований стала разработка способов профилактики диспепсии и абомазоэнтерита телят, обуславливаемых возрастными иммунными дефицитами. Материал и методы. Для реализации данной цели в условиях скотоводческого комплекса были сформированы 4 группы телят различных возрастов. В состав 1-й и 2-й групп были включены новорождённые телята (по 20 животных в каждой), в 3-ю и 4-ю – двухдневные телята (по 10 животных в каждой). Телятам 1-й группы в течение 1-го часа после рождения первая порция молозива была выпоена через зонд (дренчер), телятам 2-й группы – через сосковую поилку, в ФЧ 5,06±0,399 4,14±1,577 ФИ 3,59±0,221 2,24±0,246 сроки, предусмотренные технологией комплекса. Во всех случаях молозиво было полноценным, количество, заливаемое в дренчер и сосковую поилку, было достаточным. Телятам 3-й группы на 2-й и на 9-ы дни жизни были сделаны внутримышечные инъекции иммуностимулятора тималина в дозе 0,3 мг/ кг массы. Телятам 4-й группы иммуностимулятор тималин не вводился. Все остальные обработки у телят 3-й и 4-й групп проводились в соответствии с «Планом ветеринарных мероприятий комплекса». Условия кормления и содержания телят всех групп были сходными. У телят 1-й и 2-й на 3-й день жизни, у телят 3-й и 4-й групп на 14-й день жизни была получена кровь (у 5 животных из каждой группы). В крови телят 1-й и 2-й групп нефелометрически определяли содержание иммуноглобулинов класса G, а в крови телят 3-й и 4-й групп – фагоцитарную активность лейкоцитов крови (ФАЛК). Также нами были рассчитаны фагоцитарное число (ФЧ) и фагоцитарный индекс (ФИ). Исследования проводились по методике, приведенной в «Рекомендациях по определению естественной резистентности и путей её повышения у молодняка сельскохозяйственных животных» [3]. 167 Учёт заболеваемости телят диспепсией среди животных 1-й и 2-й групп вели до 10-го дня жизни, заболеваемости абомазоэнтеритом среди телят 3-й и 4-й групп – до 20-го дня жизни. При этом использовались клинические методы. Результаты и их обсуждение. В ходе наблюдения и клинического исследования у телят всех групп выявлялись сходные клинические признаки: угнетение различной степени, снижение и отсутствие аппетита, диарея, жидкая консистенция фекалий и наличие в них различных примесей, повышенная чувствительность и болезненность желудка и кишечника при пальпации, в ряде случаев признаки эксикоза (западение глазных яблок, повышенная складчатость и сухость кожи) и истощения. У телят 1-й и 2-й групп данные симптомы учитывали с 1-ый по 10-ый дни жизни, а у телят 3-й и 4-й групп – с 10-го по 20-ый. Количество животных с симптомами диспепсии и абомазоэнтерита в группах телят было различным (таблица 1). У животных опытных групп (1-й и 3-й) заболеваемость диспепсией и абомазоэнтеритом была ниже по сравнению с телятами контрольных групп (2-й и 4-й). Так, диспепсией в 1-й группе заболело в 3 раза меньшей телят по сравнению со 2-й, а абомазоэнтеритом в 3-й – в 4,5 раза меньше, чем в 4-й. Снижение заболеваемости диспепсией у телят 1-й группы обусловлено более полной компенсацией 1-го возрастного иммунного дефицита (таблица 2). Как видно из данных таблицы, концентрация иммуноглобулинов класса G, оказалась выше в крови телят 1-й группы на 30,6% по сравнению с животными 2-й группы. Компенсация 1-го возрастного иммунного дефицита обеспечивает полноценный иммунный ответ на различные антигенные раздражения, в том числе и на те, которые оказывают возбудители инфекционных диарейных болезней. О состоянии иммунной защиты у телят 3-й и 4-й групп судили по уровню фагоцитарной активности лейкоцитов крови. Данный показатель характеризует уровень естественной резистентности организма телят, однако состояние фагоцитарной активности имеет тесную связь как с гуморальными, так и с клеточными факторами иммунитета. Информация о состоянии ФАЛК телят 3-й и 4-й группы представлена в таблице 3. Уровень ФАЛК у телят 3-й группы превысил уровень 4-й группы на 12,4%, а ФЧ и ФИ – на 22,0 и 60,2% соответственно. Данные изменения функциональной активности лейкоцитов указывают на стимуляцию иммунной системы (её клеточной составляющей). Заключение. Установлено, что профилактика возрастных иммунных дефицитов телят, основанная на своевременной выпойке достаточного количества полноценного молозива через дренчер и применении тималина, позволяет снизить заболеваемость животных диспепсией и абомазоэнетритом. Библиографический список: 1. Карпуть, И. М. Иммунология и иммунопатология болезней молод­няка / И. М. Карпуть – Минск : Ураджай, 1993. - 288 с. 2. Кондрахин, И. П. Диагностика и терапия внутренних болезней животных / И. П. Кондрахин, В. И. Левченко. – Москва : Аквариум-Принт, 2005. – 830 с. 3. Рекомендации по определению естественной резистентности и путей её повышения у молодняка сельскохозяйственных животных / А. И. Ятусевич [и др.].- Витебск : ВГАВМ, 2011.- 40 с. 4. Рекомендации по применению иммунокорректоров для повышения резистентности и профилактики болезней молодня­ка сельскохозяйственных животных и птиц / И. М. Карпуть [и др.]. - Витебск : ВГАВМ, 2009. - 56 с. PREVENTIVE MAINTENANCE OF IMMUNE DEFICIENCIES AND DISEASES OF THE GASTROENTERIC PATH OF CALVES S. V.Piatrouski, I. N.Borisionok, S. S.Linnik Keywords: calves, immune deficiencies, dyspepsia, gastroenteritis, tube (drencher), immune stimulants 168 Watering colostrum through a tube and injection of thymalin can reduce the incidence dyspepsia and gastroenteritis of calves. These effects were accompanied by increase in blood of calves concentration of immunoglobulin G and functional УДК 619:615.3 ИЗУЧЕНИЕ ВЛИЯНИЯ ВИТАМИННО-МИНЕРАЛЬНОЙ КОРМОВОЙ ДОБАВКИ «ВОЛСТАР» И ПРЕПАРАТА «НИТАМИН» НА ПОКАЗАТЕЛИ КРОВИ ПОРОСЯТ И.А. Помещиков, аспирант тел. +79518890972, krasav4ik91@mail.ru А.А. Волков, доктор биологических наук, тел. +79173131121, volkov-aleksei@yandex.ru ФГОУ ВПО «Саратовский государственный аграрный университет им. Н.И. Вавилова» Ключевые слова: свиноводство, кормовая добавка, Волстар, Нитамин В данной работе представлены результаты производственного испытания витаминно-минеральной кормовой добавки «Волстар» в свиноводстве. В качестве препарата сравнения применяли препарат «Нитамин». По итогам работы оптимизированы дозировки, представлены усреднённые данные результатов биохимического исследования крови поросят после проведения терапевтических мероприятий. Введение. Как известно, основой продуктивности и поддержания высокой резистентности животных, в частности свиней является сбалансированное по питательным веществам, микроэлементам и витаминам кормление [2,3]. Недостаток витаминов и минералов негативно влияет на процессы пищеварения и формирования гомеостаза желудочно-кишечного тракта животных [4,5]. В частности, очень чувствителен к изменению состава рационов молодняк свиней. Изменение состава микрофлоры кишечника, приводит к усилению процессов брожения или гниения, вызывая гастроэнтероколиты, а так же в свою очередь негативно воздействует и на другие органы пищеварения (такие, как печень, которая активно участвует в дезинтоксикации токсических веществ) [6,7]. С целью изучения терапевтического действия при лечении и профилактике гиповитаминозов у свиней нами, в период 01.08.13 по 30.10.13 гг. в учхозе РГАУМСХА «Муммовское» Аткарского района Саратовской области было проведено клиническое испытание, апробация и внедре- ние витаминно-минеральной кормовой добавки «Волстар» производства ООО «НВЦ Агроветзащита» в свиноводстве. Материалы и методы исследований. Объектами исследований являлись 60 голов клинически здоровых поросят подобранных по принципу аналогов (порода «Крупная белая», в возрасте 3 мес. Средняя живая масса животных составляла 26-27 кг. Было сформировано две опытных и одна контрольная группы по 20 голов в каждой. Витаминно-минеральную кормовую добавку «Волстар» применяли согласно инструкции по применению (перорально с питьевой водой, индивидуальным и групповым методом 1 раз в день в течение 5 дней) [2]. В качестве препарата сравнения применяли препарат «Нитамин» перорально с питьевой водой 1 раз в день в течение 5 дней. Витаминно-минеральную кормовую добавку «Волстар» вводили животным орально в следующих дозировках: 1.Животным первой группы (n=20) витаминно-минеральную кормовую добавку 169 Таблица 1 - Усреднённые данные результатов биохимического исследования крови поросят до проведения терапевтических мероприятий Показатели Ед. изм. АЛТ Е/л АСТ Е/л Амилаза Е/л Глюкоза ммоль/л Креатинин ммоль/л Мочевина ммоль/л Щелочная фосфаЕ/л таза Белок г/л Альбумин г/л Глобулин г/л Группа 1 М м 43 1,8 53 1,4 68 3,02 2,69 0,04 171,8 6,0 4,5 0,5 136 10,1 Группа 2 М м 41 1,52 51 1,29 57 2,13 1,99 0,73 159 12,65 5,3 0,53 104 12,08 Контроль М м 44 2,60 54 1,50 50 4,04 1,54 0,52 152,4 11,53 4,6 0,03 148 11,68 53,2 16,1 37,1 54,1 16,8 37,3 51,7 15,6 36,1 1,2 1,9 1,6 2,80 1,52 1,31 2,82 1,06 1,90 Норма до 47 до 55 до 88 3,7-6,4 70-208 3,5-5,8 до 176 60-83 22,6-40,4 39,5-60 Таблица 2 - Усреднённые данные результатов биохимического исследования крови поросят после проведения терапевтических мероприятий Показатели АЛТ АСТ Амилаза Глюкоза Креатинин Мочевина Щелочная фосфатаза Белок Альбумин Глобулин Ед. изм. Е/л Е/л Е/л ммоль/л ммоль/л ммоль/л Е/л г/л г/л г/л Группа 1 М м 39 3,81 43 1,43 76 1,32 4,02 0,11 109,8 4,67 4,8 0,78 109 3,58 Группа 2 М м 36 1,86 39 2,08 81 2,36 5,12 0,89 144 5,14 5,3 0,19 134 6,34 Контроль М м 38 2,18 41 1,67 74 3,46 4,88 0,84 137 8,92 4,8 0,15 156 4,98 63,9 23,7 40,2 76,5* 32,9* 43,6 64,1 24,3 39,8 1,89 1,21 1,43 «ВолСтар» давали внутрь в суточной дозе 0,5 мл на 10 кг живой массы. 2.Животным второй группы (n=20) препарат давали в суточной дозе 1 мл на 10 кг живой массы. 3.Животным контрольной группы вводился препарат сравнения «Нитамин» из расчёта 1 мл на 10 кг живой массы. Продолжительность наблюдений за поросятами составила 30 дней. Для оценки эффективности применяемых препаратов проводили клинико-лабораторные исследования данных животных. До и по окончанию эксперимента проводили взвешивание животных. Через 30 суток от начала эксперимента у всех животных брали кровь для лабораторных исследований. 170 2,21 1,46 1,56 2,46 1,12 1,34 Норма до 47 до 55 до 88 3,7-6,4 70-208 3,5-5,8 до 176 60-83 22,6-40,4 39,5-60 Результаты исследований и их обсуждение. Результаты биохимического исследования крови поросят до и после проведения терапевтических мероприятий изложены в данных таблиц 1,2. В ходе эксперимента установлено, что через 30 дней от начала эксперимента отмечается достоверное повышение общего белка у поросят всех групп, в основном за счет альбуминовой фракции. Это указывает на повышение усвоения питательных веществ корма. Данный факт подтверждается повышением концентрации глюкозы в сыворотке крови поросят, что также свидетельствует о нормализации углеводного метаболизма в организме животных. Вместе с этим наиболее интенсивная динамика изменений данных показателей отмечается во второй опытной группе животных. Наряду с этим установлено, что сохранность поросят и в контроле и в опытных группах составила 100%. Наибольший среднесуточный прирост поросят наблюдается во второй опытной группе поросят. Заключение. На основании полученных результатов исследований можно заключить, что применение витаминно-минеральной добавки «Волстар» в дозировке 0,5-1 мл на 10 кг живой массы способствует нормализации обмена веществ у поросят, а так же повышению жизнеспособности молодняка и увеличению продуктивности. Библиографический список: 1. Волков А.А. Морфологические критерии, клинико-диагностическая тактика обследования и лечение собак с эзофагеальной и гастродуоденальной патологией: диссертация на соискание ученой степени доктора ветеринарных наук/Донской государственный аграрный университет. Б.м., 2009. 2. Ермолаев В.А., Липатов А.М., Шишков Н.К., Золотухин С.Н., Липатова О.А . Способы введения лекарственных веществ различным видам животных/ Учебно-методическое пособие // Ульяновск, 1995. 3. Паршин П.А., Востроилов А.В., Кузнецов Н.И., Никулин И.А., Паршина В.И. Продуктивные качества коров и телят при включении в рацион комплекса биологически активных веществ // Ветеринарная патология. 2007. № 2. С. 200-202. 4. Староверов С.А., Фомин А.С., Волков А.А., Козлов С.В., Хлебцов Б.Н., Ларионов С.В., Василенко О.А., Меженный П.В., Винников Н.Т., Дыкман Л.А. Использование фаговых мини-антител для определения концентрации ферритина в сыворотке крови животных // Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные. 2012. № 4. С. 30-33. 5. Степанов В.С., Волков А.А., Козлов С.В., Староверов С.А., Волкова А.П., Субботин А.М. Морфобиохимические показатели крови у животных при некоторых заболеваниях пищеварительной системы // Ученые записки учреждения образования “Витебская ордена “Знак почета” государственная академия ветеринарной медицины”. 2011. Т. 47. № 2-1. С. 207-211. 6. Шумский Ю.Н., Никулин И.А., Шумский Н.И. Влияние белкового и витаминного состава рациона на активность аминотрансфераз в сыворотке крови свиней//Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии. 2012. Т. 1. № 1. С. 102-103. 7. Шумский Ю.Н., Шумский Н.И., Никулин И.А. Активность аминотрансфераз сыворотки крови свиней современных мясных пород различных половозрастных групп // В сборнике: Ветеринарная медицина XXI века. Инновации, обмен опытом и перспективы развития Материалы Международной научно-практической конференции. Под редакцией А.А. Волкова. 2012. С. 351-355. STUDY INFLUENCE OF VITAMIN-MINERAL FEED SUPPLEMENT “VOLSTAR” AND PREPARATIONS “NITAMIN” ON BLOOD INDICES PIGS A.V.Pomeshikov, A.A.Volkov Key words: pig breeding, feed additive, Volstar, Nitamin The paper presents the results of tests of of industrial of vitamin-mineral feed supplement “Volstar” in pig production. As a reference drug used drug “Nitamin.” The outcome of the optimized dosage average data presented results of biochemical blood tests piglets after therapeutic interventions. 171 УДК 636.5.033 САНИТАРНО-ГИГИЕНИЧЕСКИЕ И БИОХИМИЧЕСКИЕ АСПЕКТЫ ВЫРАЩИВАНИЯ ЦЫПЛЯТ-БРОЙЛЕРОВ РАЗНЫХ ВОЗРАСТНЫХ ГРУПП Л.П. Сатюкова, кандидат ветеринарных наук, заведующая отделом ФГБУ Центральная научно-методическая ветеринарная лаборатория (ФГБУ ЦНМВЛ), тел. 8 (495) 700-01-37 И.Р. Смирнова, доктор ветеринарных наук, профессор, академик РАЕН, Г.М. Крюковская, кандидат ветеринарных наук, доцент, Р.А. Крюковский, магистр ФГБОУ ВПО Московский государственный университет пищевых производств Ключевые слова: цыплята-бройлеры, гигиена выращивания, биохимические показатели сыворотки крови. Интенсификация птицеводства предусматривает полноценное сбалансированное кормление сельскохозяйственной птицы не только основными органическими и минеральными питательными веществами, но и витаминами, выполняющими исключительно важную роль в обмене веществ организма. Нами представлен мониторинг биохимических показателей крови цыплят-бройлеров разных возрастных групп, как отражение состояния здоровья и санитарно-гигиенического благополучия. Введение. Полноценность кормления сельскохозяйственной птицы обеспечивается нормированием широкого комплекса питательных, биологически активных веществ и энергии. Потребность в энергии, элементах питания, изменяется в зависимости от вида, физиологического состояния, возраста, живой массы, продуктивности птицы и других факторов. Одним из главных правил выращивания птицы является соблюдение санитарных и гигиенических норм. Гигиена кормления при выращивании бройлеров напрямую влияет на здоровье птицы. Важно составлять сбалансировано рационы кормления, которые должны обеспечивать птицу энергией и питательными веществами для эффективного роста и здоровья, состояние которого можно оценивать по биохимическому статусу крови (7). Оптимальное кормление кур на производстве заключается в том, чтобы обеспечить обменной энергией, витаминами, микро- и макроэлементами, ферментами в экономически эффективном количестве для поддержания оптимального здоровья, продуктивности и качества продукции, и позволяет птице реализовать их истинный генетический потенциал (5). Обмен веществ в организме птицы протекает значительно интенсивнее, чем у других видов сельскохозяйственных животных. 172 Недостаток микро- и макроэлементов, витаминов, ферментов может тормозить процесс обмена веществ, тем самым замедляя рост и развитие цыплят-бройлеров. Активность ферментов крови и их связь с хозяйственно-полезными признаками изучалась, главным образом, на коровах, свиньях, кроликах. Работ, в которых описывается активность ферментов крови кур, практически мало (5). Наиболее перспективными ферментами крови, для оценки физиологического состояния организма цыплят бройлеров в норме, при некоторых заболеваниях и прогнозировании продуктивности в раннем возрасте являются аминотрансферазы, катализирующие переаминирование аминокислот и фосфатазы, принимающие участие в минеральном, углеводном и жировом обменах. Щелочная фосфатаза (ЩФ) содержится в печени, костях, кишечнике, лейкоцитах, при этом более 80% фермента сосредоточено в печени и костях. Необходимость контролировать активность этого фермента, так как ЩФ печени связана с внешней поверхностью каналикулярной мембраны гепатоцитов и повышенная активность ЩФ в крови возможна при внутри- или внепеченочной обструкции. Учитывая важность трансаминаз и фосфатаз в обмене веществ, интенсивность которых у птиц весьма высокая, а также ограниченное количество исследований по этому вопросу, мы решили изучить, на ряду с другими биохимическими показателями, активность аминотрансфераз и фосфатаз в сыворотке крови кур (4). В литературных источниках нам не удалось найти достоверного подтверждения наших данных по исследованию общего белка и его фракций (альбумин, глобулин), так как имеющиеся данные противоречивы. По данным Мосягина В.В. у цыплят бройлеров кросса Бройлер-6, с увеличением возраста, содержание общего белка в крови снижается в 15-ти суточном возрасте до 3,98%, а в 60 суток до – 3,88%. Происходит снижение количества альбуминовой фракции: в 15-ти суточном возрасте до 59,9%, а в 60-ти суточном возрасте до 34,1%. Противоположные данные получены в исследованиях Саражаковой И.М. и Бахаревой О.П., которые изучали кросс Родонит, где динамика содержания общего белка незначительно снижается после 49 дня. Эти же авторы наблюдали постоянный рост альбуминов с небольшим замедлением в конце экспериментального периода (на 1 сутки – 13,93 г/л; 21 – 14,96 г/л; 35 – 16,20 г/л; 49 – 17,07 г/ и на 63 сутки – 17,43 г/л) (2,4). Наши исследования коррелируют с данными, полученными этими авторами. Обмен белка теоретически можно рассматривать как отдельный процесс, изолированный от всего организма, но на практике живой организм ведет себя как единое целое. Изменение хотя бы одного параметра вызывает цепь биологических реакций, способствующих устранению данного изменения или перенастройку других, смежно протекающих процессов для совместной работы всех систем организма в новых физико-химических условиях. И тот и другой варианты неизбежно приводят к включению в ответную реакцию, в той или иной, степени всего организма (2). Концентрация в крови таких веществ как кальций, стероидные гормоны и триптофан, регулируется в результате связывания их с альбуминами. Отмечена связь между содержанием жидкости в организме и содержанием общего белка в крови, что, несомненно, сказывается на качестве мяса птиц. Значение солей кальция не ограничивается их участием в построении костного скелета. Во многих биохимических и физиологических процессах ионы Са2+ занимают ключевые позиции. Он участвует в передаче нервного возбуждения, т.е. пони­жает возбудимость центральной и периферической нервной системы. Ионы Са2+ участвуют в образовании неорганической фракции кост- ной ткани, уменьшают проницаемость мембран и снижают способность тканевых коллоидов связывать воду; стабилизируют трипсин поджелудочной желе­зы. Фосфор участвует в обмене и транспорте жиров, белков и углеводов; входит в состав всех тканей организма. Так же входит в состав фосфолипидов, которые играют важную роль в образовании клеточных мембран и регуляции их прони­цаемости; служит предшественником в синтезе генетически важных соедине­ ний, в частности ДНК (3). Исходя из выше изложенного, следует контролировать уровень кальция и фосфора в организме. На усвоение кальция влияет ряд факторов. В желудке он частично растворяется желудочным соком, затем подвергается действию желчных кислот, переводящих его в усвояемую форму. От уровня кальция в рационе зависят обмен и депонирование кадмия в организме птицы (5). Нарушение кальций-фосфорного обмена и, связанного с ним метаболизма коллагена и других белков костной ткани, является основной причиной болезней костей (1). Стабильный метаболизм кальция требует его постоянного поступления с кормом и обеспечивается, с одной стороны, минеральным, липидным, витаминным составом, дающим достаточное количество пластического материала, с другой стороны, эффективностью его всасывания в желудочно-кишечном тракте за счет достаточной интенсивности выделения желчи и пищеварительных ферментов, нормального состояния слизистой оболочки кишечника и оптимального состава микрофлоры (6). Недостаток микроэлементов, витаминов, ферментов может тормозить биохимические процессы и тем самым замедлять рост и развитие птицы (8). Следует констатировать, что на сегодняшний момент не существует единых норм состава крови для птицы короткого и длительного срока выращивания, на основании которых можно было бы судить о соответствии состава корма потребностям организма. Считаем актуальной задачей проведение исследований в этом направлении для скрининговой оценки качества мяса цыплят бройлеров. Материалы и методы исследований. Собственные исследования были проведены в период с 2013 – 2015 гг. На кафедре «Ветеринарная медицина» МГУПП и лаборатории ФГБУ «Центральная научно-методическая ветеринарная лаборатория». Для проведения экспериментальных исследований были ото- 173 браны по пять цыплят из разных возрастных групп. Забор крови проводили из яремной вены цыплят бройлеров разных возрастных групп при экспериментальном убое. Биохимические исследования проводили общепризнанным стандартизированным унифицированными методами на биохимическом анализаторе МАRS (Корея). Наборы реактивов относятся к сериям «Ольвекс-FL-E», «Vital Diagnostics» скомпонованными в соответствии с международными требованиями. Результаты исследований. Результаты наших исследований представлены на рисунке1. По результатам наших исследований установлено влияние полноценности белка на возрастные изменения состава крови цыплят, которые получили путем сопоставления данных убоя цыплят в возрасте 9-ти, 19-ти, 35-ти и 45-ти суток. Уровень белка, с сопутствующей альбуминэмией, в пробах сыворотки крови цыплят всех возрастных групп превышал референтные значения и соответствовал 3,1±0,08; 3,2±0,04; 3,0±0,02; 2,7±0,06 г% в возрастах 9дней, 19 дней, 35 и 45 дней, соответственно. При этом был характерен адекватный уровень глобулинов. Глобулиновая фракция белков не снижалась, что предполагает стабильность звеньев гуморального иммунитета. Относительное содержание альбуминов в общем белке за 45 суток составляло: 174 в 9-и дневном возрасте – 21,7%; 19-и дневном – 19,7%; 35-и дневном возраст – 24,6% и 45-и дневном возраст 16,2%. Высокие показатели в увеличении концентрации минеральных веществ и активность щелочной фосфатазы в сыворотке крови отмечались у цыплят-бройлеров. Содержание общего кальция и неорганического фосфора существенно превышало в сыворотке крови у цыплят-бройлеров на 9-й день их выращивания, и составила, соответственно: общего кальция 10,81±0,072 мг%, неорганического фосфора 8,53±0,039 мг%. На 19-й день кальций - 10,8 ±0,03 мг%, фосфор - 10,4 ±0,02 мг%. В 35 дневном возрасте концентрация кальция составила - 8,3 ±0,06 мг%, фосфора - 10,2 ±0,32 мг%. У цыплят бройлеров 45-и дневного возраста количество фосфора - 10,3±0,18 мг%, а количество кальция - 8,3±0,07 мг%. В крови цыплят, исследуемых нами групп, отмечена стабильно высокая активность щелочной фосфатазы, которая соответствовала на 9-й день 356,8 ± 50,5 ед/л, на 19-й день 536,8 ± 47,8 ед/л, на 35-й день 442,0 ± 20,7 ед/л и на 45-й день жизни цыплят 374± 31,4 ед/л. По нашему мнению, это связано с активным периодом роста птиц (высокая активность костеобразующих процессов). Функционально фермент связан с метаболизмом фосфора. В частности, фосфатаза контролирует процесс отщепления неорганического фосфата от органических носителей фосфора, что может рас- сматриваться как норма для данной возрастной группы. Содержание аспартатаминотрансферазы (АсАТ) в группе цыплят девятидневного возраста было ниже, чем у цыплят 45-и дневного возраста на 31,4 ед/л, аланинаминотрансферазы (АлАТ) у цыплят 9-и дневного возраста было выше, чем у цыплят 45-и дневного возраста было выше на 5,2 ед/л. По уровню этих ферментов можно косвенно судить о функции печени. Однако эти показатели недостоверны. Уровень концентрации и колебания по возрастным группам трансфераз и билирубина, как общего, так и прямого, не носили патогномоничный характер. Это дает возможность предполагать о нормальном функционировании печени. Холестерин содержится во всех клетках цыплят и необходим уже на самых ранних стадиях развития. Причем его общее количество в организме остается примерно на одном уровне при любых экзогенных воздействиях посредством механизма гомеостаза организма, что коррелирует с данными наших исследований. В наших исследованиях уровень холестерина, в среднем, у всех возрастных групп подопытной птицы существенно не изменялся и находился в пределах физиологической нормы. В 9-дневном возрасте колебания в группах по этому показателю были в пределах 2,9±0,06 ммоль/л, а к 45-и дневному возрасту этот показатель понизился на 1,7 ммоль/л. Рассматривая показатели, характеризующие состояние почек, установили, что во все сроки исследования содержание моче- вины и креатинина не имело существенных колебаний. Глюкоза основной источник энергии для многих клеток в организме. Птицы способны частично синтезировать некоторые углеводы из таких субстратов как глицерин и аминокислоты, но большинство углеводов поступают в организм с растительной пищей. Глюкоза выполняет роль основного «топлива» для клеточного метаболизма, является предшественником других сахаров, например рибозы (необходимой для синтеза нуклеиновых кислот), углеводных компонентов гликопротеинов и гликозаминогликанов. Уровень глюкозы находился в пределах нормы и повышался по мере роста цыплят-бройлеров в среднем на 1 ммоль/л, с 35-дневного возраста. Заключение. По нашему мнению, повышение концентрации общего белка и альбуминовой фракции в сыворотке крови цыплят всех возрастных групп обусловлено напряженностью адаптационных и ростовых механизмов. Достижение таких уровней общего белка и альбуминов в крови происходит двумя путями: либо усиливается их синтез в печени, либо используются резервные белки, в том числе белки тканей из «невостребованных» в текущий момент жизни органов. Концентрация минеральных веществ в частности общего кальция и неорганического фосфора, а также активность щелочной фосфатазы в сыворотке крови у цыплят-бройлеров существенно увеличивается при кормлении стартовым и ростовым видами корма и имеет тенденцию к снижению при переходе на финишный корм. Библиографический список: 1. Марюшина Т.О. Нарушение кальций-фосфорного обмена у щенков крупных пород собак и методы коррекции их лечения / Т.О. Марюшина, М.В. Матвеева, В.И. Луцай, Г.М. Крюковская // Ветеринарная практика – 2010.– № 4 (51) – С. 42-46. 2. Мосягин В.В. Биохимические механизмы активного транспорта, метаболизма белка и энергии в организме птиц / В.В. Мосягин // Монография. - Курск. ин-т социального образования (филиал) РГСУ. – Курск, 2007. – 155 С. 3. Ребров В.Г., Громова О.А. Витамины, макро- и микроэлементы. ‒ М.: ГЭОТАР-Медиа, 2008. ‒ 960 с. 4. Саражакова И.М.. Бахарева О.П. Динамика биохимических показателей крови цыплят при использовании сорбента. - http://www.kgau.ru/img/ konferenc/2009/45.doc. 5. Сатюкова Л.П. Современные методы контроля витаминов в кормах, кормовых добавках и биоматериале/ Л.П. Сатюкова Л.П., И.Р. Смирнова // Ветеринария. – 2010. - № –11. С. 37- 44. 6. Уша Б.В. Биохимические показатели крови у собак при гастрите / Б.В. Уша, Г.М. Крюковская, С.Э. Жавнис, Т.Б. Горовая / Ветеринария. – 2006. – № 12.– С. 54-56. 7. Фисинин В.И. Наука и развитие мирового и отечественного птицеводства на пороге XXI века.: Зоотехния. 1999. – N3. – С. 2 - 9. 8. Cathcart R.F. Vitamin C in the treatment of acquired immune deficiency syndrome (AIDS). Med. Hypotheses. - 1984. - Vol. 14. - P. 423-433. 175 SANITATION AND BIOCHEMICAL ASPECTS OF CULTIVATION OF CHICKENS-BROILERS OF DIFFERENT AGE GROUPS L.P.Satyukova, I.R. Smirnova, G.M. Kryukovskaya, R.A. Kryukovsky Keywords: broiler chickens, hygiene cultivation, biochemical parameters of blood serum. Intensification of poultry provides a varied and balanced feeding of poultry not only the main organic and mineral nutrients, but also vitamins, play a particularly important role in the metabolism of the body. We have presented monitoring blood biochemical parameters of broiler chickens of different age groups, as a reflection of the health and sanitary-hygienic welfare. УДК 619:618.2 ЭФФЕКТИВНОСТЬ ПРИМЕНЕНИЯ ЛТК «РЕКС» В ЛЕЧЕНИИ ЖИВОТНЫХ Г.В.Сидоров, Почетный работник среднего специального образования РФ, преподаватель1 Е.П.Свинцова, начальник структурного подразделения2 Ю.В. Алексеева, студент1 М.В. Якушкина, студент1 А.В.Никитин, директор1 1ГБПОУ СО «Усольский сельскохозяйственный техникум» 2Сызранская городская СББЖ СО СВО Ключевые слова: лазер, лазеротерапия, лазерный комплекс лечения, болезни, оптические насадки, послеродовая патология, терапевтический эффект. В статье приведены результаты научных исследований по изучению эффективности применения лазерного терапевтического комплекса «Рекс» для лечения животные с послеродовой патологией. Лазеротерапия – лечебное применение оптического излучения, источником которого является низкоинтенсивный лазер. LASER (Light Amplification by Stimulated Emission) – усиление света с помощью вынужденного излучения. Лазерное излучение имеет фиксированную длину волны (монохроматичность), одинаковую фазу излучения фотонов (когерентность), малую расходимость пучка (высокую направленность) и фиксированную ориентацию векторов электромагнитного поля в пространстве (поляризацию). Происходящая при избирательном поглощении лазерного излучения активация фотобиологических процессов вызывает расширение сосудов микроциркулярного русла, нормализует локальный кровоток и приводит к дегидратации воспалительного очага. Активируются регенера176 тивные процессы в тканях. Лазер также вызывает деструкцию оболочки микроорганизмов на облучаемой поверхности. Уменьшение импульсной активности нервных волокон приводит к снижению болевой чувствительности. Наряду с местными реакциями путём сегментарно-метамерных связей формируются рефлекторные реакции внутренних органов. Существует ряд гипотез относительно механизмов действия НИЛИ на биологические объекты, которые по уровню воздействуемого света делятся на 3 группы: биофизический, физический и биохимический, а также уровень молекулярно-структурных изменений клеточных мембран. Таким образом, лазеротерапия обладает следующими эффектами: противовоспалительный (проявляется в активизации микроциркуляции, выравнивании осмотического давления, снижении отёчности тканей, изменении уровня простогландинов), регенеративный, гипоальгезивный (прояляется в повышении уровня эндорфинов, активизации метаболизма невронов, повышении порога болевой чувствительности), иммуностимулирующий, бактерицидный и показана при заболеваниях костно-мышечной системы, нервной системы, сердечно-сосудистой, пищеварительной, дыхательной, мочеполовой систем, болезнях кожи. Способы проведения лазеротерапии разделяют в зависимости: от мощности излучения – низкоинтенсивное (терапевтическое) и высокоинтенсивное; от точек приложения – непосредственное воздействие на органы и ткани, фотодинамическая терапия, применение облучённых инфузионных жидкостей и медикаментов); от способа доставки лазерного излучения к тканям и органам животных дистанционный, контактный, через жидкую среду); В комбинации с другими физиотерапевтическими факторами – магнитотерапией, ультразвуком и др.; Прочее – лазерный пластырь, лазерные таблетки. Для терапевтических целей в основном используют низкоинтенсивное лазерное излучение (НИЛИ) с длиной волны 0,632 мкм и 0,830-0,888 мкм (красной и инфракрасной оптической области спектра электромагнитных волн). Основные физиологические процессы, происходящие в тканях на воздействуемых участках при поглощении световой энергии, сводятся к появлению внутреннего фотоэффекта, электрической диссоциации молекул и различных комплексов. Лазерный терапевтический комплекс «Рекс» предназначен для применения в ветеринарной практике при лечении ряда заболеваний домашних животных. Он состоит из блока электроники, размещённого в ударопрочном брызгозащищённом корпусе и лазерного модуля, соединённого с блоком электроники гибким витым кабелем, а также из коллиматора, сетевого зарядного устройства (прибор может работать от него или от встроенного аккумулятора, что удобно при переноске ЛТК), набора светодиодов лазерных терапевтических НСЛТ-ОРЛ (НИЛУ-Л1). Лазерный модуль снабжён оптическим разъёмом, позволяющим подключать оптические специализированные насадки для наружного и внутриполостного облучения: ректо-вагинальные с рассеивающим излучением с односторонним рассеиванием внутриматочная насадка насадка наружного облучения. Блок электроники позволяет выбрать один из шести режимов проведения процедур и обеспечивает установку необходимой мощности и длительности лазерного излучения, звуковую и световую индикацию. Противопоказания к использованию ЛТК: Заболевания с поражением свёртывающей системы крови (гемофилия); Декомпенсированные состояния сердечно-сосудистой системы; Несостоятельность адаптивной системы (отсутствие адекватного ответа на энергетическое воздействие), глубокий склероз, тяжёлые декомпенсации в сосудистой системе. Широкий диапазон спектров излучения и вариабельность энергетического потока, как в количественном, так и в качественном отношении до минимума сводит перечень противопоказаний. Новизна ЛТК «Рекс» по сравнению с аналогами состоит в том, что максимальная мощность излучения составляет 100 мВт, в то время как у аналогов – 3 – 5 мВт. Соответственно увеличивается терапевтическая глубина проникновения в биоткани. Важно отметить, что данный ЛТК обеспечивает непрерывное излучение, а не импульсное, как в аналогах, что позволяет за меньшее время доставить в ткани больше лазерной энергии, сократив продолжительность процедуры. Автономное питание комплекса делает его мобильным терапевтическим инструментом. Если добавить к этому герметичность и ударопрочность всех составляющих конструкций, мы получаем универсальный инструмент лечения сельскохозяйственных и непродуктивных животных в различных условиях работы. Для подтверждения терапевтической эффективности комплекса были проведены клинические испытания на мелких животных в условиях СББЖ. Для лечения брались животные с послеродовыми патологиями, которые предварительно проходили лабораторное обследование. Всего подвергнуто лечению 14 животных. Применяя контактно-сканирующий метод облучения в полости пораженных органов. Для получения терапевтического эффекта использовались насадки № 1 и № 2 . В зависимости от характера воспалительного процесса использовались режимы 3 и 4. Процедуры проводились ежедневно, с обязательной стерилизацией рабочего инструмента 177 после каждого животного. Терапевтическая эффективность применения ЛТК «Рекс» при лечении послеродовых патологий оказалась весьма удивительной. Проведено 5 – 6 обработок животных и процент выздоровления – 100%. Результаты исследования и эффективность лечения оценивались при выздоровлении животного. Эффективность данного метода терапии выражается в следующем: Оптимально и правильно выбранный режим и светодиодный инструмент позволяет во много раз усилить эффект лечения; Удачно подобранные режимы лазерного излучения позволяют его использовать при лечении других патологий; Высокая мощность излучения позволяет сократить время процедур, не снижая лечебной эффективности, и увеличить глубину терапевтического действия на биологические ткани; При лечении патологий проявлялся анальгезирующий эффект. Заключение. Применение лазеротерапии в лечебных целях позволяет уменьшить применение антибиотиков и химиотерапевтических средств при лечении различных заболеваний, обеспечить труд практикующих специалистов и сократить срок восстановления продуктивных функций больных животных, снижая производственные затраты, а использование на продуктивных животных позволяет получать экологически чистые продукты питания. Библиографический список: 1. Инструкция по использованию лазерно-терапевтического комплекса «Рекс», 2014 год. 2. И.И.Валковой, В.П.Иноземцев. Лазеры в ветеринарную практику. Ветеринария № 4, 1997 год. 3. В.П.Иноземцев и др. Лазерная терапия животных - это эффективно и экологически безопасно. Молочное и мясное скотоводство, № 4, 1997 год . EFFICIENCY USE LTK “REX” IN THE TREATMENT OF ANIMALS Yu. V.Alekseev, M. V. Yakushkina, A.V.Nikitin, G.V.Sidorov, E.P.Svintsova Keywords: Laser, laser system, treatment, disease, optic attachment, postpartum patoloqia, therapeutic effect. The article presents the results of scientific studies on the effectiveness of laser therapy complex “Rex” for the treatment of the animals with postpartum disorders. 178 УДК 619:615.33:618.14-002-02:618.7:636.2 ЭФФЕКТИВНОСТЬ ПРИМЕНЕНИЯ ВИАПЕНА ДЛЯ ПРОФИЛАКТИКИ ПОСЛЕРОДОВОГО ЭНДОМЕТРИТА У КОРОВ Л.В. Ческидова, кандидат ветеринарных наук тел. 8(473)253-65-94, LVCheskidova@yandex.ru Г.А. Востроилова, доктор биологических наук тел. 8(473)253-65-94, vnivipat@mail.ru ГНУ Всероссийский научно-исследовательский ветеринарный институт патологии фармакологии и терапии Ключевые слова: виапен, послеродовой эндометрит, профилактика, коровы. В статье представлены результаты исследований профилактической эффективности виапена у коров. Оценку проводили на основании клинического и акушерско-гинекологического исследования животных. Учитывали количество заболевших эндометритом и оплодотворившихся коров, период от отёла до оплодотворения, а также коэффициент оплодотворения. Установлено, что виапен обладает высокой профилактической эффективностью по сравнению с контрольным препаратом и интактной группой. Введение. Гнойно-воспалительные заболевания половых органов, которыми переболевает до 100% коров [1], на сегодняшний день являются актуальной проблемой для ветеринарного акушерства. В частности, послеродовые эндометриты развиваются вследствие осложнения родового или послеродового периодов и наносят большой экономический ущерб, связанный с продолжительными расстройствами процесса воспроизводства. В результате хозяйства недополучают молоко, вынуждены выбраковывать животных, и получают низкий процент выхода делового молодняка на 100 голов маток. Так как послеродовые воспалительные заболевания развиваются на фоне проникновения и размножения в полости матки различных условно-патогенных микроорганизмов [2], основу их лечения и профилактики составляет применение противомикробных препаратов широкого спектра действия [3, 4]. В связи с этим, была поставлена задача: изучить эффективность профилактики острого послеродового эндометрита у коров с помощью нового комплексного антимикробного препарата виапен. Материалы и методы исследований. Для оценки профилактической эффективности препарата виапен было сформировано три группы животных. Первая группа была опытной. Коровам опытной группы внутриматочно однократно вводили виапен в дозе 12 г/100 кг массы тела через 6-8 часов после самопроизвольного (n=11) или сразу после оперативного отделения последа (n=10). Вторая группа была контрольной. Коровам контрольной группы внутриматочно однократно вводили энроцид после самопроизвольного (n=10) или после оперативного отделения последа (n=9) в дозе 100 мл на животное. Животные третьей группы (по 11 коров после самопроизвольного и оперативного отделения последа) служили отрицательным контролем (интакт) и им препараты не назначали. За животными в течение опыта вели ежедневное клиническое наблюдение. Учитывали сроки плодотворного осеменения, коэффициент оплодотворения, процент заболевших животных. Диагноз на послеродовой эндометрит устанавливали на основании акушерско-гинекологического обследования. Результаты исследований. Эффективность применения виапена для профилактики острого послеродового эндометрита у коров составила 90,9% после самопроизвольного отделения последа и 80,0% - после оперативного отделения. Это на 10,9% выше, чем при применении энроцида после самопроизвольного отделения последа и на 13,3% - после оперативного. При этом в отрицательном контроле заболеваемость послеродовым эндометритом составила 45,5% после самопроизвольного отделения последа и 100,0% после оперативного отделения. 179 В течение 90 дней после отела оплодотворение у животных после внутриматочного введения виапена наступило в среднем у 88,9%, что на 10,3% больше, чем у коров после введения энроцида и на 22,2% в сравнении с животными, которым препараты не назначали. При этом период от отёла до оплодотворения у животных опытной группы оказался короче на 11,7 дня (52,9±4,21 против 64,6±4,79), чем у коров контрольной группы, и на 28,9 дня (52,9±4,21 против 81,8±6,43) – в сравнении с отрицательным кон- тролем. В тоже время коэффициент оплодотворения был меньше в опытной группе (1,73±0,11 против 2,08±0,12) в 1,2 раза по сравнению с контролем и в 1,4 раза по сравнению с интактом (1,73±0,11 против 2,34±0,16). Выводы. Таким образом, результаты проведенных исследований показали высокую эффективность виапена. Препарат может быть рекомендован для широкого использования ветеринарными специалистами для профилактики послеродовых болезней у коров. Библиографический список: 1. Нежданов А.Г. Система оценки и реабилитации ранних нарушений физиологических функций репродукции животных / А.Г. Нежданов, В.А. Сафонов, М.Н. Кочура, К.А. Лободин // Международный вестник ветеринарии. 2008. № 3. С. 13-15. 2. Нежданов А.Г. Послеродовые гнойно-воспалительные заболевания матки у коров / А.Г. Нежданов, А.Г. Шахов // Ветеринарная патология. 2005. № 3. С. 61-64. 3. Ивашкевич О.П. Профилактика и лечение эндометритов у коров и свиноматок препаратами на основе диоксидина / О.П. Ивашкевич, А.Г. Ботяновский, А.В. Лиленко и др. // Современные проблемы ветеринарного акушерства и биотехнологии воспроизведения животных: Материалы Междун. науч.-практ. конф., посвящ. 85-летию со дня рожд. проф. Черемисинова Г.А. и 50-летию создания Воронежской школы ветеринарных акушеров. 18-19 октября 2012 года, г. Воронеж. Воронеж: издательство «Истоки». 2012. С. 205-215. 4. Malinowski E. Sensitivity to antibiotics of Arcanobacterium pyogenes and Escherichia coli from the uteri of cows with metritis/endometritis / E. Malinowski, H. Lassa, H. Markiewicz et al. // Vet J. 2011. Feb. 187(2). Р. 234-238. THE EFFICACY OF VIAPEN FOR PREVENTION POSTPARTUM ENDOMETRITIS IN COWS L.V.Cheskidova, G.A.Vostroilova Key words: Viapen, postpartum endometritis, prevention, cows. The article presents the research results of the prophylactic effectiveness of Viapen in cows. The evaluation was performed based on clinical and obstetric research animals. Count the number of cases of endometritis and fertilized cows, the period from calving to insemination, as well as the coefficient of fertilization. Viapen has a high prophylactic efficacy compared to the control drug and the intact group. 