Изменения гепатоцитов печени кур, содержащихся на

ВЕТЕРИНАРНАЯ МЕДИЦИНА
сыворотке крови глобулинов и снижением коли�
чества альбуминов. Чем тяжелее воспалитель�
ный процесс, тем сильнее выражена диспротеи�
немия, тем меньше пойдёт раствора цинка суль�
фата для осаждения грубодисперсных белков.
У клинически здоровых телят в возрасте 1–3
месяцев величина бронхолёгочного теста состав�
ляет 1,7–2,7 мл, при легкой и средней тяжести
бронхопневмонии – 1,5–1,3, при тяжёлом затяж�
ном течении болезни – 1,2 мл и менее. При ана�
лизе полученных данных установлено, что вели�
чина бронхолёгочного теста в начале исследова�
ний у больных телят составляла 1,4–1,42 мл, а
после проведения терапии как в I, так и во II
опытных группах статистически достоверно уве�
личилась до 1,8±0,67 и 2,1±0,87 соответственно.
Заключение. Анализируя вышеприведенные
данные, следует отметить, что у телят, больных
катаральной бронхопневмонией, выявлены
такие характерные изменения со стороны
клинических показателей, как общее угнетение,
снижение реакции на общие раздражители,
усиленное напряжённое дыхание, сухой кашель,
смешанная одышка, бронховезикулярное и брон�
хиальное дыхание, крупнопузырчатые хрипы,
притуплённые и тупые звуки при перкуссии,
повышение температуры и учащение сердце�
биения, нормализация которых после проведе�
ния лечения у телят II опытной группы наступа�
ла на 0,4±0,67 дня раньше, чем у телят I опытной
группы.
Анализ лейкограммы показал у телят I опыт�
ной группы после проведённой терапии наличие
незначительного ядерного сдвига нейтрофилов
влево, свидетельствующее о продолжении вос�
палительного процесса.
Величина бронхолегочного теста в начале
исследований у больных телят составляла 1,4–
1,42 мл, а после проведения терапии как в I, так
и во II опытных группах увеличилась до 1,8±0,67
и 2,1±0,87 соответственно.
Таким образом, необходимо отметить, что
применение аппарата ТГЧ�терапии при лечении
катаральной бронхопневмонии телят объективно
повышает эффективность терапевтического воз�
действия и сокращает сроки выздоровления.
Литература
1. Адамович Т.Н., Рахметёв И.А. Применение ЭМИ КВЧ�
терапии в сочетании с дорином при лечении телят, боль�
ных гнойно�катаральной бронхопневмонией // Пробле�
мы квантовой терапии в ветеринарии: материалы 12�й меж�
дународной конференции по квантовой медицине. М.,
2005. С. 61–65.
2. Гынку С.П. Информационные технологии в исследовани�
ях воздействия энергии КВЧ�диапазона в ветеринарной
медицине // Матер. всерос. науч. конф., посвящ. 75�ле�
тию Казан. гос. технич. унив. им. А.Н. Туполева «Инфор�
мационные технологии в науке, образовании и производ�
стве». Казань, 2007. С. 236–238.
3. Авдеенко В.С., Калюжный И.И., Креницкий А.П. Изме�
нение метаболических процессов в крови у животных (in
vitro) под воздействием ЭМИ КВЧ МСПИ О 2 // Милли�
метровые волны в биологии и медицине. М., 2003. № 3
(31). C. 21–28.
4. Киричук В.Ф., Иванов А.Н., Антипова О.Н. Электромаг�
нитное излучение терагерцового диапазона на частотах
оксида азота в коррекции и профилактике стрессорных
нарушений функциональной активности тромбоцитов //
Миллиметровые волны в медицине и биологии: тез. докл.
14�го Рос. симпозиума с междунар. участием. М., 2007.
С. 171–174.
5. Инструкция по применению аппарата терагерцовой терапии
в ветеринарии: одобрена Департаментом ветеринарии и жи�
вотноводства МСХ РФ N 24�0.2/4 от 03 августа 2007 г. 4 с.
6. Glantz, S.A. Primer of biostatistics / S.A. Glantz – McGraw�
Hill, Inc., 1994. P. 459.