180 УДК 636.4. 087 ВЛИЯНИЕ МИНЕРАЛЬНЫХ ПОДКОРМОК НА МОРФОЛОГИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ СВИНЕЙ Т.М. Шленкина, кандидат биологических наук, доцент тел. 8(84231)5-15-97 E-mail: t-shlenkina@yandex.ru ФГБОУ ВПО «Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия им. П.А.Столыпина» Ключевые слова: цеолитовое сырье, полисоли, рацион, кремнеземистый мергель, резистентность организма, марганец, медь, цинк, кобальт. Проведены исследования кремнеземистого мергеля Сиуч – Юшанского месторождения и полисолей в качестве минеральной подкормки в рационах свиней. Установлено, что оптимальной дозой скармливания кремнеземистого мергеля является 2% от сухого вещества для поросят и 3% от сухого вещества для свиноматок. Одной из приоритетных целей современного животноводства является получение физиологически здорового потомства и экологически чистой и безопасной продукции [1, 2, 3]. Однако повышение продуктивности и ускорение темпов развития производства увеличивает риск нарушения баланса потребностей организма в биологически активных веществах [4,5]. В связи с интенсификацией животноводства на промышленной основе по-прежнему остается актуальным изыскание и разработка новых эффективных источников минеральных добавок. К нетрадиционным добавкам, с установленным положительным влиянием на рост, развитие и качество продукции относятся многочисленные природные ископаемые (цеолиты, бентониты, ирлиты, сапропели и др.). Применение комплексных минеральных добавок значительно облегчает организацию минерального питания животных, способствует лучшему обеспечению потребностей животных в минеральных элементах и, как следствие, повышению продуктивности [6, 8, 9]. Осадочные цеолитовые руды разведаны в центральной полосе России в Чувашии, Мордовии, Татарстане, Ульяновской области и других регионах. Цеолитосодержащие кремнисто – карбонатные породы осадочного типа Сиуч – Юшанского месторождения Ульяновской области по составу отличаются от цеолитсодержащих туфов вулканогенного типа, а данные о его применении в животноводстве немногочисленны. Это послужило основанием проведения экспериментальной работы для выявления вли- яния кремнеземистого мергеля на гематологические показатели крови свиней крупной белой породы. С этой целью нами был проведен эксперимент. Опыты проводили на 3-х группах поросят (по 12 голов в каждой). Животные в группы подбирали по принципу аналогов. Животные I опытной группы были получены от свиноматок, которым в течение супоросности и подсосного периода скармливали основной рацион, сбалансированный согласно существующих норм [7] по основным факторам питания, но с недостаточным уровнем, меди, цинка и кобальта. Поросята II опытной группы были получены от свиноматок, которым скармливали тот же рацион, но сбалансированный по содержанию минеральных элементов за счет введения в него полисолей (производства Буинской экспериментальной лаборатории). Поросята III опытной группы были получены от свиноматок, которым в основной рацион в качестве минеральной добавки вводили 3 % цеолита. За постнатальный период развития поросятам I группы скармливали основной рацион, сбалансированный по питательности, но без добавок минеральных веществ. В рацион поросят II опытной группы вводили добавки полисолей в количестве, соответствующим нормам [7] . В рацион поросят III опытной группы добавляли 2 % кремнеземистого мергеля, что соответствовало количеству марганца, меди, цинка и кобальта в полисолях, вводимых в рацион животным II группы. Для изучения влияния недостатка минеральных веществ и его восполнения в рационах 181 супоросных свиноматок и полученного от них потомства за счет различных минеральных добавок мы провели определение гематологических показателей у поросят. Кровь брали из хвостовой вены. Мы не установили существенных различий по количеству эритроцитов в крови животных I и II опытных групп на протяжении опытного периода. Лишь у новорожденных поросят II опытной группы этот показатель был на 9,43 % (P<0,05) выше, чем в I группе. В то же время содержание эритроцитов в крови поросят III опытной группы, получавшей добавки кремнеземистого мергеля, было выше, чем в I группе на 16,98 % (P<0,01) у 1 суточных, на 15,44 % (P<0,01) у 2-месячных, на 22,49 % (P<0,01) у 105-суточных и на 15,45 (P<0,1) – у 9-месячных свиней. Концентрация эритроцитов в крови животных III группы также была выше, чем во II группе на 6,89 % (P<0,05), 19,44 % (P<0,01), 20,82 % (P<0,001) и 11,2 % (P<0,1) в 1, 60, 105 и 270 суточном возрасте животных соответственно. Таким образом, можно заключить, что скармливание растущим свиньям добавок кремнеземистого мергеля способствовало повышению концентрации эритроцитов в крови животных. Существенных различий по содержанию лейкоцитов в крови поросят I и II групп за период опыта не отмечалось. В крови животных III группы, получавших дополнительно к рациону кремнеземистый мергель, обнаружена тенденция увеличения содержания лейкоцитов на 6,16 % (P<0,001) и 6,32 % (P>0,05) по сравнению с I группой и на 5,38 % (P<0,05) и 5,09 % (P>0,05) по сравнению со II группой в 105 и 270-суточном возрасте соответственно. Мы не обнаружили существенных различий по содержанию гемоглобина в крови поросят I и II опытных групп на протяжении первых 105 суток выращивания животных. Однако у 9-месячных свиней II группы уровень гемоглобина в крови был на 8,42 % (P<0,001) выше, чем в I группе. Более высокий уровень гемоглобина в крови был обнаружен у поросят III группы – на протяжении опытного периода содержание гемоглобина у животных этой группы было на 7,82 % (P<0,001) и 10,21 % (P<0,001) выше, чем в I опытной группе в 60 и 270 суточном возрасте и на 6,65 % (P<0,001) выше, чем во II опытной группе животных в возрасте 60 суток. Таким образом, проведенные исследования показали, что замена добавок полисолей в рационах супоросных и лактирующих свиноматок и полученных от них поросят кремнеземистым мергелем способствует повышению уровня эритроцитов и гемоглобина в крови выращиваемого откармливаемого молодняка свиней, вызывает повышение содержания лейкоцитов у 1-105 суточных свиней. В то же время следует отметить, что замена полисолей оказала одинаковое влияние на содержание лейкоцитов в крови в 1 и 60 суточном возрасте, гемоглобина в возрасте 1 и 105 суток. По содержанию эритроцитов на протяжении всего опыта, лейкоцитов в 105 и 270 суток, гемоглобина в 60 и 270 суточном возрасте минеральная добавка в виде кремнеземистого мергеля была более эффективной. Однако, несмотря на повышение уровня этих показателей в крови животных, следует отметить, что они находились в пределах физиологической нормы. На основании наших исследований и данных литературы можно предположить, что повышение гематологических показателей у животных, получавших цеолитсодержащий мергель Сиуч Юшанского месторождения, по-видимому, связано с возрастанием интенсивности гемопоэза. Библиографический список: 1. Дзагуров, Б. А. Бентонитовая глина в рационах свиней при свободном доступе к ней // Кормление сельскохозяйственных животных и кормопроизводство. - 2009. - №4. - С. 21-30. 2. Гамко, Л. Н. Влияние минеральной подкормки (мергеля) на продуктивность, качество молока, морфологические и биохимические показатели крови дойных коров / Л. Н. Гамко, Е. А. Лемеш // Вестник ОрелГАУ. - 2011. - №1(28). - С.31- 34. 3. Майорова, О. В. Влияние минерального энтеросорбента (БАВ) Воднит на морфофизиологические показатели крови свиней разных пород / О. В. Майорова, Г. В. Молянова // Известия Самарской ГСХА. - 2013. - №1. - С.31-34. 4. Ноздрачева, Е. В. Влияние природного цеолита на морфологические показатели крови при рахите телят / Е. В. Ноздрачева, О. В. Богатова, О. Г. Дутова // Вестник Алтайского аграрного университета. - 2010. - №1. - С.53-54. 5. Савинков, А. В. Профилактика алиментарной анемии телят при использовании препарата Силимикс // Самарские известия. - 2011. - №1. - С. 5-7. 182 6. Смагина, Т. В. Оценка эффективности использования хотынецких природных цеолитов в сочетании с эмульсией прополиса для лечения заболеваний желудочно-кишечного тракта незаразной этиологии у свиней / Т. В. Смагина, Е. А. Михеева // Вестник ОрелГАУ. - 2011. - №1 (28). - С.43-45. 7. Кальницкий, Б.Д. Минеральные вещества в кормлении животных. – Л.: Агропромиздат, 1985. – с. 207. 8. Шленкина, Т.М. Особенности возрастных изменений минерального профиля крови под воздействием различных добавок /Шленкина Т.ТМ., Стеценко И.И., Любин Н.А. //Научно – теоретический журнал «Вестник» Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии, №3 (23), 2013. – С…72 - 79. 9. Шленкина Т.М. Эффективность использования различных минеральных добавок в рационах свиней /Шленкина Т.М., Васина С.Б., Любин Н.А.// Материалы XIV Международной научно – практической конференции по свиноводству «Современные проблемы интенсификации производства свинины» Ульяновск: УГСХА, 2007. – С. – 259…264 INFLUENCE MINERAL PODKORMOK ON MORPHOLOGICAL INDICATORS OF PIGS T.M. Shlenkina Keywords: zeolitic raw materials, polysalts, diet, silicic marl, resistance of an organism, manganese, copper, zinc, cobalt. Researches of silicic marl of Siuch – the Yushansky field and polysalts as mineral top dressing in diets of pigs are conducted. It is established that an optimum dose of feeding of silicic marl are 2% of solid for pigs and 3% of solid for sows. УДК 619:614.31:637 ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНАЯ ЭКСПЕРТИЗА МЯСА ПРИ ЭХИНОКОККОЗЕ Н.Г. Барт, кандидат биологических наук, ст.преподаватель тел. 8(8422) 55-95-47, E-mail: bart1967@mail.ru С.Н. Золотухин , доктор биологических наук, профессор тел. 8(8422) 55-95-47, E-mail: fvm.zol@yandex.ru Д.А. Васильев , доктор биологических наук, профессор тел. 8(8422) 55-95-47, E-mail: dav_ul@mail.ru ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А.Столыпина» Ключевые слова: эхинококкоз, нематоды, бактериоскопия, зооантропонозы, инвазии. Работа посвящена проблеме изучения зооантропонозной болезни -эхинококкоз. Дана характеристика названного заболевания, проведена ветеринарно-санитарная экспертиза туш свинины и говядины, пораженных эхинококкозом и определена ветеринарно-санитарная оценка мяса. Введение. Основной задачей ветеринарно-санитарной экспертизы как науки и как од- ного из приоритетных направлений практической деятельности ветеринарных специалистов 183 является предупреждение заболевания людей зооантропонозами и заражения животных возбудителями болезней, передаваемых через продукты убоя, а также недопущение распространения заболеваний через мясо, субпродукты, боенские отходы, продукты и корма животного происхождения. Определенную опасность представляют инвазионные болезни, которые широко распространены на всех шести континентах, в том числе на территории России. Инвазионные болезни животных наносят значительный ущерб животноводству. Огромные затраты требуются на организацию и проведение диагностических и лечебно-профилактических мероприятий, направленных на борьбу с паразитарными болезнями. Большое эпизоотическое и эпидемическое значение, связанное с убойными животными имеют такие паразитарные болезни, как трихинеллез, цистицеркоз, саркоспоридиоз, эхинококкоз, цистицеркоз, ценуроз, фасциолез и другие болезни; выявляемые, как правило, при проведении ветеринарно-санитарной экспертизы продуктов убоя. Поэтому необходимо обследовать туши и органы всех убитых животных на зараженность паразитами. Ветеринарно-санитарная экспертиза продуктов убоя является важнейшим звеном ведомственного надзора не только за качеством пищевых продуктов, но и путями передачи возбудителя различных инфекционных и паразитарных болезней. Эхинококкоз относится к инвазионным болезням 2-ой группы, не передающимся через мясо и мясопродукты, но которыми человек болеет. Помимо большого экономического ущерба эхинококкоз вызывает изменение качества мяса, снижает его пищевые и вкусовые показатели. Мясо и мясопродукты, полученные от животных, поражённых эхинококкозом, являются потенциальными источниками пищевых отравлений – токсикоинфекций. Бактериальная обсеменённость органов и тканей находится в прямой зависимости от степени поражения их гельминтами, что следует учитывать в процессе проведения ветеринарно-санитарной экспертизы мяса. Поэтому, остается актуальным вопрос о разработке критериев оценки качества мяса при этом заболевании. Эхинококкозы распространены более чем на 30 из 88 административных территорий страны. 184 Основным источником распространения эхинококкоза служат приотарные и бродячие собаки, зараженность которых в отдельных овцеводческих районах достигает 70%. Согласно «Правил ветеринарного осмотра убойных животных и ветеринарно-санитарной экспертизы мяса и мясных продуктов» при множественном поражении мышц или внутренних органов (наличии большого количества пузырей, желтушности мышц) эхинококками тушу и органы направляют на техническую утилизацию или уничтожают. При частичном поражении на утилизацию направляют лишь пораженные части туши или органы. Непораженные части туши и органов выпускают без ограничений. Конфискаты не допускают к скармливанию собакам и кошкам, а обезвреживают. Материалы и методы исследования. Исследование проводилось в Государственной лаборатории ветеринарно-санитарной экспертизы ОГБУ «Чердаклинская райСББЖ» и на базе кафедры микробиологии, вирусологии, эпизоотологии и ветеринарно-санитарной эксертизы Ульяновской ГСХА им. П.А.Столыпина. При оценке параметров мы использовали стандартные методы исследований, принятые при ветеринарно-санитарной экспертизе мяса и мясопродуктов. Мясо оценивали по органолептическим, бактериоскопическим и физико-химическим показателям согласно ГОСТ и «Правил ветеринарного осмотра убойных животных и ветеринарно-санитарной экспертизы мяса и мясных продуктов». При поступлении в лабораторию туш говядины и свинины для предварительного осмотра, в легких и печени нами были обнаружены единичные беловатые пузыри величиной от горошины (в печени КРС), до грецкого ореха (в легких КРС и печени свиньи). Ткани легких, окружающие пузыри, ателектатически изменены, сдавлены, межальвеолярные перегородки утолщены. Поражённая печень слегка увеличена в объеме. Капсула напряжена. При осмотре туши мы учитывали следующие внешние признаки: состояние места зареза, степень обескровливания, наличие гипостазов и изменения в лимфатических узлах. У исследуемых нами туш животных место зареза неровное, вследствие сокращения мышц; ткани в области зареза инфильтрированы кровью в большей степени, по сравнению с глубже лежащими. При оценке степени обескровливания мясных туш мы определяли цвет мышечной и жировой ткани, наличие крови в крупных и мелких кровеносных сосудах под серозными оболочками и в мышцах и обследовали свежие разрезы мышц. Кроме того ставили следующую пробу: в свежий разрез мышечной ткани вкладывали полоски фильтровальной бумаги (длиной 10 см и шириной 1,5 см) и оставляли там на несколько минут. Учитывали результат: бумага в обоих случаях увлажнена мелкими розовыми пятнами обескровливание удовлетворительное. Физико-химическое исследование мяса. Определение свежести мяса. Органолептическое исследование (ГОСТ 7269-79) проводили при естественном освещении и комнатной температуре. Внешний вид и цвет мяса определяли внешним осмотром. Исследуемые образцы мяса с поверхности имели корочку подсыхания. Цвет свинины бледно-розовый, говядины - темно-красный. Поверхность свежего разреза слегка влажная, но не липкая, с характерным для животного каждого вида цветом. Мясной сок прозрачный. Имелась незначительная загрязненность на поверхности, сгустки крови и плесень отсутствовали. Консистенцию определяли путем надавливания на поверхность мяса пальцем, после чего наблюдали за скоростью исчезновения ямки. Консистенция мяса плотная, ямка быстро выравнивалась. Органолептически устанавливали запах поверхностного слоя туши и исследуемого образца. Затем чистым ножом делали разрез и определяли запах в глубинных слоях мышц. При этом особое внимание обращали на запах мышечной ткани, прилегающей к кости. Образцы имели приятный, специфический для животного каждого вида запах. Для более полной характеристики запах исследуемого мяса определяли пробой варки. Бульон при варке обеих проб имел незначительное помутнение. Аромат снижен, на поверхности бульона имелись скопления жира. Определение амино-аммиачного азота титрованием по фенолфталеину. Накопление в мясе аминокислот и аммиака – наиболее постоянный и характерный признак его порчи. Содержание амино-аммиачного азота в 10 мл вытяжки из мяса говядины - 1,30 мг, свинины—1,27 мг. Метод микроскопического анализа (бактериоскопия). Метод основан на определении количества бактерий и степени распада мышечной ткани путем микроскопирования мазков-от- печатков. При бактериоскопии мазка-отпечатка пробы говядины: в мазке-отпечатке из поверхностного слоя мяса мы обнаружили грам «+» кокки - 28, грам «-» палочки - 9. При микроскопии мазка из глубоких слоев мышечной ткани обнаружены грам «+» кокки - 10 и единичные грам «-» палочки - 3. При бактериоскопии мазков-отпечатков пробы свинины: в мазке-отпечатке из поверхностного слоя мяса мы обнаружили несколько десятков грам «+» кокков, грам «-» палочки - 8. При микроскопии мазка из глубоких слоев мышечной ткани обнаружены грам «+» кокки -15 и единичные грам «-» палочки - 5. Методы определения мяса больных, вынужденно убитых и павших животных. Бактериоскопия. Для бактериоскопии берут измененные участки органов и тканей. Мы готовили мазки-отпечатки из поверхностных и глубоких слоев мышечной ткани и кусочков печени. При бактериоскопии мазков-отпечатков проб говядины: в мазках-отпечатках из поверхностного слоя мяса мы обнаружили несколько десятков грам «+» кокков, грам «-» палочки - 10. При микроскопии мазков из глубоких слоев мышечной ткани обнаружены грам «+» кокки - 15 и единичные грам «-» палочки - 5. При бактериоскопии мазков-отпечатков проб свинины: в мазках-отпечатках из поверхностного слоя мяса мы обнаружили несколько десятков грам «+» кокков - 30, грам «-» палочки - 10. При микроскопии мазков из глубоких слоев мышечной ткани обнаружены грам «+» кокки - 10 и единичные грам «-» палочки - 3. Определение рН. Величина рН мяса зависит от содержания в нем углеводов в момент убоя животного, в частности – гликогена, являющегося основным углеводом мышечной ткани, а также от активности внутримышечного ферментативного процесса, который называют созреванием мяса. Результаты измерений величины pH в вытяжке из говядины – 6,5, свинины – 6,4. Реакция на пероксидазу. Сущность реакции заключается в том, что находящийся в мясе фермент пероксидаза разлагает перекись водорода с образованием кислорода, который и окисляет бензидин. В вытяжке из мяса и говядины и свинины, сине-зеленый цвет не появляется и вытяжка сразу приобретает буро-коричневый оттенок (отрицательная реакция). Формольная реакция. При тяжело протекающих заболеваниях еще при жизни животного в мышцах в значительном количестве накапли- 185 ваются промежуточные и конечные продукты белкового обмена — полипептиды, пептиды, аминокислоты и др. Сущность данной реакции заключается в осаждении этих продуктов формальдегидом. Результаты исследования: вытяжка из говядины жидкая, имеется слабое помутнение, хлопьев и сгустков нет. Результаты исследований. Проведенные нами исследования показали, что даже при незначительном поражении эхинококкозом в организме животного происходят заметные физико-химические изменения, связанные с различной степенью интоксикации продуктами жизнедеятельности паразита. Несмотря на то, что мясо от всех исследованных туш, пораженных эхинококкозом, было выпущено без ограничений, его нельзя признать качественно полноценным, свободным от токсинов эхинококка. В связи, с чем мы рекомендовали мясо, полученное от больных эхинококкозом животных направлять на производство колбас. Выводы. Для того чтобы уменьшить опасность возникновения новых вспышек болезни, необходимо осуществлять постоянный эпидемиологический и эпизоотологический надзор, включающий своевременные диагностические исследования, в том числе оценку продуктов убоя животных. Для этого следует также разрабатывать новые и совершенствовать уже известные методы выявления возбудителей паразитарных болезней на всех этапах их развития в органах и тканях как основных, так и дополнительных хозяев. Библиографический список: 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9. 10. 11. 12. 13. 14. 15. 16. Закон РФ от 14.05.1993 № 4979-1 (с изм. от 18.07.2011) «О ветеринарии» ГОСТ 7269-79 «Мясо. Методы отбора образцов и органолептические методы определения свежести» ГОСТ 23392–78 «Мясо. Методы химического и микроскопического анализа свежести» Абуладзе К.И., Павлова Н.В., Степанов А.В. Практикум по диагностике инвазионных болезней сельскохозяйственных животных – М.: Колос, 1998. – 256 с. Беэр С.А. Паразитологический мониторинг в России (основы концепции) / С.А. Беэр // Мед. пар. и пар. болезни. 1996. - № 1. - С. 3-8. Боровков М.Ф., Фролов В.П., Серко С.А. Ветеринарно-санитарная экспертиза с основами технологии и стандартизации продуктов животноводства – СПб.: Издательство «Лань», 2008. – 448 с. Васильев Д.А., Мерчина С.В. Определение мяса животных различных видов. Определение мяса больных животных. Определение свежести мяса – Учебно-методическое пособие. ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА» Кафедра МВЭиВСЭ, 2011. – 45 с. Лейкина Е.С. Эхинококкозы (этиология, эпидемиология, профилактики // Медицинская паразитология.-1999.-N 6.-С. 62-70. Никитченко В.Е., Серегин И.Г., Никитченко Д.В. Система обеспечения безопасности пищевой продукции на основе принципов НАССР М., 2010. http://www.eurolab.ua/diseases/495 http://vetlib.ru/parasitologie http://www.allvet.ru/ http://vet73.ulgov.ru/ http://www.zoovet73.ru/ http://www.fsvps.ru/ http://gelmint.com/gel-mintozy/gel-mintozy-u-zhivotnyh/page-7.html VETERINARY AND SANITARY EXAMINATION OF MEAT AT ECHINOCOCCOSIS N.G.Barth, S.N.Zolotukhin, D.A.Vasilyev Keywords: echinococcosis, nematodes, bacterioscopy, zooantroponoza, invasions. Work is devoted to a problem of studying of a zooantroponozny illness - echinococcosis. The characteristic of the called disease is given, veterinary and sanitary expertize of the hulks of pork and beef affected with echinococcosis is carried out and the veterinary and sanitary assessment of meat is defined. 186 УДК 579.678 ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНЫЙ КОНТРОЛЬ ПИЩЕВОГО СЫРЬЯ ПРИ ОБНАРУЖЕНИИ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ КИШЕЧНОГО ИЕРСИНИОЗА И ПСЕВДОТУБЕРКУЛЕЗА Н.П. Журавская, кандидат биологических наук, ст. преподаватель ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина» тел. 8(8422)55-95-47, nadikatmakova@gmail.com С.Н. Золотухин, доктор биологических наук, профессор ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина» тел. 8(8422)55-95-47, fvm.zol@yandex.ru И.Г. Швиденко, доктор медицинских наук, профессор ГБОУ ВПО «Саратовский государственный медицинский университет им. В.И. Разумовского» Минздрава России тел. 8(845-2)27-33-70, innashvidenko@mail.ru Д.А. Васильев, доктор биологических наук, профессор ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина» тел. 8(8422)55-95-47, dav_ul@mail.ru Ключевые слова: иерсиниозы, кишечный иерсиниоз, бактерии Yersinia enterocolitica, псевдотуберкулез, бактерии Yersinia pseudotuberculosis, специфичные бактериофаги, индикация В статье рассмотрены вопросы ветеринарно-санитарного контроля качества пищевого сырья и пищевых продуктов при кишечном иерсиниозе и псевдотуберкулезе с использованием методов фагодиагностики. Авторами установлено, что метод РНФ с применением специфичных бактериофагов позволяет обнаружить в исследуемых пробах пищевого сырья и пищевых продуктов бактерии видов Y.pseudotuberculosis и Y.enterocolitica в концентрации 103 м.к./см3 за 19-22 часа. Микробная контаминация пищевого сырья и продуктов питания на этапах технологического процесса производства и переработки может представлять опасность для здоровья потребителей и сокращает сроки реализации продукции. Иерсиниозы – группа инфекций, объединяющая заболевания, вызываемые бактериями Yersinia pseudotuberculosis и Yersinia enterocolitica. Кишечный иерсиниоз – зооантропонозная инфекция, возбудителем которой являются бактерии вида Y.enterocolitica. Источником инфекции являются сельскохозяйственные животные, а фактором передачи – пищевые продукты животного происхождения (мясо и мясные продукты, молоко и молочные продукты, яйца, рыба), употребляемые в пищу в сыром или термически недостаточно обработанном виде, длительное время хранившиеся при низких температурах. Ежегодно в Российской Федерации этой инфекцией переболевают более 3 тыс. человек, среди которых наиболее подвержены инфекции дети в возрасте до 14 лет [5]. Проявления кишечного иерсиниоза носят спорадический характер с незначительным весенним и выраженным осенне-зимним подъемами. Официально регистрация кишечного иерсиниоза проводится с 1992 года. Сведения об исследованиях на псевдотуберкулез, выполняемых центрами госэпиднадзора, начали учитываться в 1991 г. С 1993 г учет проводится в соответствии с ведомственной формой статистического наблюдения [5]. Псевдотуберкулез – зооантропонозная кишечная инфекция, вызываемая бактериями вида Y.pseudotuberculosis. В настоящее время псевдотуберкулез встречается практически на всей территории России. Для псевдотуберкулеза характерным является вспышечная заболеваемость, на долю которой приходится 50 % всех случаев. В последние годы резко обозначилась тенденция снижения количества вспышек: псевдотуберкулез чаще проявляется как спорадическое заболевание, однако, вспышки инфекции встречаются, преимущественно в коллективах, объединенных общим питанием. Псевдотуберкулез поражает все возрастные 187 группы населения, но в меньшей степени болеют дети до 2 лет и взрослые старше 50 лет, что объясняется их меньшей связанностью с предприятиями общественного питания [7]. Среди многочисленных факторов передачи Y.pseudotuberculosis, кроме растительных, все большую популярность приобретают продукты животного происхождения: мясо, молоко, а также молочные и мясные продукты, яйца, рыба. Заражение человека происходит в результате наличия благоприятных условий, которые создаются на пищеблоках организованных коллективов, предприятий общественного питания или в бытовых условиях в результате попадания возбудителя в готовый продукт или вторичного накопления возбудителя в готовых блюдах при нарушении технологии приготовления и увеличении сроков их хранения. Свойство иерсиний длительно существовать и размножаться в окружающей среде при низких температурах способствует накоплению возбудителя в пищевом сырье и продуктах в инфицируемой дозе. В настоящее время лабораторная диагностика иерсиниозов включает бактериологический метод, методы генодиагностики (ПЦР, иммуноблот), иммуноферментные реакции. Бактериологический метод исследования сводится, в основном, к выделению чистой культуры возбудителя из исследуемого материала и его идентификации по общепринятым биохимическим тестам. Типичная схема выделения бактерий вида Y.enterocolitica и Y.pseudotuberculosis включает несколько этапов: выдерживание исследуемого материала в среде накопления (холодовое обогащение), посев на плотные селективные среды, изучение ферментативных свойств выделенных культур [5]. Эффективность данного метода ограничена сроками исследования материала от начала заболевания, что связано с биологическими особенностями возбудителей. В диагностической практике для ускоренного обнаружения и идентификации возбудителей ряда инфекционных болезней Y.pseudotuberculosis и Y.enterocolitica в пищевом сырье и пищевых продуктах предложены индикаторные бактериофаги [1,4,6]. Нами выделены фаги, активные в отношении бактерий вида Y.pseudotuberculosis, Y.enterocolitica [1,2,3]. Установлено, что выделенные бактериофаги обладают высокой литической активностью (не ниже 10-8 по Аппельману, 109-1010 по Грациа), широким спектром литической активности, строго специфичны и могут использоваться для ускоренной индикации и идентификации иерсиний методом реакции нарастания титра фага (РНФ). Метод РНФ с применением специфичных бактериофагов позволяет обнаружить в исследуемых пробах пищевого сырья и пищевых продуктов бактерии видов Y.pseudotuberculosis и Y.enterocolitica в концентрации 103 м.к./см3 за 19-22 часа. В основу эпидемиологического надзора за кишечным иерсиниозом и псевдотуберкулезом должен быть положен постоянный ветеринарно-санитарный контроль предприятий, осуществляющих производство и переработку продуктов животноводства: молокозаводов, мясо- и хладокомбинатов. Постоянное наблюдение за санитарно-ветеринарным состоянием этих объектов, инфицированностью иерсиниями мяса, молока и других продуктов животного происхождения позволит вовремя дать оценку эпидемиологической ситуации и принять предупредительные меры. Библиографический список: 1. Васильев, Д.А. Бактериофаги микроорганизмов значимых для животных, растений и человека / Д.А. Васильев, С.Н. Золотухин, А.В. Алешкин, Н.Г. Барт, И.И. Богданов, Ю.Б. Васильева, Д.А. Викторов, Д.С. Золотухин, Н.П. Журавская, А.И. Калдыркаев, Н.Н. Карамышева, Е.Н. Ковалева, Б.М. Коритняк, Е.А. Ляшенко, Н.И. Молофеева, Е.Н. Пожарникова, Л.П. Пульчеровская, Е.Н. Семанина, Н.А. Феоктистова, А.Г. Шестаков и др. // Монография. – Ульяновск: УГСХА, 2013. – 316 с. 2. Журавская, Н.П. Выделение и изучение основных биологических свойств бактериофагов бактерий вида Yersinia pseudotuberculosis / (глава в кн.) Бактериофаги микроорганизмов значимых для животных, растений и человека. – Ульяновск, 2013. – С. 89-100. 3. Журавская, Н.П. Разработка схемы постановки РНФ для индикации бактерий вида Yersinia pseudotuberculosis в объектах внешней среды / Н.П. Журавская, С.Н. Золотухин // Материалы конференции молодых ученых, посвященной памяти члена-корреспондента РАСХН Вишнякова И.Ф. 70-летию со дня рождения «Актуальные проблемы инфекционной патологии ветеринарной медицины», 3-4 декабря, 2009. – Покров, 2009. – С. 140-143. 188 4. Золотухин, С.Н. Бактериофаги малоизученных энтеробактерий и перспективы их применения в ветеринарии / С.Н. Золотухин, Д.А. Васильев, А. Мелехин // Ветеринария сельскохозяйственных животных, 2011. – № 9. – С. 4-10. 5. Иерсинии и иерсиниозы / [Бургасова О.А. и др.]; под редакцией Г.Я. Ценевой. – Спб., 2006. – 168 с. 6. Садртдинова, Г.Р. Сравнительный анализ биологических свойств бактериофагов бактерий Klebsiella pneumonia / Г.Р. Садртдинова, Е.А. Ляшенко, Д.А. Васильев // Материалы III Санкт-Петербургского Международного экологического форума. – Спб., 2014. – С.94-95. 7. Ющук, Н.Д. Иерсиниозы / Н.Д. Ющук, Г.Я. Ценева, Г.Н. Кареткина. – М. : Медицина, 2003. – 208 с. VETERINARY AND SANITARY CONTROL OF FOOD RAW MATERIALS IN THE DETECTION OF PATHOGENS OF INTESTINAL YERSINIOSIS AND PSEUDOTUBERCULOSIS INFECTIONS N.P.Zhuravskaya, S.N.Zolotukhin, I.G.Shvidenko, D.A.Vasiliev Keywords: yersiniosis, intestinal yersiniosis infection, bacteria Yersinia enterocolitica, pseudotuberculosis infection, bacteria Yersinia pseudotuberculosis, specific bacteriophages, indication The paper deals with veterinary and sanitary quality control of food raw materials in the intestinal yersiniosis and pseudotuberculosis infections using methods bacteriophages diagnostics. The authors found that the method of RNF using specific bacteriophages can detect in the test samples of food raw materials and food and bacteria species Y.pseudotuberculosis and Y.enterocolitica at a concentration 103 microbial cells in 1 cm3 for 19-22 hours. УДК 636.5.033:637.05 ВОПРОСЫ ЭПИЗООТОЛОГИИ И ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНОЙ ЭКСПЕРТИЗЫ ДЕРМАТОФИЛЕЗА ЖИВОТНЫХ В ИОРДАНИИ Заядин Фади Фахри, аспирант МГАВМиБ им. К.И.Скрябина (Иордания) Серегин И.Г., кандидат ветеринарных наук, профессор, РГАУ-МСХА им. К.А. Тимирязева Золотухин С.Н., доктор биологических наук, профессор ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. А.И.Столыпина» Ключевые слова: животные, дерматофилез, возбудитель болезни, источник инфекции, распространение болезни, клинические и патологоанатомические признаки, предубойная и послеубойная диагностика. В странах с тропическим и субтропическим климатом определенное распространение у животных имеют кожные болезни, причиной которых являются паразиты и возбудители инфекционных болезней. При этом наибольшее значение в инфекционной патологии кожных покровов у животных имеют микроскопические грибы, обусловливающие висцеральные микозы и дерматомикозы. Наряду с такими инфекционными болезнями, как микроспория и трихофития, широкое распространение у животных в последние десятилетия получил дерматофилез, поражающий крупный рогатый скот, верблюдов, овец, лошадей, свиней, собак, кошек, животных других видов и человека. В период биологической активности многочисленных членистоногих и жалящих насекомых дерматофилез возникает у многих видов животных, поражая в неблагополучных хозяйствах большую часть поголовья скота. Больные животные теряют продуктив189 ность, а тяжелые случаи проявления болезни могут иметь летальный исход. Средства эффективного лечения и специфической профилактики дерматофилеза не разработаны. Симптоматическое лечение экономически не выгодно, поэтому больных животных обычно выбраковывают и направляют на убой. Однако в инструктивных документах и в «Правилах ветеринарного осмотра убойных животных и ветсанэкспертизы мяса и мясных продуктов» (1988) нет каких-либо рекомендаций по ветеринарно-санитарной оценке мяса и по обеззараживания шкур при дерматофилезе. Дерматофилез относится к зооантропонозным болезням, человек может заразиться при контакте с больными животными или его шкурами[2]. В данной статье представлены материалы по дерматофилезу, позволяющие обосновать необходимость изучения вопросов распространения и диагностики дерматофилеза прежде всего, у убойных животных и ветеринарно-санитарную оценку мяса и других продуктов убоя при этой болезни. Актуальность темы. Многие вопросы дерматофилеза в странах арабского мира еще недостаточного хорошо изучены. Поэтому эпизоотическая напряженность в регионах, неблагополучных по дерматофилезу, продолжает повышаться и производители сельскохозяйственной продукции недополучают значительную часть кожевенно – мехового сырья, мяса и молочного продовольствия. По причине дерматофилеза кожевенная промышленность во многих странах недополучает до 25-50% шкур, до 10-25% шерсти, около 20-25% мясного сырья и более 20% молока. Достижения в биологической промышленности, современное производство различных диагностикумов, вакцин и сывороток, позволило снизить заболеваемость животных многими бактериальными и вирусными болезнями. Но при этом в странах жарким климатом еще сохраняется эпизоотическая напряженность, обусловленная микроскопическими грибами и актиномицетами. Большие экономические потери животноводству наносят как висцеральные микозы, так и дерматомикозы, которые трудно поддаются лечению и часто осложняются секундарными инфекциями, что приводит к снижению продуктивности, преждевременной выбраковке идаже гибели тяжело больных животных. Одной из таких болезней является дерматофилез, который поражает многие виды домашних, сельскохозяйственных, диких животных и человека. В Иордании дерматофилез выявляют у верблюдов, овец, коз, крупного рогатого скота, кроликов, собак, кошек и других шерстных животных, а также имеются случаи заражения людей. Интенсивное развитие международной торговли сельскохозяйственной продукцией соз190 дает предпосылки дальнейшего распространения дерматофилеза в другие регионы, в том числе в Россию, СНГ, и другие страны Таможенного союза. Во многих странах, особенно на Африканском континенте, контролю дерматофилеза придают большое значение, разрабатывают совместно с ФАО при ООН, ОДА и ЕС программы по снижению заболеваемости животных этой болезнью [5]. Поэтому перед нами была поставлена задача проанализировать эпизоотическую ситуацию по дерматофилезу в различных странах мира и разработать предложения по снижению опасности заноса возбудителя этой болезни из вне на территорию Российской Федерации. Материалы и методы. Проведен анализ научных работ зарубежных и отечественных авторов по дерматофилезу, представлены собственные эпизоотические исследования в Иордании, разработаны предложения по ветеринарно-санитарной экспертизе продуктов убоя животных при дерматофилезе. В работе использовали общепринятые методы изучения эпизоотической ситуации и лабораторных исследований по диагностике дерматофилеза. Результаты исследования. Впервые дерматофилез был описан в 1915 году при заболевании крупного рогатого скота в Конго. В последующие годы дерматофилез был диагностирован во многих других африканских странах. По данным ФАО/ВОЗ и МЭБ в семидесятых годах прошлого столетия болезнь регистрировали в 25 странах Африки, во многих странах Южной Америки, в США, на островах Карибского моря, на Азиатском континенте, в Австралии, Новой Зеландии и в Европе. В 1992 году заболевае- Таблица 1 - Показатели распространения дерматофелеза у овец в Иордании № п/п 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 Название провинции Поголовье обследованных голов Аджлун 10011 Акаба 12039 Амман 421495 Джараш 11151 Ирбид 156262 Маан 131226 Мадаба 136945 Эз-Зарка 219788 Эль-Балка 108597 Эль-Карак 1089656 Эль-Мафрак 933397 Эт-Тафила 65660 В Среднем Годы изучения, количество заболевших, % 2012 2013 2014 1,41 1,72 1,83 2,32 3,27 5,16 1,74 2,26 2,91 1,18 1,74 1,70 1,52 1,86 2,07 1,27 1,38 1,79 1,37 1,42 2,07 1,63 1,85 2,19 1,12 1,74 1,06 1,68 1,74 2,04 1,93 2,18 2,,66 1,04 1,25 1,55 1,52 1,81 2,24 мость продуктивных животных дерматофилезом отмечали в Заире, Кении, Нигерии, Гане, Мали, Конго и других африканских странах, где пораженность скота достигала уже 20-30% выращиваемого поголовья. При этом носительство возбудителя болезни на поверхности кожи и шерсти выявляли дополнительно у 50% обследуемых клинически здоровых животных. В регионах, где на пастбищах растут травы и кустарники с колючками, заболеваемость животных дерматофилезом достигает 23,7-62,0% от всего пасущегося там поголовья. Чаще поражается молодняк домашних и диких животных. В разных странах дерматофилез из-за особенностей возбудителя и поражения кожи у животных имеет различные названия – стрептотрихоз, микотический дерматит, пролиферативный дерматит и др., что влияет напоказатели отчетности по дерматофилезу[1]. Дерматофилез на Британских островах чаще выявляли у крупного рогатого скота, овец и лошадей, в Голландии – у лошадей, в Болгарии – у свиней, в Австралии и Новой Зеландии – у овец, лошадей и человека, в Индии и Бангладеш – у верблюдов и крупного рогатого скота, в Израиле – у крупного рогатого скота, зоопарковых животных и человека. Имеются сообщения о дерматофилезе во Франции, Норвегии, Румынии, Чехии, Германии, Бельгии и других европейских странах[1,5]. В настоящее время география дерматофилеза значительно расширилась. Болезнь стали выявлять в других, ранее благополучных, стра- В среднем 1,41-1,83 2,32-5,16 1,74-2,91 1,18-1,74 1,52-2,07 1,27-1,79 1,37-2,07 1.63-2,19 1,06-1,74 1,68-2,04 1,93-2,66 1,04-1,55 1,52-2,24 нах мира. Число заболевших животных в очагах инфекции возрастает в периоды сезонных дождей, массовой активности клещей, мух и других жалящих насекомых. В Иордании дерматофилез имеет широкое распространение и препятствует более интенсивному развитию животноводства. Наиболее часто в Иордании, как в Судане и Саудовской Аравии, выявляют дерматофилез у верблюдов, коз, овец, крупного рогатого скота и кроликов, реже - у собак, кошек и диких животных. Болезнь протекает часто в виде эпизоотии и в различных регионах страна поражает животных в массовом порядке. Дерматофилез в Иордании наносит большие экономические убытки владельцам продуктивных животных. Кроме того, почти ежегодно регистрируются случаи заболевания дерматофилезом пастухов, бедуинов и других лиц, имеющих контакт с больными животными. На территории Российской Федерации дерматофилез еще не зарегистрирован. Но эта болезнь установлена во многих соседних странах (Болгария, Турция, Норвегия, Румыния и др.) и в странах дальнего зарубежья, импортирующих мясо и мясные полуфабрикаты в Россию (Франция, Англия Германия, Швейцария, США, Аргентина, Бразилия и др.). При интенсивной международной торговле животными и их продукцией, при слабом ветеринарно-санитарном контроле на пограничных ветеринарных пунктах возбудитель болезни может быть занесен в любой регион России, в том числе в хозяйствах 191 южных. В нашей стране была разработана и утверждена в 1981 году «Временная инструкция о мерах по профилактике и ликвидации заболевания сельскохозяйственных животных дерматофилезом», где представлены основные сведения о возбудителе, вопросы профилактики и борьбы с этой болезнью.В Иордании такого инструктивного документа до сих пор нет, поэтому борьба с дерматофилезом осуществляется владельцами животных самостоятельно и часто неэффективно. Возбудителем дерматофилеза (стрептотрихоза) в Иордании является патогенный актиномицет – Dermatophiluscongolensis, который на определенных этапах развития имеет форму нитей или форму коккообразных клеток, хорошо окрашивающихся анилиновыми бактериальными красками и грамположительно. Культивируется возбудитель дерматофилеза на плотных и жидких питательных средах с 5-10% сыворотки крови, образуя при этом плотные, желтовато-золотистые или светло-коричневые, сморщенные и бугристые колонии, а на жидких питательных средах образует ватоподобный осадок, разбивающийся при встряхивании на крупные хлопья. В отличие от микромицелий возбудитель дерматофилеза на среде Сабуро не культивируется[3]. Для D. congolensis характерен рост мицелия с перпендикулярно растущими ветвями, которые делятся сначала поперечно, затем в продольном направлении, образуя пакеты клеток в виде сарцин. Клетки, после выхода из пакета, превращаются в споры с плотной оболочкой (зооспоры). В патологическом материале (корочки, чешуйки и др.) больных животных обнаруживается разветвленный мицелий возбудителя болезни, который легко распадается на пакеты со спорами. Устойчивость возбудителя дерматофилеза во внешней среде высокая. Зооспоры сохраняются жизнеспособными при высушивании, они выдерживают нагревание до 45 ºС в течение 9-10 дней, кипячение – до 15 мин, при замораживании погибают только через 5-7 сут. В некротических корочках кожи и в другом патматериале сохраняются жизнеспособными в течение 2-2,5 года, в сухой почве – до 4 мес. Но возбудитель сравнительно чувствителен к различным дезсредствам, в том числе к формальдегиду, хлорсодержащим и щелочным растворами[1, 3]. Источником возбудителя дерматофилеза являются больные животные и носители зоо192 спор, а переносчиком болезни – клещи, мухи и другие жалящие и кровососущие членистоногие и насекомые. Факторами передачи могут быть контаминированные ветки кустарников и колючки трав, повреждающие целостность кожи. Для возникновения патологического процесса необходимы повреждения кожного покрова в виде царапин, проколов, ссадин, через которые возбудитель болезни проникает в толщу кожи и начинает развиваться, прорастая мицелием в клетки кожи. Зооспоры D. congolensis имеют положительный хемотропизм в отношении CO2, поэтому в поврежденной коже легко прорастает в мицелиальную форму.