Изменения гепатоцитов печени кур,
содержащихся на селенопирановой диете
Г.А. Трифонов, к.в.н., профессор; К.А. Кулешов, к.б.н.,
Н.Ю. Свиридова, аспирантка, Пензенская ГСХА;
К.А. Пресняков, соискатель, Пензенский ГУ
Ядро является элементом клетки и содержит
генетическую информацию, которая регулирует
белковый синтез. Как известно, ядро неделя�
щейся клетки имеет овальную форму и состоит
из хроматина, ядрышка, кариоплазмы. Хрома�
тин неделящейся клетки – это разрыхлённые,
деконденсированные хромосомы в активном ра�
бочем состоянии. В это время они находятся в
процессах транскрипции нуклеиновых кислот.
Хромосомы в конденсированном (плотном) со�
стоянии неактивны, участвуют в переносе гене�
тической информации в дочернюю клетку [2].
Ядрышко – плотное, интенсивно окрашива�
ющееся образование в ядре клетки, округлой
формы и размером 1–5 мкм. Ядрышко служит
местом образования рибосом, на котором синте�
В ходе исследований было проанализировано
морфофункциональное состояние клеток печени
птицы кросса «Ломанн Браун» на рационе с се�
ленопираном (разработка академика А.Ф. Бли�
нохватова) в сравнении с контрольной группой,
содержащейся на обычном промышленном
рационе (по рекомендациям кормления кур
яичного направления) [4]. Задачей исследова�
ний является анализ структурно�функциональ�
ного состояния печени при скармливании птице
селенсодержащей добавки в дозе 0,3 мг/кг корма
и сравнение её с обычной диетой.
76
ВЕТЕРИНАРНАЯ МЕДИЦИНА
зируются полипетидные белковые цепи в цито�
плазме клеток. Селен является составной частью
ряда белков, обладающих ферментативной ак�
тивностью. Сумма частных биологических функ�
ций белков, содержащих селен, сводится к трём
основным защитным системам животного орга�
низма: антиоксидантной, иммунной и детокси�
кационной, а также обеспечению нормальной
деятельности систем энергопродуцирования.
Основными объектами ферментативной дея�
тельности являются липидные пероксиды и гид�
ропероксиды, гидропероксиды простагландинов,
витаминов и нуклеиновых кислот. Неорганичес�
кие селеносодержащие соединения на этапах
первичной метаболизации способны к обратно�
му воздействию – индукции окислительного
стресса, приводящего к образованию дополни�
тельного количества перекисей и активации глу�
татионпероксидазы. Данный феномен может
быть токсическим для клеток организма. Селен
максимально концентрируется среди прочих ор�
ганов преимущественно в печени. «Ленивые»
органы слабо концентрируют селен, а печень яв�
ляется одной из функциональных желёз [3, 10].
Экспериментальная часть и биохимические
исследования работы выполнены на кафедре
«Биология животных и ветеринария», в виварии
ФГОУ ВПО «Пензенская ГСХА». Морфологичес�
кая часть выполнена на кафедре «Патологическая
анатомия с курсом гистологии, цитологии, эмб�
риологии» Пензенского государственного уни�
верситета. Методы: морфометрия (печени, в см),
гистологическое исследование (окраска гематок�
силин�эозином); биохимические анализы печё�
ночных тестов [6, 7].
Куры разных групп содержались на одинако�
вых рационах, характерных для продуктивности
кросса «Ломанн Браун», с суточного возраста и
до убоя [4]. Сроки убоя: 90, 120 и 150 дней, по
6 голов. Метод убоя осуществляли декапитаци�
ей. Взвешивание птицы и отдельных органов
производилось на весах ВЛК�500 и аналитичес�
ких весах. После вскрытия птицы по срединной
линии производили взвешивание отдельных ор�
ганов, делали замеры. Сразу после убоя собира�
ли кровь на биохимические исследования. При
исследовании печени сравнивали контрольную
и опытную (селенопиран) группы по следующим
показателям: вес печени, длина печени, общий
белок, альбумин, щелочная фосфатаза сыворот�
ки крови, гистологическое состояние [9].