Но распространяясь в эпидермисе, возбудитель вызывает воспалительный процесс и отек сосочкового слоя эпидермиса, размягчает эпителиальные клетки и обуславливает нейтрофильную инфильтрацию. Из пораженных слоев эпидермиса и высохшей экссудативной массы образуются струпья в виде чешуи и корочек, которые через 12-14 дней могут отделяться, что обуславливает поражение второго слоя эпидермиса и появление многослойных корочек. В случаях обширного поражения кожи болезнь изнуряет животных зудом, приводит к истощению и гибели до 30% заболевшего поголовья. В организме пораженного дерматофилезом животного развивается аллергическая перестройка иммунитета, появляются антитела в крови, которые способны повысить фагоцитоз, но не защищают организм от последующего заражения [1]. Инкубационный период составляет 5-12 дней в зависимости от возраста, вида, породы и состояния здоровья животных. Клиническое проявление дерматофилеза у крупного рогатого скота начинается с появления очажков поражения кожи вдоль спины, шеи, головы, затем в области корня хвоста, бедер, на вымени или мошонке. На пораженных участках кожа припухает, образуются папулы, шерсть теряет блеск, склеивается инфильтратом и легко выдергивается, обнажая мокнущие участки с чешуйками и корочками. При удалении корочек и чешуек кожа кровоточит. Различают две стадии дерматофилеза – стадия некротического дерматита изолированных очагов или слившихся участков поражения [5]. У лошадей, ослов и мулов при дерматофилезе чаще выявляют поражение кожи конечностей в виде экссудативного дерматита с осложнениями, приводящими к развитию панариция, слоновости, изъязвлению кожи и мягких тканей. У жеребят болезнь протекает часто в острой форме и приводит к гибели. В Иордании наибольшую эпизоотическую напряженность по дерматофилезу создают овцы и ягнята, разведением которых занимаются многие жители степных и горных районов. Заболеваемость овец зависит от сезона года, возраста и породы животных. Мы ретроспективно изучали эпизоотическую ситуацию по дерматофилезу в 12 регионах Иордании. За 2012-2014 гг. Данные, представленные в таблице 1 свидетельствуют, что эпизоотическая напряженность по дерматофилезу зависит от концентрации поголовья овец на определенной территории. В среднем заболеваемость овец дерматофилезом составила в 2012 году 1,18-2,32%, в 2013 году- 1,25-3,27%, в 2014 году-1,29-5,16%, наиболее часто дерматофилез выявили в провинциях Акаба (2,32-5,16%), Амман (1,74-2,91%), Мадада (1,37-2,07%), Эль-Тафила (1,93-2,66%) и Эз-Зарка (1,63-2,19%). Значительно реже эту болезнь выявили у овец на территории провинции Эт-Тафиле (1,04-1,55%), Эль-Балка (1,06-1,74%), Джаращ (1,18-1,74%) и Аджлун (1,41-1,83%). У больных овец и коз участки дерматофилезного поражения выявляют обычно на безволосых поверхностях кожи (конечности, голова, молочная железа) в виде мокнущих папул. В дождливый сезон и при наличии клещей, мух и других жалящих членистоногих и насекомых у овец поражаются и шерстные участки кожи. При этом в результате обильного выделения экссудата шерсть сваливается, теряет эластичность, на коже развиваются гранулематозные поражения, напоминающие ягоды земляники, и развивается так называемая «земляничная» копытная гниль. Овцы теряют живую массу, плохо двигаются и в тяжелых случаях погибают [4]. Наиболее массовое поражение дерматофилезом отмечается у ягнят. У них при внедрении возбудителя в клетки кожи за более короткий инкубационный период развивается воспалительный отек с последующим некрозом эпителия. Затем в инфильтрате пораженного участка накапливаются эритроциты, лейкоциты, гистиоциты и особенно много нейтрофилов, которые изменяют цвет и консистенцию пораженного очага. Образовавшиеся пустулы быстрее, чем у других животных, лопаются, вытекающий экссудат склеивает шерсть. Эпидермальные клетки ороговевают, образуя струпья и толстые корки на пораженной коже, которая становится болезненной. Губы и уши могут покрываться желтоватым налетом, теряют подвижность. У ягнят дерматофилез внешне напоминает признаки стригущего лишая и оспы, но при дерматофилезе корки на пораженных участках более толстые, изрытые трещинами, заполненными сукровичной жидкой массой. Иногда пораженные участки кожи осложняются гноеродными микроорганизмами (стафилококками, стрептококками, синегнойной палочкой и др.). Такие ягнята становятся угнетенными, ограниченными в движениях, осторожны из-за болезненности кожи. Это приводит к отказу от корма, истощению и гибели многих заболевших ягнят. При таких признаках для подтверждения диагноза делают 3-4 мазка из корочек и инфильтрата, окрашивают анилиновыми красками (фуксин, метиленовая синька и др.) или по Граму. Диагноз считается установленным, если обнаружен возбудитель болезни, который представляет собой грамположительные нити, обрывки мицелия и пакеты, состоящие из мелких коккообразных клеток. У таких ягнят часто выявляют дополнительно секундарные инфекции, что осложняет эффективность лечения и ветеринарно-санитарных мероприятий в хозяйствах [1, 4]. При экспериментальном заражении травмированных участков кожи у молодняка крупного рогатого скота прослеживается такая же динамика развития дерматофилеза (воспаление и отек кожи, папулы, корки), как и у спонтанно больных животных. У других видов животных (свиньи, кролики, собаки, кошки) болезнь сопровождается выраженными экссудативными поражениями кожи и тоже с образованием корочек коричневого или черного цвета. Более остро и в тяжелой форме дерматофилез протекает на фоне других хронических болезней (гистоплазмоз, нокардиоз, туберкулез, бабезиоз, трипаносомоз, другие эндопаразитарные болезни). В таких случаях при дерматофилезе поражаются обширные части кожи, которые могут удаляться большими лоскутами с кровоподтеками на оголенных участках кожи, что приводит к истощению и гибели животных. Диагностика дерматофилеза предусматривает обязательный осмотр животных, выявление папул и корочек, микроскопическое исследование чешуек и некротических масс кожи с целью обнаружения возбудителя, а также посевы патматериала на сывороточные питательные среды для изолирования возбудителя в чистом виде, с 193 целью идентификации болезни от трихофитии, чесотки, некробактериоза, оспы, вирусной экзантемы и поражения эктопаразитами. Борьба с дерматофилезом затруднена отсутствием специфических средств лечения и профилактики. Рекомендуется для обработки кожи в начальной стадии болезни использовать препараты местного действия (салициловый спирт, настойка йода, формалин, метилвиолет, соединения серы и др.). При более тяжелой форме болезни необходимо внутримышечно вводить антибиотики (пенициллин, террамицин, стрептомицин и др.) в больших дозах. В дождливый сезон, когда отмечается высокая активность членистоногих и эктопаразитов, необходимо вести борьбу с клещами, кровососущими и жалящими насекомыми, подвергать животных купанию в специальных траншейных ваннах с акарицидными препаратами, выпасать их на территориях, лишенных колючих трав и кустарников. По нашему мнению животных при выявлении дерматофилеза экономически выгоднее отправлять на убой. При этом размещать их на скотобазе не допускается. Таких животных надо подавать на убой из транспортных средств, минуя загоны предубойной выдержки [1, 4, 5]. Мясо от убитых больных и подозрительных по заболеванию животных используют по результатам бактериологического исследования. Шерсть подвергают дезинфекции, шкуры высушивают на солнце или обрабатывают при пикелевании в растворе кремнефтористого натрия. Кровь и эндокринно-ферментное сырье для медицинских целей не собирают. При импорте и экспорте животных и шкур необходимо проводить более тщательный осмотр с целью выявления поражений, характерных для дерматофилеза. Заключение. Дерматофилез имеет широкое распространение у животных в странах с теплым и влажным климатом, в том числе в Иордании. Из-за недостаточной изученности ряда вопросов по дерматофилезу борьба с этой болезнью пока не позволяет снизить эпизоотическую напряженность во многих регионах мира. Некоторые исследователи рекомендуют убивать больных животных, а шерсть и шкуры от них сжигать. В Австралии и других овцеводческих странах, где болезнь имеет наиболее широкое распространение, такие меры считаются неэкономичными. В ряде стран предлагается в неблагополучных хозяйствах животных делить на две группы – явно больные (с характерными признаками дерматофилеза) и условно здоровые. Больных животных подвергают лечению и, при отсутствии положительного результата, выбраковывают для вынужденного убоя. Животных второй группы (здоровых) постоянно осматривают с целью выявления больных дерматофилезом, которых отделяют и переводят в первую группу или направляют на убой. Однако в ветеринарных нормативных и инструктивных документах в Иордании, как в Правилах ветсанэкспертизы мяса и мясных продуктов в Российской Федерации, нет каких-либо рекомендаций по ветеринарно-санитарной оценке и использованию продуктов убоя животных при дерматофилезе. Вопросы ветеринарно-санитарной экспертизы и оценке продуктов убоя при дерматофилезе остаются еще не изученными. По нашему мнению, мясо больных дерматофилезом животных не может быть использовано в пищевых целях без ограничения. Мясное сырье таких животных подвергают лабораторным исследованиям или направляют на изготовление вареных колбас или консервов, а при осложнении секундарными инфекциями подвергается проварке при общепринятых температурных режимах. Кровь и эндокринно-ферментное сырье для пищевых и медицинских целей не используются. Шкуры и шерсть подлежат дезинфекции, а при сильном поражении направляются в утиль. Туши и органы истощенных животных подлежат утилизации или на кормовые цели. Библиографический список: 1. Балабанов В.А. Дерматофилез // М.: «Мир», 1982, 140 с. 2. Временная инструкция о мерах по профилактике и ликвидации заболевания сельскохозяйственных животных дерматофилезом // М.: ГУВ ГАК СССР, 1981, 5 с. 3. Краткий определитель бактерий Берги // Под ред. Дж. Хоулта, перевод с англ. яз. – канд. биол. наук С.Ш. Тер-Казарьян, под. ред. чл.-корр. АНСССРГ.А. Заварзина // М.: «Мир», 1980, 495 с. 4. Anonim – In «Dermatophilus infection in animals and man», edit. by Lloyd D.H. and Sellers K.S., 1976, 300-305. 5. Graber M. Existence au Tchad de taurinset de Zebus PorteuraSains de Dermatophiluscongolensis. Rev. Elev. Med. Vet pays trop, 1969, 22, 1, 41-45. 194 QUESTIONS EPIZOOTOLOGY AND VETERINARY-SANITARY EXAMINATION DERMATOFILEZA ANIMALS IN JORDAN F. F.Zayadin, I.G. Seregin, S.N. Zolotukhin Keywords: animals, dermatofilez, the causative agent of the disease, the source of infection, the spread of disease, the clinical and pathological signs ante-mortem and post-mortem diagnosis. This article presents the materials dermatofilezu to substantiate neobhoimosti explore issues of distribution and diagnostics dermatofileza primarily from slaughter animals and veterinary-sanitary assessment of meat and other products of slaughter in this disease УДК 639.311 ПОВЫШЕНИЕ КАЧЕСТВА И БЕЗОПАСНОСТИ ПРОДОВОЛЬСТВЕННОГО СЫРЬЯ И ПИЩЕВЫХ ПРОДУКТОВ КАК ОДНА ИЗ ВАЖНЕЙШИХ СОЦИАЛЬНО-ЭКОНОМИЧЕСКИХ ЗАДАЧ СОВРЕМЕННОСТИ В.В. Зотов, аспирант ФГБОУ ВПО «Московский государственный университет пищевых производств», 8 (926) 548-97-00, valeriyzotov@mail.ru Ключевые слова:баланс, безопасность, закон, качество, прогресс, продовольственное сырье, продукция животного происхождения, производство, экология. В статье отражено социально-экономическое значение повышения качества и безопасности продовольственного сырья и пищевых продуктов, задачи с этим связанные и пути их решения. Выявлена тесная связь между научно-техническим прогрессом и антропогенной нагрузкой, гигиеной пищевого производства и экологическим балансом окружающей среды. Рубеж третьего тысячелетия ознаменовался мощным научно-техническим прогрессом, который привел к резкому росту промышленности, увеличению населения и его скученности в промышленных центрах. С этого времени экономическое развитие характеризуется постоянным ростом объемов не только промышленного, но и сельскохозяйственного производства, увеличением потребления животноводческой и сельскохозяйственной продукции, появлением новых технологий и процессов, веществ и материалов. Для компенсации возросших потребностей строятся мясокомбинаты, животноводческие комплексы, образуется бесчисленное множество малых предприятий, растет антропогенная нагрузка [1,2,5,7,10]. Человеческое общество с момента своего возникновения существовало и развивалось в тесной взаимосвязи с природой, изменяло ее и само менялось вместе с ней. Эта взаимная направленность носит объективный характер. Природа выступает источником средств жизни. Она поставляет человеку пищу, обеспечивает водой. Роль природы как источника средств существования наполняется конкретным содержанием в каждую историческую эпоху применительно к каждой социальной общности, но если на первых этапах экономического развития потенциал окружающей природной среды был достаточно велик для восстановления от увеличивающихся, но все же небольших антропогенных нагрузок, то к настоящему времени воздействие человека на окружающую среду возросло настолько, что мировое научное сообщество забило тревогу. Современный уровень антропогенных нагрузок на геосферу приблизился к критическому и грозит необратимыми последствиями планете в целом [2, 7, 10]. 195 И все это при том, что по своей биомассе человечество как биологический вид составляет тысячные доли процента живого вещества планеты, оно создает в несколько тысяч раз больше отходов, чем вся биосфера нашей планеты. Если отходы жизнедеятельности организмов естественным образом вписываются в разнообразные процессы утилизации и разложения, то поток бытовых и производственных отходов, в том числе пищевых, нарушает установившееся равновесие в природе. Впервые в истории, по словам Р. Калфера, «люди обрели такую власть над природой, что могут пресечь эволюцию человеческого рода…» [10]. Однако отказаться от технического прогресса невозможно. Если поставить современное общество в исходные природные условия, начать тормозить его развитие, то оно не сможет существовать. Наилучший выход – это развитие технологий на основе поддержания экологического баланса в макро- и микро-масштабах, в том числе и в пищевом производстве от крупных мясокомбинатов до цехов малой мощности [10]. В связи с этим повышение качества и безопасности продовольственного сырья и пищевых продуктов становится одной из важнейших социально-экономических задач, решение которой зависит от квалифицированного использования достижений научно-технического прогресса в сельскохозяйственной и перерабатывающих отраслях и научно обоснованных подходов к системе производства, хранения, контроля и реализации сырья и продукции животного и растительного происхождения [6,8]. Для реализации выше обозначенной задачи необходим также постоянный контроль и совершенствование нормативно-правовой базы. В Федеральном законе «О качестве и безопасности пищевых продуктов» от 02.01.2000 г. № 29-ФЗ четко сформулированы правовые нормы государственного регулирования качества и безопасности пищевых продуктов и определены основные понятия, связанные с пищевым производством: - качество пищевых продуктов - совокупность характеристик пищевых продуктов, способных удовлетворять потребности человека в пище при обычных условиях их использования; - безопасность пищевых продуктов - состояние обоснованной уверенности в том, что пищевые продукты при обычных условиях их использования не являются вредными и не представляют опасности для здоровья нынешнего и будущих поколений [11]. 196 Этот законявляется одним из основных документов, опираясь на который государство, наука и производство должны планомерно решать весь комплекс проблем трофологической цепочки прохождения продуктов питания от фермы, переработки до прилавка и населения [3]. В последнее время в ряде европейских стран появился большой интерес к натуральной экологически безопасной продукции. Люди готовы платить большие деньги за действительно качественные продукты питания. Мировой рынок экологически безопасного сельскохозяйственного сырья и продуктов питания сегодня относится к числу быстрорастущего. Его ёмкость выросла в 9 раз и к 2020 году по оценкам специалистов достигнет 400 миллионов долларов США. Страны Европейского союза установили дополнительные меры поддержки предприятий, занимающихся производством экологически чистого сырья и продуктов - это дотации и субсидии. Государство оказывает помощь в проведении научных исследований данной проблемы. В отличие от многих стран в России имеется гораздо больше возможностей для получения экологически безопасного сырья. В тоже время государство стоит пока в стороне от решения этой проблемы. А ведь здоровое питание является одним из важнейших факторов, определяющих здоровье населения. Правильное питание обеспечивает нормальный рост и развитие детей, способствует профилактике заболеваний, продлению жизни людей, повышению работоспособности и создаёт условия для адекватной адаптации их к окружающей среде. Успешное решение проблемы питания зависит от создания устойчивой базы производства качественного сельскохозяйственного сырья, современной пищевой индустрии и доступных продуктов питания для всех слоев населения. При этом, в центре внимания должны быть качество пищевых продуктов и продовольственная безопасность, которая базируется на надёжном самообеспечении страны основными видами отечественного продовольствия[9]. В нашей действительности продовольственное сырье и продукция животного происхождения могут являться источником и носителем большого числа потенциально опасных и токсичных веществ химической и биологической природы[3]. Известно, чтооколо 70 % вредных веществ поступает в организм с продуктами питания [9], вызывая различные заболевания, а для некоторых, например гельминтозов, харак- терен исключительно алиментарный путь инвазии.В этой связи актуальна работа ветеринарных специалистов и исполнение статьи 21 закона РФ «О ветеринарии» от 14.05.1993 г. № 4979-1, согласно которой «запрещаются реализация и использование для пищевых целей мяса, мясных и других продуктов убоя (промысла) животных, молока, молочных продуктов, яиц, иной продукции животного происхождения, кормов и кормовых добавок растительного происхождения и продукции растительного происхождения не промышленного изготовления, не подвергнутых в установленном порядке ветеринарно-санитарной экспертизе» [4]. Анализ литературы приводит к выводу, что в условиях современности, когда уровень антропогенных нагрузок приблизился к критическому приоритетными становятся научные исследования, позволяющие оценить эту нагрузку и предложить методы и подходы, обеспечивающие поддержание экологического баланса. Исследования подобной направленности нельзя отнести к какой-то одной научной дисциплине, обычно они носят системный характер с привлечением методов, применяемых в разных областях науки: ветеринарии, гигиене и экологии. Библиографический список: 1. Бабатова А.Ш. Философский контекст развития экологии. // Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата философских наук. Москва - 2000 г. – 16 с. 2. Богун А.С., Костяная Н.О. Философские проблемы взаимодействия живых организмов со средой обитания. // Философия биологии и экологии. Сборник статей / Отв. ред. А.В. Белов – Ростов-на-Дону, Изд-во «ИВВР», 2008. - 112 с. 3. Донченко А.С., Шелепов В.Г. Безопасность и качество продукции сельскохозяйственного производства в Сибири. // Пища. Экология. Качество. Труды V Международной научно-практической конференции / РАСХН. Сибирское отделение. ГНУ СибНИПТИП. – Новосибирск, 2008 г. – 386 с. 4. Закон РФ «О ветеринарии» от 14.05.1993 г. № 4979-1. 5. Карапетьян О.Ш. Экологическая культура, образование и воспитание в свете экологических проблем современной цивилизации. // Философия биологии и экологии. Сборник статей / Отв. ред. А.В. Белов – Ростов-на-Дону, Изд-во «ИВВР», 2008. - 112 с. 6. Костенко Ю.Г., Бутко М.П., Ковбасенко В.М. и др. Руководство по ветеринарно-санитарной экспертизе и гигиене производства мяса и мясных продуктов. Под ред. д-ра вет. наук, проф. М.П. Бутко, д-ра вет. наук, проф. Ю.Г. Костенко – Москва, РИФ «Антиква», 1994 г. – 608 с. 7. Марьин В.К., Овчаренков Э.А., Калашников Д.В. Экологическая безопасность. — Пенза: ПГУАС, 2006. – 372 с. 8. Серегин И.Г. и др. Ветеринарно-санитарная экспертиза пищевых продуктов на продовольственных рынках: Учебное пособие. – СПб: ГИОРД, 2005. – 472 с. 9. Сизенко Е.Г. Стратегия научного обеспечения развития конкурентоспособного производства отечественных продуктов питания высокого качества. // Пища. Экология. Качество. Труды V Международной научно-практической конференции / РАСХН. Сибирское отделение. ГНУ СибНИПТИП. – Новосибирск, 2008 г. – 386 с. 10. Татаринцева О.П., Деревянчук Е.Г. Экологические проблемы современной цивилизации. // Философия биологии и экологии. Сборник статей / Отв. ред. А.В. Белов – Ростов-на-Дону, Изд-во «ИВВР», 2008. - 112с. 11. Федеральный закон «О качестве и безопасности пищевых продуктов» от 02.01.2000 г. № 29-ФЗ. IMPROVING THE QUALITY AND SAFETY OF FOOD RAW MATERIALS AND FOOD PRODUCTS AS ONE OF THE MOST IMPORTANT SOCIOECONOMIC ISSUES OF THE DAY V.V. Zotov Key words: balance, safety, law, quality, progress, raw food, products of animal origin, production, ecology. The socio-economic importance of improving the quality andsafety of food raw materials and food products is reflected in the article,and also associated with this problemsand possible solutions. The close relationshipis revealed between the scientific and technical progress and by anthropogenic load, the hygiene of food production and ecologicalbalanceof environment. 197 УДК 637.5.04/07:637.524.24 ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНАЯ ЭКСПЕРТИЗА КОЛБАСЫ «ДОКТОРСКАЯ» РАЗЛИЧНЫХ ПРОИЗВОДИТЕЛЕЙ Н.Ю. Парамонова, кандидат ветеринарных наук, доцент 8 (4942) 41-94-37, natparamonova@yandex.ru М.Ю. Якубовская, кандидат ветеринарных наук, доцент 8 (4942) 65-71-02, yakubovskaya_78@mail.ru М.С. Трескин, кандидат ветеринарных наук, доцент 8 (4942) 62-91-30 (доб. 5106), trmhsr@mail.ru ФГБОУ ВПО «Костромская государственная сельскохозяйственная академия» Ключевые слова: ветеринарно-санитарная оценка, вареные колбасные изделия, оценка качества, органолептические, физико-химические показатели. Проведены исследования вареных колбасных изделий различных производителей. Изучены органолептические, физико-химические и микробиологические показатели, по результатам которых проведена сравнительная оценка исследуемых образцов. Введение. Для мясного рынка России последних лет характерно большое разнообразие изделий колбасного ряда. При этом ассортимент представленных на рынке колбас продолжает увеличиваться. Существующая система технического регулирования позволяет осуществлять выпуск подобной продукции по рецептуре, разрабатываемой непосредственно мясоперерабатывающими предприятиями, что существенно увеличило их долю в общем ассортименте колбас [7]. С этим связано повышение недоверия потребителей не только к новым технологиям, используемым в производстве, но и к традиционным, давно применяемым в этой отрасли при выпуске изделий состав которых регламентируется соответствующим ГОСТом [4]. В связи с вышеизложенным, целью наших исследований явилась сравнительная оценка вареных колбас, реализуемых через торговую сеть г. Костромы. Материалы и методы исследования. Объектом исследований послужили образцы вареной колбасы «Докторская» шести различных производителей: ЗАО «Шувалово» Костромской области, ООО «Старт» Костромской области, ОАО «Царицыно» г. Москва, ЗАО МЗ «Ступино-Останкино» Московской области, ЗАО «Стародворские колбасы» г. Владимир и ООО Мясокомбинат «Дубки» Саратовской области. Все образцы вареных колбасных изделий приобретены в розничных торговых точках г. Костромы. С целью конфиденциальности исследуемым образцам присвоили номера: образец № 198 1 — образец № 6 (нумерация образцов не совпадает с последовательностью перечисления производителей). Исследуемые образцы подвергли трехкратной комплексной оценке. При этом учитывали органолептические, микроскопические и физико-химических показатели. Полученные результаты обрабатывали методом вариационной статистики с применением критериев Стьюдента с использованием Microsoft Ехсеl. Органолептические исследования проводили в соответствии с требованиями ГОСТ Р 521962011 «Изделия колбасные вареные. Технические условия», ГОСТ 9959-91 «Продукты мясные. Общие условия проведения органолептической оценки». Микроскопические исследования — по ГОСТ 23392-78 «Мясо. Методы химического и микроскопического анализа». Массовую долю влаги определяли в соответствии с требованиями ГОСТ 9793-74 «Продукты мясные. Методы определения влаги». Лабораторные исследования проводились по общепринятым методам с использованием современного оборудования [1, 2, 3, 5, 6]. Результаты исследований и их обсуждение. Органолептические исследования образцов проводила по показателям: внешний вид, консистенция, цвет и вид на разрезе, запах, вкус. Результаты исследований приведены в таблице 1. Данные, приведенные в таблице 1, свидетельствуют о том, что по всем органолептическим показателям исследуемые образцы колбасных изделий соответствуют требовани- Таблица 1 — Органолептические показатели вареных колбас Показатели Внешний вид Консистенция Цвет и вид на разрезе Исследуемый образец №1 №2 №3 №4 №5 №6 Чистая сухая поверхность батонов, без налетов слизи и плесени. Оболочка плотно прилегает к батону. упругая упругая эластичная упругая эластичная упругая равномерное равномер- равномерное равномерное равномербледно-розо- ное розовое бледно-розо- бледно-розо- ное розовое вое окраши- окрашивание вое окраши- вое окраши- окрашивание вание вание вание Запах и вкус без посторонних привкусов и запахов ароматный аромат пря- ароматный ароматный ароматный запах, при- ностей, при- запах, прият- запах пряно- запах, приятятный вкус ятный вкус ный вкус стей, приятный вкус в меру соленый вкус ный равномерное бледно-розовое окрашивание ароматный запах, приятный вкус, в меру соленый Таблица 2 — Физико-химические показатели колбасных изделий Показатели Массовая доля влаги, % Массовая доля поваренной соли, % Содержание нитрита натрия, % рН Содержание крахмала Реакция на газообразный аммиак по Эберу Определение каталазы Исследуемый образец №3 №4 №1 №2 54 ± 3,60 54 ± 2,64 54 ± 2,00 1,96 ± 0,74 1,73 ± 1,37 2,56 ± 1,32 0,0032 ± 0,004 №5 №6 53 ± 1,00 54,6 ± 2,88 52 ± 1,00 1,60 ± 0,1 1,73 ± 0,05 2,3 ± 0,2 0,002 ± 0,001 0,004 ± 0,005 0,004 ± 0,005 0,004 ± 0,005 0,005 ± 0,004 6,35 ± 0,41 6,2 ± 0,40 6,6 ± 0,53 6,1 ± 0,12 6,0 ± 0,2 6,7 ± 0,11 – – – – – – – – – – – – – – – – – – Примечание: «+» – положительная реакция; «–» – отрицательная реакция ям действующих стандартов, что указывает на высокое качество исходного сырья и соблюдение режимов хранения вареных колбасных изделий. Для проведения микроскопических исследований из каждого образца подготовили по два мазка-отпечатка: первый — из-под оболочки, второй — из середины батона. В результате исследований установили, что во всех исследуемых образцах отсутствуют микроорганизмы. Для оценки состава и контроля технологических режимов производства колбас провели комплекс физико-химических исследований. Результаты представлены в таблице 2. Анализ данных таблицы 2 свидетельствует о том, что количество массовой доли влаги колеблется в пределах от 52% (образец № 6) до 54,6% в образце № 5. Однако, в соответствии с требованиями ГОСТ Р 52196-2011 массовая доля влаги не нормируется, следовательно отклонений от нормативных значений ни в одном из образцов 199 не выявлено. Вместе с этим, по данным, приведенным Б.В. Уша, И.Г. Серегиным [6] в вареный колбасе «Докторская» должно содержаться влаги не более 65%, что на 10,4…13,0 % выше по сравнению с полученными нами данными. В ходе исследований установили, что исследуемые колбасы по содержанию в них поваренной соли и нитрита натрия соответствую требованиям нормативных документов. Максимальное количество массовой доли поваренной соли выявлено в образце № 3, что составляет 2,56%, а наименьшее ее количество в образце № 4 — 1,6%, при нормативных значениях 1,5-3,5%. Содержание нитрита натрия во всех исследуемых образцах не превышало предельно допустимых показателей и составляло от 0,002 до 0,005%. С целью определения свежести провели определение рН колбасных изделий. В результате исследований установили, что уровень рН исследуемых образцов находится в пределах 6,0… 6,7, что подтверждает свежесть колбас (норма рН для свежих вареных колбас составляет 5,0- 6,8). Кроме того, о степени свежести колбасных изделий можно также судить по реакции на газообразный аммиак по Эберу. В нашем случае, все пробы дали отрицательную реакцию. При исследовании образцов на содержание каталазы и крахмала нами были получены отрицательные результаты, что свидетельствует о высоком качестве вареных колбасных изделий. В качестве дополнительных исследований проводили люминисцентный анализ образцов с помощью люминоскопа «Филин». В ходе исследований отметили, что все образцы как с поверхности, так и на разрезе дают бледно-розовое свечение, что в свою очередь так же указывает на свежее колбасное изделие. Выводы. Проведенные исследования свидетельствуют о том, что все исследуемые образцы по результатам органолептических, микроскопических и физико-химических исследований признаны свежими и соответствуют требованиям нормативной документации и заявленным системам оценки соответствия. Библиографический список: 1. ГОСТ 23392-78 «Мясо. Методы химического и микроскопического анализа» — Введ. 1980–01–01 — М. : Стандартинформ, 2009. — 10 с. 2. ГОСТ 9959-91 «Продукты мясные. Общие условия проведения органолептической оценки». — Введ. 1993–01–01 —- М. : Стандартинформ, 2010. — 10 с. 3. ГОСТ Р 52196-2011. Изделия колбасные вареные. Технические условия. — Взамен ГОСТ Р 521962003 ; введ. 2013–01–01. — М. : Стандартинформ, 2012. — 32 с. 4. Гутник Б.Е., Веретов Л.А., Семенова А.А. В ответ на вредные суждения о «вредной колбасе». — Все о мясе. — 2012. — № 6. — С. 44-46. 5. Лысакова И.А., Крыгин В.А., Безина И.В., Солянская И.А. Ветеринарно-санитарная экспертиза сырья и продуктов животного и растительного происхождения. — СПб: издательство «Лань», 2015. — 304 с. 6. Уша Б.В., Серегин И.Г. Лабораторные методы в ветеринарно-санитарной экспертизе пищевого сырья и готовых продуктов. — СПб.: Издательство «РАПП», 2008. — 408 с. 7. Хвыля С.И., Алексеева Е.А. Изучение фактического состава сырья в варенокопченых и полукопченых колбасах, представленных на продовольственном рынке Москвы. — Международная научно-практическая конференция, посвященная памяти Василия Матвеевича Горбатова. — 2012. —Т. 2. — № 2. С. 156-162. VETERINARY AND SANITARY EXAMINATION OF SAUSAGE “DOCTOR” FROM DIFFERENT MANUFACTURERS N.Y.Paramonova, M.Y.Yakubovskaya, M.S.Treskin Keywords: veterinary and sanitary assessment, cooked meat products, quality assessment , organoleptic, physical and chemical parameters Abstract. Researches cooked sausages from different manufacturers. Studied organoleptic, physical, chemical and microbiological parameters and logical, which resulted in a comparative evaluation of the samples 200 УДК 637 АНАЛИЗ КАЧЕСТВА И БЕЗОПАСНОСТИ МЯСНОЙ ПРОДУКЦИИ С МАРКИРОВКОЙ ХАЛЯЛЬ НА РОССИЙСКОМ РЫНКЕ Н.В. Пименов, доктор биологических наук, профессор Ю.В. Петрова, кандидат биологических наук, старший преподаватель Я.С. Татаренко, студентка 5 курса факультета «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВПО Московская ГАВМиБ им. К.И. Скрябина 8(926)984-92-04,anka92-09@bk.ru Ключевые слова: халяль, халяльная продукция, ветеринарно-санитарная экспертиза, метод иммунохроматографии. В статье представлен и описан метод имуннохроматографии как ведущий и эффективный метод определения качества продукции с маркировкой «халяль», позволяющий выявить наличие нарушений в продукте, не только в производственных масштабах, но и бытовых условиях непосредственно потребителем (покупателем). В современной России, многонациональном и поликультурном государстве мира, проживает более 20 миллионов мусульман. Вместе с увеличением их численности, растет и спрос на так называемую «халяльную» продукцию, растет количество предприятий, выпускающих халяль. В погоне за прибылью многие недобросовестные производители выпускают продукцию под маркировкой «Халяль», не соответствующую стандарту и религиозным требованиям, что ведет к необходимости усиления контроля качества продукции. Сертификация «Халяль» – основное средство, гарантирующее соответствие продукции и услуг требованиям халяльной продукции в условиях рыночной экономики. Повышение конкурентоспособности российской мясной продукции в целях обеспечения замещения импортной на внутреннем рынке является одной из приоритетных задач аграрной политики государства:«Важными условиями выпуска промышленной продукции высокого качества является дальнейшее совершенствование методов его контроля, строгое соблюдение технологической дисциплины, всесторонний анализ причин понижения уровня качества или появления брака» [12]. Процедура подтверждения призвана помочь потребителям-мусульманам в компетентном выборе продукции и услуг «Халяль»,защитить потребителей-мусульман от недобросовестного изготовителя (продавца, исполнителя),подтвердить информацию о соответствии продукции и услуг нормам «Халяль»,создать благоприятные условия для деятельности организаций и предпринимателей на рынке России и за ее пределами для участия в международном экономическом, научно-техническом сотрудничестве и международной торговле. Российская фирма «ХЕМА медика», которая более 15 лет специализируется на разработке тестов на основе метода иммуноанализа, представила на рассмотрение в Центр стандартизации и сертификации «Халяль» Совета муфтиев России оригинальный способ быстрого определения следовых количеств свинины без применения специальных приборов – «Экспресс-Х тест на свинину».По принципу действия он напоминает хорошо известные тест-полоски на беременность и может применяться потребителями, контролирующими организациями в любом случае, когда нужно быстро определить возможную примесь свинины в продуктах: при закупке мяса и мясопродуктов на ферме, в магазине, в ресторане и даже на базаре и на кухне. По словам создателей, этим тестом можно также пользоваться на предприятиях, производящих или торгующих смешанной продукцией («халяль» — «не халяль со свининой»). Все, что нужно – чистый нож или другой инструмент для взятия образца и столовая ложка воды или любой другой жидкости, смыв с поверхности оборудования или инструмента. Результаты считываются визуально в течение 3-5 минут. 201 На основании вышеперечисленного целью нашей работы стало проведение ветеринарно-санитарной экспертизы продукции с маркировкой «Халяль» на соответствие принятым Стандартам качества и правилам, установленным шариатом. Для достижения цели нам необходимо было решить следующие задачи: 1. Провести осмотр и органолептические исследования мяса и продуктов с маркировкой «Халяль». 2. Провести экспертизу продукции по физико-химическим показателям качества. 3. Провести органолептическое, микробиологическое исследования и лабораторную диагностику продукции. 4. Апробировать иммунохроматографические тесты на выявление антигенов свинины в халяльных продуктах. 5. Дать оценку доброкачественности исследованных образцов. Нами были подвергнуты исследованию колбасы, сосиски и мясные консервы с маркировкой «Халяль» ряда российских производителей: ООО «КУМК» и ОАО «Кизлярагрокомплекс», Дагестан, г. Кизляр; ООО «Лидер-А» Чеченская Республика, г. Гудермес; ООО «Челны - бройлер», Республика Татарстан, г. Набережные Челны; ООО «САФА» Московская обл., г. Воскресенск; ООО «Руссо-Балт», г. Санкт-Петербург, продукция изготовлена по заказу ИП Кодзоев И.Х., СтароПетергофский пр.; ООО «Оптимум» Московская область, Домодедовский район; ООО «Совад», Ленинградская область; ООО «Экопрод», Пензенская область; ОАО «Царицыно» г. Москва. Образцы продукции получены на профильной выставке под контролем Совета муфтиев России. В качестве контроля иммунохроматографического теста использовали полукопченую колбасу, приготовленную по общепринятым методикам «Европейский сервелат» и «Останкино» ОАО «ОМПК» и содержащую в составе свинину. Исследования проводились на кафедре паразитологии и ветеринарно-санитарной экспертизы ФГБОУ ВПО МГАВМиБ и на базе лаборатории компании «ХЕМА» по общепринятым методикам. В работе использовались следующие методы: статистический, органолептический, физико-химический и микробиологический, иммунохроматографический, взятые из нормативно-технической документации [1-11]. Объектами исследования были мясные продукты с маркировкой «Халяль» (колбасы, 202 сосиски, мясные консервы, пельмени, манты). Оценку органолептических показателей мяса проводили по следующим критериям: изучали внешний вид и цвет продукции, запах, консистенцию, состояние жира и качества бульона при варке [13]. При наружном осмотре оболочки колбасных изделий дефектов выявлено не было: оболочка чистая, сухая, слизи и плесени не обнаружено; при снятии – оболочка крепкая, плотная, прочно прилегает к фаршу. Батон – без деформации, загрязнений нет, слипы, пустоты, отеки жира отсутствуют;при разрезании батона фарш не крошится, он плотный, хорошо режется ровными кусками, распределен равномерно, цвет – однородный без пятен. Запах – специфический и ароматный, вкус – приятный, без присутствия затхлости. При исследовании с помощью люминоскопа признаков порчи колбасы и сосисок не обнаружено, отмечали равномерный, коричневый цвет. Исследование на наличие аммиака по методу Эберадало отрицательный результат во всех пробах: при контакте реактива с колбасным фаршем видимых изменений не обнаружено ни в одной из исследуемых колбас. Качественная реакция – определение крахмала с раствором Люголя показала, что все исследуемые колбасные изделия не имеют повышенного содержания крахмала, цвет поверхностей колбас после нанесения капли реактива Люголя остался неизменным. Измерение pH проводили с помощью pHметра «Picollo». Отмечено, чтоpH всех колбас находится в пределах нормы, есть незначительное увеличение pH у колбасы «VIVO» (см. табл. 1). Мясные консервы имеют специфический запах, приятный вкус, консистенция мяса – упругая, бульон – желтоватого цвета и прозрачный, подтеков нет, деформации банок нет, бомбаж отсутствует, закисания не обнаружено, зловонного запаха нет, размягчения тканей нет, расплавление жира и растительных компонентов не выявлено. Все образцы пельменей и мантов не слипшиеся, недеформированные, края хорошо заделаны, фарш не выступает, поверхность сухая.Вареные пельмени и манты имеют вкус и аромат, свойственные данному виду продукта. Фарш – в меру сочный, с ароматом пряностей, без посторонних привкуса и запаха. Микробиологические исследования проводили по ГОСТ 21237-75.Получили результа- Таблица 1 - Уровень pH в исследуемых образцах колбасных изделий Название исследуемого продукта Колбаса «VIVO» Колбаса «Докторская» Колбаса «Особая» Колбаса «Баранья» Колбаса «Дарман» Колбаса «Мусульманская» Колбаса «Говяжья особая» Колбаса «Сабантуй» Колбаса «Говяжья оригинальная» Сосиски «Эколь» Колбаса «Жомга» Колбаса «КУМК» Колбаса «Сервелат по-татарски» Колбаса «Байрам» УровеньpH 7,2 6,8 6,7 6,6 6,5 6,5 6,5 6,5 6,5 6,4 6,2 6,2 6,2 6,2 Рисунки 1, 2 - Мясные консервы «ЭКОпрод» ты, характеризующие соответствие продукции СанПиН 2.3.2.-1078-01. Применение иммунохроматографического теста позволило происследовать халяльную продукцию на содержание антигенов свинины. Тест-полоски «Экспресс-Х тест на свинину» компании «XЕМА медика» дали отрицательные результаты на всех испытуемых колбасах, сосисках, консервах, пельменях и мантах. Итогом проведенных нами комплексных исследований продукции с маркировкой «Халяль» стал вывод о ее соответствии стандартам качества. По данным иммунохроматографического анализа выявлено несоответствие правилам шариата у одной пробы колбасы, имевшей в своем составе антиген мышечной ткани свиньи, чего не было указано в составе продукта. В зависимости от окончательной оценки образцы халяльной продукции разделили на несколько категорий: высокий уровень соответствия (всего более 92% исследуемой продукции), достаточный или средний уровень соответствия (8%), полное несоответствие или низкий уровень соответствия ( 0%, выявлено не было). В результате проведенной ветеринарно-санитарной экспертизы продукции с маркировкой «Халяль» все исследованные образцы отвечали показателям качества по органолептическим, физико-химическим и бактериоскопическим методам исследования, в том числе тест-полоски, поэтому все образцы допускаются в свободную реализацию без ограничений на территории рынка. Успешно апробирован и может быть рекомендован для проведения 203 Рисунок 3 - Манты «САФА» Рисунок 4 –Тест-полоски «Экспресс-Х тест на свинину» Рисунок 5 - Отрицательный результат«ХЕМА»-теста на свинину ветеринарно-санитарной экспертизы и анализа соответствия качеству иммунохроматографический метод определения следовых количеств свинины без применения специальных приборов – «Экспресс-Х тест на свинину». Иммунохроматографический тест определяет 204 с практически одинаковой чувствительностью сырое свиное мясо, полуфабрикаты на его основе, а также мясо, прошедшее любую кулинарную обработку, включая варку, жарку, тушение, копчение и т. д. Библиографический список: 1. Федеральный закон «О санитарно-эпидемиологическом благополучии населения» № 52-ФЗ от 30.03.99г. 2. Федеральный закон «О качестве и безопасности пищевых продуктов» № 29-ФЗ от 02.01.2000 г. 3. ГОСТ Р 52427-2005 «Промышленность мясная. Продукты пищевые. Термины и определения». 4. ГОСТ 72269-79 «Мясо. Методы отбора образцов и органолептические методы определения свежести». 5. ГОСТ 23392-78 «Мясо. Методы химического и микроскопического анализа свежести мяса». 6. ГОСТ 21237-75 «Мясо. Методы бактериологического анализа». 7. «Правила ветеринарного осмотра убойных животных и ветеринарно-санитарной экспертизы мяса и мясных продуктов». 8. «Инструкция по товароведческой маркировке мяса». 9. СанПиН 2.3.2.1078-01 «Гигиенические требования безопасности и пищевой ценности пищевых продуктов». 10. Серегин И.Г., Уша Б.В. Государственный ветеринарный надзор при экспорте с/х сырья и продовольственных товаров. С-Пб., 2011. 11. Серегин И.Г., Никитченко В.Е., Никитченко Д.В. Ветеринарно-санитарная экспертиза продуктов убоя животных и птицы. М., 2010. 12. Кудряшова К.В., Феоктистова Н.А., Васильев Д.А. Методика выделения фитопатогенных бацилл // Материалы V Международной студенческой электронной научной конференции «Студенческий научный форум» URL: www.scienceforum.ru/2014/666/29639 ANALYSIS OF QUALITY AND SECURITY OF MEAT PRODUCTS MARKED “HALAL” ON THE RUSSIAN MARKET N.V. Pimenov, J.V. Petrova, U.S. Tatarenko Key words: Halal, “Halal” marked products, veterinary-sanitary examination, the method of immunochromatography. This article presents and describes immunochromatography as the leading and the most effective method of determining of the quality of products marked “Halal” which allows to find out violation of norms not only on an industrial scale but at home by a consumer. 205 УДК 637.12.04/.07:636.237.21 ПОКАЗАТЕЛИ КАЧЕСТВА МОЛОКА КОРОВ ГОЛШТИНСКОЙ ЧЕРНО-ПЕСТРОЙ ПОРОДЫ НЕМЕЦКОЙ СЕЛЕКЦИИ ПРИ КОМПЛЕКСНОМ ИСПОЛЬЗОВАНИИ ИММУНОМОДУЛЯТОРОВ Н.А. Попкова, преподаватель ФГБОУ ВПО «Курганская государственная сельскохозяйственная академия им. Т.С. Мальцева» тел.8-919-562-38-87, nadezhdast85@mail.ru Ключевые слова: молоко, препараты, качество, дозировка, «Гамавит», «Экстракт элеутерококка», безопасность. Исследования посвящены определению показателей качества молока-сырья коров согласно ФЗ №88 «Технический регламент на молоко и молочную продукцию» при комплексном использовании препаратов «Гамавит» и «Экстракт элеутерококка» в различных дозировках. В ходе исследований установлено, что по органолептическим, физико-химическим, микробиологическим показателям и показателям безопасности молоко всех групп соответствовало установленным требованиям, показатели не превышали допустимых норм. Введение. Молоко – полноценный высококалорийный продукт в питании человека, содержащий все необходимые питательные вещества в сбалансированной и легкоусвояемой форме [1,2,3]. Молочную продуктивность принято оценивать по количественным показателям и составным компонентам молока [4]. От состава молока зависит его пищевая и биологическая ценность, а также выход молочной продукции и ее качество [5,6]. Качество молока является многофакторной категорией [7,8,9]. С целью улучшения качества перерабатываемого молока принят закон № 88-ФЗ от 12.06.2008 г «Технический регламент на молоко и молочную продукцию». Материалы и методы исследований. Исследования были проведены в 2014 года в условиях ЗАО «Глинки» (г.Курган) на высокопродуктивных коровах голштинской черно-пестрой породы немецкой селекции. Коровы подобраны по методу пар-аналогов в количестве 27 голов с учетом происхождения, возраста, живой массы, даты отела, молочной продуктивности. Научно-хозяйственный опыт был проведен по следующей схеме: животные контрольной группы получали основной рацион (ОР), животным 1 опытной группы к ОР добавляли 60 мл препарата «Гамавит» и 15 мл «Экстракта элеутерококка», 2 опытной группе – ОР с добавлением препаратов «Гамавит» в дозировке 40 мл и «Экстракта элеутерококка» 25 мл. 206 В течение опыта у коров всех групп структура рационов (% по поедаемости) была практически одинакова: в контрольной группе грубые – 5,85, сочные – 35,72, концентрированные – 49,65, минеральные и витаминные – 0,42, БВД – 4,81, сахар – 3,55; в 1 опытной грубые – 5,82, сочные – 36,06, концентрированные – 49,40, минеральные и витаминные – 0,41, БВД – 4,78, сахар – 3,53; во 2 опытной грубые – 5,83, сочные – 35,93, концентрированные – 49,50, минеральные и витаминные – 0,41, БВД – 4,79, сахар – 3,54. Рационы кормления коров контрольной и опытных групп отличались количеством съеденных кормов по массе и введением иммуномодулирующих препаратов. Результаты исследований и их обсуждения. Оценка качества молока-сырья проводится посредствам определения органолептических, физико-химических, микробиологических показателей, а также показателей безопасности. Органолептический метод основан на использовании органов чувств. В его рамках применяются способы: визуальный, тактильный, обонятельный, вкусовой и аудиометод [10]. К основным органолептическим показателям молока относят консистенцию, вкус и запах, цвет продукта. В результате проведения органолептической оценки молока-сырья отклонений от допустимых значений в группах выявлено не было. Таблица 1 - Органолептические показатели молока-сырья Показатель Консистенция Вкус и запах Цвет Допустимые значения согласно ФЗ №88 Однородная жидкость без осадка и хлопьев. Замороженная не допускается Вкус и запах чистые, без посторонних запахов и привкусов, не свойственных свежему натуральному молоку От белого до светло-кремового Так, молоко по своей консистенции представляло собой однородную жидкость без осадка и хлопьев. Посторонних запахов и привкусов не обнаружено, сырье обладает чистым, свойственным свежему натуральному молоку, вкусом и запахом. Цвет молока в контрольной и опытных группах белый. Таким образом, в результате проведенной органолептической оценки, можно сделать вывод, что молоко-сырье соответствует требованиям, предъявляемым ФЗ №88. К основным физико-химическим и санитарно-гигиеническим показателям молока-сырья относятся: массовая доля жира и белка, доля сухих и обезжиренных веществ молока, кислотность и плотность, бактериальная обсемененность, соматические клетки, термоустойчивость и группа чистоты. Массовая доля белка во всех группах соответствовала допустимым значениям нормативного документа. Максимальное содержание выявлено в 1 опытной группе и составило 3,10%, что на 0,04 и 0,02% больше, чем в контрольной и во 2 опытной. По содержанию жира молока контрольной группы уступало 1 опытной на 0,10%, 2 опытной – на 0,06%. Разница данного показателя в опытных составила 0,04% в пользу 1 группы. Плотность и кислотность молока также относятся к одним из основных показателей качества молока. Кислотность является показателем свежести молока. Так, кислотность контрольной и 2 опытной групп находилась на одном уровне (19,93 Т0) и уступала 1 опытной на 0,35%. Плотность – показатель натуральности молока. В контрольной и 1 опытной плотность больше, чем во 2 опытной группе на незначительный процент (0,02%). Важной характеристикой состава молока является содержание СОМО, которое обуславливает его биологическую полноценность контрольная Группа I опытная II опытная Соответствует Соответствует Соответствует Соответствует Соответствует Соответствует Белый Белый Белый и определяется по разнице между сухим веществом и жиром [11]. Массовая доля сухих и обезжиренных веществ молока в группах в среднем составила 8,33%. Общая бактериальная обсемененность имеет важное значение при оценке молока. По данному показателю судят о наличии в молоке микроорганизмов, влияющих на качество и безопасность молочных продуктов. По бактериальной обсемененности молоко 1 и 2 опытных различалось на 6,20% в пользу 2 группы. В молоке-сырье контрольной группы бактериальная обсемененность была больше чем 1 опытной на 18,24%, и на 11,33% по сравнению со 2 опытной. В целом, молоко всех групп коров по данному показателю находилось в пределах нормы и соответствовало по значению молоку высшего сорта. Соматические клетки – это клетки различных органов и тканей, обусловливающие сортность молока и его технологическую пригодность для производства большинства молочных продуктов [12]. Количество соматических клеток в контрольной группе превышало 1 опытную на 13,68%, 2 опытную – на 2,47%. Между собой опытные группы различались на 10,95% в пользу 2 опытной. Показатель калорийности молока 1 опытной был больше, чем в контрольной и во 2 опытной на 23,33 и 5,17% соответственно. Возможность производства продуктов, требующих термической обработки, зависит от термоустойчивости молока. Во всех группах показатель термоустойчивости имел 1 группу. Это свидетельствует о том, что молоко было пригодно для производства молочных продуктов, предусматривающих стерилизацию и высокотемпературную обработку при длительной выдержке. Группа чистоты молока определяется по содержанию в нем механических примесей. Так, по группе чистоты всем группам присвоена еди- 207 Таблица 2 - Физико-химические и санитарно-гигиенические показатели молока, ( X ± Sx ) Показатель Допустимые значения согласно ФЗ №88 не менее 2,8 2,8-6,0 16,0-21,0 не менее 1027,0 Массовая доля белка, % Массовая доля жира, % Кислотность, Т0 Плотность, кг/см3 Массовая доля сухих и обезжиренных веществ не менее 8,2 молока, % Бактериальная обсеме500-4000 тыс./см3 ненность Соматические клетки, г не более 1х106 в см3 Калорийность,ккал Термоустойчивость Группа чистоты, не ниже - Группа контрольная I опытная II опытная 3,06±0,01 3,92±0,04 19,93±0,07 1030,30±0,49 3,10±0,01 4,02±0,03 20,00±0,00 1030,10±0,50 3,08±0,03 3,98±0,03 19,93±0,07 1029,97±0,89 8,30±0,06 8,37±0,09 8,33±0,07 127,70±12,99 108,00±8,02 114,70±10,11 99,70±14,70 64,68±5,30 1 группа 1 87,70±11,90 79,77±5,53 1 группа 1 97,30±5,17 75,85±5,53 1 группа 1 Таблица 3 - Микробиологические показатели молока-сырья, ( X ± Sx ) Показатель КМАФАнМ, КОЕ/г Патогенные м/о, в т.ч. сальмонеллы, г Соматические клетки, г Допустимые значения согласно ФЗ №88 не более 5х105 в 25,0 г не допускается не более 1х106 в см3 Микотоксины: 0,0005 Афлатоксин М1, мг/л Ингибирующие вещества не допускается Антибиотики: менее 0,01 мг/кг Тетрациклиновая гр., мг/кг Стрептомицин, мг/кг менее 0,5 мг/кг Пенициллин, мг/кг менее 0,004 мг/кг Левомицетин, мг/кг менее 0,01 мг/кг ница, что говорит о хорошем санитарном состоянии на предприятии. В целом, анализируя полученные результаты, можно сделать вывод, что по физико-химическим показателям молоко-сырье контрольной и опытных групп существенно не различалось и полностью соответствовало требованиям ФЗ №88 «Технический регламент на молоко и молочную продукцию». Молоко, не содержащее в своем составе антибактериальных препаратов и опасных бактерий, принято называть безопасным. 208 Группа контрольная I опытная II опытная 4,4*104±1,96 3,1*105±1,05 4,0*103±0,12 не выделено не выделено не выделено 99,70±14,70 87,70±11,90 97,30±5,17 менее 0,0001 менее 0,0001 менее 0,0001 не обнаружено не обнаружено не обнаружено не обнаружено не обнаружено не обнаружено не обнаружено не обнаружено не обнаружено не обнаружено не обнаружено не обнаружено не обнаружено не обнаружено не обнаружено При определении микробиологических показателей молока-сырья большое значение имеет количество мезофильных аэробных и факультативно анаэробных микроорганизмов (КМАФАнМ). Показатель характеризует содержание в продукте микроорганизмов, увеличивается при их размножении. Высокий уровень микроорганизмов может вызвать пищевое отравление (гастроэнтерит). Так, максимальное количество КМАФАнМ выявлено в контрольной группе и составило 4,4*104 КОЕ/г, что больше чем в 1 опытной на 14,19%, и на 11,00% по сравнению со 2 Таблица 4 - Показатели безопасности молока-сырья коров Показатель Токсичные элементы: Кадмий, мг/л Ртуть, мг/л Свинец, мг/л Мышьяк, мг/л Пестициды: ГХЦГ (a,b,g-изомеры), мг/л ДДТ и его метаболиты, мг/л Радионуклеиды: Цезий-137, Бк/кг Стронций-90, Бк/кг Допустимые значения согласно ФЗ №88 Группа контрольная I опытная II опытная 0,03 менее 0,005 менее 0,005 менее 0,005 0,005 0,1 0,05 менее 0,002 0,071±0,028 менее 0,005 менее 0,002 0,066±0,026 менее 0,005 менее 0,002 0,051±0,021 менее 0,005 0,05 менее 0,001 менее 0,001 менее 0,001 0,05 менее 0,007 менее 0,007 менее 0,007 100,0 менее 4,5 менее 3,5 менее 3,0 25,0 менее 5,6 менее 5,7 менее 5,0 опытной. В целом, данный показатель находился в пределах нормы - не более 5*105 КОЕ/г. По содержанию Афлатоксина М1 сырье всех групп также находилось в пределах нормы и не превышало 0,0001 мг/л. Такие показатели, как патогенные микроорганизмы, ингибирующие вещества и антибиотики в пробах молока не выявлены, что соответствует требованиям Технического Регламента. Таким образом, в результате проведенной оценки качества молока-сырья по микробиологическим показателям выявлено, что все показатели не превышали установленных пределов. Безопасность пищевых продуктов по содержанию химических загрязнителей определяется их соответствием гигиеническим нормативам в СанПиНе 2.3.2.1078-01. Токсичные элементы, в частности кадмий и свинец, не являются необходимыми микроэлементами и относятся в кумулятивным ядам (114). Содержание кадмия в молоке-сырье всех групп не превышало допустимых норм (0,03 мг/л) и составило менее 0,005 мг/л. Максимальное содержание свинца выявлено в контрольной группе – 0,071 мг/л, что больше чем в 1 и во 2 опытной на 7,58 и 39,22% соответственно. При сравнительной оценке содержания свинца в опытных группах разница составила 29,41% в пользу 1 опытной. Во 2 опытной группе данный показатель был минимален. Ртуть в организм животных попадает с водой или кормом. Во всех группах содержание ртути было менее 0,002 мг/л при допустимом значении в 0,1 мг/л. По содержанию пестицидов, а также ДДТ и его метаболитов группы также не различались. Из радионуклеидов в молоке коров были выявлены цезий-137 и стронций-90. Во 2 опытной группе содержание цезия было минимальным и составило 3,0 Бк/кг, что меньше, чем в контрольной на 15,00%, и на 11,67% по сравнению с 1 опытной. Стронций максимально выявлен в контрольной и 1 опытной, где разница между группами была незначительной и составила 0,1 Бк/кг. 2 опытная уступала по содержанию стронция контрольной и 1 опытной на 11,2 и 11,4% соответственно. Заключение. В целом, проведя оценку качества молока-сырья по органолептическим, физико-химическим, микробиологическим показателям и показателям безопасности можно сделать вывод, что молоко всех групп соответствовало установленным требованиям, показатели не превышали допустимых норм и, как следствие, сырье может быть использовано для дальнейшего производства молочной продукции. Библиографический список: 1. Эзергайль К.В. Инновационные пути в кормлении лактирующих коров для получения молока-сырья, используемого в производстве продуктов детского питания / К.В. Эзергайль, Е.А. Петрухина // Наука и высшее профессиональное образование. Известия Нижневолжского агроуниверситетского комплекса, 2012, №1, с.105-109. 2. Соболева Н.В. Химический состав и технологические свойства голштинизированных коров бесту- 209 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9. 10. 11. 12. жевской породы / Н.В. Соболева, Л.В. Фомина, С.В. Карамаев // Известия Оренбургского государственного аграрного университета, 2014, №3, с. 111-114. Бабушкин В.А. Физико-химический и биологический состав молока коров воронежского типа красно-пестрой породы / В.А. Бабушкин, Я.В. Авдалян, И.В. Зюзиков // Вестник Мичуринского государственного аграрного университета, 2012, №4, с.71-72. Валитова А.А. Повышение качества молока черно-пестрой породы за счет применения пробиотической добавки ветоспорин-актив / А.А. Валитова, И.В. Миронова, И.М. Файзуллин // Известия Самарской государственной сельскохозяйственной академии, 2014, №1, с.82-85. Мартынова Е.Н. Влияние сезона года на молочную продуктивность, химический состав и технологические свойства молока черно-пестрой породы / Е.Н. Мартынова, Е.В. Ачкасова, И.Ф. Дултаева // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана, 2014, №3, с. 215-219. Кебеков М.Э. Физико-химические и технологические показатели молока коров при скармливании в составе рациона препаратов антиоксиданта и сорбента / М.Э. Кебеков, З.А. Гутиева, З.Б. Гасиева, З.Г. Рамонова, А.А. Черкасова // Известия Горского государственного аграрного университета, том №51, 2014, №4, с. 87-94. Дедков К.А. Анализ продуктивности молочных коров / К.А. Дедков // Техника и технология пищевых производств, том №17, 2010, с. 46-49. Каиров В.Р. Физико-химические и технологические показатели молока коров при скармливании в состав рациона биологически-активных добавок / В.Р. Каиров, З.А. Караева, А.Н. Джатиева // Известия Горского государственного аграрного университета, том №49, 2012, №1-2, с. 148-150. Семьянова Е.С. Биотехнология повышения качества и увеличения производства молока / Е.С. Семьянова, Н.Б. Губер // Известия Южно-Уральского государственного университета. Серия: Пищевые и биотехнологии, том №3, 2015, №1, с. 5-14. Крыгин В.А. Основы сенсорного анализа продовольственных товаров / В.А. Крыгин, И.А. Лыкасова, Троицк: ФГОУ ВПО «УГАВМ», 2007, 179 с. Валитова А.А. Влияние пробиотической добавки Ветоспорин-актив на состав и свойства молока и творога / А.А. Валитова // Известия Оренбургского государственного аграрного университета, 2014, №4(48), с. 137-140. Арсеньев Д.Д. Качественная оценка молока-сырья коров ярославской породы в разные сезоны года по микробиологическим показателям / Д.Д. Арсеньев, Е.А. Дмитириевская // Вестник АПК Верхневолжья, 2010, №1, с. 53-55. FACTORS OF MILK QUALITY OF COWS OF HOLSTEIN BLACK-ANDWHITE BREED OF GERMAN SELECTION OVER COMPLEX USING OF IMMUNOMODULATORS N.A. Popkova Key words: milk, agents, quality, dose, «Gamavit», «Eleuterococus extract», safety. Research performed the definition of factors of raw milk quality of cows according to federal law №88 «Technical reglament at milk and milk production» over complex using of agents «Gamavit» and «Eleuterococus extract» in different doses. During research it was discovered that due to organoleptic, physicochemical and microbiologic factors and factors of safety, milk of all groups corresponded fixed requirements, factors didn’t increase permissible rates. 210 УДК 619:614.31:620.2:635 БОЛЕЗНИ И ПОРОКИ КАБАЧКОВ И ИХ ВЕТЕРИНАРНОСАНИТАРНАЯ ОЦЕНКА Д.А. Рыбалко, Е.П. Айдарова, студентки 1 курса факультета ветеринарной медицины М.В. Заболотных, доктор биологических наук, профессор ФГБОУ ВПО ОмГАУ им.П.А. Столыпина, Институт ветеринарной медицины и биотехнологии Ключевые слова: кабачки, болезни и пороки, партия, белая гниль. В настоящее время большую актуальность приобретает правильное и диетическое питание, и для осуществления этого ученые и диетологи мира решают проблемы безопасности пищевых продуктов и нахождения в них всех необходимых для организма человека питательных веществ. Введение. Кабачки ценны тем, что в них содержатся действенные компоненты, необходимые для правильного питания человека. Они богаты минеральными солями, очень важными для обмена веществ в организме человека. В значительной степени удовлетворяют потребность организма в витаминах С, В, В2, В6, РР [1]. Не все знают, что кабачки легкоусвояемые, и хорошо влияют на пищеварение и здоровье кожи. Они богаты минеральными солями фосфора, калия, кальция и магния, очень важными для обмена веществ в организме человека. В животноводстве при скармливании кабачков у коров увеличиваются надои молока, у молодняка КРС и свиней - суточный прирост массы. Поэтому включение их в рацион питания благоприятно воздействует на весь организм[2]. Среди овощных культур кабачки (Cucurbita pepo var. giromontina) относятся к однолетним культурам, урожай которых убирают в течение вегетационного периода. Это травянистое растение рода Cucurbita, семейства Cucurbitaceae, разновидность тыквы обыкновенной (Cucurbita pepo). Плоды имеют продолговатую форму зелёного, жёлтого или белого цвета. Однако во время выращивания и в дальнейшем при ветеринарно-санитарной экспертизе выявляются болезни и пороки кабачков, которые приводят к снижению питательной ценности, сроков их хранения, а при употреблении в пищу некачественных плодов кабачков – к пищевым отравлениям. Цель данной работы – дать ветеринарно-санитарную оценку плодов кабачков при их болезнях и пороках. Для достижения намеченной цели были поставлены следующие задачи: •Провести органолептические, физико-химические и микробиологические исследования кабачков с различными пороками и болезнями. •Дать ветеринарно-санитарную оценку кабачков. Материалы и методы исследований. Материалом исследований были взяты кабачки, которые условно обозначены как партия 1 и партия 2. Для исследования кабачков на наличие болезней и пороков был взят образец аналогичный образцам партии №2(образец №3) Были проведены органолептические, физико-химические и микробиологические методы исследования. Результаты исследований и их обсуждение. Объектом исследования служили образцы № 1 и 2 из партий № 1 и 2 соответственно. Органолептические показатели представлены в таблице 1. Количественное содержание нитратов в образцах партии №2 превышает содержание нитратов в партии №1 на 16 мг/кг. Такое незначительное превышение связано возможно с тем что производитель партии №2 стремился быстрее вырастить свой урожай, поэтому внес больше нитратных удобрений в почву. Обе партии опытных образов соответствовали требованиям СанПиН 2.3.2.1078-01 «Гигиенические требования безопасности и пищевой ценности пищевых продуктов». При хранении опытного образца №3 был выявлен факт его порчи. Внешние признаки болезни – в первый период заболевания на кабачке наблюдалось образование мелких очаговых поражений чисто белого цвета размером от 1-2 211 Таблица 1 - Органолептические характеристики Наименование показателя Внешний вид Партия №1 Партия №2 Образец №1 Образец №2 Образец №1 Плоды продолговатой формы, свеПлоды продолговатой, слегка изогнутой жие, чистые, здоровые, не увядшие, у плодоножки формы, свежие, чистые технически спелые, с не огрубевшей здоровые, не увядшие, технически кожицей, гладкие, с плодоножкой, без спелые, с не огрубевшей кожицей, реизлишней внешней влажности, бристые, с плодоножкой, без излишней внешней влажности. Дефекты внешне- Плодоножка акПлодоножка акПлодоножка акПлодоножка аккуратно отрезана, куратно отрезана, куратно отрезана, куратно отрезана, го вида длиной 2 см., длиной 1,5 см. длиной 2,5 см., длиной 2 см. поповерхностные поверхностные поверхностные верхностные дедефекты незна- дефекты незначи- дефекты незна- фекты, в виде мночительны, в виде тельны, в виде не- чительны, в виде гочисленных немелких порезов глубоких вмятин и мелких порезов глубоких вмятин и кожицы, не затра- мелких порезов на кожицы, не затра- мелких порезов на гивающих мякоть кожице, не затра- гивающих мякоть кожице, не затрагигивающих мякоть вающих мякоть Запах и вкус Свойственный данному ботаническому сорту без постороннего запаха и привкуса Внутренне строе- Мякоть сочная, плотная, без пустот и трещин, без перезревших семян, семенное гнездо с недоразвитыми белыми семенами ние Размер плодов без плодоножки, см. 18 19,5 21 21,5 Масса плодов, г. 427 487 220 269 Рисунок 1 - Склеротинии на 3-е сутки мм в диаметре. При рассмотрении под лупой было обнаружено, что очаги порчи не что иное, как мицелий гриба. В результате проведенной бактериоскопии и анализа результатов мы определили, что заболевание вызвано грибом рода Sclerotinia . Отсутствие на образцах кабачков обеих партий яиц гельминтов и их личинок связано с 212 Рисунок 2 - Склеротинии на 6-е сутки тем что, при прохождении ветеринарно-санитарной экспертизы полученного урожая все кабачки, подозрительные на обсеменение гельминтами, проходят санитарную обработку. Кабачки обеих партий были выращены в местности, благополучной по паразитарным заболеваниям. Вследствие отсутствия возможности провести наблюдение за фазами роста кабачков в условиях выращивания, а также проанализировать возможные случаи заражения болезнями не только плодов кабачков, но и других частей растений. Для проведения исследования нами был использован плод кабачка (цуккини), который при хранении подвергся грибковой порче. Нами был произведен посев на дифференциально диагностическую питательную среду Сабуро. При росте культуры в чашке Петри мы наблюдали: обширный рост в виде нитей-гифов белого цвета. По культурально – морфологическим свойствам выросших колоний было определено, что возбудитель относится к роду Sclerotinia. При анализе показателей визуального осмотра очага заболевания на образце №3, проведенной бактериоскопии и результатов посева на пита- тельную среду, был идентифицирован гриб вида Sclerotinia sclerotiorum. Болезнь известна под названием белая гниль. Заключение. При органолептической оценке внешнего вида образцы из партии №2 имели на поверхности, более выраженные дефекты обусловлены транспортировкой. Показатели безопасности кабачков соответствовали требованиям СанПиН 2.3.2.1078-01 «Гигиенические требования безопасности и пищевой ценности пищевых продуктов». При хранении кабачков выявлены болезни под название белая гниль, обусловленная грибом вида Sclerotinia sclerotiorum. Данная продукция была утилизирована согласна Правил. Библиографический список: 1. Бедин Ф.П., Балан Е.Ф., Чумак Н.И. «Технология хранения растительного сырья. Физиологические, теплофизические и транспортные свойства» Научное пособие. – Одесса: Астропринт, 2002 г. 2. Граве Д. И., Михайлов В.С. «Резервы растительной пищи». – К.: Штиинца, 1996 г. 3. Ганиев М .М., Недорезков В.Д. «Защита овощей от болезней и вредите-лей: Справочник огородника».: Москва, «Колос», 2005 г., 184 с 4. ГОСТ Р 53084-08 «Кабачки свежие, реализуемые в розничной торговле. Технические условия» Введ. 2008-18-12. – М.: Изд-во стандартов. – 15 с. DISEASES AND FAULTS AND THEIR ZUCCHINI VETERINARY AND SANITARY ASSESSMENT Rybalko D.E., Aydarova E.P., Zabolotnykh M.V. Key words: Zucchini, disease and defects, party, white rot Currently, more urgent and proper diet, and exercise scientists and nutritionists this world solve food safety problems and finding them all the necessary for the human body of nutrients. 213 УДК 636.5.033 ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНЫЙ АНАЛИЗ ДИОКСИНОВ И ДИОКСИНОПОДОБНЫХ ВЕЩЕСТВ МЕТОДОМ DR.CALUX® В МЯСЕ ЦЫПЛЯТ-БРОЙЛЕРОВ Л.П. Сатюкова, кандидат ветеринарных наук, заведующая отделом ФГБУ Центральная научно-методическая ветеринарная лаборатория (ФГБУ ЦНМВЛ), тел. 8 (495) 700-01-37 Ключевые слова: диоксины и диоксиноподобные вещества, методы определения, скрининговый метод DrCalux®, влияние диоксинов на организм сельскохозяйственной птицы. Диоксины поражают большинство форм живой материи– от бактерий до теплокровных. Кумулятивные свойства делают каждое последующее поступление диоксинов и диоксиноподобных веществ в организм токсичнее предыдущего. Они проявляют высокую токсичность в малых дозах (минимальная токсическая доза для животных составляет 0,5 – 1 мкг/ кг массы тела). Превышение остаточных количеств диоксинов и диоксинопободных веществ неоднократно становилось причиной массовых отравлений диких и сельскохозяйствен­ных животных, человека, а так же выбраковки продукции животноводства. Введение. В настоящее время ограниченное число лабораторий проводит анализ на диоксины любой степени сложности, в частности, их количественное определение в различных матрицах (биологических жидкостях организма, объектах окружающей среды, кормах, продуктах растительного и животного происхождения и др.). Такие исследования связаны с большими методическими, техническими и материальными трудностями. Одним из современных методов является Dr.Calux®- скрининговый метод определения диоксинов и диоксинопободных веществ, предложенный голландскими учеными (2). Данный метод имеет ряд преимуществ перед другими, и с его помощью можно осуществлять контроль безопасности сельскохозяйственной продукции и продуктов питания. Ключевые методы определения диоксинов в различных объектах. При всем многообразии методы ана­лиза диоксинов и диоксинопободных веществ, включают ряд обязательных этапов: отбор и подготовку пробы, экстракционное извлечение, очистку эк­страктов от мешающих примесей био­генного и антропогенного происхожде­ния, хроматографическое разделение и масс-спектрометрическое определение. Сочетание газовой хроматографии высокого разре­шения с масс-спектрометрическим ана­лизом обеспечивает возможность опре­деления отдельных, наиболее токсичных 214 изомеров на уровне следовых количеств. Эти анализы трудоемки, продолжитель­ны и дороги. В данных методах информативное значение имеют факты выявления токсикантов каждого в отдельности. Суммарная оценка в TEQ (ToxicEquivalencyQuantity) производится в связи с тем, что в природу диоксины поступают в составе сложных смесей, а не в виде отдельных веществ (3,6). Материалы и методы. Объектом исследования служили клинически здоровые цыплята-бройлеры массой 1,8-2,2кг в возрасте 1,0-1,5 месяцев. Материалом для проведения исследований служила мышечная ткань цыплят-бройлеров данной группы. Протокол анализа. Исследование диоксинов по методу DrCalux® является достаточно новым и малоизвестным методом, однако число лабораторий, внедряющих его, растет. Причиной этому служат достоинства метода, а именно: доступность и простота, выполнение исследования в сжатые сроки, высокие производительность и чувствительность метода, использование доступных реагентов, исследование широчайшего спектра матриц (пищевые продукты, корма, сырье и т.д.). Результат анализа выдается в виде суммы токсических эквивалентов. Кроме того, метод позволяет рассчитать отдельно содержание диоксинов и ПХБ, что имеет большое значение, т.к. с 2006 года вступили в силу новые ПДК для диоксинов и ПХБ (1,2). Таблица 1 - Нормы содержания диоксинов и их аналогов в различных объектах Матрица Растительный корм (комбикорма) Корм животного происхождения Яйцо Птица (мясо) Птица (печень) Норма содержания диоксинов и диоксинподобных веществ, нг ТЭК ВОЗ/кг жира 1,25 – 1,5 3,0 5,0 3,0 10,0 Таблица 2 - Исследование мышечной ткани цыплят-бройлеров и кур № пробы Содержание диоксинов и ДПВ в мышечной ткани цыплят-бройлеров, нг ТЭК ВОЗ/кг жира M±m, нг ТЭК ВОЗ/кг жира, где n=9 N, нг ТЭК ВОЗ/кг жира 1 2 3 4 5 6 7 8 9 0,54 0,84 0,91 1,02 1,19 1,26 1,3 1,64 2,17 1,21±0,17* 3,00 *Статистически рассчитанный достоверный результат (p ≤0,05) Таблица 3 - Положительные пробы в мясе птицы Исследуемый объект Мясо птицы (бедро) Мясо птицы (грудка) Диоксины + ПХБ, нг ТЭК ВОЗ/кг жира Полученный результат Нормативное значение 3,68 3,0 4,10 3,0 Структура анализа включает в себя стандартный набор этапов: гомогенизация проб, экстракция, очистка, культивация клеток Calux®, экспонирование клеток диоксинами, измерение биолюминесценции, обработка результатов. Принцип метода: диоксины связываются в клетке Calux® с арилгидрокарбоновым рецептором (AhR), затем комплекс переносится в ядро клетки и взаимодействует со специфической последовательностью ДНК, что запускает процесс экспрессии генов фермента люциферазы. Затем, после освобождения люциферазы, путем лизирования клеток добавлением пигмента люциферина инициируется свечение люциферазы. С помощью прибора люминометра измеряется интенсивность люминесценции, которая пропорциональна содержанию диоксинов в исследуемой пробе. Разделение диоксинов и ПХБ. Метод DrCalux® позволяет отдельно рассчитать содержание в пробе диоксинов и ПХБ. Метод основан на различном хроматографическом поведении диоксинов и ПХБ в колонке с оксидом алюминия. Полученные элюенты испаряют в слабом токе азота, затем переносят в малые конические пробирки, чтобы в дальнейшем экспонировать клетки. Культивирование и поддержание клеток ® Calux . В методе Dr.Calux® используются генно-модифицированные клетки опухоли печени крысы со встроенным геном светлячка. Клетки культивируются в CO2-инкубаторе при 37оС с 5,0%-СО2и в условиях 100%-влажности. Для них используют среду альфа-МЕМ с добавлением глутамина и эмбриональной бычьей сыворотки (ЭБС). 215 После определения люминесценции ее останавливают раствором гидроксида натрия во избежание взаимных помех между лунками. После измерения люминесценции люминометром, подключенным к компьютеру, специальная программа подсчитывает концентрации диоксинов и диоксинподобных веществ и строит калибровочный график. Затем, пользуясь таблицей норм концентраций для каждого вида исследуемого материала (таблица 1), отбираются ложные и истинные результаты. В случае получения подозрительного результата и для подтверждения положительного результата, пробу необходимо переделать еще раз. Результаты выдаются в нг/кг жира (нг/л) или в пг/г (пг/мл). Предел обнаружения от 0 до 3 пмоль/лунка. Для исследования были взяты различные образцы мяса (мышечной ткани) цыплят-бройлеров, а также, проведена статистическая обработка результатов. Собственное исследование. Исследование проводили в мышечной ткани цыплят-бройлеров. В качестве объекта для исследования было взято 9 навесок массой 120 г (таблица 2) от цыплят-бройлеров разных возрастов. Большая часть проб мышечной ткани цыплят-бройлеров находилось в пределах допустимого уровня и имела отрицательный результат, т.е. количество диоксинов, выделенных из них, находилось в пределах нормы. Однако в двух образцах куриного мяса (бедро и грудка) было обнаружено превышение нормативного значения. Повторный анализ подтвердил повышенное содержание диоксинов и диоксиноподобных веществ в указанных пробах (таблица 3). Заключение. Экспериментальная апробация метода DrCalux® показала, что данный метод применим для количественного определения диоксинов и диоксиноподобных веществ в животных тканях и объектах окружающей среды с высокой точностью результатов измерения. Использование описанного метода позволяет наладить путь к мониторингу диоксинов и диоксиноподобных веществ в различных биологических объектах, что в данный моментцелесообразно и актуально для решения вопросов поддержания экологического равновесия в природе и сохранения здоровья человека. Библиографический список: 1. Галкин А. Биосистема для определения диоксинов в кормах / А. Галкин // Комбикорма. – 2011. №8. – С. 97-98. 2. Галкин А.,Бениш П. Диоксины в кормах. Риски для человека// Комбикорма. 2011. № 2. С. 64 – 67. 3. Желтов В.А. Особенности диагностики отравлений животных диоксинами /В.А. Желтов // Ветеринария. – 2002. - №4. - С. 35-38. 4. Желтов В.А. Токсичность 2,3,7,8-тетрахлордибензо-п-диоксина для сеотскохозяйственных животных /В.А. Желтов, А.Л. Лавров, Н.Г. Пименова // Токсикологический вестник. – 2004. - №1. – С. 30-34. 5. Сарапулова Г.И. Экологическая безопасность продуктов питания. Диоксины//ж. Безопасность жизнедеятельности.2005.№ 10.С. 28–30. 6. Тремасов М.Я. Диоксины: источники загрязнения, опасность, предупреждение отравлений / М.Я. Тремасов, В.А. Новиков // Ветеринария. – 2004. - №5. – С. 46-50. VETERINARY AND SANITARY ANALYSIS OF DIOXINS AND DIOXINLIKE SUBSTANCES BY DR. CALUX® IN MEAT OF BROILER CHICKENS L.P.Satyukova Keywords: dioxins and dioxin-like substances, hygiene cultivation, screening method Dr.Calux®, dioxins in meat of broiler chickens. Dioxins affect most forms of living matter - from bacteria to warm-blooded animals. Cumulative properties make each subsequent intake of dioxins and dioxin-like substances in the body more toxic than previous. They exhibit high toxicity at low doses (minimal toxic dose for animals is 0.5 - 1 mg / kg body weight). Excess residual amounts of dioxins and dioksin-like substances often become a cause of mass poisoning of wild and farm animals, humans, as well as culling of livestock products (3,4,5). 216 УДК 637.54 ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНАЯ ЭКСПЕРТИЗА ДИКИХ УТОК ПРИ САРКОЦИСТОЗЕ И.Г. Серегин, кандидат ветеринарных наук, профессор ФГБОУ ВО РГАУ-МСХА им. К.А. Тимирязева, тел. 8(499)479-02-32 С.Н. Золотухин, доктор биологических наук, профессор ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина», тел. 8(8422) 55-95-47 О.С. Волкова, магистрант ветеринарно-санитарной экспертзы ФГБОУ ВО РУДН, тел. 8(967)130-60-05 Ключевые слова: дикие утки, саркоцистоз, экстенсивность и интенсивность поражения, признаки болезни, товароведные показатели, органолептические свойства, ветеринарно-санитарная оценка мяса. Проведены исследования тушек диких уток с целью определения экстенсивности и интенсивности поражения саркоцистозом, изучены основные биологические свойства возбудителя болезни и признаки патологоанатомического проявления заболевания, определены товароведные показатели тушек и потребительские свойства мяса диких уток при поражении саркоцистозом. Актуальность темы. Среди природных богатств, обилием которых известна Россия, важное место в получении мяса и другого ценного сырья занимают дикие промысловые животные и пернатая дичь. Охота в нашей стране является одним из видов промысла, с помощью которого добывается мясо в объеме около 10% потребляемого в стране мясного сырья. Большая доля ценного и диетического мяса пернатой дичи приходится на промысел диких уток. Дикие утки включают 19 видов: серая утка, кряква, шилохвост, свиязь, широконоска, чирок, гоголь, нырковые утки, хохлатая чернеть, крохали и др. Живая масса большинства видов диких уток составляет 800-1500г, масса потрошеных тушек достигает 600-980 г. Другие виды водоплавающей птицы большого промыслового значения в качестве источника охотничьего мяса не имеют. Их добыча осуществляется обычно в виде частной охоты с собственным потреблением мяса. Вместе с тем, по данным охотников и промысловиков, численность диких уток в последние годы стало сокращаться. Причинами снижения популяций диких уток является не только экологическое ухудшение водоемов в местах выводков утят и возрастающий отстрел уток на путях их перелетов. На поголовье дикой птицы стало влиять также повышение эпизоотической напряженности по некоторым инфекционным и инвазионным заболеваниям. Одной из таких болезней пернатой дичи, с которой достаточно часто стали сталкиваться охотники и ветеринарные специалисты, является саркоцистоз. Саркоцистоз имеет определенное социальное значение, так как эта болезнь имеет широкое распространение возбудителя в природе, в том числе среди животных и птицы и эпидемическую напряженность в ряде регионов страны эта болезнь повышает. Саркоцистоз – это протозойное заболевание животных, птицы и человека, при котором у дефинитивных хозяев (собаки, кошки, дикие плотоядные животные, человек) поражается слизистая оболочка кишечника, у промежуточных (крупный рогатый скот, овцы, козы, свиньи, лошади, птица, человек) – мышечная ткань. Саркоцистозом заражаются все виды продуктивных сельскохозяйственных животных, собаки, кошки, волки, лисицы, мышевидные грызуны, домашняя и дикая птица. Имеются сообщения о поражении саркоцистозом рыбы и других гидробионтов. Человек может быть дефинитивным и промежуточным хозяином возбудителя саркоцистоза. Заражение человека чаще всего происходит при употреблении инвазированного мяса крупного рогатого скота или свиней, а также мяса зараженной домашней птицы и промыс- 217 ловой дичи. Из тканей человека в разных регионах выделены саркоцисты семи видов, которые являются патогенными для многих животных. Саркоцистоз у человека, как у промежуточного хозяина, может протекать в кишечной форме и с поражением скелетных мышц и мышц сердца. Многие исследователи считают саркоцистоз природно-очаговым заболеванием, при этом к резервуару возбудителя болезни относят диких плотоядных животных и грызунов. В природных очагах могут создаваться условия для заражения саркоцистозом дикой птицы. Саркоцистоз животных и птицы регистрируют во многих странах мира, в том числе в Российской Федерации. Экстенсивность саркоцистозной инвазии у сельскохозяйственных и диких животных в отдельных хозяйствах достигала 75-80%, и в некоторых очагах инвазии – до 80-100% обследованного поголовья. Согласно официальной ветеринарной отчетности, саркоцистоз у убойных животных за 2010-2012 гг. выявлялся в 12 областях Центрального федерального округа, в 8 областях Северо-Западного федерального округа, в 8 областях Приволжского федерального округа, в 3 областях Уральского федерального округа. Экстенсивность поражения животных в среднем составляла 0,01-4,2%. В Северо - Кавказском федеральном округе эту инвазию выявили во всех республиках и областях с экстенсивностью поражения овец до 80-100%, крупного рогатого скота – 75-90%, свиней – 25-35%. Животные заражаются саркоцистозом обычно в тех хозяйствах и населенных пунктах, где пораженные собаки и кошки (дефинитивные хозяева) находятся в свободном контакте с кормами и источниками водопоя для животных. Саркоцистозу были посвящены труды многих отечественных и зарубежных исследователей (Позов С.А., 1982,1984; Пасько С.Г., 1982; Вершинин И.И., 1982; Голубков В.И., 1980,1982; Пайер Т.В. с соавт, 2001; Богуш А.А. с соавт, 1974,1977; Yhosal S.B. с соавт, 1987, 1988 и др.). Однако, некоторые вопросы по саркоцистозу птицы остаются еще недостаточно изученными, так, например, в доступных литературных источниках нет данных по саркоцистозу диких промысловых уток, в частности по ветсанэкспертизе пернатой дичи, что определяет актуальность данной темы и задачи наших исследований. Методы исследования. Мы провели ветеринарный осмотр тушек уток, отстрелянных с целью выявления поражения их саркоцисто218 зом. Промысел проводился в весенний и осенний сезоны на территории шести областей Центральной России (Московская, Тверская, Тульская, Рязанская, Калужская, Владимирская). Тушки убитых диких уток в потрошеном виде и вместе с внутренними органами доставлялись в лабораторию для комплексного исследования в день отстрела. При осмотре тушек диких уток определяли вид, возраст, массу необработанной и потрошеной тушки , категорию упитанности. Дополнительно осматривали пищевод, диафрагму, сердце и другие органы обращали внимание на наличие саркоцист и сферу поражения. Для выявления саркоцист делали разрезы шейных, грудных и бедренных мышц, стенки миокарда, паренхимы других органов. Органолептическую оценку мяса осуществляли по 9-ти балловой шкале, разработанной ВНИИМП (1972). Лабораторный анализ мяса уток проводили общепринятыми методами в соответствии с правилами ветсанэкспертизы (1988) и СанПин, 3с2.1078-01(2002). Всего было исследовано 22 тушки диких уток, отстрелянных на разных водоемах в течение двух сезонов. Результаты исследования. В охотничью добычу попадали утки только двух видов - кряква и серая утка. По массе тушки, оперению и коже на лапках добытые селезни и утки были отнесены к взрослому поголовью. Данные ветеринарной отчетности и исследования отдельных авторов свидетельствуют, что из 10 известных видов возбудителя саркоцистоза наибольшее эпизоотическое значение у животных и птицы в обследуемых регионах имеют S.S. tenella, miescheriana и в отдельных очагах - hirsute, cruzi. Саркоцистоз птицы, как у промежуточных хозяев, чаще протекает в острой форме с воспалительным процессом пролиферативного характера мышечной ткани, где локализуется возбудитель болезни, а в сердце отмечаются признаки миокардита. Хроническое течение саркоцистоза сопровождается не только дистрофическими процессами, но и атрофией мышечных волокон в местах локализации саркоцист, что влияет на физическую активность птицы и способность своевременно улететь от опасности. Механизм заражения водоплавающей птицы саркоцистозом достаточно сложный и до сих пор еще мало изучен. Не определена эпизоотическая роль при этой болезни околоводных животных, рыбы, лягушек и других гидробионтов, не изучено значение других видов водоплавающей птицы в поддержании напряженности природных очагов саркоцистоза. Считается, что птицы, как и травоядные животные, заражаются через корма и воду, загрязненные отходами дефинитивных хозяев, которые выделяют с фекальными массами ооцисты и спороцисты возбудителя болезни. Через 3,5-4 месяца после заражения у водоплавающей птицы (утки, гуси) как и сухопутной (куры, индейки) чаще всего поражаются мышцы шеи, головы и сердца, у диких уток – достаточно часто отметается поражение грудных мышц. Величина и форма саркоцист у уток имеют различия в соответствии с видом возбудителя, места его локализации и стадии развития саркоцист. Возбудитель саркоцистоза имеет несколько стадий своего развития (спорогония, мерогония, гаметогония). Стадия мерогонии проходит в организме промежуточного хозяина (птицы и др.), а стадия гаметогонии и спорогонии – в организме дефинитивного хозяина (плотоядные животные). Ооцисты и спорозоиты попав с кормом или водой в организм птицы, обуславливают развитие в скелетной мускулатуре меронтов (первой генерации, затем второй) с мерозоитами и приобретают признаки поражения саркоцистозом. При нашем осмотре отстрелянных тушек диких уток саркоцистоз был выявлен в двух случаях, что составляет экстенсивность 9,09% от числа обследованных тушек. Интенсивность поражения была высокой или средней. Одна зараженная утка была отстреляна на территории Тверской области, вторая- на водоемах Владимирской области. Саркоцисты у первой утки в большом количестве выявляли в грудных мышцах и меньше – в мышцах шеи, у другой пораженной утки саркоцисты были обнаружены в небольшом количестве во многих скелетных мышцах. Величина саркоцист была не одинаковой, но в пределах размера просяного зерна. Саркоцисты в обоих случаях располагались вдоль мышечных волокон и имели вид серовато-желтоватых пузырчатых образований круглой или овальной формы. На месте развития саркоцист в мышцах выявляли ответную воспалительную реакцию, что, по-видимому, влияло на скорость полета уток и на более легкую их добычу для охотников. При интенсивном поражении уток саркоцистозом оперение отличалось матовым цветом и легче удалялось из кожи. При этом масса тушек пораженных уток не превышала 540-680 г, масса непораженных уток достигала 810-920г. Упитанность во всех случаях соответствовала показателям 2-й категории. При микроскопировании кусочков мышц больных уток, раздавленных между стеклами компрессориума, саркоцист в виде «мишеровых мешочков» нами не обнаружено. При органолептической оценке мяса пораженных саркоцистозом уток были отмечены более низкие показатели, по сравнению с мясом здоровых уток. По внешнему виду оно было хуже на 0,6-0,8 балла, по цвету на разрезе на 0,5-0,6 балла, по запаху – на 0,3-0,5, консистенции – 0,3-0,4, сочности – 0,3-0,4, по вкусу после варки – на 0,5-0,6 балла. Если мясо здоровых диких уток имело общую оценку как «хорошее» и «очень хорошее», то мясо пораженных цистицеркозом уток – только как «среднее». Отличия в отрицательную сторону мяса диких уток, пораженных саркоцистозом, от мяса уток, непораженных данной инвазией, было подтверждено лабораторными исследованиями. В таком мясе было отмечено повышенное содержание влаги (на 1,7 %), уменьшение количества белка и жира (на 0,7% и 1,9%), повышение содержания микроорганизмов (в 2,1-2,4 раза). В опытах in vitro на простейших (инфузориях) оно имело показатели безвредности и биологической ценности на 11,717,9% ниже, чем мясо здоровых уток. Заключение. Анализ проведенных нами исследований позволяет заключить, что саркоцистоз поражает не только домашних и диких животных, но и птицу, в том числе пернатую дичь. Экстенсивность поражения диких уток достигает 9,09% от числа отстрелянного и обследованного поголовья. Заболевания диких уток саркоцистозом обнаруживается визуально при разрезе и осмотре грудных и шейных мышц. В мышцах пораженных диких уток обнаруживается пузырчатые многочисленные образования серо-желтого цвета величиной с просяное зерно, которые имеют круглую или овальную форму. Саркоцистоз у диких уток снижает упитанность до 2-й категории и ниже, а органолептические показатели мяса – на 0,3-0,8 балла. Оно имеет повышенное содержание влаги, на 1,7% снижения уровня белка и жира на 0,7 и 1,9% увеличенную микробную контаминацию в 2,1-2,4 раза и пониженные на 11,7-12,9 % показатели безвредности. Широкое распространение болезни у птицы определяет необходимость вскрытия и осмотра у отстрелянных диких уток грудных мышц и мышц шеи с целью диагностики саркоцистоза. Предложения по ветеринарно-санитарной оценке мяса птицы при саркоцистозе необходимо включить в «Правила ветеринарного осмотра убойных животных и ветеринарно-санитарной экспертизы мяса и мясных продуктов» или в «Технический регламент на мясо и мясные продуты». В случаях 219 интенсивного поражения мышц саркоцистозом тушки и органы направляют на утилизацию или скармливают животным после проварки не менее 1 часа. Не допускается скармливание пораженного саркостозом сырого мяса птицы собакам, кошкам и другим плотоядным животным. Библиографический список: 1. Бейер Т.