Гистологическое исследование проводилось
методом световой микроскопии. Для определе�
ния процента отличных ядер клеток на получен�
ных микропрепаратах оценивали 50 ядер клеток
в 10 полях зрения. Для выполнения синтетичес�
кой и антитоксической функции гепатоциты де�
терминированы структурно: тёмные гепатоциты
периферии долек богаты ультраструктурами син�
теза, а светлые гепатоциты центров долек богаты
ультраструктурами детоксикации и гидролиза.
При воздействии токсических веществ избира�
тельно реагируют светлые гепатоциты. При ви�
русном поражении печени более реагируют тём�
ные гепатоциты периферии долек [8]. В норме
при гематоксилин�эозиновой окраске гепатоци�
тов в цитоплазме гликоген окрашивается в виде
диффузно расположенных эозинофильных зёрен.
Биохимические анализы проводили общеприня�
тыми в медицинской практике методами [5].
Опытная группа кур на
селенопирановой добавке
На 90�е сутки. Окраска гепатоцитов равно�
мерная, поля соединительной ткани не встре�
чаются, из�за чего границы печёночных долек
определить не удаётся. Размеры клеток гепато�
цитов равновеликие. Триады определяются чёт�
ко, расположены обычно. Просветы жёлчных
протоков пустые. Печёночные балки сближены
и слегка S�образно извиты. Встречаются еди�
ничные светлые гепатоциты и 10% гепатоцитов
являются двухядерными.
На 120�е сутки. Окраска гепатоцитов равно�
мерная, размеры гепатоцитов равновеликие, ядра
округлые. Балочные структуры разделяются бо�
лее отчётливо. Границы классических печёноч�
ных долек не выявляются. Триады расположены
обычно, просветы просматриваются хорошо. Ко�
личество светлых гепатоцитов увеличилось и
составляет 15–18%, количество 2�ядерных –
5–7%, 55% ядер определяются в виде ядрышек
от 3 до 5, в основной массе это 4�ядрышковые
гепатоциты. Ядра на 35% хорошо равномерно
окрашены, 10% ядер гепатоцитов полиморфной
формы (овальные, треугольные, трапецевидные,
т.е. делящиеся), при равновеликих гепатоцитах.
На 150�е сутки. Окраска гепатоцитов равно�
мерная, балочное строение просматривается бо�
лее чётко. Гепатоциты расположены компактно,
плотно прилегают друг к другу, размеры их рав�
новеликие. Границы классических печёночных
долек выделить не удаётся. Ядра гепатоцитов
округлые, в основной массе ядра представлены в
виде трёх ядрышек. Полиморфных ядер выде�
лить не удаётся. Светлых гепатоцитов выявить
не удаётся.
Контрольная группа кур на
промышленной диете
90 суток. Гепатоциты окрашены равномерно и
размеры равновеликие. Межбалочное простран�
ство увеличено за счёт соединительной ткани,
чёткая граница долек не определяется. Ядра ге�
патоцитов округлые, оттеснены на периферию,
5% ядер представлены овальной формой.
120�е сутки. Окраска гепатоцитов равномер�
ная, размеры гепатоцитов равновеликие, чётких
77
ВЕТЕРИНАРНАЯ МЕДИЦИНА
1. Биохимические показатели крови кур
Контрольная
группа n=6, М
содержащейся на селенопирановой добавке
(табл. 1). Она существенно выросла на 150�е
сутки (до 2868 Е/л) против контрольной (606 Е/л),
при этом гепатотоксической гистологической
картины мы не увидели. Это указывает, как
можно предположить, на то, что увеличение
идёт за счёт синтетической функции печени или
костной фосфатазы. Увеличение синтеза ЩФ
гепатоцитами связано с повышением образова�
ния белка и РНК.
Выделение ферментов в сыворотку крови мо�
жет быть обусловлено их проникновением из ка�
нальцев в синусоиды через разрыхлённые плот�
ные контакты [2]. Увеличение на 120�е сутки
генетической активности клеток печени говорит
о выраженном прогенетическом влиянии селено�
пирана, что согласуется и с биохимическими
показателями роста общего белка и увеличения
щелочной фосфатазы на 150�е сутки. Это сви�
детельствует о более выраженном напряжении
дезинтоксикационных свойств гепатоцитов в
контрольной группе по сравнению с селенопи�
рановой диетой. Отсутствие светлых гепатоци�
тов в контрольной группе это подтверждает [1].