В. Современные представления о саркоспородиях (Sarcocystis, Eimeriidae, Sporozoa); морфофункциональная организация, жизненный цикл, практическое значение. Паразитологии. 1988Т.22, 3-13с. 2. Вершинин И.И. Саркоцистозы. Протозойные болезни сельскохозяйственных животных. Москва, 1982. 215-254 с. 3. Голубков В.И. Саркоцистоз птицы, МГУ «Птицеводство», 1978, №10, 44-45с. 4. Голубков В.И. Экпертиза мяса животных и птицы при саркоцистозе, журнал «Ветеринария», 1983, №3, 72-73с. 5. Сахно В.М. Саркоцистозы и качество мяса животных, журнал «Вестник ветеринарии», 2009, №49, 51-57с. 6. Серегин И.Г., Уша Б.В. Лабораторные методы в ветеринарно-санитарной экспертизе пищевого сырья и готовых продуктов, изд-во РАПП, 2008, 406с. VETERINARY AND SANITARY EXAMINATION OF WILD DUCKS IN SARCOCYSTIS I.G. Seregin, S.N. Zolotukhin, O.S.Volkovа Keywords: wild ducks, sarcocystis, incidence and intensity of destruction, disease symptoms, tovarovednyh indicators organoleptic properties, veterinary and sanitary assessment of meat. Investigations of carcasses of wild ducks in order to determine the intensity and extensiveness of defeat sarcocystis studied basic biological properties of pathogens and pathologic manifestations of the disease symptoms, defined tovarovednyh indicators carcasses and consumer properties of meat of wild ducks in the defeat sarcocystis. УДК 639.311 ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНАЯ ОЦЕНКА КАЧЕСТВА И БЕЗОПАСНОСТИ РЫБЫ И.Р. Смирнова, доктор ветеринарных наук, профессор, академик РАЕН, 8 (926) 181-89-20, tpop-rmat@mail.ru В.В. Зотов, аспирант, 8 (926) 548-97-00, valeriyzotov@mail.ru ФГБОУ ВПО «Московский государственный университет пищевых производств» Ключевые слова: рыбная промышленность, пищевой статус, качество и безопасность рыбы, основные показатели. Рыбная промышленность России представляет собой многоотраслевой, органически взаимосвязанный производственно-хозяйственный комплекс с развитой межотраслевой кооперацией и международными связями. В общем балансе производства отрасль производит около 20 % полноценного белка животного происхождения и выпускает более 2500 наименований пищевой продукции. 220 Россия – одно из ведущих рыбопромышленных государств и, несмотря на определенные сложности в рыбном хозяйстве, занимает 6 место в мире по добыче рыбы и нерыбных объектов после Китая, Японии, Перу, Чили и США Рыбное хозяйство России находится в неразрывной связи с другими отраслями и сегодня поставляет свою продукцию 58 отраслям. Важную роль рыбная отрасль играет в качестве поставщика кормовой продукции для животноводства и птицеводства, а также сырья и полуфабрикатов для медицинской, пищевой, легкой промышленности и других отраслей. Комплексная переработка рыбы позволяет использовать до одной трети массы сырья на производство рыбной муки и жира. При этом белок рыбной муки усваивается животными и птицей соответственно на 85 и 90 % (для сравнения: белок растительного происхождения усваивается только на 30-40%). Добавление кормовой муки в количестве 3-7 % позволяет получить сбалансированные корма; продолжительность откорма сокращается на 30-40%. Сегодня океаническое рыболовство обеспечивает 91 % общих объемов добычи гидробионтов в стране, однако по сравнению с 1990 г. объемы его уменьшились на 59 %. Во внутренних водоемах уловы сократились на 55 %. Снижение уловов вызвало уменьшение производства рыбной товарной продукции. Существенно снизилось производство непищевой продукции (в 4,6 раза), в том числе кормовой муки — в 4,5 раза[1, 2, 5, 9, 10]. Рыба — один из важнейших и многочисленных источников пищи, в том числе незаменимых компонентов питания. Ее используют для приготовления разнообразных пищевых продуктов, получения ряда ценных лечебных, кормовых и технических продуктов. Такое комплексное и разностороннее использование рыбы основано на том, что отдельные части ее тела имеют различное строение и химический состав. Размеры, химический состав и пищевая ценность рыбы зависят от ее вида, возраста, пола, физиологического состояния и условий обитания. В товароведной практике рыб классифицируют по семействам и видам. В зависимости от условий обитания и образа жизни рыбы делят на следующие виды: Морские рыбы обитают и нерестятся в морях и океанах. Различают рыбы пеллагические, обитающие в толще воды (сельдь, сардина, скумбрия, тунец и др.); придонные и донные, обитающие на дне или у дна (треска, камбала, пикша, палтус, морской окунь и др.). Рыбы подразделяют также на стайные (треска, атлантические и тихоокеанские сельди, килька, ставрида, сардина, кефаль и др.), временно стайные, объединяющиеся в стаи в период нереста (некоторые виды океанических рыб), и рассеянные, ведущие одиночный образ жизни (камбала, акулы). Пресноводные рыбы постоянно живут и нерестятся в пресной воде (стерлядь, налим, форель, толстолобик и др.). Проходные рыбы живут в морях, но на нерест уходят в реки (осетровые, кроме стерляди, лососевые и др.), или наоборот, живут в пресной воде, а для икрометания заходят в моря и океаны (угорь). Полупроходные рыбы обитают в опресненных участках морей перед устьями рек, а на нерест и зимовку уходят в верховья рек (сазан, судак, сом). Рыбу характеризуют по следующим признакам: - по размеру или массе — крупная, средняя, мелкая [4, 6, 7]; - по сезонам (времени) лова — весеннего, весенне-летнего, летнего, летне-осеннего, осеннего, зимнего лова; - по физиологическому состоянию — питающаяся, жирующая или нагульная, преднерестовая, отнерестившаяся; - по упитанности, судя по внешнему виду рыбы, — хорошо упитанная, средней упитанности, тощая; - по содержанию жира в мясе (в момент лова) — нежирная до 2 % жира (тресковые, окуневые, щука и др.); средне жирная — до 8 % жира (зубатка полосатая, зубатка пятнистая, карповые, некоторые лососевые, камбаловые и др.); жирная — от 8 до 15 % жира (осетровые, лососевые и др.); очень жирная — более 18 % жира (угорь, минога, сельди и др.); - по содержанию белка условно подразделяют на рыбу с низким количеством белка — от 13 до 16 % (мойва, минога, макрос); рыбу со средним количеством белка — от 17 до 20 % (салака, сардина, севрюга, сельди, сиг, хариус, щука и др.); рыбу с высоким содержанием белка — от 21 до 23 % (кета, тунец, горбуша, семга и др.); - по половой принадлежности — самцы и самки; - по характеру питания — хищная (поедающая других рыб); питающаяся планктоном или бентосом; травоядная; - по районам обитания и добычи — например, лещ каспийский, аральский, азовский; 221 - по способам лова — траловая рыба (добываемая тралом), сетная, неводная. Все эти признаки в той или иной мере характеризуют пищевые достоинства рыбы, ее возможную стойкость при хранении и пригодность для выработки различных видов рыбной продукции. В зависимости от энергетической ценности рыбу и рыбные продукты условно можно разделить на три группы: высоко-, средне- и низкокалорийные. Энергетическая ценность рыбопродуктов обусловлена компонентным составом и зависит от ЭЦ исходного сырья, количества вводимых добавок и других факторов. По сравнению с мясом теплокровных (убойных) животных рыба характеризуется более сбалансированным соотношением аминокислот, необходимых организму человека, особенно растущему. Поэтому рыба является биологически полноценным продуктом питания, так как она служит источником основных питательных веществ, необходимых для поддержания гомеостаза. Рыба и рыбопродукты имеют различную биологическую ценность. Например, рыба океанического промысла (анчоусовые, камбаловые, килька, окунь морской и др.) содержит несколько меньше витаминов, чем пресноводная рыба (сом, карась, лещ), однако энергетическая ценность морских рыб этих же видов выше (85220 ккал), чем пресноводных (84-115 ккал), что обусловлено присутствием энергоемких компонентов. Рыба содержит большое количество полиненасыщенных жирных кислот (ПНЖК). Суммарное содержание этих кислот в рыбе составляет 0,4-4,3 %. В рыбе и рыбопродуктах в большом количестве содержатся физиологически активные вещества, формирующие биологическую полноценность рыбы и рыбопродуктов с точки зрения формирования пластического резерва микронутриентов для обеспечения важнейших физиологических функций организма человека. Поэтому все вышеуказанные вещества в рыбе и рыбопродуктах должны находиться в сбалансированном соотношении в соответствии с требованиями современной науки о питании. Химический состав мяса рыбы не постоянен и зависит от ее вида, возраста, пола, физиологического состояния, места обитания, времени и места вылова. Чем старше рыба, тем больше жира и меньше воды содержится в ее мясе, и наоборот. 222 При истощении рыбы во время преднерестовых миграций и нереста содержание жира в мясе уменьшается, а воды — увеличивается; при откорме рыбы после нереста жирность мяса возрастает, а содержание воды в нем соответственно понижается. Рыбы, обитающие в богатых кормом водоемах, имеют, как правило, более жирное мясо, чем обитающие в водоемах, бедных кормом [3, 8, 9, 11]. Различные вещества, входящие в состав рыбы, распределены в ее теле неравномерно. Как правило, мышечная ткань содержит значительно больше воды и гораздо меньше минеральных веществ, чем кости, плавники и чешуя. Весьма большие различия имеются в распределении жира. У одних рыб (осетровых, лососевых, сельдевых) жир находится преимущественно в мясе — в жировой ткани, располагающейся в миотомах между мышечными волокнами или в подкожном слое. У других рыб (в частности у камбал) жир сосредоточен главным образом в околокостной соединительной ткани (у позвоночника, основания плавников и головных костей). Наконец, у некоторых рыб основная масса жира заключена в брюшной полости — в облегающих внутренности жировых отложениях (судак, морской окунь) или отдельных внутренних органах, в частности в печени (тресковые, акулы, скаты). Имеется различие в общем содержании и соотношении количества белковых и небелковых азотистых веществ в мясе рыб разных классов — костистых и хрящевых. У костистых рыб в мясе содержится 2,0-3,6 % азота (преимущественно 2,7-3,2 %), причем большая часть его — от 80 до 92 % (в среднем 85 %) — заключена в белках (белковый азот), а остальные 8-20 % (в среднем 15 %) приходятся на долю небелковых соединений (небелковый азот). У хрящевых рыб (акулы, скаты) общее количество азота в мясе выше и достигает 3,5-4,0 %, а иногда и 5 %, но при этом только 60—65 % всего азота приходится на долю белков, а 35-40 % (иногда до 50 %) — на небелковые вещества. Знание состава и свойств азотистых веществ имеет очень важное практическое значение, поскольку вкус, запах и консистенция мяса рыбы, подверженность рыбы действию микроорганизмов и быстрая порча при хранении, а также другие технологические свойства зависят от содержания и количественного соотношения отдельных белковых и небелковых веществ. В состав мяса рыбы, входят в основном простые белки, причем преимущественно белки типа глобулинов.Наряду с простыми белками в мясе рыбы находятся в небольшом количестве различные сложные белки — нуклеопротеиды, липопротеиды, гликопротеиды (мукопротеиды), хромопротеиды (гемоглобин, миоглобин), а также специфические белки — ферменты. Наиболее важным из всех мышечных белков является миозин благодаря количественному преобладанию (25-30 % всех мышечных белков) и особым биологическим свойствам — наличию ферментной (АТФ-азной) активности. Содержание наиболее важных аминокислот в белковых веществах мяса рыб следующее, %: аланин — 5,2-7,5; аргинин — 2,6-9,6; аспарагиновая кислота — 6,2-11,8; лизин — 4,1-14,4; валин — 0,6-9,4; глицин (гликокол) — 1,0-5,6; гистидин — 1,2-5,7; глутаминовая кислота — 5,9-16,6; изолейцин — 2,6-7,7; лейцин — 3,9-18,0; метионин — 1,5-3,7; пролин — 3,0-7,1; серин — 2,5-5,4; тирозин — 1,3-5,0; треонин — 0,6-6,2; триптофан — 0,4-1,4; фенилаланин — 1,9-14,8. Содержание отдельных аминокислот меняется в зависимости от вида рыбы и ее физиологического состояния (времени лова). Состав жирных кислот, заключенных в жире разных видов рыб, не идентичен и может весьма сильно отличаться. Количество насыщенных кислот в жире мяса разных рыб составляет от 17 до 30 %, а ненасыщенных — соответственно 70-83 % от общей массы всех жирных кислот. Наиболее распространенным в тканях рыбы и других животных стерином является холестерин (холестерол).Холестерин обнаружен в мясе рыб в количествах от 0,045 до 0,15 % (в том числе свободного холестерина 0,023-0,092 %). Каротиноиды (ксантофиллы) — тараксангин, астаксантин и лютеин — являются веществами, придающими жиру рыб окраску от светло-желтой до красной (у лососевых рыб). В жире сардины найден также хлорофилл, поэтому он имеет зеленоватый оттенок Каротиноиды содержатся преимущественно в нижнем пигментированном слое кожи (дерме), подкожной клетчатке (субкутисе) и покрывающем мышцы слое жира, причем в основном в спинной части рыбы. Они могут быть в свободном состоянии, а также в связи с белками. Вследствие высокой ненасыщенности жиры рыб легко подвергаются окислению и полимеризации, что имеет очень большое значение при обработке рыбы и хранении рыбных продуктов (мороженых, соленых, вяленых и сушеных). Таким образом, рыба является высокоценным в пищевом отношении продуктом питания, что обусловлено содержащимися в ней комплексами питательных веществ, в т. ч. биологически активных веществ (БАВ). Поэтому использование рыбы и рыбных продуктов в пищу существенно улучшает структуру питания и способствует повышению качества жизни населения. Более половины массы тела рыбы составляет вода, причем количество ее в разных случаях может довольно сильно меняться — от 50 до 85 %, т. е. примерно в 1,7 раза. Содержание азотистых веществ в теле рыбы относительно постоянно и составляет 16-20 % (меняется в среднем в 1,2 раза). Наибольшие колебания наблюдаются в содержании жира, количество которого в теле рыб может быть от 2 до 30 %, т. е. изменяется практически в 15 раз. Содержание минеральных веществ варьирует от 2,5 до 4,5 %, т. е. меняется в среднем в 1,8 раза. Характерная особенность химического состава рыб — наличие определенной взаимосвязи между содержанием жира и воды: чем больше содержание жира в рыбе, тем меньше содержание воды, и наоборот. Суммарное содержание воды и жира в теле рыбы — сравнительно постоянная величина, в среднем 78-79 % (в отдельных случаях наблюдаются колебания в пределах 77-81 %). Таким образом, рыба является высокоценным в пищевом отношении продуктом питания, что обусловлено содержащимися в ней комплексами питательных веществ, в т. ч. биологически активных веществ (БАВ). Поэтому использование рыбы и рыбных продуктов в пищу существенно улучшает структуру питания и способствует повышению качества жизни населения [3, 9]. Библиографический список: 1. Александрова Е.Н. Технолого-экономические аспекты, определяющие успешность развития рыбоводства в многоотраслевых сельхозпредприятиях // Рыбоводное освоение водоёмов комплексного назначения. Сб.статей, М., 1990. С.161-166. 2. Багров А.М., Серветник Г.Е., Новоженин Н.П. Товарное рыбоводство (раздел 7.8) // Концепция-прогноз развития животноводства в России до 2010 г. ЦНСХб, 2002 - 128 с. – 2001. С. 101-104. 223 3. Бахтиярова З.Г. Ветеринарно-санитарная экспертиза прудовых рыб // Тезисы докл. Всесоюзной научной конференции «Совершенствование ветеринарно-санитарной экспертизы продуктов животноводства и повышение уровня гигиены производства в перерабатывающей промышленности», 4-6 октября 1988. Казань. С. 129. 4. Белов В.С., Федяев В.Е. Товарное рыбоводство СССР. Москва, 1992. 5. Виноградов В.К. Рыбоводство России; перспективы развития «Рыбоводство и рыболовство», 1994, №2. С. 9-11. 6. ГОСТ 1368-2003. Рыба. Длина и масса. (введен Постановлением Госстандарта РФ от 27.01.2004 N 36-ст) 7. ГОСТ 24896-81. Рыба живая. Технические условия. 8. Дронова В.В. Сельскохозяйственное рыбоводство: пути повышения эффективности // Рыбоводство. 1987. №4. С. 2-4. 9. Позняковский В.М., Рязанова О.А., Каленик Т.К., Дацун В.М. Экспертиза рыбы, рыбопродуктов и нерыбных объектов водного промысла. Качество и безопасность [Текст]: учеб.-справ. пособие для вузов; под общ. ред. В.М. Позняковского. – Новосибирск: Сиб. унив. изд-во, 2005. – 311 с., ил. – (Экспертиза пищевых продуктов и продовольственного сырья). 10. Серветник Г.Е., Новоженин Н.П. Сельскохозяйственное рыбоводство России: состояние, перспективы развития // Вестник Россельхозакадемии, 2002 -№4. С.28-30. 11. Смирнова И.Р., Субботина Ю.М., Корягина Н.Ю., Пронина Г.И. Сельскохозяйственные водоемы как резерв производства товарной рыбы. Здоровое животное - безопасная пища - здоровый человек: материалы международной конференции. (Москва, Моск. гос. ун-т прикладной биотехнологии). М.: МГУПБ, 2002. С. 115-116. VETERINARY-SANITARY QUALITY AND SAFETY EVALUATION OF FISH I.R. Smirnova, V.V. Zotov Key words: fishing industry, nutritional status, quality and safety offish, main indicators. Russianfishing industryis adiversified, organically interrelatedproductionand economic complexwith a developedintersectoral cooperationandinternational relations. In the general balance ofproduction the industry producesabout 20% of complete animal proteinandproducesmore than 2,500items offood. 224 УДК 63.639.4.09 ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНАЯ ОЦЕНКА И ПАРАЗИТОЛОГИЧЕСКИЙ КОНТРОЛЬ ВОДОЕМОВ ЦЕНТРАЛЬНОГО РЕГИОНА РОССИИ И.Р. Смирнова, доктор ветеринарных наук, профессор, академик РАЕН, 8 (926) 181-89-20, tpop-rmat@mail.ru В.В. Зотов, аспирант, 8 (926) 548-97-00, valeriyzotov@mail.ru Р.А. Крюковский, Г.М. Крюковская, Н.Ю. Сысоева, Г.Л. Верховская ФГБОУ ВПО «Московский государственный университет пищевых производств» Ключевые слова: паразитофауна, моллюски, церкарии, метацеркарии. Статья посвящена оценке экологического состояния природного проточного озера. В связи с большой антропогенной нагрузкой происходит нарушение сбалансированной структуры биоценоза, в том числе и паразитарной компоненты. Для контроля окружающей среды использованы пресноводные моллюски как индикаторы паразитарного загрязнения. Получены данные о зараженности моллюсков возбудителями паразитозов. Введение. Охрана окружающей среды от загрязнения, в том числе и биологически инвазионного материала, является одной из актуальных проблем современности. Она находится в центре внимания государств, различных международных организаций, ученых, практических работников ветеринарии и здравоохранения всего мира. Для оценки экологической ситуации проводится мониторинг окружающей природной среды, который представляет собой комплексную систему наблюдений с целью оценки и прогноза изменения отдельных ее компонентов под влиянием воздействий, предупреждение о создавшихся критических ситуациях, вредных или опасных для здоровья людей, животных и других живых организмов и их сообществ [1]. В последние годы отмечается ухудшение экологической ситуации, связанное с интенсивной антропогенной нагрузкой на природу, что негативно сказывается на качественном состоянии не только водоемов, являющихся источником питьевого водоснабжения, но и почвы, растительности и других объектов внешней среды. Следует отметить, что загрязнение водных экосистем представляет собой серьезную опасность для здоровья человека. Источники загрязнения водоёмов различны. Поэтому проблема сохранения безопасности водных объектов, развитие и совершенствование методов, технологий, обеспечивающих объективную оценку состояния водных экосистем актуальна и значима. В природных экосистемах, в результате интенсивной урбанизации, наблюдается про- цесс изменения составляющих их компонентов. Особенно это становится заметных в водных экосистемах, которые являются местом аккумуляции последствий большинства антропогенных факторов. Происходит нарушение сбалансированной структуры их биоценозов, в том числе и паразитарной компоненты, которая является неотъемлемой частью любого биоценоза. Разработка и апробация методик, позволяющих оценивать экологическое состояние природных водоемов, в связи с большой антропогенной нагрузкой, испытываемой природными комплексами в последнее время, становится все более актуальной. Так как все компоненты природы тесно и неразрывно взаимосвязаны между собой, то нарушения одного компонента вызывает изменение состояния всех остальных. Загрязнение сточными водами приводит к возникновению биогенные мутаций. Из водоемов исчезают многие виды рыбы, а которые остаются - непригодны в пищу. Значительно скудеют флора и фауна водоемов. Эвтофикация воды вызывает, так называемое цветение, изменяется химический состав воды, повышается содержание азота, фосфора и хлорсодержащих веществ. Мир организмов, населяющих водные пространства, очень разнообразен. Каждому водоему присуща своя фауна и флора. Организмы, населяющие водоем, характеризуют его загрязнение и протекающие в нем процессы. Всякое загрязнение оказывает повреждающее действие на отдельные популяции организмов, биоценозы или, в целом на экосистему водоема. При этом 225 биологические методы в оценке последствий загрязнений играют решающую роль, в то время как химические или физические методы обнаруживают, в лучшем случае, наличие загрязнений, но не их последствия. Результаты биологического анализа качества воды свидетельствуют, что начинаются изменения в видовом составе и в численности организмов водного биоценоза. Это является сигналом надвигающегося неблагополучия в состоянии водоема еще до того, как концентрации отдельных химических соединений достигли или превысили уровни ПДК. Одним из показателей биологической безопасности водоема естественного происхождения является определение видового состава природных объектов, обитающих в водоеме, стадии их развития и степень контакта с природной средой [3, 4, 5]. Каждому виду для нормального существования необходимы в определенном сочетании физико-химические (pH, газовый режим, температура, содержание солей) и биологические факторы. В связи с этим организмы, населяющие водоемы, являются своего рода индикаторами, т. е. показателями вида и характера загрязнений. Одним из таких индикаторных организмов являются брюхоногое моллюски. Из всех таксонов макрозообентоса именно моллюски, в том числе и брюхоногие, широко распространены в континентальных водоемах, являются довольно крупными организмами, имеют прочный наружный скелет, хорошо сохраняющийся при отмирании, поэтому использование этой группы животных для биоиндикационных целей весьма выгодно в практическом отношении. Целью наших исследований было определение биологической безопасности озера Жижицкое Псковской области методом мониторинга паразитофауны моллюсков. Для решения поставленной цели нами были решены следующие задача: изучить степень зараженности моллюсков различными видами гельминтов. Материалы и методы исследований. Исследование проводили на озере Жижицкое Псковской области, Куньинского района. Материалом для исследования служили моллюски, собранные в летний период 2014 г. в прибрежной части водоема. Моллюсков собирали при помощи скребка на водной растительности вдоль береговой линии, имеющей различную степень антропогенной нагрузки. Каждая проба содержала по 3-5 экземпляров половозрелых животных (40-80 мм) с общим весом без раковин не менее 50 г. Отобранных моллюсков поме226 щали на фильтровальную бумагу и после удаления раковин заворачивали в фольгу или кальку. Раковины собирали и анализировали отдельно. Всего было исследовано 135 экземпляров. Родовую и видовую принадлежности моллюсков определяли по морфологическим признакам по работам А.П. Стадниченко (2004), и Н.Д. Кругловой (2005). При идентификации видовой принадлежности организмов использовались определительные таблицы Старобогатова Я.И. (1977). При исследовании моллюсков на наличие личинок гельминтов проводили фазово-контрастную микроскопию, смыва с подошвы, мантийной полости и компрессионное исследование гепатопанкриаса. Для сохранения фиксировали 10 %-ным раствором формалина. Статистическую обработку результатов проводили общепринятыми методами. Результаты исследований. Псковская область насчитывает более 13 крупных озер, площадью более 10 км2, в числе которых и озеро Жижицкое, которые имеют рыбохозяйственное назначение. В этих водоёмах обитают различные виды животных, птиц, рыб. Несмотря на то, что Псковская область среди областей северо-запада России считается наиболее благоприятной в экологическом отношении, нарушение и загрязнение природной среды представляют серьёзную опасность для здоровья населения. Жижицкое озеро - проточное расположено в Куньинском районе Псковской области, площадь 60 км2. Озеро достаточно мелкое, максимальная глубина - 7,8 м, средняя - 3,2 м, образовалось в результате отступления ледника. Берега озера пологие, частично заболоченные. На дне озера скапливается ил - сапропель, вдоль водной кромки распространен камыш, тростник, рогоз и хвощ. В прибрежных сосновых и смешанных лесах водятся кабаны, лоси, косули, зайцы. Встречаются здесь белки, куницы, енотовидные собаки. У воды успешно акклиматизировались бобры, выдры и ондатры. Из водоплавающей птицы на озере селятся утки, на болотистых местах – вальдшнепы. Луговая дичь - перепела, куропатки. Так же встречаются глухари, тетерева, рябчики, коростель (погоныши). Озеро Жижицкое во все времена славилось рыбой. Среди водоемов Псковской области здесь самый разнообразный видовой состав рыб. В нем обитает около 25 видов пресноводных рыб: судак, снеток, лещ, уклея, густера, плотва, щука, красноперка, окунь, ерш, угорь, линь, карась, язь, синец, налим, пескарь. Жерех и сом не встречается. Для жереха нет быстрины, а для сома нет достаточной глубины. Потенциальная промысловая продукция оценивается приблизительно в 1000 т, однако в последние годы промысловые уловы незначительны — 20-50 т [3]. Охота, рыбалка и живописные места Жижицкого озера привлекают туристов. За последние пять лет в данном районе открываются новые места отдыха по разным направлениям досуга, что привело к увеличению антропогенной нагрузки. Нами было собрано 135 моллюсков. Видовой состав собранных моллюсков озера Жижицкое представлен брюхоногими моллюсками семейства Lymnaeidae, рода Lymnaeа, их довольно много в пробе, взятой на каждой площадке (до 24 особи), а также семейством Planorbidae. При анализе результатов паразитологических исследований зараженности моллюсков личинками гельминтов нами установлено, что 127 моллюсков (94,07 % случаев) заражены церкариями и метацеркариями трематод семейства Echinoctomatidae. Экстенсивность моноинвазии моллюсков вида Lymnaea stagnalis церкариями трематод семейства Echinoctomatidae составила 28,34 %. Церкарии трематод семейства Echinoctomatidae крупные, имеют собственно тело и хвостик, подвижно сочлененный с телом. Длина тела соответствует величине хвостика. Моллюски вида Lymnaea stagnalis в 15,74 % случаев заражены метацеркариями трематод семейства Echinoctomatidae, которые характеризуются многими чертами строения, свойственными взрослым паразитам данного вида. Метацеркарии имеют вооруженный шипиками адоральный диск, брюшная присоска крупная. В 10,23 % случаев в моллюсках Lymnaea stagnalis мы обнаруживали личинки трематод на разных стадиях развития. Это связано с тем, что церкарии Echinoctomatidae могут внедряться снова в моллюсков и использовать их в виде второго промежуточного хозяина (Коробов О.И.). Для моллюсков Lymnaea truncatula отмечали более низкую зараженность личинками трематод Echinoctomatidae, при этом церкарии трематод семейства Echinoctomatidae обнаруживали у них в 24,41 % случаев (рис. 3), а метацеркарии – в 8,66 % случаев. В моллюсках семейства Planorbidae мы обнаруживали церкарии трематод Diplostomum sp. семейства Diplostomatidae в 3,14 % случаев, метацеркарии – в 6,29 % случаев. Тело метацеркария прозрачное. На середине тела имеется брюшная присоска, возле нее железистый фиксаторный орган Бранлеса. От ротового отверстия отходит короткий пищевод, разветвляющийся на 2 кишечных ствола, которые на заднем конце тела соединяются в один слепо заканчивающийся ствол. По результатам наших исследований инвазированность моллюсков Lymnaea stagnalis личинками трематод семейства Echinoctomatidae была выше, чем инвазированность моллюсков Lymnaea truncatula. При этом инвазированность лимненид церкариями в августе месяце была выше инвазированности метацеркариями в раза. Это связано с сезонными колебаниями развития личинок трематод. Пик зараженности моллюсков церкариями приходится на август, а осенью возрастает инвазированность моллюсков метацеркариями, которые могут в них зимовать. По данным Коробова О.И. для церкарий пик инвазированности приходится на летние месяцы, метацеркарий характерно два пика инвазии лимнеид – весенний и осенний. Следует отметить, что круг окончательных хозяев у трематод достаточно широк и включает как домашних, так и многих диких животных. Это в конечном итоге обусловливает природно-очаговое распространение инвазий, а отсюда и трудности в организации высокоэффективных профилактических мероприятий. Инвазированность моллюсков личинками трематод позволяет сделать вывод, что озеро Жижицкое является неблагополучным по паразитарным болезням водоплавающей и рыбоядной птицы, которая является основным хозяином выявленных трематод. Результаты наших исследований позволяют предложить использовать моллюсков для оценки паразитологического неблагополучия естественных водоемов как ббиоиндикаторы. Заключение. Брюхоногие моллюски встречаются почти во всех природных водоемах, существующих хотя бы несколько недель в году. Но их видовой состав, разнообразие и обилие в разных местах резко различаются. Поэтому как биоиндикаторы брюхоногие моллюски обладают рядом преимуществ среди других групп макрозообентоса, прежде всего из-за богатства таксономического состава, относительной простоты взятия проб, малоподвижного образа жизни. Как правило, наиболее высокой численности моллюски достигают в прибрежной полосе шириной от 1 до 10 метров (в среднем - 5 м). Именно эти мелководные участки водоемов представляют наибольшую опасность в отношении риска за- 227 ражения гельминтозами. Пресноводные озера являются биотопами постоянного типа, которые повышают энзоотичность и эпизоотичность паразитарных систем трематодоза на стадиях яйца, инвазионной личинки и имаго. Наиболее инвазированным видом в малакофауне озера Жижицкое Псковской области являются Lymnaea stagnalis, гельминтофауна которых представлена представителями семейства Echinoctomatidae и Diplostomum sp. Библиографический список: 1. Коробов О. И. Фауна и эколого-биологические особенности личинок трематод моллюсков рода lymnaea водоемов омской области, Омск, ГОУ ВПО «Омский государственный педагогический университет», 2010. 2. Круглов, Н. Д. Моллюски семейства Lymnaeidae Европы и Северной Азии/Н.Д. Круглов. – Смоленск, 2005. – 507 с. 3. Крюковский Р.А. К вопросу биологической безопасности озера Жижицкое Псковской области / А.А. Крюковский, Н.Ю. Сысоева, Г.Л. Верховская, Г.М. Крюковская Международный научно-исследовательский журнал, № 02(33) – С. 58 – 59. 4. Смирнова И.Р. Санитарно-гигиенические и экологическоие основы управления современными продукционными процессами в водных экосистемах / И.Р. Смирнова, П.Т. Садеков, А.В. Медников, А.М. Михалев, // «Российский журнал «Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии», №1(19) – С. 67-69. 5. Смирнова И.Р. Управление биологической продуктивности прудовых экосистем / И.Р. Смирнова, П.Т. Садеков, А.М. Михалев, А.В. Медников, Д.Е. Зазнобин // «Российский журнал «Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии», №1(19) – С. 67-69. 6. Стадниченко, А. П. Прудовиковые и чашечковые/ А. П. Стадниченко. - Киев: Центр учебной литературы, 2004. – 327 с. 7. Старобогатов, Я. И. Биологическое разнообразие моллюсков континентальных водоемов и состояние его изученности в Российской Федерации и соседних независимых государствах // Биоразнообразие: Степень таксономической изученности/ Я.И. Старобогатов. – М.: Наука, 1994. – С. 60-65. VETERINARY-SANITARY ASSESSMENT AND PARASITOLOGICAL CONTROL OF WATER BODIES OF CENTRAL REGION OF RUSSIA I.R.Smirnova, V.V.Zotov, R.A.Kryukovskii, G.M.Krasouskaya, N.Y.Sysoev, G.L.Verkhovskaya Key words: parasitofauna, shellfish, cercariae, metacercariae The article is devoted to assessing the ecological status of the natural flow of the lake. Due to the high anthropogenic load is a violation of a balanced structure of biocenosis, including parasitic components. Freshwater molluscs were used as indicators of parasitic contamination for environmental monitoring. The data about the contamination of shellfish pathogens parasitosis were obtained. 228 УДК 628.312:574,5 ОСОБЕННОСТИ ОЧИСТКИ И САНАЦИИ СТОЧНЫХ ВОД В БОКС-ПРУДАХ Ю.М. Субботина, кандидат сельскохозяйственных наук, доцент, РГСУ, Москва И.Р. Смирнова профессор д.в.н. МГУПП, Москва mu_beard@mail.ru, toop-rmat@mail.ru Ключевые слова: оксидационные, стабилизационные пруды, бессточные пруды, сточные воды, микроводоросли, альголизация, обеззараживание, санация. Аннотация: в статье рассматривается проблема очистки и санации сточных вод в специальных прудах, находящихся на контактном режиме эксплуатации, основной особенностью таких прудов, является контактный режим эксплуатации и внесение альгологического комплекса микроводорослей. Актуальность. В настоящее время обращается большое внимание на охрану чистоты водоемов и водотоков. Разрабатываются мероприятия по охране поверхностных и подземных вод от загрязнения сточными водами. Однако если на крупные объемы сточных вод обращают внимание правозащитные и государственные предприятия, то на стоки не больших объемов, часто не обращают должного внимания. Небольшие поселки и малые города в большинстве случаев сбрасывают свои неочищенные сточные воды в те реки, на берегах которых они расположены. Проблема «чистой воды» в нашей стране стала проблемой номер один. К решению ее привлечено внимание ученых и специалистов многих стран мира и международных организаций. Цель исследований. Охарактеризовать особенности очистки сточных вод в БОКС прудах. Новизна и приоритет разработок в изучаемой области, защищены патентом и авторским свидетельством на изобретение РФ. Разработан универсальный способ очистки и санации сточных вод с помощью микроценозов, бактериоценозов. Данный метод апробирован и внедрен в хозяйствах не только Московской области, но и в Центрально черноземном районе России. Результаты исследований. Очистные или биологические пруды получают разные наименования в разных странах и у разных авторов. Термин биологические пруды в иностранной литературе не встречается. В США широко употребляется термин «лагуна», который обычно относят к мелководным прудам, заполненным городской сточной жидкостью. В последние годы этот термин вытесняется все чаще используемым на- званием стабилизационные пруды (stabilization ponds), которое употребляется в широком смысле и охватывает пруды, заполняемые как городскими, так и производственными сточными водами, как аэробные, так и; анаэробные. [2,3,7]. Очистные пруды могут применяться и фактически применяются в разных вариантах в отношении проточности, глубины и т. д., что дает большие возможности подобрать наиболее подходящий для данных конкретных условий способ их эксплуатации [3,6,7]. Пруды, служащие очистным сооружением, обычно непрерывно принимают сток, но возможен и другой способ их эксплуатации, когда они периодически заполняются и по истечении некоторого времени опорожняются. В первом случае пруды могут иметь поверхностный отток, т. е. быть проточными, или же, когда поступление сточных вод компенсируется фильтрацией и испарением, - бессточными. Периодически заполняемые и спускаемые пруды, в отличие от бессточных прудов первого типа, называют контактными. Контактные пруды имеют преимущество в том, что устраняют возможность какого-либо смешения поступающих стоков со спускаемыми, прошедшими очистку водами. Однако их эксплуатация более сложна в связи с тем, что нужно располагать значительным количеством прудов, по меньшей мере равным числу дней пребывания в них жидкости, и регулировать заполнение и опорожнение прудов. В подавляющем большинстве случаев применяются пруды с непрерывным поступлением стоков. Исследованиями Всесоюзного научно-производственного объе­динения «Прогресс» по сель- 229 Таблица 1 - Технико-экономические показатели высоконагружаемых контактных биопрудов производительностью 400 м3/сутки в сравнении с сооружениями искусственной биологической очистки [9] п/п Очистные сооружения Капитальные затраты, тыс. руб. 1 2 3 Капельные биофильтры Башенные биофильтры Биофильтры с пластмассовой загрузкой Аэротенки продленной аэрации Циркуляционно-окислитёльные каналы БОКС пруды с депонентом-биоокислителем 4 5 6 Себестоимость, м3/руб. 118,6 68,6 57,4 Ежегодные эксплуатационные издержки, руб. 16352 10512 8906 60,2 60,0 7300 7740 5,0 5,3 37,8 4380 3,0 - 4,0 скохозяйственному использованию сточных вод указанные недостатки были устранены путем разработки нового технологического режима с введением в пруды особого комплекса микроводорослей и используя пруды специальной конструкции биопруда [2,3,7]. Разработанные в результате этих исследований пруды получили название: биологические оксидационные контактные стабилизационные (БОКС) пруды. БОКС пруды требуют для своего строительства незначительных затрат, а эксплуатация их отличается простотой, надежностью, экономичностью и не требует высокой квалификации обслуживающего персонала. Первые экспериментальные наработки проходили с хозяйственно бытовыми сточными водами поселка Старая Купавна, которые проходили обеззараживание и очищение в БОКС прудах [2,3,7]. Биологические оксидационные контактные стабилизационные пруды или кратко БОКС пруды, являются сооружениями, обеспечивающими в первую очередь биологическое обеззараживание (санацию) хозяйственно-бытовых, близких к ним по составу городских сточных вод, перед выведением их на орошаемые поля. После БОКС прудов сточные воды рекомендуется непосредственно направить на поля орошения или накапливать их в накопительных прудах (депонентах) в периоды, когда не могут производиться ни вегетационные, ни влагозарядковые, ни промывочные поливы. Сброс в накопительные пруды также должен производиться в те периоды, когда по температурным условиям возможно снижение эффективности работы БОКС прудов. 230 11,2 7,1 6,1 Ученые разработчики [2,3,8] отмечают, что БОКС пруды в условиях малой канализации являются наиболее эффективными и экономичным сооружением по сравнению с рядом сооружений искусственной биологической очистки, применяемой в этих условиях (табл. 1). Себестоимость очистки, рассчитанная при исследованиях, как мы видим в БОКС прудах минимальная [2,3,8]. Основными агентами, принимающими участие, в обеззараживании сточных вод являются бактерии и микроводоросли так называемый альгологический комплекс микроводорослей. Образовавшаяся и «отработанная» в БОКС прудах биомасса микроводорослей представляет собой вторичное образование органической среды, не имеющей ничего общего с первоначальным фекально-бытовым загрязнением, и как, оказалось, является дополнительным азотным удобрением, выносимым на орошаемые поля. Значительно позже после модернизации БОКС пруды были применены в составе очистных сооружений животноводческих и птицеводческих комплексов, а также для некоторых видов промстоков при специальном обосновании и предварительных исследованиях в каждом конкретном случае [4,5,6,8]. БОКС пруды могут одновременно выполнять функции бассейна не только, суточного, но и сезонного регулирования. Интенсификация прудового метода очистки сточных вод заключается в переводе проточных прудов на облигатно-контактный режим работы (гидравлическая нагрузка при этом увеличивается приблизительно в два раза) и во введении в пруды альгологического комплекса микроводорослей. Пруды состоят из серии искусственно созданных водоемов, в каждую секцию которых поочередно напускается сточная вода. В секциях стоки выдерживаются определенное время до полного их обеззараживания. По прошествии этого времени пруд опорожняется. При первоначальном заполнении секции в каждую из них вводится специально подобранный комплекс микроводорослей, который сохраняется на дне пруда после его опорожнения в виде «закваски». Вторичного введения микроводорослей во время эксплуатации не требуется. Очистка сточных вод в БОКС прудах — это процесс, происходящий при помощи биологических альгологического комплекса микроводорослей, в котором при правильном его течении за несколько дней пребывания сточной воды в пруду происходит ее обеззараживание. Самоочищение сточных вод в БОКС прудах зависит от биоло­гических, физических и химических факторов. К основным биологическим агентам, участвующими в процессе самоочищения вод в оксидационных прудах, относятся водоросли, простейшие, бактерии и бактериофаги. Основная технологическая функция водорослей в оксидационных прудах заключается в выделении ими, в процессе фотосинтеза, большого количества кислорода (до 25 г/м2 в сутки). Выделяемый водорослями кислород используется аэробными микробами для окисления органических загрязнений сточных вод. Кроме того, водоросли выделяют в сточную воду различные фитонциды, обладающие сильным бактерицидным и бактериостатистическим действием, губительно действующим на патогенную и условно-патогенную микрофлору [5]. Основная технологическая функция простейших в оксидационных прудах заключается в их фагоцитарной деятельности (в процессе своей жизнедеятельности они поглощают бактерии, являющиеся одним из источников их питания) [169,197]. Из бактерий (в прудах присутствуют все типы бактерий-прототрофы, метатрофы и паратрофы) при процессах, имеющих окислительный характер, развиваются лишь те метатрофы, которые, имеют аэробный тип дыхания. Соответственно в числе прототрофов имеются микроорганизмы, окис­ляющие аммонийные соли в нитраты и нитриты; проводящие окисление сероводорода до серы с последую- щим окислением ее до сульфатов; окисляющие сероводород без промежуточного выделения свободной серы, непосредственно до сульфатов; осуществляющие так называемую «мобилизацию» фосфатов, т. е. окисление труднорастворимого трехкальциевого фосфата в легкорастворимый фосфат под действием углекислоты. Среди метатрофов содержатся микробы, окисляющие углеродосодержащие вещества с открытой цепью и ароматические углеродосодержащие вещества через ряд промежуточных продуктов до углекислоты и воды. Микробы, имеющие паратрофный тип питания (патогенные), в БОКС прудах быстро погибают. Это установлено для всех патогенных микробов кишечной группы (возбудителей брюшного тифа, паратифа А, паратифа В и всех видов дизентерии), а также возбудителей туберкулеза [5,7]. В БОКС прудах создаются благоприятные условия для развития бактериофагов, лизирующих возбудителей брюшного тифа, паратифа В, дизентерии. Основным обеззараживающим фактором являются микроводоросли. Свет так же играет существенную роль в очистке сточных вод в БОКС прудах. От световых условий зависит прирост водорослей, являющихся основным источником кислорода. При достаточном количестве углекислоты, поступающей в воду при разложении органических загрязнений, нередко наблюдается перенасыщение кислородом обычно во второй половине дня, когда предел насыщения достигает 180—:200%[5]. В результате развития водорослей и поглощение ими световой энергии в большей степени зависят изменения концентрации водорослей (биомассы) и их видового состава. Интенсивность проникновения в пруды света зависит от мутности сточной воды. Проникновение света в прудах ограничено глубиной затухания (свет на глубине 1,2-1,5м в значительной степени затухает). Еще большее значение имеет тот факт, что прозрачность воды, как правило, в прудах резко понижается при развитии микроводорослей. Наиболее эффективный фотосинтез наблюдается в верхних слоях 20 - 30 см. Использование световой энергии протекает весьма неодинаково из-за неоднородности и изменчивости бактериальной массы. Основным химическим фактором, влияющим на жизнедеятельность микроводорослей, является концентрация свободной углекислоты, карбонатного и бикарбонатного ее резервов. Для успешного протекания фотосинтеза существенным моментом является запас углекисло- 231 ты в том или ином водоеме, так как растения в процессе фотосинтеза могут использовать только свободную углекислоту. Поэтому на эффективность фотосинтеза, как мощного фактора самоочищения, можно рассчитывать лишь в тех случаях, когда вода водоемов содержит много карбонатов. Водоемы с малой концентрацией карбонатов могут пополнять углекислоту лишь путем поступления ее из атмосферы [2,7,8]. Из этих рассуждений следует очень важный вывод: в неглубоких водоемах не свет, а углекислота является решающим фактором фотосинтеза. Поэтому при устройстве биологических очистных прудов и других водоемов необходимо учитывать суммарный запас углекислоты в воде. Для процесса фотосинтеза необходимо наличие биогенов (углерод, азот, фосфор, калий, кальций, железо, марганец; медь, кремний), не говоря уже о микроэлементах. Отсутствие даже одного какого-либо биогенного элемента приводит к прекращению развития микроводорослей и, соответственно, фотосинтеза. Именно поэтому применение прудового биологического метода очистки для некоторых производственных сточных вод иногда не дает результатов. Добавление бытовых сточных вод, содержащих все необходимые биогенные элементы и микроэлементы, приводит к быстрому развитию водорослей в прудах. Выводы. Направленность действия биологических факторов в БОКС прудах достигается введением в сточную жидкость комплексов микроводорослей, которые являются мощными продуцентами кислорода и веществ антибиотического характера. Вводимые микроводоросли вместе с естественными биоценозами прудов осуществляют сложные процессы биохимического превращения углеродосодержащих, азотосодержащих и серосодержащих веществ в продукты, имеющие высокую степень минерализации. БОКС пруды с успехом можно применять для многих сельскохозяйственных предприятий пищевой и перерабатывающей промышленности. Библиографический список: 1. Гривцева О.А., Субботина Ю.М. Биологическая очистка сточных вод. // Актуальные вопросы охраны окружающей среды и обеспечения экологической безопасности. // Материалы студенческой научно-практической конференции по результатам учебных и производственных практик. М.: Издательство РГСУ, 2009. – С. 19 - 27. 2. Доливо-Добровольский Л.Б. Альголизация как метод дезодорации, очистки и обеззараживания стоков утиных ферм. // Культивирование и применение микроводорослей в народном хозяйстве. 27-29 апреля, Ташкент, 1984. – С. 76 - 77. 3. Доливо-Добровольский Л.Б. и др. Рекомендации по устройству биологических оксидационных контактных стабилизационных (БОКС) прудов в СССР для небольших населенных пунктов. М.: 1987. – 32 с. 4. Смирнова И.Р. Теоретическое обоснование, усовершенствование и разработка мероприятий, направленных на оптимизацию технологий естественной биологической очистки сточных вод с возможностью их использования на орошение и рыборазведение: автореферат на соискание степени д.в.н. М.: 1997. – 48 с. 5. Субботина Ю.М. Ветеринарно – санитарная оценка эффективности очистки сточных вод в биологических оксидационных контактных стабилизационных (БОКС) прудах. // Актуальные проблемы техногенной и экологической безопасности. Сборник научных трудов. В. 7. М.: РГСУ, 2012. – С.132 - 143. 6. Субботина Ю.М. Эколого-биологические особенности очистки сточных вод в биологических оксидационных контактных стабилизационных (БОКС) прудах. // Страны БРИК в условиях глобального кризиса: потенциал и проблемы консолидации. IX Международный социальный конгресс. М:. РГСУ, 2010. – С. 149. 7. Субботина Ю.М., Гончарова А.В. Особенности очистки сточных вод в БОКС прудах Сб. науч. трудов Охрана окружающей среды и рациональное природопользование в условиях глобального кризиса. М.: РГСУ, 2009. – С. 52 - 59. 8. Субботина Ю.М., Корчевский Д.А. Разработка и внедрение системы прудовой очистки для условий малых и средних населенных пунктов. / /Актуальные проблемы техногенной и экологической безопасности. Сб. научных трудов. В. 6. М.: Изд-во РГСУ, 2011. – С.143 - 151. 9. Субботина Ю.М. Эколого-экономический менеджмент очистных сооружений и экономическая эф232 фективность от внедрения сооружений естественной биологической очистки сточных вод. Международный научный журнал Наука и Мир. №1 (1), 2013. – С. 127 – 132. FEATURES CLEAN AND REMEDIATION SEWAGE THE BOX-POND J.M.Subbotina, I. R.Smirnova Keywords: oxidation, stabilization ponds, closed ponds, wastewater, microalgae, legalizacja, disinfection, sanitation Abstract: the article considers the problem of treatment and rehabilitation of waste water in special ponds, located on the contact mode of operation, the main feature of these ponds, is a contact mode of operation and the introduction of algological complex microalgae. УДК 636.5.033:637.05 ОРГАНОЛЕПТИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ И ДЕГУСТАЦИОННАЯ ОЦЕНКА МЯСА ЦЫПЛЯТ-БРОЙЛЕРОВ, ПРИ ИСПОЛЬЗОВАНИИ ЖИДКОЙ КОРМОВОЙ ДОБАВКИ ВЕРСАЛ ЛИКВИД Е.Ю. Терентьева, аспирант тел. 8(8452)69-25-32, terenteva.e.1987@mail.ru В.В. Салаутин, доктор ветеринарных наук, профессор, тел. 8(8452)69-25-31, salautin60@mail.ru С.Е. Салаутина, кандидат ветеринарных наук, доцент тел. 8(8452)69-25-32, Sse36@mail.ru ФГБОУ ВПО «Саратовский государственный аграрный университет им. Н.И. Вавилова» Ключевые слова: жидкая кормовая добавка, ВерСалЛиквид, дегустация тушкицы плят–бройлеров, мясной бульон, мясо. Работа посвящена оценке органолептических и дегустационных показателей мяса и бульона цыплят – бройлеров.Результаты свидетельствуют о повышении качественных показателей у цыплят опытной группы, получавших жидкую кормовую добавку ВерСал Ликвид. По мере увеличения доходов населения России усиливается рост потребления спроса на мясо и мясную продукцию. Происходят изменения и в структуре потребления: доля птицы и свинины растет, а говядины сокращается. Если в 90-е годы удельный вес говядины в структуре потребления мяса составлял 43%, свинины – 35, а птицы – 18, то в настоящее время доля говядины снизилась до 26%, а свинины и птицы увеличилась соответственно до 31 и 38% [1]. Помимо увеличения производственных показателей, необходимо оценивать влияние добавок на качественные показатели получаемой продукции[2,3]. Цель исследования. Определить влияние ВерСалЛиквид на органолептические показатели мяса цыплят – бройлеров и провести дегустационную оценку качества их мяса и бульона. Материал и методы исследований. Объектом для исследования служило мясо, полученное после убоя цыплят – бройлеров контрольной и опытной группы на 42 день выращивания. ВерСалЛиквид является жидкой кормовой добавкой, предназначенной для улучшения процессов пищеварения. В её состав входят муравьиная, молочная, пропионовая, лимонная и уксусная кислоты. Работа выполнена кафедре «Морфология, патология животных и биология» ФГБОУ ВПО 233 Рисунок 1 - Динамика живой массы цыплят-бройлеров Таблица 1 - Дегустационная оценка мяса цыплят –бройлеров Группа Внешний Аромат Вкус Консистенция (нежвид ность, жесткость) Опытная 7,75±0,32* 8,00±0,41* 8,50±0,25* 7,75±0,32* Контрольная 7,50±0,25 7,75±0,24 8,25±0,13 7,50±0,25 Сочность 8,25±0,43* 8,00±0,29 Общая оценка 8,05±0,12* 7,8±0,12 Примечание: здесь и далее *- р ≤ 0,050 Таблица 2 - Дегустационная оценка качества бульона из мяса цыплят –бройлеров Группа Опытная Контрольная Внешний вид 8,75±0,13* 8,50±0,25 Аромат 8,25±0,24* 8,00±0,41 «Саратовский государственный аграрный университет им. Н.И. Вавилова». По принципу аналогов было сформировано 2 группы суточных цыплят –бройлеров кросса «Сobb-500» по 50 голов в каждой: первая контроль (основной рацион), вторая – к основному рациону, ежедневно, начиная с суточного возраста, добавляли в воду ВерСалЛиквид в дозе по 0,5 мл на 1л воды (согласно рекомендациям «БиохемГмбХ, Германия»). При проведении дегустации руководствовались ГОСТ 9959-91 «Продукты мясные», «Общие условия проведения органолептической оценки». При бальной оценке качества мяса птицы использовали 9- бальную шкалу, представленную в дегустационных листах. Согласно общим правилам проведения дегустации, органолептические показатели вареного мяса оценивали в следующей последовательности: внешний вид, аромат, вкус, нежность, сочность. Дегустационные исследования предусматривали оценку качества мясного бульона по следующим показателям: внешний 234 Вкус 8,25±0,24* 7,75±0,24 Наваристость 8,50±0,25* 8,00±0,29 Общая оценка 8,44±0,12* 8,06±0,16 вид, аромат, вкус, наваристость[4,5]. Образцы мышечной ткани отбирали согласно ГОСТу 51944-2002. Исследование состава мяса цыплят-бройлеров 42-дневного возраста проводили согласно ГОСТам 25011-81; 23042-86; 9993-74; 26226-96; 7702.1-74; Р 51478-99. Статистический анализ полученных результатов проводили с использованием стандартных программMicrosftExcelXP. Результаты собственных исследований. В начале эксперимента (с 1 по 8 день) живая масса цыплят в обеих исследуемых группах существенно не отличалась, и в среднем составила 201,8 г. К концу опыта живая масса цыплят опытной группы на 5,4 % была выше по сравнению с контрольной. Наиболее наглядно динамика массы тела цыплят представлена на рисунке 1. Проведенные нами исследования показали, что живая масса цыплят опытной группы в 42 - дневном возрасте составила 2972,0 г, а контрольной -2820,4 г. Качество мяса птицы регламентировали по ГОСТам 21784-76 и 25391 -82.Тушки птиц обеих групп были хорошо обескровлены, чистые, без остатков пера, пуха и пеньков, поверхность тушек сухая, цвет бледно-желтоватый с розовым оттенком; подкожный жир бледно-розового цвета; консистенция мяса упругая, при надавливании пальцем ямка быстро выравнивается; на поверхности и на глубине разреза запах специфический, свойственный свежему мясу птицы. При варке мяса бульон прозрачный, ароматный. На поверхности бульона жир собирался в виде крупных капель; вкус бульона в обеих группах соответствовал показателям доброкачественного продукта. Посторонние запахи отсутствовали. Таким образом, нами установлено, что результаты органолептического анализа тушек цыплят - бройлеров обеих групп характерны для свежего мяса. По результатам комиссионной дегустационной оценки образцы мяса и бульона получили от 7,5 до 8,5 баллов. Данные представлены в таблицах 1 и 2. Из данных таблиц 1 и 2 видно, что мясо цыплят, получавших кормовую добавку ВерСалЛиквид, превосходило контрольную группу по: внешнему виду на 4%, аромату – на 3,8%, вкусу – на 3,6%, консистенции – на 2,7%, сочности – на 2,6%. В целом, результаты общей (комплексной) органолептической оценки образцов цыплят-бройлеров показывают, что мясо цыплят опытной группы получило оценку 8,05 баллов, в то время как в контрольной - 7,8 баллов. Наиболее выраженные отличия между группами,экспертами были отмечены в показателях вкуса бульона. Так, вкусовые качества бульона из мяса цыплят-бройлеров опытной группы получили оценки 8,25 -8,75 баллов, а контрольной – 7,75 – 8,5 баллов. Аналогичная тенденция прослеживается при оценке мясного бульона. При общей оценке бульона более высокие показатели отмечены в опытной группе, получавшей в воду добавку ВерСалЛиквид. Бульон из мяса цыплят опытной группыполучил 8,44 балла, а в контрольной- 8,06 балла. Таким образом, наши исследования показали, что применение жидкой кормовой добавки ВерСалЛиквид улучшает товароведческие показатели тушек. Кроме этого, по дегустационной оценке,мясо цыплят-бройлеров опытной группы превосходит мясо цыплят контрольной, что дает основание признать его наиболее полно удовлетворяющим потребительский спрос. Библиографический список: 1. Тучемскин Л. Морфологический состав тушек курочек породы плимутрок в зависимости от возраста / Л. Тучемскин, В. Никитченко, Ж. Емануйлова // Птицеводство. – 2012. - №6. – С. 9-14. 2. Андреев В.В. Органолептическая и дегустационная оценка мяса цыплят – бройлеров, получавших в рационе комплекс органических микроэлементов / В.В. Андреев // Молодой ученый. – 2013.- №3.- С. 534-536. 3. Преображенская С.М. Ветеринарно-санитарная оценка применения пероксидов при откорме цыплят-бройлеров/С.М.Преображенская, И.Г.Серегин // Мясная индустрия. – 2007.- №8. – С.64-67. 4. Методические рекомендации по проведению анатомической разделки тушек и органолептической оценке мяса и яиц сельскохозяйственной птицы и морфология яиц / ВНИТИП; сост. В.С. Лукашенко, М.А. Лысенко, Т.А. Столяр, А.Ш. Кавтарашвили, О.А. Лукашенко, В.В. Дычановская, А.И. Калашгиков.- Сергиев Посад, 2001.-26 с. 5. Определение качества мяса сельскохозяйственных животных птицы: методические рекомендации / сост. С.П. Кулаченко, В.И. Булавина, Е.Я. Логвинова, Н.П. Дьякова. – Белгород, 1982. -82 с. ORGANOLEPTIC AND TASTING QUANTITATIVE METRICS OF MEAT OF BROILER CHICKENS, WHEN USING LIQUID FEED SUPPLEMENT VERSALLIKVID E.Y.Terentieva, V.V.Salautin, S.E.Salautina Keywords: liquid feed supplement,VerSal Likvid, poultry farming, tasting of broilerchickens meat, meat broth, meat. The work is devoted to the evaluation of organoleptic and tasting characteristics of meat and broth of chicken broilers. The results show an improvement of quality indicators in chickens from experimental group treated with a liquid feed supplement Versal Liquid. 235 УДК 619: 614.31: 637. 12 МОНИТОРИНГ УСЛОВНО-ПАТОГЕННОЙ МИКРОФЛОРЫ СЫРОГО МОЛОКА В ХОЗЯЙСТВАХ МОСКОВСКОЙ И ВОЛОГОДСКОЙ ОБЛАСТЕЙ Н.А. Шурдуба, кандидат ветеринарных наук, доцент тел. 8(499)256-04-50, sanitaria_moloka@mail.ru В.М. Сотникова, кандидат ветеринарных наук тел. 8(499)256-04-50, sanitaria_moloka@mail.ru ФГБНУ «ВНИИ ветеринарной санитарии, гигиены и экологии» Ключевые слова: мастит коров, секрет вымени коров, сырое молоко, условно-патогенная микрофлора. Работа посвящена микробиологическому мониторингу сезонного изменения микрофлоры в хозяйствах Московской и Вологодской областей. В молоке здоровых и больных маститом коров выявлены наиболее часто встречающиеся виды микроорганизмов. Введение. Молочное скотоводство является одной из ведущих отраслей сельскохозяйственного производства, призванного полностью удовлетворить потребности людей в продуктах питания животного происхождения. В связи с этим большое значение придается качеству производимого молока, на которое существенное влияние оказывает воспаление молочной железы коров [1, 2]. На крупных фермах даже незначительные нарушения правил содержания и кормления животных приводят к заметному увеличению уровня заболевания коров маститом. Кроме того, к возникновению мастита предрасполагают кормление животных недоброкачественными кормами, физические факторы (охлаждение, неудовлетворительный микроклимат), антисанитарные условия содержания. Основным же фактором, обусловливающим возникновение мастита, является микробный [1, 3, 4]. Получение высококачественного молока, в котором содержится минимальное число микроорганизмов и которое способно длительное время сохранять свои исходные свойства, остается важнейшей задачей для молочных ферм, комплексов и фермерских хозяйств. В связи с этим необходимо уделять большое внимание микробиологическому мониторингу условно-патогенной микрофлоры и разработке экологически безопасных, безвредных даже в больших дозах лечебно-профилактических препаратов для лечения мастита коров [3, 4, 5, 6,7]. Материалы и методы исследований. Материалом для исследований явились 384 236 пробы молока и секрета вымени здоровых и больных маститом коров, а также сборного сырого молока (221 проба из хозяйств Московской области, 163 пробы из хозяйств Вологодской области). Диагностику мастита у коров осуществляли согласно «Наставлению по диагностике, профилактике и терапии мастита у коров» (2000 г.), для чего применяли клинические методы исследования (осмотр, пальпация, пробное сдаивание), быстрый маститный тест (БМТ) с 2%-ным раствором мастидина, пробу отстаивания. Микробиологические исследования секрета вымени коров проводили согласно «Методическим указаниям по бактериологическому исследованию молока и секрета вымени у коров» (1983 г.). Биохимическую идентификацию выделенных микроорганизмов осуществляли с использованием нового бактериологического компьютеризированного анализатора MicroTax (Австрия). Результаты исследований и их обсуждение. Установлено, что заболеваемость коров носит сезонный характер. При обследовании коров в течение года на ряде ферм Московской и Вологодской областей отмечено, что уровень заболеваемости лактирующих коров маститом в зависимости от сезонов года находился в пределах 15,8…46,6% (рис. 1). Так, на фермах Московской области в зимний период отмечался уровень мастита в пределах 39,2%, в весенний период – 46,6%, летний – 21,4%, осенний – 19,2%; в хозяйствах Вологодской области эти Рисунок 1 - Уровень заболеваемости коров маститом (%) в зависимости от сезонов года Рисунок 2 - Сравнительная сезонная динамика обнаружения условно-патогенных микроорганизмов (%) в сыром молоке в хозяйствах Московской и Вологодской областей показатели были 21,2%, 32,6%, 16,5% и 15,8% соответственно. Наиболее высокий уровень заболеваемости коров маститом отмечался зимой и весной. При изучении состава условно-патогенной микрофлоры, выделенной из сырого молока в разные сезоны года, установлено, что количество выделяемых видов микроорганизмов в среднем по двум областям было примерно одинаковым: в зимний период микроорганизмы выделялись в среднем из 50,0% проб, весной из 65,1%, летом 24,6% и осенью 21,7% (рис. 2). Чаще всего (рис.3) условно-патогенные микроорганизмы обнаруживались в секрете вымени коров, больных клиническим маститом (64,1% в хозяйствах Московской области, 61,8% – Вологодской) и в молоке коров с субклинической формой воспаления вымени (64,4% по Московской области, 46,2% – по Вологодской). Частота выделения микрофлоры из сборного молока и вымени здоровых коров была примерно одинаковой (17,1…26,7% на фермах Московской области и 20,8…22,5% в хозяйствах Вологодской области). Был проведен сравнительный анализ состава микрофлоры, выявленной в пробах сырого молока из хозяйств Московской и Вологодской областей. Как видно из рис.4, на фермах обеих областей независимо от сезонов года чаще встречались энтеробактерии (59,2% от числа выделенных микроорганизмов в Московской, 58,5% – в Вологодской областях) и стафилококки (39,8% и 44,6% соответственно). Стрептококки выявлялись в 32,3% проб из хозяйств Вологодской области против 18,5% проб молока с ферм Московской области. Энтерококки и микрококки были обнаружены в 13,5% в хозяйствах Московской и в 10,8% – Вологодской областей. При сравнении видового состава энтеробактерий, наиболее часто выделявшихся на фермах двух областей в течение года, было уста- 237 Рисунок 3 - Количество выделенных условно-патогенных микроорганизмов (%) в сыром молоке в зависимости от клинического состояния молочной железы Рисунок 4 - Сравнительный состав обнаруженной микрофлоры (%) в сыром молоке в хозяйствах Московской и Вологодской областей новлено, что и в Московской, и в Вологодской областях более распространены Hafnia alvei (32,8…39,5% от числа выделенных энтеробактерий), Serratia marcescens (24,6…18,4%) и E.coli (22,9…21,1%). Остальные виды энтеробактерий встречались от 1,7% до 10,3% в зависимости от хозяйств и области. Отмечено, что среди стафилококков, обнаруженных в пробах сырого молока в хозяйствах Московской и Вологодской областей, некоторые виды встречались значительно чаще. Так, St.epidermidis выявлялся в 31,7% проб на фермах Московской области и в 27,6% проб – Вологодской; St.aureus обнаруживали в 26,8% и в 44,8% соответственно. Пробы из хозяйств Московской области содержали до 20,7% St. intermedia против 9,8% в Вологодской; в образцах, взятых на фермах последней, также выделяли до 21,9% St. saprophyticus (в хозяйствах Московской области этот стафилококк не обнаружили). Незначительный процент других стафилококков 238 (от 2,4 до 9,5% выявляли в отдельных хозяйствах как в одной, так и другой области. В 42,8% от общего числа выделенных стрептококков во всех хозяйствах выявляли Str. agalactiae. В Вологодской области в 3,6 раза чаще, чем в Московской встречался Str. uberis (38,1% против 10,5%). На фермах Московской области отмечен рост Str. pyogenes (31,6%). Кроме того, в одном хозяйстве Вологодской области выделены другие стрептококки (от 4,8 до 9,5%). Было отмечено, что из энтерококков и микрококков только E.faecalis одновременно встречался в пробах сырого молока в хозяйствах двух областей (71,4% в Московской области и 42,8% – в Вологодской). Кроме того, в Московской области выделялись E.faecium, E. luteus и M. varians (14,3…28,6%), а в Вологодской – E.durans (28,6%). Заключение. Проведенные исследования позволили установить, что пик заболеваемости животных маститом в Московской и Вологодской областях приходился на весенний и зимний периоды. Микрофлора также чаще выделялась весной и зимой, а летом и осенью микроорганизмы обнаруживались в 2,5 раза реже. На фермах двух областей независимо от сезонов года чаще выделялись различные виды энтеробактерий (в среднем 58,9%) и стафилококков (42,2%). В меньшей степени были выявлены стрептококки (25,4%), энтерококки и микрококки (12,2%). Библиографический список: 1. Белкин Б.Л. Мастит коров: Этиология, патогенез, диагностика, лечение и профилактика / Б.Л. Белкин, Л.А. Черепахина, В.М. Сотникова. – Орел, Орел ГАУ, 2009. – 216 с. 2. Ларионов Г.А. Влияние обработки вымени коров на микробиологическую обсеменённость молока / Г.А. Ларионов, Н.И. Миловидова, Л.М. Вязова // Вестник ветеринарии. – 2012. – № 63. – С. 174176. 3. Золотухин С.Н. Бактериофаги малоизученных энтеробактерий и перспективы их применения в ветеринарии / С.Н. Золотухин, Д.А. Васильев, А.С. Мелехин, Е.А. Бульканова, Н.А. Феоктистова, Е.Н. Пожарникова // Ветеринарная патология. – 2006. - №3. – С. 80-88. 4. Золотухин С.Н. Идентификация возбудителя гафниоза методом MALDI / С.Н. Золотухин, Д.А. Васильев, Д.С. Золотухин // Вестник Ульяновской ГСХА. – 2014. – №4(28). – С.44-47. 5. Золотухин, С.Н. Экспресс-метод определения качества молока и молочных продуктов с помощью бактериофагов рода Bacillus/ Васильев Д.А., Золотухин С.Н., Феоктистова Н.А. //Зоотехния. – 2014. - № 10. – С. 20-24. 6. Ларионов Г.А. Применение препаратов на растительной основе для лечения коров при субклиническом мастите / Г.А. Ларионов, Л.М. Вязова, О.Н. Дмитриева, М.А. Сергеева // Международный научно-теоретический и прикладной журнал. Вестник ЧГПУ им. И.Я. Яковлева. – Чебоксары: ЧГПУ. – 2013. – № 4(80). – Ч. 2. – С. 99-102. 7. Шурдуба Н.А. Видовой состав микрофлоры сырого молока в хозяйствах, неблагополучных по маститу коров / Н.А. Шурдуба, В.М. Сотникова, М.В. Рыжова, И.С. Осипова, С.В. Токарев // Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии. – 2014. – №1(11). – С.65-67. MONITORING OF CONDITIONALLY PATHOGENIC MICROFLORA OF RAW MILK FARMS IN MOSCOW AND VOLOGDA REGIONS N.A.Shurduba, V.M.Sotnikova Keywords: mastitis of cows, the secret of udder of cows, raw milk, conditionally pathogenic microflora. Work is devoted to the microbiological monitoring of seasonal changes of microflora in the farms of the Moscow and Vologda regions. In the milk of healthy and sick mastitis cows were the most common types of microorganisms. 239 УДК 619.338.24.021.8 (470) СОХРАННОСТЬ КАЧЕСТВА ПРОДОВОЛЬСТВИЯ В ВОИНСКИХ ЧАСТЯХ А. В. Юдаков, кандидат ветеринарных наук, «ПЛ 1064 Центра ветеринарно-санитарной экспертизы и лабораторной диагностики Центрального военного округа» г.Новосибирск тел. 8(383) 240-08-90, ale117501@yandex.ru Л. Я. Юшкова, доктор ветеринарных наук, профессор, ФГБНУ «Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока» тел. 8(383)308-73-58, iushkowa.l@yandex.ru Ключевые слова: ветеринарно – санитарный надзор, декларация о соответствии, сертификат соответствия, безопасность пищевых продуктов, скоропортящиеся продукты. В статье изложены вопросы по контролю качества продовольствия при его поступлении, выдаче и организации хранения на складах воинских частей. Основные санитарно-гигиеническими требованиями, предъявляемые к хранению продовольствия. Введение. Ветеринарно – санитарный надзор за продовольствием на складах воинских частей осуществляется штатным ветеринарным составом, а там, где его нет, ветеринарными специалистами ветеринарных учреждений округа, в зоне обслуживания которых находятся эти воинские части. Ветеринарно – санитарный надзор за качеством поступающего и хранимого продовольствия, за содержанием объектов продовольственной службы в воинских частях имеет большое значение для предупреждения пищевых отравлений и острых кишечных инфекций. Этот сложный участок работы требует от соответствующих должностных лиц разносторонних знаний по вопросам, касающимся пищевой и биологической ценности пищевых продуктов, их эпидемической и токсикологической роли, гигиенической регламентации и регистрации на территории Российской Федерации, сертификации не только продуктов питания, но и продовольственного сырья. Кроме того, необходимо уметь оценивать результаты лабораторных исследований пищевых продуктов и продовольственного сырья, руководствоваться официальными законодательными документами и нормативно-технической документацией на пищевые продукты. Организация питания военнослужащих, обеспечение их доброкачественными продуктами, доведение положенной нормы до каждого из них, соблюдение ветеринарно - санитарных 240 требований при транспортировке, хранении, обработке продуктов, приготовлении и приеме пищи, содержание продовольственного склада, помещений столовой, технологического и немеханического оборудования, столово-кухонной посуды в надлежащем виде возлагаются на продовольственную службу воинской части и организации, оказывающей услуги по питанию военнослужащих по системе аутсорсинга. Во всех воинских частях необходимо реализовывать принципы рационального (разумного) питания личного состава с учетом современных научных требований. Рациональное, физиологически полноценное питание способствует сохранению здоровья военнослужащих, выработке высокой боеспособности, укреплению морального состояния личного состава. Материалы и методы исследования. Материалом для исследования явилась приказы по продовольственному и ветеринарно – санитарному обеспечению ВС РФ, литературные источники по данной тематике, материалы по экспертной оценке ветеринарного - санитарного и санитарно - гигиенического обеспечения мест дислокации войск Центрального военного округа. Для исследования применялся публикационный и экспертный методы прогнозирования. Результаты. При хранении продовольствия на складе воинской части выполняется комплекс мероприятий, обеспечивающих полное сохранение его качества, что достигается путём: -правильного размещения, устройства и оборудования складских помещений; -тщательной проверки количества и качества принимаемого на хранение продовольствия и правильной организации его хранения; -правильной упаковки, размещения и укладки продовольствия; -создания нормальных условий хранения для каждого вида продовольствия (температуры, относительной влажности воздуха, вентиляции и освещения помещений) и соблюдения ветеринарно – санитарных и санитарно – гигиенических требований; -постоянного наблюдения за качественным состоянием хранимого продовольствия и своевременного проведения мероприятий, обеспечивающих его сохранность (перекладка, просушка, очистка, борьба с грызунами, амбарными вредителями и др.); - правильной организации отпуска продовольствия. Основными санитарно-гигиеническими требованиями, предъявляемыми к хранению продовольствия, являются: - сохранение в течение длительного времени натуральных свойств продуктов путем создания оптимальных условий хранения (температуры, влажности, освещенности и т.д.) и соблюдения товарного соседства; - прием и выдача пищевых продуктов с учетом времени их выработки и качественного состояния. Хранение продовольствия в воинской части осуществляется в специально оборудованном складе. Помещение для хранения пищевых продуктов должно быть сухое, хорошо проветриваемое и оборудовано стеллажами, ларями и полками. Нижняя поверхность стеллажей, ларей, полок должна находиться на высоте от пола не менее чем на 15см, проходы между стеной и штабелем оставляются не менее 70см, между штабелями – 50см, а между парой штабелей – 30см. На складах должны быть весы, термометры и прибор для определения влажности воздуха, инструменты для расфасовки и упаковки продовольствия, средства механизации погрузочно-разгрузочных работ, противопожарный инвентарь и др. Камеры холодильников, где хранится мясо, оборудуются лужеными крючьями и противнями для сбора стекающего мясного сока. Все складские помещения необходимо регулярно убирать (очищать стены, протирать полы под стеллажами и мыть окна), ежедневно в процессе работы собирать россыпь и тщательно подметать полы. Для мытья рук необходимо иметь умывальник, щетку, мыло, полотенце. Скоропортящиеся продукты хранятся только в охлажденном помещении. Для хранения каждого вида продуктов оборудуются специальные помещения (секции). В небольших продовольственных складах допускается хранение скоропортящихся продуктов в общей холодильной камере, но места хранения мяса, рыбы, молочных продуктов должны быть разграничены и обязательно оборудованы специальными стеллажами, полками и ящиками, легко поддающимися мытью и обработке. Совместное хранение восприимчивых к посторонним запахам продуктов с продуктами, издающими запах, запрещается. В связи с особенностью организации питания воинских коллективов наиболее актуальной для них является профилактика пищевых отравлений микробной природой. Не смотря на разнообразие экологических факторов в возникновении пищевых отравлений микробной природы, их профилактика в воинских частях и учреждениях достигается проведением мероприятий по следующим направлениям: - предупреждение заражения продуктов питания и пищи микроорганизмами; - предупреждение размножения попавших в продукты питания и готовые блюда микроорганизмов; -уничтожение микроорганизмов в процессе тепловой (кулинарной) обработки продуктов питания; - изоляция источников возбудителя инфекции. Мероприятия по предупреждению пищевых отравлений и острых кишечных инфекций являются: - соблюдение санитарно-гигиенических требований при приеме, подвозе хранении и отпуске пищевых продуктов, при кулинарной обработке, особенно скоропортящихся, приготовление пищи, ее хранении и раздачи личному составу, при содержании помещений продовольственных складов, кухонь, столовых, оборудования и столово-кухонной посуды; - строгое выполнение правил личной гигиены поварским и обслуживающим персоналом кухонь, столовых и работниками продовольственных складов, проведение им установленных медицинских обследований; 241 - строгий ветеринарный надзор за убоем скота, разделкой мясных туш и клеймений; - санитарно-просветительная работа. Контроль за состоянием складских помещений, режимом и порядком хранения, количественным и качественным состоянием продовольствия, законностью и целесообразностью их расходования осуществляется соответствующими должностными лицами воинской части, организацией аутсорсинга в соответствии с требованиями Устава внутренней службы Вооруженных Сил и положением о войсковом хозяйстве Вооруженных Сил, государственным контрактом на оказание услуг по организации питания, федеральными законами и другими нормативно – правовыми актами в области качества продовольствия. Соответствующие должностные лица при поступлении продовольствия на склады обязаны проверить подготовленность хранилищ, предназначенных к размещению прибывшего продовольствия (ветеринарно – санитарное состояние, техническая исправность, отсутствие заражённости амбарными вредителями, наличие стеллажей, пригодность хранилищ для размещения продовольствия). В документах поставщика сверяют данные о качестве поступившего продовольствия, состояния тары и упаковки с фактическим качеством прибывшего продовольствия. Проводят ветеринарно – санитарную экспертизу по основным органолептическим показателям на соответствие стандартам или техническим условиям. В случаях, предусмотренных ГОСТом, ОСТом, ТУ, а также при сомнении в доброкачественности и несоответствии стандарту или техническим условиям, производят отбор проб и их лабораторное исследования согласно постановления Правительства Российской Федерации от 16.06.1997 года № 720 « Об утверждении перечня товаров, которые по истечении срока годности считаются непригодными для использования по назначению» Отбор проб производится с соблюдением требований, предусмотренных стандартом или ТУ на тот или иной продукт, и оформляется актом, который подписывается лицами, участвующими в отборе. Принимаемое продовольствие обязательно проверяют на заражённость амбарными вредителями (клещи, жуки, бабочки). Заражённые и при необходимости принимаемые на склад продукты размещают в отдельных (карантинных) хранилищах. На основании данных лабораторного анализа и органолептической оценки, а также документов поставщика о качестве продовольствия производятся записи в книге анализов, актах приёма и в штабельных карточках с указанием качества продовольствия и даты его выработки. При хранении продовольствия в хранилищах соответствующие должностные лица систематически осуществляют контроль за его качественным состоянием, за соблюдением правил размещения продовольствия, укладки штабелей, температурного режима и относительной влажности воздуха, за соблюдением санитарного режима в помещениях и на территории склада, а также следят за своевременным проведением дезинфекционных, дезинсекционных и дератизационных работ. В случае, если при хранении, перевозках пищевых продуктов допущено нарушение, приведшее к утрате пищевыми продуктами соответствующего качества и приобретению ими опасных свойств……., такие пищевые продукты не подлежат реализации, направляются на экспертизу, в соответствии с результатами которой они утилизируются или уничтожаются. (Гл.IV, ст.19 Федерального закона «О качестве и безопасности пищевых продуктов» в ред. Федерального закона от 18.07.2011 г., № 242 – ФЗ) Заключение. Строгое выполнение обязательных ветеринарно – санитарных и санитарно-гигиенических требований на этапах получения продовольствия от поставщиков, его транспортирования в воинскую часть (организацию), последующее хранение на складах и отпуска в столовую позволяет исключить выдачу на довольствие личному составу недоброкачественных продуктов питания. Библиографический список: 1. Кошелев Н.Ф, Михайлов В.П, Лопатин С.А. Гигиена питания войск. СПб, Военно – Медицинская Академия, 1993. 259 с. 2. Приказ МО РФ от 21 июня 2011г. № 888 «Руководство по продовольственному обеспечению военнослужащих ВС РФ и некоторых других категорий лиц, а также обеспечение кормами (продуктами) и подстилочным материалом штатных животных воинских частей в мирное время». 3. Приказ МО РФ № 295 Д от 17.04.2013г. «Руководство по ветеринарно – санитарному обеспечению ВС РФ». Главы VII, VIII, IX, X, XI, XII. 242 THE PRESERVATION OF FOOD QUALITY IN MILITARY UNITS A.V. Yudakov ,L. Y. Yushkova Keywords: veterinary - sanitary inspection, Declaration of conformity, certificate of conformity, safety of food products, perishable products. The article considers the issues of quality control of food upon receipt, issue and storage in warehouses of military units. Basic hygiene requirements for food storage. УДК 636.2.084.087 ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ПРЕПАРАТА СМАРТАМИН –М В СОСТАВЕ КОМБИКОРМОВ-КОНЦЕНТРАТОВ ПРИ КОРМЛЕНИИ КОРОВ В.Н. Дмитриев, студент, тел.:8 (347) 252-55-58. Х.Г. Ишмуратов, доктор сельскохозяйственных наук, профессор тел.:8 (347) 252-55-58. Ishmuratov_57@mail.ru ФБГОУ ВПО Башкирский ГАУ Ключевые слова: препарат Смартамин-М; рецепт комбикорма-концентрата; основной рацион; коровы голштинской черно-пестрой породы; среднесуточный удой; себестоимость 1 ц молока; прибыль и рентабельность производства молока. Использование препарата Смартамин-М на протяжение первых 100 дней лактации новотельного периода положительно повлияло на продуктивность молочных коров. За три месяца лактации снижение затрат кормов на производство 1кг молока составило: энергии – на 7 %; сырого протеина – на 2 и концентратов – на 6 %. Введение. Условием получения наибольшего количества молока является удовлетворение потребностей животного во всех питательных веществах, т. е. организация полноценного сбалансированного кормления. При этом важно учитывать такие показатели, как режим и уровень кормления, подбор кормов и структура рациона, и многие другие кормовые факторы [1,3,5]. Синтетическая аминокислота – метионин, в рационах кормления высокопродуктивных коров, в качестве липотропной кормовой добавки пока не находит широкого применения, в связи с тем, что в рубце метионин подвергается микробному расщеплению. Поэтому с целью дополнительного поступления метионина в организм коров его необходимо «защищать» от воздействия рубцовой микрофлоры [10]. Многочисленные исследования, проведенные за рубежом, в том числе и недавние в России свидетельствуют о том, что скармливание Смартамина-М способствует росту удоев молока натуральной жирности, при одновременном увеличении содержания в нем белка и жира, а также оказывает профилактическое и лечебное влияние на метаболизм печени и улучшение репродуктивной функции коров [8]. Цель и задачи исследования. Исходя из вышеизложенного, целью нашего исследования явилось изучение продуктивных качеств дойных коров при использовании в составе основного рациона кормления метионинсодержащего препарата Смартамин-М. Для решения поставленной цели необходимо было решить следующие задачи: 1. Изучить химический состав, оценить питательность кормов и кормовых добавок, используемых в хозяйстве, в том числе Смартамина-М, и на основе полученных данных составить полноценные сбалансированные рационы кормления для лактирующих коров. 243 Таблица 1 - Схема опыта Группа Количество голов Продолжительность опыта (дней) контрольная 10 100 опытная-I 10 100 опытная-II 10 100 Характеристика кормления основной рацион + комбикорм без метионина основной рацион + комбикорм c 0,16% метионина основной рацион + комбикорм c 0,25% метионина Таблица 2. Рецепты комбикормов-концентратов, % Компоненты Ячмень Пшеница Отруби пшеничные Шрот подсолнечный Трикальцийфосфат Соль поваренная Премикс П60-3 Смартамин-М контрольная 20,0 15,0 40,0 21,0 2,0 1,0 1,0 - 2. Установить влияние препарата Смартамин-М в составе основного рациона кормления на количественные и качественные показатели производимого молока. 