Опытная группа
(селенопирановая
добавка) n=6, М
90 суток
Общий белок, г/л
Альбумины, %
Щелочная
фосфатаза, Е/л
37,20
14,44
810,00
35,77
18,58
920,00
120 суток
Общий белок, г/л
Альбумины, %
Щелочная
фосфатаза, Е/л
32,65
16,75
1352,00
38,215
19,150
1316,60
150 суток
Общий белок, г/л
Альбумин, %
Щелочная
фосфатаза, Е/л
44,40
16,50
606,60
49,00
18,10
2 868,00
границ классических печёночных долек нет.
Гепатоциты лежат неплотно. Ядра гепатоцитов
округлые, оттеснены на периферию. Можно
зафиксировать 40% светлых ядер с одним цен�
тральным ядрышком; 20% ядер с разными
фигурами митоза; 18% клеток – 2�ядерные.
150�е сутки. Окраска гепатоцитов равномер�
ная. Размеры гепатоцитов равновеликие. Грани�
цы печёночных долек чётко не определяются.
Окраска цитоплазмы гепатоцитов при большом
увеличении микроскопирования – вакуолеобраз�
ная. Ядра округлые, оттеснены на периферию,
хорошо выделяется ядрышковая организация,
которая неравномерно образована по размерам,
количеством 2–4.
Выводы. Увеличение количества альбумина в
сыворотке крови статистически выше во все три
срока наблюдения. Это говорит о повышенной
синтетической активности гепатоцитов. В обо�
значенные сроки на 90�е и 120�е сутки щелочная
фосфатаза была незначительно выше у птицы,
Литература
1. Хохлов И. Морфология изменения печени кур // Птице�
водство. М., 2006. № 12. С. 27–30.
2. Шерлок Ш., Дум Дж. Заболевания печени и желчных пу�
тей: практическое руководство: перев. с англ. / под ред.
З.Г. Апросиной, А.А. Мухиной. М.: Медицина, 1999. С. 864.
3. Аюпов Ф.Г. О биологической роли селена в организме цып�
лят�бройлеров: дис. ... канд. биол. наук. М., 1972. С. 192.
4. Околелова Т.М. Кормление сельскохозяйственной птицы.
Сергиев Посад, 1996. 168 с.
5. Березов Т.Т., Коровкин Б.Ф. Биологическая химия. М.:
Медицина, 1990. С. 432.
6. Волкова О.В., Елецкий Ю.К. Основы гистологии с гистоло�
гической техникой. М.: Медицина, 1982. 304 с.
7. Капитаненко А.Н., Дюнин И.И. Клинический анализ ла�
бораторных исследований. М.: Воениздат, 1988. 233 с.
8. Серов В.В., Пальцев М.А. Патологическая анатомия: курс
лекций. М.: Медицина, 1988. С. 37.
9. Кулешов К.А. Постнатальный морфогенез кишечника кур
при применении селенсодержащих препаратов: дис. … канд.
биол. наук. Пенза, 2006. 160 с.
10. Блинохватов А.Ф., Древко Б.И., Денисова Г.В. Селен в био�
сфере. Пенза: РИО ПГСХА, 2001. С. 324.
Применение противоспаечных
лекарственных средств в ветеринарии
в современных условиях
В.В. Караулов, к.мед.н., Волгоградская ГСХА
дов местного и общего воздействия не приносят
желаемого эффекта [1, 3, 4, 5, 6, 7].
Цель исследования: дать экспериментальное
обоснование использования новых лекарствен�
ных средств для профилактики послеоперацион�
ных спаек.
Материал и методы исследования. Для изуче�
ния закономерности спаечного процесса мы ис�
Профилактика образования спаек после опе�
раций на органах брюшной полости является
актуальной проблемой хирургии.
Многочисленные попытки найти возможность
управления процессом образования спаек в
брюшной полости при помощи различных мето�
78