3. Дать оценку экономической эффективности применения данного препарата с защищённым метионином в рационах кормления высокопродуктивных лактирующих коров. Условия, материалы и методы исследования. Исследование проводилось в условиях ГУСП совхоза «Алексеевский» Уфимского района Республики Башкортостан в период с мая по август 2013 года на новотельных коровах. Перед проведением эксперимента методом пар-аналогов по живой массе, возраста в отёлах и уровня продуктивности за предыдущую лактацию нами были сформированы 3 группы полновозрастных коров чёрно-пёстрой голштинской породы по 10 голов в каждой. После детального изучения химического состава и питательности рациона кормления был установлен небольшой дефицит сырого протеина, а также незаменимой аминокислоты – метионин. Было решено восполнить недостаток этих элементов питания при разработке рецепта комбикорма-концентрата собственного 244 Группа опытная-I 20,0 15,0 40,0 21,0 2,0 1,0 1,0 0,16 опытная-II 20,0 15,0 40,0 21,0 2,0 1,0 1,0 0,25 производства с включением Смартамина-М из расчёта 0,16% (I-опытная) и 0,25% (II-опытная) от массы скармливаемого комбикорма-концентрата или 10 и 15 г соответственно на голову в сутки. В эксперименте была принята следующая схема опыта. Потребление сухого вещества рациона в опытных группах коров было несколько выше, чем в контроле, и в основном это было обусловлено более высокой поедаемостью кормов этих рационов, где применялся метионсодержащийся препарат Смартамин-М, соглано схемы опыта. Состав, структуру (табл. 2) и количество комбикормов-концентратов нормировали в соответствии с нормами кормления коров, то есть с учётом физиологического состояния, живой массы и суточного удоя из расчёта 300 г на литр молока. Объёмистая часть рационов кормления состояла из сена разнотравного, сенажа злаково-бобового и силоса кукурузного [9]. Для восполнения недостатка сахара применяли патоку кормовую, предварительно разбавленную водой в соотношении 1:4. Концентрация обменной энергии в 1 кг сухого вещества рациона составила: 10,07 МДж в контрольной; 10,16 в опытной-I и 10,19 Таблица 3 - Среднесуточные рационы кормления коров за период опыта Корма Требуется по норме, ЭКЕкрс Сено разнотравное, кг Сенаж злаково-бобовый, кг Силос кукурузный, кг Патока кормовая Комбикорм, кг Комбикорм +Смартамин М Содержится в рационе ЭКЕкрс Сухого вещества, кг Сырого протеина, г Переваримого протеина, г Клетчатки,г Крахмала, г Сахара, г Жира, г Кальция, г Фосфора, г контрольная 21,3 8 12,5 20 2 5 - Группа опытная-I 21,3 8 12,5 21 2 5,010 опытная-II 21,3 8 12,5 22 2 5,015 22,10 21,95 2826,0 1793 5113 3094 1708 723 135 98 22,48 22,10 2841,0 1800,6 5117 3094 1708 723 135 98 22,67 22,25 2846,1 1807,2 5119 3094 1708 723 135 98 МДж в опытной-II группе. Для определения поедаемости кормов проводили ежедекадный групповой учёт заданных кормов и их остатков. Оценка молочной продуктивности коров и её качественных показателей учитывалась путём проведения контрольных доек, проводимых 2 раза в месяц. Результаты исследования. Внесение определённой дозы препарата в рецепты комбикормов-концентратов, в составе основного рациона кормления опытных групп новотельных лактирующих коров, способствовало некоторому повышению в них сухого вещества, энергии и других биологически активных веществ, что улучшило не только поедаемость, но переваримость и усвояемость питательных веществ кормов, в особенности на уровне аминокислотного питания. Анализируя данные таблицы 3, в которой представлены рационы кормления коров, в среднем за опыт по фактически потребленным кормам видно, что включение «Смартамина М» в состав комбикорма-концентрата для коров опытных групп незначительно повысило концентрацию обменной энергии, протеина и аминокислот. По данным таблицы 4 видно, что за 100 дней новотельного периода от подопытных коров получен высокий среднесуточный удой мо- лока натуральной жирности, который составил от 25,81 до 27,53 кг или на 5,85 и 6,66 % больше, чем в контрольной. Таким образом, скармливание коровам комбикормов собственного производства с «защищенным» метионином интенсифицировало обмен веществ, в особенности белкового (аминокислотного) и липидного в их организме, в результате чего у них увеличился выход молочного жира и белка [8]. По результатам опыта установлено, что валовой надой молока в опытных группах было выше чем в контрольной, в опытной-I – на 1510 кг, опытной-II – на 1720, а разница между опытными группами составила 210 кг. Для коров опытной 1 группы всего было израсходовано кормовой добавки 1 кг, а для животных опытной 2 группы – 1,5 кг. Всего для опыта было затрачено 2,5 кг кормовой добавки Смартамин-М, и дополнительно получено по двум опытным группам 3230 кг молока по сравнению с контрольной группой [2,4]. Главным приоритетом хозяйства является снижение себестоимости 1 ц производимого молока, что в свою очередь отражается на рентабельности хозяйства. В нашем примере экономическую выгоду получаем путем увеличение количества произведенной продукции при дополнительных затратах, которая в свою очередь 245 Таблица 4 - Молочная продуктивность коров за 100 дней лактации Показатель Удой молока натуральной жирности, кг Валовой надой молока, кг Содержание жира, % Содержание белка, % Выход молочного жира, кг Выход молочного белка, кг ЭКЕ Сырого протеина, г Концентратов, г контрольная Группа опытная-I опытная-II 25,81 27,32 27,53 25810 27320 4,21 4,23 2,92 2,98 10866 11556 754 814 Затраты корма на производство 1 кг молока: 0,86 0,83 131 133 194 183 27530 4,25 3,03 11700 834 0,82 134 182 Таблица 5 - Результаты опыта Показатель Цена реализации 1 ц молока, руб. Стоимость валовой продукции по закупочным ценам, руб. Себестоимость 1 ц молока, руб. Себестоимость всей продукции, руб. Прибыль от реализации молока, руб. Рентабельность, % Контрольная 200,00 Опытная-I 200,00 Опытная-II 200,00 51620 153,30 39567 12053 30,46 54640 143,59 39229 15411 39,28 55060 139,87 38506 16554 42,99 окупается в разнице между валовыми надоями молока опытной и контрольной группы [6,7]. Результаты экономической эффективности показаны в таблице 5. Рентабельность производства молока по группам составила: 30,46% в контрольной, 39,28 в опытной-I и 42,99% во II-опытной. Выводы. Применение препарата Смартамин-М на протяжение первых 100 дней лактации новотельного периода положительно повлияло на продуктивность коров. Зоотехническая и экономическая оценка использования защищенного метионина показала их высокую эффективность. За три месяца лактации имело место снижения затрат кормов на производство 1кг молока: энергии от 0,86 до 0,80 ЭКЕ; сырого протеина от 134 до 131 г и концентратов от 194 до 182 г. Использование препарата Смартамин-М на протяжение первых 100 дней лактации новотельного периода положительно повлияло на продуктивность молочных коров. За три месяца лактации снижение затрат кормов на производство 1кг молока составило: энергии – на 7 %; сырого протеина – на 2 и концентратов – на 6 %. Для балансирования аминокислотного состава рациона кормления коров с продуктивностью 6000 кг молока и увеличения производства биологически полноценной продукции в новотельный период рекомендуем использовать кормовую добавку Смартамин-М с защищенной формой метионина в количестве 0,16 % и 0,25 % от массы скармливаемого комбикорма-концентрата или 10 и 15 г соответственно на голову в сутки. Библиографический список: 1. Нормы и рационы кормления сельскохозяйственных животных [Текст]: справочник / А.П. Калашников [и др.] под ред. А.П. Калашникова. – 3-е изд., доп. – Москва, 2003. – 456 с. 2. Ишмуратов, Х.Г. Смешанные и одновидовые посевы кормовых культур в решении проблемы белка 246 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9. 10. на этапах биогеоценоза: корм – животное – продукция [Текст]: рекомендации /Х.Г. Ишмуратов, А.И. Фицев, А.Г. Ман­напов, В.М. Косолапов. – Уфа: Башкирский ГАУ, 2006. – 144 с. Хазиахметов, Ф.С. Раздой коров и первотёлок: наука и практика [Текст]: электронная статья / Ф.С. Хазиахметов, Х.Г. Ишмуратов. – 3 февраля 2010 года http://www.iksrb.ru/pages/docs/mc_showdoc. aspx?id=4476. Хованская, А.А. Применение бикарбоната натрия в рационах кормления молочного скота [Текст]: статья / А.А. Хованская, Х.Г. Ишмуратов. «ЕС – Россия: 7-я Рамочная программа в области биотехнологии, сельского, лесного, рыбного хозяйства и пищи» в рамках Федеральной целевой программы «Научные и научно-педагогические кадры инновационной России» на 2009-2013 гг. 29 сентября-5 октября 2010 г. – Уфа: БГАУ, 2010. – 322-326 с. Хованская, А.А. Продуктивность, качество молока у коров при использовании в рационах кормления пивной дробины и бикарбоната натрия [Текст]: статья / А.А. Хованская, Х.Г. Ишмуратов. Особенности развития агропромышленного комплекса на современном этапе //Материалы всероссийской научно-практической конференции в рамках ХХI Международной специализированной выставки «АгроКомплекс – 2011» (16-17 марта 2011 г.) Часть I. Уфа: ФГОУ ВПО «Башкирский ГАУ». – 2011. – С. 186-188. Хазиахметов, Ф.С. Кормление молочных коров [Текст]: статья / Ф.С. Хазиахметов, Х.Г. Ишмуратов, Ш.М. Гареев. Система ведения агропромышленного производства в РБ. – Уфа: АН РБ, Гилем, 2012. – 330-348 с. Хазиахметов, Ф.С. Особенности заготовки кормов в условиях засухи и рационального их использования в зимне-стойловый период [Текст]: методические рекомендации. 2-ое изд. с изм. и доп. / Ф.С. Хазиахметов, Х.Г. Ишмуратов [и др.]. – Уфа: Башкирский ГАУ, 2012. – 68 с. Дмитриев, В.Н. Влияние препарата Смартамин-М на молочную продуктивность коров [Текст]: статья / В. Н. Дмитриев, Х. Г. Ишмуратов. VI Международный студенческий форум 2014. -http://www. scienceforum.ru/2014/635/4334. Узянбаева, Н.Н. Использование разнокачественных кормов в зимних рационах кормления дойных коров с одинаковой продуктивностью [Текст]: статья / Н. Н. Узянбаева, Х. Г. Ишмуратов. Российский электронный научный журнал №1, Январь 2014. Масалимов, И.Ф. Применение Бергафата при кормлении новотельных высокопродуктивных коров [Текст]: статья / И.Ф. Масалимов, Х.Г. Ишмуратов. Перспективы инновационного развития АПК // Материалы Всероссийской научно-практической конференции в рамках XXIV Международной специализированной выставки «Агрокомплекс – 2014» (11-14 марта 2014). Часть I. Уфа: ФГБОУ ВПО «Башкирский ГАУ». – 2014. – С. 186-188. THE USE OF THE DRUG SMARTEN-M FEED-CONCENTRATES WHEN FEEDING COWS V.N. Dmitriyev, Kh.G. Ishmuratov Keywords: drug Smarten-M; recipe feed-concentrate; basic diet; cow Holstein black-motley breed; the average daily milk yield; cost 1 C milk; profits and profitability of milk production. The use of the drug Smarten-M during the first 100 days of lactation fresh period had a positive impact on the productivity of cows. Three months of lactation, the lower cost of feed for production of 1 kg of milk amounted to: energy - 7 %; crude protein - 2 and concentrates - 6 %. 247 УДК 636.4.082.265 СИСТЕМА СОВЕРШЕНСТВОВАНИЯ СВИНЕЙ КРУПНОЙ БЕЛОЙ ПОРОДЫ ПРИ ЧИСТОПОРОДНОМ РАЗВЕДЕНИИ А.А. Зацаринин, кандидат сельскохозяйственных наук, доцент ФГБОУ ВПО «Саратовский государственный аграрный университет» им. Н.И. Вавилова тел. 8-927-163-45-28, zacarinin_a@mail.ru Ключевые слова: крупная белая порода, «освежение крови», воспроизводительные, откормочные и мясные качества. Работа посвящена изучению результатов «освежения крови» свиней крупной белой породы отечественного происхождения за счет генетического потенциала свиней эстонской, французской и венгерской селекции. Лучшие воспроизводительные качества получены от использования свиноматок французской селекции; откормочные и мясные качества – хряков венгерской селекции. Введение. Крупная белая порода свиней отличается уникальными адаптационными способностями, в силу чего занимает лидирующую позицию по удельному весу в структуре породного состава нашей страны [2,4]. Хорошие воспроизводительные качества свиней крупной белой породы делают ее не заменимой материнской породой в региональных системах разведения [6]. Однако, несмотря на это, развитие откормочных и мясных качеств у животных данного генотипа оставляет желать лучшего, поскольку, в основной массе, животные позднеспелые и уклоняются в сальное направление, что при современных требованиях рынка снижает их конкурентоспособность с породами зарубежной селекции. Улучшение мясных форм, при чистопородном разведении крупной белой породы, должно идти за счет «освежения крови» с высокопродуктивными животными заводских и внутрипородных типов, а также вводного скрещивания с мясными породами, хорошо зарекомендовавших себя на мировом рынке производства свинины, обладающие хорошими адаптационными способностями к условиям разведения каждого региона нашей страны. С помощью «освежения крови» получают физиологически здоровое, крепкое конституционально, высокопродуктивное потомство с повышенной генетической неоднородностью и признаками гетерозиса (Иванов М.Ф., 1931) [3,5,7,8]. Изучение новых генетических сочетаний свиней с высокими показателями продуктивности и хорошими адаптационными качествами является важным и перспективным направлением в свиноводстве. 248 Целью наших исследований было изучение результатов использования специализированного генетического потенциала свиней в различных сочетаниях при улучшении свиней крупной белой породы отечественной селекции. Материал и методы исследований. Научно-производственный опыт проводился в 2011-2014 гг. на базе ООО «Время-91» Энгельсского района Саратовской области по схеме, приведенной в таблице 1. Для проведения опыта было сформировано 10 производственных групп свиноматок крупной белой породы различного происхождения в количестве по 25 голов в каждой, в возрасте 1,52,5 года. Свиньи эстонского внутрипородного типа завезены из СХПК «им. Суворова» Чувашской Республики, французской селекции – ООО «Селекционно-гибридный центр» Воронежской области, венгерской – ООО «Кузнецкий проект» Пензенской области. I, II, III и IV группы свиноматок представляли собой исходные чистые формы крупной белой породы: отечественного происхождения, эстонского внутрипородного типа, французской и венгерской селекции – соответственно. Формирование групп на комбинативную сочетаемость осуществлялось по методу реципрокного подбора. Группы свиноматок комплектовались по принципу аналогов: показатели роста и развития удовлетворяли требованиям класса элита и первого класса (Порядок и условия проведения бонитировки племенных свиней, 2009), условия содержания и кормления свиноматок, как Таблица 1 - Схема опыта № группы I II III IV V VI VII VIII IХ Х свиноматки Порода, тип, происхождение n крупная белая, отечественной селекции (КБ) крупная белая, эстонский внутрипородный тип (ЭКБ) крупная белая, французской селекции (ФКБ) крупная белая, венгерской селекции (ВКБ) 25 крупная белая, отечественной селекции (КБ) крупная белая, эстонский внутрипородный тип (ЭКБ) крупная белая, отечественной селекции (КБ) крупная белая, французской селекции (ФКБ) крупная белая, отечественной селекции (КБ) крупная белая, венгерской селекции (ВКБ) 25 в супоросный, так и в подсосный периоды были одинаковые. Воспроизводительные качества свиноматок изучались по многоплодию, крупноплодности, молочности, массе гнезда в 30-дневном возрасте, количеству поросят к 30-дневному возрасту. Откормочные качества молодняка изучались путем проведения контрольного выращивания. Мясные качества изучались на основании контрольного убоя, проводимого в соответствии с методикой ВАСХНИЛ (1978). Материалы исследований обработаны методом вариационной статистики по методике Н.А. Плохинского (1969), с использованием компьютерной программы Microsoft Office Excel. Результаты исследований и их обсуждение. На основании исследований установлено, что свиноматки практически всех подопытных групп характеризовались вполне хорошими показателями воспроизводства, имея зависимость от происхождения и комбинативной сочетаемости (табл.2). Можно отметить, что во всех исследуемых генетических сочетаниях по типу «освежения крови» свиней крупной белой породы отечественного происхождения, практически по всем основным показателям вос- 25 25 25 25 25 25 25 25 хряки n крупная белая, отечественной селекции (КБ) крупная белая, эстонский внутрипородный тип (ЭКБ) крупная белая, французской селекции (ФКБ) крупная белая, венгерской селекции (ВКБ) крупная белая, эстонский внутрипородный тип (ЭКБ) крупная белая, отечественной селекции (КБ) крупная белая, французской селекции (ФКБ) крупная белая отечественной селекции (КБ) крупная белая, венгерской селекции (ВКБ) крупная белая, отечественной селекции (КБ) 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 производства наблюдались признаки истинного гетерозиса. На фоне вполне высокого многоплодия свиноматок отечественного происхождения, при «освежении крови» генетическим потенциалом неродственных им форм произошло увеличение данного показателя во всех группах. При этом высокое многоплодие было характерно для свиноматок французского происхождения (III группа), а максимальное - VII группы в сочетании генотипов ФКБ х КБ: преимущество их над I группой составило 6,5% (P>0,95) и 9,2% (P>0,95) – соответственно. Более крупные поросята рождались при кроссе свиноматок отечественного происхождения с хряками венгерской и французской селекции: преимущество Х и VII группы над сверстницами из I группы по крупноплодности составило 12,6% (P>0,99) и 10,8% (P>0,99) - соответственно. Наибольшей молочностью отличались свиноматки VII и VIII групп при реципрокном подборе свиней отечественного происхождения и французской селекии, что можно рассматривать как положительное влияние генотипа последних на потенциал первых: преимущество 249 Таблица 2 - Воспроизводительные качества свиноматок при различных сочетаниях, Группа I II III IV V VI VII VIII IХ Х Генотип Многоплодие, гол Масса при рождении, кг Одной гоГнезда ловы (крупноплодность), кг КБ х КБ 10,8±0,11 1,19±0,01 12,85±0,09 ЭКБ х ЭКБ 10,9±0,10 1,21±0,02 13,19±0,08 ФКБ х 11,5±0,12 1,24±0,02 14,26±0,09 ФКБ ВКБ х ВКБ 11,1±0,11 1,23±0,02 13,65±0,08 КБ х ЭКБ 11,2±0,15 1,24±0,02 13,89±0,11 ЭКБ х КБ 10,9±0,13 1,20±0,03 13,06±0,10 КБ х ФКБ 11,4±0,11 1,28±0,03 14,59±0,12 ФКБ х КБ 11,8±0,15 1,25±0,02 14,75±0,12 КБ х ВКБ 11,6±0,16 1,34±0,02 15,54±0,11 ВКБ х КБ 11,3±0,13 1,26±0,03 13,24±0,10 Молочность, кг Кол-во поросят в 30 дн., гол. Масса в 30 дн. кг Одной гнезда головы Сохранность к 30 дн., % 52,6±0,51 53,8±0,69 52,1±0,65 9,8±0,06 9,6±0,05 9,8±0,07 7,1±0,33 7,4±0,35 7,2±0,38 69,6±2,36 71,0±3,28 70,6±3,43 90,7 88,1 85,2 52,8±0,62 9,5±0,07 55,9±0,97 9,9±0,09 54,5±1,03 9,7±0,09 56,8±0,91 10,0±0,08 60,1±0,81 10,6±0,09 55,4±0,75 10,3±0,09 54,2±0,96 9,9±0,09 7,4±0,48 7,4±0,67 7,2±0,62 7,6±0,82 8,0±0,76 7,9±0,54 7,8±0,61 70,3±3,33 72,9±4,88 69,8±4,24 76,1±4,83 84,8±3,91 81,4±4,25 77,2±4,16 85,6 88,4 89,0 87,7 89,8 88,8 87,6 Таблица 3 - Откормочные и мясные качества потомства, Группа Генотип I II III IV V VI VII VIII IХ Х КБ х КБ ЭКБ х ЭКБ ФКБ х ФКБ ВКБ х ВКБ КБ х ЭКБ ЭКБ х КБ КБ х ФКБ ФКБ х КБ КБ х ВКБ ВКБ х КБ Возраст Затраты достижения корма на 1 живой массы кг прироста, 100 кг, дни к.ед. 198 ± 2,24 3,89 ± 0,06 184 ± 2,38 3,62 ± 0,09 175 ± 2,12 3,42 ± 0,10 175 ± 1,94 3,40 ± 0,09 183 ± 3,66 3,59 ± 0,14 188 ± 3,57 3,74 ± 0,10 178 ± 3,83 3,46 ± 0,18 181 ± 3,29 3,54 ± 0,12 174 ± 1,89 3,38 ± 0,08 180 ± 2,06 3,53 ± 0,09 их над сверстницами из I группы составило 8,0% (P>0,99) и 14,2% (P>0,99) – соответственно. По количеству поросят в 30 дневном возрасте лидировали свиноматки VIII групп, что еще раз подчеркивает хорошие воспроизводительные качества свиноматок французской селекции. Их превосходство над I контрольной группой составило 8,2% (P>0,99). Максимальная же сохранность молодняка была присуща I группе (90,7%), что свидетельствует о высоких приспособительных качествах свиней отечественного происхождения к местным условиям разведения. Самые тяжеловесные поросята в 30 дневном возрасте отмечались в VIII и IХ группах: они 250 Толщина шпика, мм Длина туши, см Масса окорока, кг 29,8 ± 0,06 27,1 ± 0,07 22,6 ± 0,26 22,4 ± 0,46 27,6 ± 0,08 28,0 ± 0,07 26,9 ± 0,07 27,1 ±0,39 24,6 ± 0,49 25,9 ± 0,51 93,2 ± 0,67 97,4 ± 0,83 97,6 ± 0,59 97,8 ± 0,69 96,5 ± 1,03 95,3 ± 1,19 96,8 ± 1,02 96,1 ± 0,98 97,1 ± 0,76 96,3 ± 0,75 10,4 ± 0,09 10,5 ± 0,08 11,1 ± 0,10 11,3 ± 0,10 10,7 ± 0,13 10,4 ± 0,12 10,9 ± 0,11 10,6 ± 0,12 11,4 ± 0,13 10,9 ± 0,12 достоверно превосходили молодняк контрольный группы на 12,7% (P>0,99) и 11,3% (P>0,99). Завершающим показателем, характеризующим воспроизводительные качества свиноматок, является масса гнезда поросят в 30 - дневном возрасте. Установлено, что свиноматки VIII и IХ групп обладали максимальным развитием данного признака, а преимущество их над сверстницами I контрольной группы составляло 12,7% (P>0,99) и 11,3% (P>0,99) – соответственно. Все это показывает высокую степень проявления «реализованного материнского эффекта», обусловленного высокими наследственными качествами [1] свиноматок французской селекции. По скороспелости кроссированный молодняк имел закономерное преимущество над животными отечественного происхождения. Наилучшие показатели были характерны для молодняка IХ группы (174 дня), а также потомству исходных родительских форм венгерской и французской селекции. Отмечено достоверное (P>0,99) превосходство молодняка IХ группы по развитию данного признака над сверстниками из I контрольной группы (13,8%). Наименьшими затратами корма на 1 кг прироста характеризовалось поголовье IХ группы, а наибольшими – молодняк I группы. При этом разница по величине данного показателя в пользу кросса в сочетании КБ х ВКБ составила – 15,1% (P>0,99). Туши молодняка от чистых исходных родительских форм венгерской и французской селекции отечественного происхождения отечественного происхождения отечественного происхождения отечественного происхождения обладали наибольшей длиной и наименьшей толщиной шпика над 6-7 грудными позвонками и (97,8 см и 22,4 мм, 97,6 см , и 22,6 мм - соответственно). Кроссированный молодняк занимал промежуточное положение по развитию данных признаков, лидировали молодняк IХ и VIII групп с незначительной разницей в пользу первых. Окорока всех сравниваемых групп были массивные и хорошо выполнены. Самые массивные окорока, из всех сравниваемых групп, получены от молодняка IХ группы, которые незначительно (P<0,95) превосходили чистые исходные линии венгерской и французской селекции по развитию данного признака. Заключение. Для улучшения племенных и продуктивных качеств свиней крупной белой породы отечественного происхождения рекомендуется проводить «освежение крови» животными эстонского внутрипородного типа, французской и венгерской селекции. Наиболее полный эффект гетерозиса по воспроизводительным качествам проявляется при сочетании свиноматок французской селекции и хряков отечественного происхождения; откормочным и мясным качествам - свиноматок отечественного происхождения и хряков венгерской селекции. Библиографический список: 1. Бажов, Г.М. Роль материнской наследственности в формировании эффекта гетерозиса в свиноводстве / Г.М. Бажов // Свиноводство.- 2009.- № 1.- С. 4-7. 2. Дунин, И.М. Краткие итоги работы племенного и товарного свиноводства России за 2012 год / И.М. Дунин, В.В. Гарай, С.В. Павлова // Свиноводство. - 2013. - № 5. - С. 6-9. 3. Зацаринин, А.А.Совершенствование племенных и продуктивных качеств свиней крупной белой породы методом «освежения крови» / А.А. Зацаринин // Известия Самарской государственной сельскохозяйственной академии.-2013.-Выпуск 1.- С.64-66. 4. Мысик, А.Т. Состояние животноводства в мире, на континентах, в отдельных странах и направления развития // А.Т. Мысик // Зоотехния.- 2014.-№1.-С.2-5. 5. Погодаев, В.А. Воспроизводительные качества свиноматок СМ-1 при скрещивании с хряками породы ландрас французской и канадской селекции / В.А. Погодаев, А.М. Шнахов, А.Д. Пешков // Свиноводство.-2010.-№6.-С.16-18. 6. Соловых, А.Г. Репродуктивные и откормочные качества подсвинков крупной белой породы, дюрок и их помесей / А.Г.Соловых, А.В. Овчинников, О. Хренова // Свиноводство.- 2005. -№3.С.25-27. 7. Ухтверов, А. Продуктивные качества свиней крупной белой породы свиней разных генотипов при прямом и реципрокном спаривании// Свиноводство.- 2003.- № 4.- С. 5-6. 8. Шарнин, В.Н. Проблемы отечественной селекции свиней / В.А. Шарнин, Ю.П. Садовников, Н.В. Михайлов // Свиноводство.- 2012.-№6.-С.11-13. SYSTEM IMPROVE QUALITY PIGS OF LARGE WHITE BREED WITH PUREBRED BREEDING A. A. Zatsarinin Key words: large white breed, “refreshing blood, reproductive, fattening and meat quality. 251 The work is devoted to the study results “refresh” blood of pigs of large white breed of domestic origin at the expense of the genetic potential of pigs Estonian, French and Hungarian breeding. Better reproductive qualities obtained from the use of sows French selection; fattening and meat quality of boars Hungarian breeding. УДК 636.084 ЭНЕРГЕТИЧЕСКАЯ КОРМОВАЯ ДОБАВКА В РАЦИОНАХ КОРМЛЕНИЯ НОВОТЕЛЬНЫХ КОРОВ И.Ф. Масалимов, магистр 2 года обучения факультета Тел.:8 (347) 252-55-58. Х.Г. Ишмуратов, доктор сельскохозяйственных наук, профессор, Тел.:8 (347) 252-55-58, Ishmuratov_57@mail.ru ФБГОУ ВПО Башкирский ГАУ Ключевые слова: молочно-товарный комплекс, коровы голштинской породы немецкой селекции, энергетическая добавка Бергафат, среднесуточный рацион кормления, молочная продуктивность коров, стоимость валовой продукции, общие производственные затраты, прибыль, уровень рентабельности. При внесении Бергафата в дроблёную зерносмесь собственного производства в составе основного рациона кормления в количестве 100 г/гол/сут., среднесуточный удой коров повысился за период новотельности на 4,86 %, а при даче 150 г/гол/сут. прирост надоя молока составил 7,37 %, по сравнению с контролем. Введение. Разработка научно обоснованных систем кормления животных и технологий подготовки кормов к скармливанию обеспечивает максимальный выход высококачественной продукции с единицы земельной площади. В практическом отношении кормление сельскохозяйственных животных можно охарактеризовать как важнейший комплекс производственных процессов в животноводстве и растениеводстве, обеспечивающий запрограммированное производство кормов и высокоэффективную переработку их в животноводческую продукцию [2]. Мировой опыт свидетельствует о том, что очередной пересмотр кормовых норм знаменует собой новую веху в развитии учения о кормлении. Корректировка кормленческих нормативов означает также достижение крупных успехов в селекции животных и технологии кормов. Поэтому совершенствование норм кормления на основе непрерывного уточнения потребности и разработка технологических приемов, обеспечивающих нормированное кормление с учетом особенностей производства на ферме, породной 252 принадлежности, возраста, назначения и физиологического состояния животных должны быть постоянной составной частью научных исследований [1]. Цель и задачи исследования. Цель данной работы явилось определить влияние энергетической добавки Бергафат в составе основного рациона кормления на показатели молочной продуктивности высокопродуктивных лактирующих коров в новотельный период. Для успешной реализации поставленной цели необходимо было выполнить следующие задачи: - составить на основе норм потребности среднесуточный рацион кормления для новотельных дойных коров; - определить дозу и сроки скармливания препарата; - оценить влияние препарата на молочную продуктивность коров за первые 90 дней лактации; - рассчитать экономическую эффективность влияния препарата на показатели производства молока. Материал, методика и условия проведения исследований. Исследования проводились в условиях молочно-товарной фермы ООО «Агрофирма Байрамгул» Учалинского района в 2010 году на коровах голштинской породы немецкой селекции. Для проведения научно-хозяйственного опыта были сформированы 3 группы новотельных коров по принципу пар-аналогов в количестве 10 голов в каждой. Подбирали коров-аналогов в группы с учётом происхождения, породы, возраста в отёлах, живой массы, уровня молочной продуктивности и качества молока за предыдущую лактацию. В опыте условия содержания, кормления животных были одинаковыми и соответствовали общим зооветеринарным требованиям. Основной рацион кормления соответствовал современным детализированным нормам [3]. Коровам-аналогам двух опытных групп в соответствии с условиями опыта в составе кормосмеси дополнительно скармливали энергетическую кормовую добавку Бергафат, согласно инструкции по его применению, что показано в нижеприведённой схеме. Бергафаты – фракционные (получены с помощью физических процессов, а не химическим путем) сухие пальмовые жиры, достаточно давно известны и широко используются в кормлении высокопродуктивных коров как в России, так и во всем мире. Это чистые жиры (99,9%) «защищённые», в рубце благодаря своему составу выполняют разгрузочную функцию для печени. Они абсолютно безопасны для здоровья животных и людей. Энергетическая ценность Бергафата составляет – 26,0 МДж NEL/кг, общая энергия – 36,8 МДж/кг, температура плавления 56-60о С. Представляет собой сухой сыпучий порошок, хорошо смешиваемый с комбикормом. Для получения качественной кормовой смеси мы Бергафат добавляли в дроблёную зерносмесь собственного производства – дерть (ячменя, гороха и овса) через люк загрузки добавок, который расположен под бункером смесителя ССК-2,3 (смеситель для сыпучих, сухих кормов шнековый) на миникомбикормовом оборудовании «Доза». Кормление коров было трёхразовое с применением полнорационной кормосмеси, которая приготавливалась и раздавалась на прицепных смесителях-кормораздатчиках [5,6]. Эффект от использования Бергафат можно ожидать следующий: удои молока увеличива- Таблица 1 - Схема опыта Группа контрольная Количество коров, гол. 10 I-опытная 10 II-опытная 10 Особенности кормления ОР ( основной рацион ) ОР + 100 г/гол/ сут Бергафат ОР + 150 г/гол/ сут Бергафат Таблица 2 - Состав Бергафата Показатель Растительный пальмовый жир Лецитин Ароматизатор Диоксид кремния Влага Примесь Температура плавления, °С Процентное соотношение 90 5 2 2 1 1 56-60 ются в диапазоне от 1,8 до 3,5 л молока в день, жирность молока повышается от 2 до 15%, суммарное содержание белка в молоке возрастает. Скармливание коровам Бергафат повышает процент животных, проявляющих признаки эструса (концентрация прогестерона >1 нг/мл) между 30 и 90 днями после родов на 72,7%, по сравнению с контрольной группой. Исследованиями установлено, что процент стельных коров после первого осеменения в экспериментальной группе был почти вдвое выше, чем по сравнению с контрольной группой (62,5% против 35,5%). Результаты исследования. Из таблицы 4 следует, что наивысший среднесуточный удой во всех трёх группах приходится на середину третьего месяца лактации: контрольная – 31,5 кг; I-опытная – 34,1; II-опытная – 34,9 кг. Это можно сказать пик молочной продуктивности у коров в период новотельности и раздоя. Именно первые два-три месяца лактации считаются критическими, так как потребление сухого вещества кормов рациона повышается именно после прохождения молочного пика и, начинается на 90-100 день после отёла. Высокопродуктивные коровы с удоем 30 кг и более в сутки дают молока зна- 253 Таблица 3 - Рацион кормления коров с массой 550 кг и суточным удоем 29-31 кг Корма Норма Сено бобово- злаковое Силос разнотравный из подвяленных трав Дерть из ячменя Дерть из гороха Дерть из овса Патока кормовая П 60-6 М Содержится в рационе Разница Добавки Соль поваренная, г Монокальцийфосфат кормовой, г Итого Структура, % Кол-во корма, кг ЭКЕкрс 29-31 22,9 ПП., г 2252 Са, г 143 Р, г 102 Каротин, мг 890 18,00 6,00 4,08 318 45,4 15 126 31,00 28,00 7,00 672 53,2 25,2 560 15,37 14,58 12,05 8,20 3,00 3,00 3,00 2,00 0,09 3,52 3,33 2,76 1,88 333 576 237 120,0 1,2 6,0 4,5 6,5 9,0 12,9 10,2 0,40 0,6 3,9 - 100,0 45,0 22,57 2256 117 73 890 - 0,33 4,0 -26 -29 23,6 32,2 141 105 Кол-во 90 134 45,0 22,57 2256 890 Таблица 4 - Результаты исследований и их анализ Группа контрольная I-опытная II-опытная Продуктивность и качество молока Среднесуточный удой, кг Валовой надой, ц Массовая доля жира, % Массовая доля белка, % Среднесуточный удой, кг Валовой надой, ц Массовая доля жира, % Массовая доля белка, % Среднесуточный удой, кг Валовой надой, ц Массовая доля жира, % Массовая доля белка, % чительно быстро и больше, чем съедают корма в этот период. И остаётся всеми известными способами обеспечить максимальную поедаемость кормов рациона, а если этого не сделать, то недостаток глюкозы и других энергетических метаболитов создаст общий и достаточно острый дефицит энергии в организме. В целях предупреждения нарушения рубцового пищеварения и обмена веществ, мы ввели в состав кормосмеси буферную добавку Бергафат, чтобы нормализовать энергетический обмен у коров в период его наивысшего напряжения. 254 I 26,84 80,52 3,64 3,26 27,90 83,70 3,70 3,29 27,98 83,94 3,73 3,31 Месяц лактации II 29,17 87,51 3,72 3,31 31,00 93,00 3,81 3,35 31,44 94,32 3,87 3,36 III 31,50 94,50 3,75 3,42 34,10 102,30 3,86 3,53 34,90 104,70 3,94 3,42 Эффект от применения данного препарата коровами I и II опытных групп ощутили сразу. Результаты первых контрольных доек свидетельствовали о том, что уже в первом месяце лактации удои выросли на 3,95 и 4,25 % соответственно, по сравнению с контролем. Качественные показатели молока подтвердили адекватность полезного действия препарата, при этом массовая доля жира и белка также повысилась. Во втором месяце лактации коровы, которые получали добавку, значительно превосходили своих сверстниц-коров как по удою, так и по Таблица 5 - Показатели экономической эффективности использования препарата Бергафат Показатель Количество , гол Продолжительность опыта, дней Среднесуточный удой, кг Валовой надой, ц Цена реализации 1ц молока, руб Стоимость валовой продукции, руб Общие производственные затраты, в т.ч. расходы на покупку, транспортировку и смешивание, руб Прибыль, руб Уровень рентабельности,% содержанию жира и белка в молоке. Разница по удою составила: в I-опытной на 1,83 кг больше, чем в контрольной, а во II-опытной – на 2,27 и 0,44 кг выше, чем в контроле и I-опытной группе. Третий месяц лактации также характеризовался повышением уровня количества и качества надаиваемого молока коровами всех подопытных животных, включая и контрольную группу. Это говорит о том, что рацион кормления коров полностью соответствует требуемым потребностям норм кормления с учётом их физиологического состояния и здоровья. Если сравнить показатели молочной продуктивности животных за три месяца лактации в разрезе групп, то видно, что она возросла: в контроле – на 17,36 %; I-опытной – на 22,22; и во II-опытной – на 24,73 %. Следовательно, при скармливании Бергафата в количестве 100 г/гол/сут. среднесуточный удой за период новотельности повысился на 4,86 %, а контрольная 10 90 29,17 262,53 1800 472554 318540 - Группа I-опытная 10 90 31,00 279,00 1800 502200 321540 3000 II-опытная 10 90 31,44 282,96 1800 509328 323040 4500 154014 48,35 180660 56,18 186288 57,66 в размере 150 г/гол/сут. прирост составил 7,37 % по сравнению с контролем. Оценка результатов экономической эффективности показала, что использование энергетической добавки Бергафат в первые 90 дней лактации положительно повлияло не только на энергетический статус организма-животного, что в дальнейшем благоприятно отразилось и на продуктивности самих коров. Выводы. Использование Бергафата в обеих опытных группах коров, по сравнению с контролем, наряду с увеличением удоя и валового производства молока способствовало повышению поступления денежной массы и прибыли (на 26646 рублей в I-опытной и на 32274 рубля во II-опытной), что в целом улучшила рентабельность её производства на 7,83 и 9,31%, соответственно[4]. Библиографический список: 1. Нормы и рационы кормления сельскохозяйственных животных [Текст]: справочник / А.П. Калашников [и др.] под ред. А.П. Калашникова. – 3-е изд., доп. – Москва, 2003. – 456 с. 2. Ишмуратов, Х.Г. Энергосберегающие технологии производства кормов, эффективность их использования животными при производстве молока и говядины [Текст]: монография / Х.Г. Ишмуратов, А.Г. Маннапов, А.И. Фицев. – Уфа: Издательство БГАУ, 2006.-170с. 3. Ишмуратов, Х.Г. Практикум по технологии производства и переработки животноводческой продукции [Текст]: учебное пособие / Х.Г. Ишмуратов, Н.М. Губайдуллин, В.М. Косолапов, А.Г. Маннапов, А.И. Фицев, А.Е. Андреева, Ф.М. Гафарова. – М. ООО Издательство «Лань», 2010. –280 с. 4. Масалимов, И.Ф. Применение Бергафата при кормлении новотельных высокопродуктивных коров [Текст]: статья / И.Ф. Масалимов, Х.Г. Ишмуратов. Перспективы инновационного развития АПК // Материалы Всероссийской научно-практической конференции в рамках XXIV Международной специализированной выставки «Агрокомплекс – 2014» (11-14 марта 2014). Часть I. Уфа: ФГБОУ ВПО «Башкирский ГАУ». – 2014. – С. 186-188. 5. Хазиахметов, Ф.С. Кормление молочных коров [Текст]: статья / Ф.С. Хазиахметов, Х.Г. Ишмуратов, Ш.М. Гареев. Система ведения агропромышленного производства в РБ. – Уфа: АН РБ, Гилем, 2012. – 330-348 с. 255 6. Узянбаева, Н.Н. Использование разнокачественных кормов в зимних рационах кормления дойных коров с одинаковой продуктивностью [Текст]: статья / Н.Н. Узянбаева, Х.Г. Ишмуратов. Российский электронный научный журнал №1, Январь 2014. Издательство: ФГБОУ ВПО Башкирский Государственный Аграрный Университет. Адрес: 450001, г. Уфа, ул. 50-летия Октября, 34 7. E-mail: electronic_bsau@mail.ru. 8. Свидетельство о регистрации ЭЛ № ФС 77 – 54909 от 26.07.2013 г. ISSN 2308-9644 ENERGY FEED ADDITIVE IN DIETS FEEDING FRESH COWS I. F. Masalimov, K. G.Ishmuratov Keywords: the dairy complex, cows of Holstein breed German selection, energy Supplement, Bergafat, average daily feed rations, milk yield of cows, the value of gross output, total production costs, profit, profitability. Annotation. During the period of experiment the introduction of Bergafat in crushed seromas own production as part of the main feeding diet in amount of 100 g/head/day., average daily milk yield of cows has increased over the period of neoteleostei on a 4.86 %, and in giving 150 g/bird/ day. the increase in milk yield was 7,37 %, compared with the control. УДК: 636.22/.28.082.13(478)+619:614.31:637.12 ПОРОДЫ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА МОЛОЧНОГО НАПРАВЛЕНИЯ В РЕСПУБЛИКЕ МОЛДОВА И ВЛИЯНИЕ ИНФЕКЦИОННЫХ ЗАБОЛЕВАНИЙ НА БЕЗОПАСНОСТЬ МОЛОКАСЫРЬЯ С.В. Мелешко, аспирант Технического Университета Молдовы, заместитель начальника Управления безопасности пищевых продуктов животного происхождения и ветеринарной медицины Министерства Сельского Хозяйства и Пищевой Промышленности, тел. 0037322210238, sofiameleshko@bk.ru В.З. Енчу, кандидат ветеринарных наук, доцент Государственного Аграрного Университета Молдовы, начальник Управления безопасности пищевых продуктов животного происхождения и ветеринарной медицины Министерства Сельского Хозяйства и Пищевой Промышленности, тел. 0037322210062, enciu@bk.ru Ключевые слова: Красная степная порода, Симментальская порода, Чёрно-пёстрая порода, Голштинская порода, молочная продуктивность, инфекционные болезни, безопасность молока-сырья. Обзорная статья посвящена суммарному анализу породного состава коров использованных для получения безопасного и качественного молока в условиях Республики Молдова. Выращивание крупного рогатого скота направлено, главным образом, на производство молока и мяса – пищевых продуктов с наибольшим значением в питании населения и ценного сырья для промышленной переработки молока и мяса. В последние годы вследствие неудачной аграрной реформы произошел спад в системе выращивания крупного рогатого скота в Молдове [5,6]. Для получения молока в нашей стране используются следующие районированные 256 породы крупного рогатого скота - Красная степная в Центральных и Южных районах страны, Симментальская - на Севере страны, и межпородный вид (молдавский) Черно-пёстрой породы и Голштинской - для всех районов страны. Между тем различные инфекционные заболевания влияют на качество молока коров, факт, требующий введения мер предосторожности для того, чтобы ввести или исключить из пищевой цепочки непригодное молоко. Введение. Обеспечение продовольственной безопасности в условиях демографического взрыва населения во всем мире и повышения потребности к продукции, получаемой от крупного рогатого скота, является одним из основных компонентов экономической и социальной политики государств. Выращивание крупного рогатого скота является направлением первостепенного значения для мирового сельского хозяйства, из-за объема, стоимости и разнообразия производящейся продукции, получаемой в данной области деятельности. Таким образом, крупный рогатый скот обеспечивает 95% от общего количества молока, потребляемого в мире, 30-35% мяса и 90% обработанной кожи в кожевенной промышленности во всем мире. При нормальном режиме содержания, корова может обеспечить оптимальное количество мяса для 6-8 человек, и молока для 10-15 человек. Несмотря на то, что обеспечивается почти полностью объём молока и 1/3 от количества мяса, потребляемого в мире, более одного миллиарда от общей численности населения мира страдает от недоедания. Данное явление особенно серьезно в связи с тем, что 20-25% из указанного населения составляют дети в возрасте до пяти лет (статистика ФАО). Крупный рогатый скот, представляющий самую большую группу животных в мире, будучи видом, который использует кормовые ресурсы на природных лугах (представляющих 21,1% мирового сельскохозяйственного ареала), можно рассматривать как важный фактор, который влияет на управление сельской местностью и защиту ландшафта. Гранты, выделяемые для выращивания или приобретения пород молочного и мясного крупного рогатого скота, приспособленных к местной зоне и для поддержки строительства ферм, в соответствии с Положением о порядке распределения средств фонда субсидирования сельскохозяйственных производителей, ежегодно утверждаемые Правительством Республики Молдова, содействуют увеличению количества получаемого молока и мяса. Освоение экономического и производственного потенциала крупного рогатого скота в современных условиях, предполагает корреляцию с требованиями эксплуатации, экологическими особенностями ферм и технологических практик, с природными и искусственными условиями в которых эксплуатируются животные, а также с безопасностью пищевых продуктов животного происхождения. Материалы и методы исследования. В качестве материала для исследования послужили статистические данные о количестве скота и его производительности в Республике Молдова за 1989-2014 гг. Проведён анализ ряда работ опубликованных в стране и за рубежом о районированных породах крупного рогатого скота и инфекционных заболеваниях коров и влияние данных заболеваний на качество и безопасность сырого молока. Также были использованы данные из электронных источников, содержащих статистику, анализ и оценку в изучаемой области. Результаты и их обсуждение. Самый высокий уровень развития сектора животноводства в нашей стране был достигнут в 1989-1990 годах, когда были зафиксирован наивысший индекс численности стада коров, их годовая производительность и общая производительность молока [5, 6]. Результаты сравнительного анализа производственных показателей приведены в таблице 1. Аналогичный анализ отрасли производства коровьего молока был произведён следующими авторами в своих странах: Российская Федерация – А. Данкверт и др. 2010, Ю. Саморуков и др. 2013, Ю. Фомичев и др. 2013; Румыния – A. Avram и др., 2008, E. Jurco, G. Onaciu, 2008, Nela Caragia, 2010; Польша – Joanna Barlowska и др., 2006; Франция – Chilliard Y, Ferlay A, Doreau M, 2001; Республика Молдова – S. Chilimar, 2010, S. Coşman, 2013. Авторы приводят данные об уменьшении количества молочного скота в их странах, что указывает на необходимость активизации деятельности, связанной с селекционной работой, питанием и улучшением благосостояния животных и технологических процессов. Для производства молока в Республике Молдова используются следующие районированные породы крупного рогатого скота - Красная степная в Центральных и Южных районах страны, Симментальская - на Севере страны, и 257 Таблица 1 - Динамика численности стада крупного рогатого скота и производства молока в Республике Молдова Показатели Год 1989 2004 2005 2006 2007 2008 2009 2010 Численность крупного рогатого скота в 1112 331 310 299 232 218 221 216 хозяйствах всех категорий, тыс. голов Включительно коров, тыс. го402 231 217 207 169 160 161 154 лов Годовой объем производства 4014 2480 2800 2995 2871 3011 3316 3435 молока от коровы, кг Общий объем производства 1548 627 659 645 603 543 575 591 молока, тыс. тонн 2011 2012 2013 2014 204 191 189 191 144 134 131 130 3438 3425 3607 3672 560 525 526 525 1989 год – базисный год с высокими показателями производства. межпородный вид (молдавский) Черно-пёстрой породы и Голштинской - для всех районов страны. Каждая из районированных пород обладает индивидуальными показателями производительности и состава молока, что соответствует стандартам породы (таблица 2). Красная степная порода была сформирована в южном регионе Украины путём скрещивания местных популяций Серой степной породы с некоторыми Красными степными породами, завезенными немецкими поселенцами. В настоящее время Красная степная порода характеризуется уровнем производительности в 35004000 кг молока в год, будучи достаточно хорошо адаптированной к местным погодным условиям и питанию на юге Молдовы [5, 6]. Симментальскую породу привезли в нашу страну во второй половине девятнадцатого века. Первоначально данная порода использовалась для улучшения продуктивных качеств Серой степной породы в северной части республики. В 1960-1974 годы, для увеличения содержания жира в молоке коров местных помесей Симментальской породы были использованы для скрещивания быки Джерсейской породы. Путём скрещивания местных популяций Красной степной и Симментальской пород быками Гольштинской и Черно-пёстрой пород был улучшен и получен межпородный тип (молдав258 ский) Черно-пёстрой породы. Полученные метисы были разделены на два подтипа - «Северный», полученный путем скрещивания местного крупного рогатого скота Симментальской пароды с быками улучшающих пород и «Южный», созданный путем скрещивания Красной степной породы с быками улучшающих пород. Показатели производства молока указаны в таблице 3. Исследование гибридных пород крупного рогатого скота с разным уровнем генов показало, что одновременно с увеличением доли генов Голштинской породы от 50% до 75% и от 75% до 87,5% было замечено большое сходство с быками улучшающих пород [4, 5, 6]. Восстановление животноводческой отрасли в нашей стране продолжается, и появляются новые фермы крупного рогатого скота для производства молока. Эти хозяйства внедряют новые технологии, оснащены современной техникой и племенным скотом, как правило, приобретенными за рубежом. Наиболее представительные племенные хозяйства в Республике Молдова представлены в таблице 4. Анализ данных, приведённых в таблице, указывает, что из шести молочно-товарных ферм, содержащих Черно-пёструю породу, только одно хозяйство (ООО «Агро-Маире») достигло стандартных показателей. Ферма АО «Страпит» поддерживает производительность молока, превышающую стандарт Симментальской породы, Таблица 2 - Показатели производительности и состава молока в соответствие со стандартами породы Наименование породы Живой вес, кг Чёрно-пёстрая Симментальская Красная степная Голштинская 500-600 550-520 450-520 600-700 Количество жира ПродолжиПроизводительность за периЕжеи белка за период тельность од лактации дневный лактации периода удой молактации, белок, белок, лока, кг молоко, кг жир, % жир, кг дни % кг 305 20-22 5000-7000 3,6-3,7 3,0-3,2 18000 15000 305 13-15 4000-5500 3,9-4,5 3,3-3,5 15600 13200 305 12-15 3500-4000 3,7-3,9 3,2-3,5 12850 11200 305 23-30 7000-9000 3,6-3,8 3,2-3,3 25200 22400 Таблица 3 - Производительность гибридизированных коров за 305 дней первой лактации Доля генов Голштинской породы, % кол. коров 25-50 51-75 76-87,5 90 и > В среднем: 75 604 1302 342 2323 25-50 51-75 76-87,5 90 и > В среднем: 273 850 487 68 1678 Производительность молока количество Содержание M±m, кг жира M±m, % Подтип „Северный” 4249±128,2 3,55±0,010 5145±38,4 3,58±0,040 5224±26,4 3,58±0,002 4578±37,7 3,59±0,004 5077±20,0 3,58±0,002 Подтип „Южный” 4862±72,6 3,69±0,010 4634±58,9 3,71±0,010 3938±58,7 3,74±0,007 3423±81,9 3,75±0,018 4420±37,8 3,72±0,006 а хозяйства сосредоточенные на выращивание Голштинской породы соответствуют стандартным параметрам производительности данной породы (ООО «ДокСанКом» и АО «Айдын»). Многие литературные источники в области ветеринарной медицины [3, 9, 11, 12, 13, 14] указывают на то, что различные инфекционные заболевания влияют на качество и безопасность коровьего молока, факт, требующий соблюдения мер предосторожности для того, чтобы ввести или исключить из пищевой цепочки загрязненное молоко. Такое заболевание, как мастит, представляет собой потенциальную опасность для общественного здоровья путём провоцирования пищевых отравлений, вызванных употреблением зараженного маститного молока, в частности Streptococus pyogenes или Stafilococi enteroxigeni. В маститном молоке происходит снижение содержания сухого вещества, жира, казеина, лак- ± в сравнении с типовыми стандартами нового типа коров Содержание молоко, кг жира M±m, % +449 +1345 +1424 +778 +1277 -0,05 -0,02 -0,02 -0,01 -0,02 +1262 +1034 +338 -177 +820 +0,09 +0,11 +0,14 +0,15 +,012 тозы, кальция и витаминов группы В. В то же время увеличивается содержание альбумина, глобулина, хлора, натрия и витамина С [3]. В случае, когда 10-15% от общего объёма принятого молока являются маститным, могут проявиться следующие технологические дефекты: - слабое скисание (путем ингибирования роста или полного отсутствия Str. lactis); - нестабильность при температурах пастеризации-концентрации (хлопья в питьевом и сгущенном молоке); - аномальная коагуляция и брожение в йогурте, иногда присущее в случаях лечения больных животных антибиотиками; - исчезновение аромата сливочного масла, наиболее очевидного после хранения (за счет видов бактерий, которые производят диацетил-редуктазу); 259 Таблица 4 - Производительность молока в главных племенных хозяйствах Республики Молдова Пери- Ежеднев- Производительность Количество Пого- од лак- ный удой за период лактации жира за Название хозяйств Породы коров ловье тации, молока, период лакмолоко, кг жир, % дни кг тации, кг ТЭС „Максимовка” Чёрно-пёстрая 89 305 8,5 3088 3,77 11640 CAP „Чобалакчия” Чёрно-пёстрая 153 305 9,0 3285 3,75 12318 ООО „Агро-Маире” Чёрно-пёстрая 246 305 17,8 6500 3,75 24375 ООО „БасНикКом” Чёрно-пёстрая 68 305 12,3 4494 3,72 16717 ТЭС „Бельцы” Чёрно-пёстрая 98 305 8,3 3020 3,8 11476 ООО „Логофтены” Чёрно-пёстрая 60 305 11,8 4318 3,62 15631 АО „Страпит” Симментальская 320 305 15,0 5708 3,75 21405 ИП „Магнет АлексанСимментальская 10 305 9,0 3240 4,2 13608 дрина” ООО „ДокСанКом” Голштинская 246 305 22,5 8230 3,55 29216 АО „Айдын” Голштинская 199 305 21,5 7788 3,75 29205 - задержка созревания сыров, образование жировых включений в сыворотке, прорывание корки, что приводит к загрязнению плесенью и гнилостному разложению казеина. Чтобы избежать патологических и технологических эффектов должны быть приняты, в зависимости от типа мастита, следующие меры: а) при клиническом мастите, соответственно остром мастите, (молоко с отталкивающим запахом), как и в случаях хронического мастита (соленый/ кислый вкус) – молоко не следует смешивать с нормальным молоком; б) при скрытом субклиническом мастите на основании положительного результата теста CMT (California-Mastitis-Test) и зная, что клинические параметры в норме – следует избегать смешивания такого молока из вымени или четверти поражённого вымени с нормальным молоком. Особую опасность для молочных ферм представляет ящур, при котором требуется введение карантина в соответствии с необходимыми ветеринарными мероприятиями [11]. Другим заболеванием, которое может повлиять на критерии безопасности молочного сырья, являются патогены рода Salmonella. При эффективной пастеризации молока концентрация сальмонеллы должна быть нулевой или приведённой под уровень гарантированной безопасности. Опасность может сохраняться при вторичном загрязнении молочных продуктов посредством оборудования, воды или персонала [13]. Ветеринарный надзор должен включать в себя систему мер по предотвращению загрязнения сырого молока кампилобактериями или иерсиниями, в частности: 260 - соблюдение правил приёма, сбора и обработки молока в соответствии с действующим законодательством; - уровень чистоты посуды, используемой для приема, хранения, транспортировки сырого молока, упаковка готовой продукции, а также ее доставка конечным потребителям; - соблюдение санитарно-гигиенических и технологических требований для других общих инфекций [14, 15]. Безопасность молочных продуктов обеспечивается, прежде всего, путем обеспечения здоровья животных, а также использованием в технологических процессах питьевой воды, соответствующей микробиологическим критериям и применение эффективной пастеризации сырого молока. Согласно ветеринарному законодательству запрещается использование сырого молока, происходящего из стада с подозрением на туберкулез. Это молоко может быть использовано в следующих условиях: а) молоко из зараженных ферм, в которых все животные, зараженные или подозреваемые на заражение были отправлены на бойню или в карантинные центры, будет передано в промышленную переработку и разрешено для поставки в потребление только после пастеризации при высоких температурах. Сырое молоко из данных категорий ферм не допускается для кормления телят; б) молоко, происходящее от инфицированных коров, из карантинных центров передаётся на перерабатывающие предприятия и перерабатывается по специальным технологическим схемам, предназначенным для этой цели [3]. Особое место в безопасности сырого молока занимает обнаружение остатков антибиотиков. Нежелательное воздействие на здоровье человека может быть прямым и проявляться в виде аллергических реакций или реакций токсического характера. Вследствие многосторонних вмешательств, косвенные эффекты являются более существенными, особенно потому, что создаются устойчивые к антибиотикам микроорганизмы. Наличие остатков антибиотиков в молоке способствует значительным помехам в его промышленной переработки, в связи с ингибирующим действием полезных молочнокислых бактерий, а также способствует росту протеолитических, липолитических или патогенных бактерий [3]. Наличие остатков антибиотиков в молоке затрудняет, или даже способствует фальсифицированию результатов тестов контроля качества, таких, как оценка эффективности пастеризации по тестам на фосфатазу, которые в данных условиях не будут правдивыми. Основным источником загрязнения молока являются больные коровы, которые подвержены лечению антибиотиками, особенно в случае маститов, когда антибиотик вводится непосредственно в вымя. Умышленное добавление антибиотиков в качестве консервантов маловероятно с одной стороны из-за их относительно высокой стоимости, а с другой стороны, из-за режима контроля их закупок и прослеживаемоси. Так как в продуктах питания в целом, и в частности в молоке, не допускается присутствие антибиотиков и других ингибиторов с различными функциями, необходима проверка на их присутствие, в случае подозрений, в лабораторных условиях. Для обнаружения остатков антибиотиков в молоке, количество которых, как правило, очень мало, методы их обнаружения должны обладать повышенной чувствительностью. Данное качество может быть обеспечено конкретными микробиологическими методами, принцип которых основан на присутствии ингибирующих остатков антибиотиков на чувствительные штаммы стандартизированных бактерий. Выводы: 1. Для производства молока в Республике Молдова используются следующие районированные породы крупного рогатого скота Красная степная в Центральных и Южных районах страны, Симментальская - на Севере страны, и межпородный вид (молдавский) Чернопёстрой породы и Голштинской - для всех районов страны. 2. В целях обеспечения безопасности коровьего молока необходимо соблюдать ветеринарно-санитарные и технологические меры предосторожности при вводе или исключении из пищевой цепочки загрязненное молоко. Библиографический список: 1. Avram A. ş.a. Situaţia agriculturii şi creşterii bovinelor în România. În: Revista de zootehnie, 2008, nr. 2, pag. 17-19. 2. Barlowska J. and oth. Technological usefulness of milk of cows of six breeds maintained in Poland relative to a lactation phase. In: Polish journal of food and nutrition sciences, 2006, vol. 15/56, pp. 17-21. 3. Traian Enache, Ioan Paul, Ovidiu Popescu, Vasile Stanescu, Ion Iordache. Medicina legală veterinară, Bucureşti, 1994, 872 p. 4. Coşman S. Utilizarea tipului de taurine Bălţat cu Negru Moldovenesc. În: Agricultura Moldovei, 2013, nr. 4-5, pag. 29-31. 5. Chilimar S. Importanţa şi viitorul creşteri bovinelor în Republica Moldova. În: Ştiinţa agricolă, 2010, nr. 2, pag. 45-50. 6. Chilimar S. Ce trebuie să cunoaştem pentru sporirea eficacităţii producerii laptelui de vacă. În: Agricultura Moldovei, 2011, nr. 8-9, pag. 33-34. 7. Jurco E., Avram A., Onaciu G. Cercetări privind creşterea vacilor de lapte în ferme de diferite dimensiuni din Transilvania. În: Revista de zootehnie, 2008, nr. 2, pag. 27-30. 8. Данкверт А., Джапаридзе Т. Уровень потребления молока – здоровье нации. В: Молочное и мясное скотоводство, 2010, № 2, стр. 2-5. 9. Ковалюк Н. и др. Система селекционно-диагностических мероприятий для эффективного оздоровления стад от лейкоза крупного рогатого скота. В: Молочное и мясное скотоводство, 2010, №5, стр. 12-14. 10. Саморуков Ю. и др. О породах в молочном скотоводстве. В: Молочное и мясное скотоводство, 2013, № 1, стр. 21-23. 11. Свириденко Г. Безопасность молока-сырья – здоровье животных (ящур). В: Молочная промышленность, 2009, № 1, стр. 63-65. 261 12. Свириденко Г. Ингибирующие вещества – комплексный показатель безопасности молока и молочных продуктов. В: Переработка молока, 2014, №6, стр. 44-48. 13. Свириденко Г. Основной критерий безопасности молока-сырья – здоровье животных (сальмонеллез). В: Молочная промышленность, 2009, № 2, стр. 44-46. 14. Свириденко Г. Основной критерий безопасности молока-сырья – здоровье животных (иерсиниоз). В: Молочная промышленность, 2009, № 4, стр. 70-72. 15. Свириденко Г. Основной критерий безопасности молока-сырья – здоровье животных (кампилобактериоз). В: Молочная промышленность, 2009, № 3, стр. 75-77. 16. Фомичёв Ю. и др. Эколого-биохимические аспекты формирования продуктивного здоровья первотёлок и получения молока с высокими биологическими и гигиеническими свойствами. В: Молочное и мясное скотоводство, 2013, №7, стр. 2-4. DAIRY CATTLE BREEDS IN REPUBLIC OF MOLDOVA AND THE IMPACT OF INFECTIOUS DISEASES ON SECURITY OF RAW MILK S.V.Meleşco, V.Z.Enciu Key words : Red Steppe Breed, Simmental breed, Black-Motley breed, Holstein Breed, milk productivity, infectious diseases, safety of raw milk. The review article is devoted to the summary analysis of the breed composition of cows used to produce safe and quality milk in the Republic of Moldova. A cattle farming in Moldova has as a main purpose the production of milk and meat which are valuable food products for the population and raw material for milk and meat processing industry. In recent years, because of numerous failed agrarian reforms, it has been observed a downgrade of cattle system in Republic of Moldova. Main Breeds of dairy cattle certified in our country are – Red steppe breed for central and southern districts, Simmental – for the north and Interracial (Moldavian) of Black Spotted breed and Holstein breed for all areas of the republic. At the same time various infectious diseases in cows influences milk quality production which requires precautions for the avoidance of inclusion in the food chain of contaminated milk. 262 УДК 619:658.3.(031) НУЖНЫ ЛИ ЛЬГОТЫ И СТИМУЛИРОВАНИЕ ТРУДА ВЕТЕРИНАРНЫХ РАБОТНИКОВ? Л.Я.Юшкова, доктор ветеринарных наук, профессор, ФГБНУ Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока г.Новосибирск тел. 8(383)30-87-35-8, iushkowa.l@yandex.ru Б.Н.Балыбердин, кандидат ветеринарных наук, руководитель службы ветеринарии Иркутской области тел.8(3952) 252369, Gorvet@vet.irkutsk.ru О.А.Рожков, кандидат ветеринарных наук, начальник управления ветеринарии Новосибирской области 8.(383) 20-20-8-20, norma_group@mail.ru Ключевые слова: льготы, ветеринарный специалист, нагрузка, объём обработок. Работа посвящена обоснованности тяжёлого труд ветеринарного врача. Какие были льготы для улучшения работы ветеринарных специалистов. Льготная пенсия за выслугу лет. Инструкция о порядке оплаты ветеринарным работникам , командируемым для проведения работ по борьбе с особо опасными болезнями животных. Предоставление бесплатных коммунальных услуг ветеринарным работникам центральных зооветучастков с районными ветеринарными лечебницами. Изучена нагрузка и объёмы обработок. Введение. Актуальность этого вопроса не вызывает сомнения. Сегодня тяжёлый труд ветеринарного работника не совсем оценён. Это не нормированный рабочий день, без выходных и праздников, иногда с тяжёлыми и не комфортными условиями оказания помощи животным. Не раз приходилось оказывать помощь при родовспоможении продуктивным животным с осложнениями, отделять послед у коров и вправлять матку. Исследовать коров на стельность ректально. Делать прокол рубца троакаром при остром вздутии рубца, извлекать инородные предметы из преджелудков крупного рогатого скота магнитным зондом, кастрировать в разных условиях, разного веса, вида животных и разного настроения и отношения хозяина животных. Приходилось иногда делать и патологическое вскрытие трупов крупных животных. И хочется вспомнить, что было хорошего в облегчении труда ветврача. Поэтому большое значение в улучшении работы ветеринарных врачей имело установление льготной пенсии за выслугу лет. Выдавалась она в размере 50% получаемого оклада по достижении 50-летнего возраста и при наличии 25-летнего непрерывного стажа работы в животноводстве. При этом в случае продолжения работы сохранялся полный оклад [1, с. 163]. В этот период установлен порядок присуждения почётного звания «Заслуженный ветеринарный врач республики» (Указ Президиума Верховного Совета СССР от 20 апреля 1949 г.). Утверждена Инструкция о порядке оплаты ветеринарным работникам системы Министерства сельского хозяйства СССР, командируемым для проведения работ по борьбе с особо опасными болезнями животных (МСХ СССР,16 апреля 1949 г.). Она упорядочила оплату труда ветеринарных специалистов в период таких командировок и дала им значительные преимущества перед обычными командировками ( суточные в размере 6% месячной ставки и второй оклад основной заработной платы. Распоряжением Министерства сельского хозяйства СССР (1950г.) предусматривалось предоставление бесплатных коммунальных услуг ветеринарным работникам центральных зооветучастков с районными ветеринарными лечебницами. Это обеспечивало повышение трудовой активности ветеринарных врачей и фельдшеров, способствовало значительному улучшению работы всей ветеринарной службы страны. Материалы и методы исследований. Фактографическим методом поэтапно изучали влияние факторов риска, сдерживающих улучшение ветеринарного дела в РФ, путём обосно- 263 Таблица 1 - Работники пенсионного возраста Категории работников Работники пенсионного возраста 2011 197 2012 198 2013 213 2014 158 Таблица 2 - Образование Категории работников специалисты с высшим ветеринарным образованием специалисты со средним специальным ветеринарным образованием 2011 444 2012 427 2013 470 2014 485,5 338 319 287 275 Таблица 3 - Текучесть кадров Показатель уволено работников в% 2012 275 23,5% 2013 259 21,4% 2014 233 20% Таблица 4 - Работа ветспециалистов, выполняемая во внеслужебное время и выходные дни Регион Карымский район В % к числу опрошенных 5 и более вызовов от 3 до 5 вызовов 1-2 вызова в нев неделю в неделю делю 53,8 30,8 15,4 Читинская область вания гипотезы причинно- следственных связей состояния противоэпизоотического обслуживания животноводства с влиянием отдельных факторов, статистического испытания гипотезы, согласования полученных данных с научным представлением механизма ветеринарного обеспечения животноводства, выявления элементов в причинно- следственной связи. поддающихся изменениям под ветеринарным воздействием, доступным науке и практике. Социологические исследования в ветеринарии в современных условиях проводили путём опросов и специального анкетирования ветспециалистов Новосибирской области, Алтайского и Красноярского краёв. Субъективные данные (данные опроса отдельных специалистов) методом сравнения и аналогий группировали по отдельным показателям и факторам и путём верификации соотносили с объективными показателями состояния ветеринарного дела и противоэпизоотического обслуживания животноводства, устанавливали правильность и достоверность общественного мнения о факторах, снижающих престиж про264 47,8 37,3 16,9 фессии. Уровень ветеринарного обеспечения животноводства. Результаты исследований и их обсуждение. Интенсивность и эффективность профессионального труда ветеринарных специалистов зависит от эрудиции и ориентации в практической деятельности. Из данных результатов работы Иркутской ветеринарной службы мы видим: что работников пенсионного возраста стало намного меньше по сравнению с прошлыми годами (табл.1.) Исходя из анализа вышеуказанной диаграммы наблюдается «омоложение» коллектива учреждений ветеринарии в целом, что является не совсем положительным результатом кадровой политики учреждений. Так как уходят специалисты с высшим ветеринарным образованием и большим практическим опытом (табл. 2,3) Следует отметить изменения в квалификационном уровне ветеринарных специалистов. Просматривается увеличение количества специалистов с высшим ветеринарным образованием. В 2014 году текучесть кадров составила 20% в целом. Подбор кадров осложнен отсутствием жилья и низкой заработной платой ветеринарных специалистов, отсутствием механизмов поддержки молодых специалистов. Средняя заработная плата молодого дипломированного ветеринарного специалиста – выпускника ВУЗа сегодня составляет 13-15 тысяч рублей. Провели анализ материалов анкетирования ветеринарных специалистов в Новосибирской и Кемеровской областях. Всего использованы данные по 58 респондентам. По материалам результатов исследования видно, что из общего количества респондентов (ветспециалистов уволившихся до или во время анкетирования) 20,7% уволились по причине повышения в должности в одном учреждении; 12,1%- оставили должность в связи с переходом на работу в вышестоящие организации. В 8,6% случаев увольнения ветспециалистов проведено по принуждению к увольнению по собственному желанию. В 3,4% случаев увольнение по инициативе работающего из-за чрезмерного объёма работы, в 5,2% случаев- из-за сложной эпизоотической ситуации в хозяйстве, в 12,1% случаев- изза конфликтов с руководством, а в 8,6% случаевиз-за частых незаслуженных моральных и материальных наказаний; в 19% случаев- увольнение состоялось из-за плохих условий труда и только в 10,3% случаев увольнение состоялось по семейным обстоятельствам. Полученные результаты исследований дают основание заключить, что только в 43,1% случаев увольнение ветеринарных специалистов проведено по согласованию с работником- по семейным обстоятельствам, согласие на переход на другую работу (продвижение по службе и общественной деятельности) в остальных 56,9% случаев обусловлено или ухудшением условий работы, преднамеренными воздействиями со стороны администрации, в т.ч. и принуждение к увольнению по собственному желанию. В 28,2; случаев увольнение сопровождалось воздействием ряда причин (2…4), что подтверждает сложные условия труда ветеринарных специалистов и особенно в животноводческих хозяйствах с промышленной технологией ведения животноводства, в экологически напряжённых условий [2, с. 10]. В целях подтверждения объективности отдельных причин повышенного оттока кадров ветеринарной службы провели исследования по определению нагрузки на одного специалиста при организации и проведении мероприятий по ветеринарному обслуживанию животноводства. С этой целью провели общую оценку объёмов ветеринарного обслуживания животноводства, исходя из поголовья животных. Из представленных результатов выяснили, что нагрузка на одного специалиста ветеринарной службы в Новосибирской области составляла 1894 животных, из них 1389 (73,3%) составляли животные коллективных хозяйств ( колхозов и совхозов). В Алтайском крае эти показатели соответственно составляли 2009 и 1581 (78,7%) животных, а в Красноярском крае- 2614 и 2092 (80,0%) животных всех видов. Полученные данные подтверждают широкий диапазон нагрузки ветспециалистов по специальному обслуживанию животноводства. В условиях Красноярского края она на 43,3% выше, чем в Новосибирской обл. Кроме того, специалисты Карымского района Читинской области ( 80% ветврачей, 60% ст. ветврачей, 50% гл. ветврачей хозяйств ( по окончанию рабочего времени часто имеют вызовы на экстренные работы, связанные с болезнями животных, а также в выходные дни [2, с. 21]. Объём обработок противоэпизоотических мероприятий на 1 ветеринарного специалиста в Новосибирской области составил: В Черепановском районе 9575, Куйбышевском - 9665,1, Венгеровском - 43750, Тогучинском 31924, Сузунском - 22715, Краснозёрском районе - 28 653; в Иркутской области.: в Зиминской СББЖ - 1492,2, Усть-Ордынском районе - 11390, Тулунском районе - 4327, Братской СББЖ 6703,14 [3, с.19]. Сегодня также увеличилось поголовье скота в частном секторе как в количественном так и видовом разнообразии животных [4, с.71]. В Карелии депутат Николай Зайков (фракция «Единая Россия») в качестве законодательной инициативы внес на рассмотрение парламента законопроект, который призван восстановить социальную справедливость среди специалистов различных профессий, проживающих и ранее работающих в сельской местности. Согласно проекту Закона предлагается пенсионерам – бывшим специалистам ветеринарной службы, проработавшим не менее 10 лет в сельской местности и в настоящее время проживающим за пределами городов, предоставлять меры социальной поддержки в форме освобождения от оплаты жилплощади с отоплением и освещением. В настоящее время подобная мера социальной поддержки оказывается в отношении сельских пенсионеров, ранее проработавших врачами, провизорами, медицинскими и фармацевтическими работниками, социальными работниками, педагогами, специалистами 265 сферы культуры. Ветеринаров среди этих категорий граждан нет. Комитет по социальной политике Законодательного Собрания Республики Карелия депутатскую инициативу поддержал и рекомендовал законопроект к принятию в первом чтении [5]. Ветеринарным специалистам нужно предоставлять такие же льготы, как врачам и учителям. Такое заявление так же сделал председатель правления мясо- молочного союза Казахстана Иван Сауэр на прошедшем в МСХ РК II форуме производителей…[6]. В соответствии со ст. 6. Закона РФ №4979-1 от 14 мая 1993 года « О ветеринарии» ( послед. ред. от 12 июня 2008 года № 88-ФЗ), специалисты государственной ветеринарной службы, РФ, проживающие и работающие в сельской местности не менее 10 лет, посёлках г/т, городах районного подчинения, имеют право на бесплатные комму- нальные услуги, на другие льготы в соответствии с Законодательством РФ. Заключение. Результаты исследований дают основание заключить, что при существующей на момент исследований системе организации ветеринарной службы, противоэпизоотического обслуживания животноводства нагрузка на одного специалиста крайне высока, при отвлечении ветеринарных специалистов на работу, не связанную с профессиональным профилем, отсутствие материальной заинтересованности и правовой защиты резко снижает качество и результативность проводимых мероприятий, принижает профессиональную удовлетворённость и порождает отток кадров из ветеринарной службы. Необходимо вернуться к вопросу о льготах ветеринарным работникам на уровне Правительства Российской Федерации. Библиографический список: 1. Справочник по организации ветеринарной службы / А.Г. Гинзбург, В.С. Лодянов, В.П. Пословский, В.Г.Федотов.- М.,« Колос»,1974.- 302с. 2. Юшкова Л.Я. Совершенствование ветеринарного дела в Российской Федерации в условиях экономической реформы: автореф. дис….док. ветерин. наук / Л.Я. Юшкова.- Санкт-Петербург,1993.- 33 с. 3. Cредние затраты времени на оказание ветеринарных услуг / Л.Я.Юшкова, М.А.Амироков, А.В. Юдаков, Б.Н. Балыбердин // Ветеринария.- 2012.-№ 2.-С.18-20. 4. Юшкова, Л.Я. Определение затрат оперативного времени по видам работ и расчёт стоимости ветеринарных услуг/ Л.Я.Юшкова, Б.Н. Балыбердин // Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук.-2013.-№ 3.-С. 70-72. 5. Комитет по социальной политике Законодательного Собрания Республики Карелия [электронный ресурс] http://www.karelia-zs.ru/ mail news/2011/newsveterinar 14092011.html 6. Мясо- молочной союз Казахстана Иван Сауэр в МСХ РК II форуме производителей/[электронный ресурс] http://inform.kz/ rns/article/2361405 PRIVILEGES AND WORK INCENTIVES OF VETERINARY WORKERS ARE NECESSARY? L. Ya. Yushkova, B.N.Balyberdin, O.A.Rozhkov Keywords: privileges, veterinary expert, loading, volume of processings. Work is devoted to validity heavy work of the veterinarian. What privileges for improvement of work of veterinary experts were. Preferential long-service pension. The instruction about a payment procedure to the veterinary workers sent for work on fight against especially dangerous diseases of animals. Providing free utilities to veterinary workers of the central zoovetuchastok with regional veterinary clinics. Loading and obma of processings is studied. 266 СОДЕРЖАНИЕ Пелевина Н.И. Организация государственной ветеринарной службы Ульяновской области и её роль в обеспечении безопасности продовольствия............................................................... 3 Андреева А.В., Николаева О.Н., Муратова Е.Т., Мюристая М.Л., Баишева Г.И. Новая технология профилактики отъемного стресса поросят.................................................................. 6 Барт Н.Г., Золотухин С.Н., Васильев Д.А. Фаги Providencia для лечения и профилактики заболеваний молодняка сельскохозяйственных животных . ........................................................ 9 Васильева Ю.Б., Мастиленко А.В., Сверкалова Д.Г., Васильев Д.А., Золотухин С.Н. Подбор селективных компонентов к питательной среде для выделения B.Bronchiseptica...... 12 Голенева О.М., Романова Е.М., Любомирова В.Н. Влияние моногенетических сосальщиков на развитие карпа в прудовых хозяйствах Ульяновской области......................... 15 Гулий О.И., Макарихина С.С., Бунин В.Д., Староверов С.А., Игнатов О.В. Использование метода электрооптического анализа для детекции бактериофагов........................................... 18 Зотов В.В. Современные способы профилактики бактериальных болезней прудовых рыб............ 22 Колбасенко А. Интерпретация результатов серологических исследований в птицеводстве....... 27 Колбасенко А. Репродуктивно-респираторный синдром свиней............................................... 30 Колбасенко А. Вирусная диарея крупного рогатого скота – диагностика и борьба с этим заболеванием на производственном предприятии......................................................... 33 Ларионова О.С., Красникова Е.С. Ретровирусные инфекции КРС, Их взаимообусловленность и влияние на качество коровьего молока....................................................... 36 Доктор Антонио Муноз Луно, Доктор Франциско Жозе Палларес Мартинез, Доктор Гильермо Рамис Видал Патогенетическая, зоотехническая и экономическая эффективность вакцины БАЙОВАК® МИКО против энзоотической пневмонии (ЭП) свиней............................................................................................................................................... 41 Михайлова И.И., Евглевская Е.П., Ерыженская Н.Ф., Михайлова О.Н. К вопросу разработки средств иммунометаболической направленности с антимикробной активностью..................................................................................................................................... 46 Нафеев А.А., Васильев Д.А., Золотухин С.Н., Васильева Ю.Б. Зоонозные инфекции, с природной очаговостью, с позиции эпидемиологического и эпизоотологического диагнозов ........................................................................................................................................ 50 Павлова И.Б., Юдина Т.Г., Баскова И.П., Феоктистова Н.А., Васильев Д.А., Золотухин С.Н. Лизис клеток возбудителя псевдомонозов Pseudomonas aeruginosa под влиянием секрета слюнных клеток медицинской пиявки HIrudo medicinalis..................... 54 Пашкова Т.М., Акжигитов А.С., Карташова О.Л., Попова Л.П. Антикарнозиновая и антигемоглобиновая активности микроорганизмов, выделенных от собак с наружными отитами..................................................................................................................... 60 Пелевина Н.И., Шоболев С.В. Лейкоз крупного рогатого скота: оздоровление и решение проблемных вопросов................................................................................................. 63 Пименов Н.В., Петрова Ю.В., Хромова Е.А. Ветеринарно-санитарная характеристика мяса цыплят-бройлеров при применении в рационе препаратов белковых гидролизатов................................................................................................................................... 66 Романова Е.М., Игнаткин Д.С., Видеркер М.А., Шадыева Л.А. Распространение возбудителей церкариозов в популяциях моллюсков Lymnaea stagnalis Ульяновской области............................................................................................................................................. 70 267 Райчинец Ю.А., Лыдина М.А., Феоктистова Н.А., Золотухин С.Н., Васильев Д.А. Американский гнилец ПЧЕЛ как угроза урожайности сельскохозяйственных культур............. 73 Райчинец Ю.А., Лыдина М.А., Золотухин С.Н., Васильев Д.А., Барт Н.Г. Методы лечения и профилактики американского гнильца пчел............................................................... 77 Романова Е.М. , Баева Т.Г., Романов В.В., Шленкина Т.М. ГИС - мониторинг нематодозов крупного рогатого скота на территории Ульяновской области.................................................... 80 Романова Е.М., Шадыева Л.А., Акимов Д.Ю., Шленкина Т.М. Эпизоотологические особенности и экология бабезиоза собак в Ульяновской области.............................................. 84 Сафиуллин Р.Т., Новиков П.В., Нуртдинова Т.А., Леонтьева О.В., Кудревич Е.Е., Купырева В.А. Эффективность комплексной инсектицидной программы против имаго жука-хрущака и его личинок в условиях птицефабрики при напольном содержании цыплят – бройлеров........................................................................................................................ 88 Топурия Л.Ю., Сингариева Н.Ш. Экономическая эффективность применения пробиотиков для профилактики желудочно-кишечных болезней телят.................................... 94 Феоктистова Н.А., Васильев Д.А., Золотухин С.Н., Калдыркаев А.И., Лыдина М.А., Климушкин Е.И., Белова К.В. Особенности выделения фагов бактерий Bacillus anthracis...... 97 Феоктистова Н.А., Васильев Д.А., Золотухин С.Н., Лыдина М.А., Белова К.В., Шокина К.В. Подбор методики выделения бактериофагов Bacillus coagulans........................ 100 Феоктистова Н.А., Васильев Д.А., Юдина Т.А., Золотухин С.Н. Выявление бацилл, вызывающих порчу продуктов питания (БВППП) бактериологическими методами............... 103 Феоктистова Н.А., Лыдина М.А., Васильев Д.А., Золотухин С.Н., Белова К.В., Шокина К.В. Изучение антибиотикочувствительности штаммов бактерий, выделенных из трупов пчел................................................................................................................................ 111 Шестаков А.Г., Молофеева Н.И., Пульчеровская Л.П., Мерчина С.В., Калдыркаев А.И., Васильев Д.А. Проявление антагонистических свойств бактерий Lactobacillus acidophilus в отношении бактерий Serratia marcescens и Klebsiella pneumonia........................................... 114 Анников В.В., Беляева М.В. Жировая дистрофия печени и гиперлипидемия собак. Новый подход к лечению.............................................................................................................. 117 Анников В.В., Широбокова Д.А. Этиологические аспекты и клиникоэлектрокардиографические изменения при обструктивном бронхите собак......................... 121 Ахметова В.В., Васина С.Б. Влияние условий обитания на морфофункциональные показатели крови карпа ............................................................................................................... 126 Бурмистрова А.В. К вопросу о рентгенологической диагностике заболеваний желудка у мелких домашних животных..................................................................................................... 131 Волкова А.П., Давтян Э.С. Уточнение рентгенологических признаков язвенной болезни желудка и двенадцатиперстной кишки у собак.......................................................................... 133 Волкова А.П., Давтян Э.С. Функциональные расстройства желудка у мелких домашних животных в рентгенологическом изображении......................................................................... 136 Гапонова В.Н., Ковалёв С.П. Изменения лабораторно-клинических показателей мочи собак с признаками хронической почечной недостаточности под влиянием гипохлорита натрия............................................................................................................................................. 138 Давтян Э.С. Диагностика кардиомиопатий у собак с использованием биомаркера Тропонина...................................................................................................................................... 142 Ермолаев В.А., Ляшенко П.М., Марьин Е.М., Сапожников А.В., Днекешев А.К., Мурзабаев К.Е., Киреев А.К. Гемостазиологические аспекты при болезнях пальцев у крупного рогатого скота............................................................................................................. 145 268 Ермолаев В.А., Сапожников А.В., Марьин Е.М., Ляшенко П.М., Днекешев А.К., Мурзабаев К.Е., Киреев А.К. Клинико-морфологическая картина кожно-мышечных ран у собак под воздействием светодиодного излучения красного диапазона (СДИКД)....... 149 Ермолаев В.А., Марьин Е.М., Ляшенко П.М., Сапожников А.В., Днекешев А.К., Мурзабаев К.Е., Киреев А.К. Динамика офтальмологической патологии у крупного рогатого скота................................................................................................................................ 154 Ермолаев В.А., Марьин Е.М., Ляшенко П.М., Сапожников А.В., Якоб В.К. Динамика планиметрических показателей заживления язвенных дефектов в области копытец у коров, при комплексном их лечении........................................................................................ 159 Ковалев С.П., Трушкин В.А., Киселенко П.С. Результаты электрокардиографического исследования у здоровых собак.................................................................................................. 163 Петровский С.В., Борисёнок И.Н., Линник С.С. Профилактика иммунных дефицитов и болезней желудочно-кишечного тракта телят ........................................................................ 166 Помещиков И.А., Волков А.А. Изучение влияния витаминно-минеральной кормовой добавки «ВОЛСТАР» и препарата «НИТАМИН» на показатели крови поросят........................ 169 Сатюкова Л.П., Смирнова И.Р., Крюковская Г.М., Крюковский Р.А. Санитарногигиенические и биохимические аспекты выращивания цыплят-бройлеров разных возрастных групп........................................................................................................................... 172 Сидоров Г.В., Свинцова Е.П., Алексеева Ю.В., Якушкина М.В., Никитин А.В. Эффективность применения ЛТК «РЕКС» в лечении животных................................................. 176 Ческидова Л.В., Востроилова Г.А. Эффективность применения Виапена для профилактики послеродового эндометрита у коров................................................................. 179 Шленкина Т.М. Влияние минеральных подкормок на морфологические показатели свиней..... 181 Барт Н.Г., Золотухин С.Н. , Васильев Д.А. Ветеринарно-санитарная экспертиза мяса при эхинококкозе.......................................................................................................................... 183 Журавская Н.П., Золотухин С.Н., Швиденко И.Г., Васильев Д.А. Ветеринарно-санитарный контроль пищевого сырья при обнаружении возбудителЕЙ кишечного иерсиниоза и псевдотуберкулеза ....................................................................................................................... 187 Заядин Фади Фахри, Серегин И.Г., Золотухин С.Н. Вопросы эпизоотологии и ветеринарно-санитарной экспертизы дерматофилеза животных в Иордании..................... 189 Зотов В.В. Повышение качества и безопасности продовольственного сырья и пищевых продуктов как одна из важнейших социально-экономических задач современности........... 195 Парамонова Н.Ю., Якубовская М.Ю., Трескин М.С. Ветеринарно-санитарная экспертиза колбасы «Докторская» различных производителей.................................................................. 198 Пименов Н.В., Петрова Ю.В., Татаренко Я.С. Анализ качества и безопасности мясной продукции с маркировкой халяль на российском рынке.......................................................... 201 Попкова Н.А. Показатели качества молока коров голштинской черно-пестрой породы немецкой селекции при комплексном использовании иммуномодуляторов......................... 206 Рыбалко Д.А., Айдарова Е.П., Заболотных М.В. Болезни и пороки кабачков и их ветеринарно-санитарная оценка................................................................................................. 211 Сатюкова Л.П. Ветеринарно-санитарный анализ диоксинов и диоксиноподобных веществ методом DR.CALUX® в мясе цыплят-бройлеров........................................................... 214 Серегин И.Г., Золотухин С.Н., Волкова О.С. Ветеринарно-санитарная экспертиза диких уток при саркоцистозе........................................................................................................ 217 Смирнова И.Р., Зотов В.В. Ветеринарно-санитарная оценка качества и безопасности рыбы........... 220 269 Смирнова И.Р., Зотов В.В., Крюковский Р.А., Крюковская Г.М., Сысоева Н.Ю., Верховская Г.Л. Ветеринарно-санитарная оценка и паразитологический контроль водоемов центрального региона России.................................................................................... 225 Субботина Ю.М. , Смирнова И.Р. Особенности очистки и санации сточных вод в бокс-прудах................................................................................................................................. 229 Терентьева Е.Ю. , Салаутин В.В. , Салаутина С.Е. Органолептические показатели и дегустационная оценка мяса цыплят-бройлеров, при использовании жидкой кормовой добавки Версал ликвид............................................................................................... 233 Шурдуба Н.А. , Сотникова В.М. Мониторинг условно-патогенной микрофлоры сырого молока в хозяйствах Московской и Вологодской областей.......................................... 236 Юдаков А.В., Юшкова Л.Я. Сохранность качества продовольствия в воинских частях........ 240 Дмитриев В.Н., Ишмуратов Х.Г. Использование препарата Смартамин –М в составе комбикормов-концентратов при кормлении коров................................................................... 243 Зацаринин А.А. Система совершенствования свиней крупной белой породы при чистопородном разведении ........................................................................................................ 248 Масалимов И.Ф. , Ишмуратов Х.Г. Энергетическая кормовая добавка в рационах кормления новотельных коров ................................................................................................... 252 Мелешко С.В. , Енчу В.З. Породы крупного рогатого скота молочного направления в республике Молдова и влияние инфекционных заболеваний на безопасность молока-сырья................................................................................................................................. 256 Юшкова Л.Я., Балыбердин Б.Н., Рожков О.А. Нужны ли льготы и стимулирование труда ветеринарных работников?.......................................................................................................... 263 270 Материалы Международной научно-практической конференции «Актуальные вопросы ветеринарной науки». / Ульяновск, ГСХА им. П.А.Столыпина, 2015. - 271 с. Подписано в печать 01.06.2015 Формат 60×84 1/8 Бумага офсетная Усл.п.л. 33,88 Заказ 81 Тираж 100 экз. 432017, г.Ульяновск, бульвар Новый Венец, 1 Для заметок
