Федеральное государственное бюджетное учреждение высшего профессионального образования

Федеральное государственное бюджетное учреждение
высшего профессионального образования
«Московская государственная академия ветеринарной медицины и
биотехнологии им. К.И. Скрябина»
На правах рукописи
Молянова Галина Васильевна
СТАНОВЛЕНИЕ ФИЗИОЛОГОИММУННОГО СТАТУСА
СВИНЕЙ С ВОЗРАСТОМ В ЗАВИСИМОСТИ ОТ
ГЕЛИОГЕОФИЗИЧЕСКИХ И КЛИМАТИЧЕСКИХ ФАКТОРОВ
СРЕДНЕГО ПОВОЛЖЬЯ И ЕГО КОРРЕКЦИЯ ТИМОЗИНОМ-α1
03.03.01 – физиология
03.01.04 – биохимия
Диссертация на соискание ученой степени
доктора биологических наук
Научные консультанты:
доктор биологических наук,
профессор Максимов В.И.
доктор ветеринарных наук,
академик РАСХН,
профессор Василевич Ф.И.
Москва 2011
ОГЛАВЛЕНИЕ
1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ…………………………...
5
2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ……………………………………………… 12
2.1. Иммунный статус организма животных в постнатальном
онтогенезе……………………………………………………………………. 12
2.2. Формирование факторов резистентности организма животных
в постнатальном онтогенезе………………………………………………… 33
2.3. Значение гелиогеофизических и климатических факторов для
жизнедеятельности живых организмов……………………………………. 43
2.4. Влияние микроклиматических факторов на формирование и
функционирование естественной резистентности организма животных.. 49
2.5. Использование биогенных препаратов в животноводстве…………. 52
3. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ……………………… 61
3.1. Условия проведения исследований…………………………………… 61
3.2. Определение природно-климатических и микроклиматических
параметров в зоне расположения свинокомплекса……………………….. 69
3.3. Определение состояния микроклимата в животноводческих
помещениях………………………………………………………………….. 70
3.4. Определение физиологического состояния свиней…………………. 70
3.5. Определение гематологических показателей крови животных…….. 71
3.6. Определение биохимических показателей крови свиней…………… 74
3.7. Определение поверхностного натяжения сыворотки крови………… 74
3.8. Определение активности ферментов…………………………………. 74
3.9. Определение иммунологических показателей……………………….. 75
3.9.1. Определение клеточных факторов резистентности……………... 75
3.9.2. Определение гуморальных факторов резистентности…………... 78
3.10. Определение иммуноглобулинов……………………………………. 79
3.11. Оценка роста и развития свиней…………………………………….. 80
4. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ……………………………………… 81
4.1. Становление физиологоиммунного статуса свиней с возрастом
и его коррекция тимозином-α1 в теплый период года (1 серия опыта)….. 82
4.1.1. Состояние природно-климатических условий в зоне
расположения животноводческих помещений……………………………. 82
4.1.2. Оценка физиологического состояния чистопородных свиней
пород: крупная белая, дюрок, йоркшир…………………………………… 93
4.1.3. Морфологический профиль крови………………………………... 103
4.1.3.1. Характеристика изменений лейкограммы свиней в теплый
период года в зависимости от изменяющихся факторов внешней среды……...
110
4.1.4. Особенности биохимического состава крови свиней
в теплый период года………………………………………………………..
117
4.1.4.1. Изменения концентрации общего белка и его фракций в крови
свиней в теплый период года……………………………………………………..
118
2
4.1.4.2. Динамика концентрации минеральных веществ в крови свиней
в постнатальном онтогенезе в теплый период года……………………………..
124
131
4.1.5. Состояние ферментативной системы в организме свиней………
4.1.6. Формирование и становление клеточных факторов
резистентности свиней разных генотипов в теплый период года………... 136
4.1.6.1. Количественные изменения Т-лимфоцитов в крови у свиней
в постнатальном онтогенезе в в теплый период года……………………………
142
4.1.7. Становление гуморальных факторов резистентности у свиней
в теплый период года………………………………………………………..
146
4.1.7.1. Возрастная динамика В-лимфоцитов и иммуноглобулинов
в крови свиней разных генотипов в теплый период года………………………. 147
4.1.7.2. Состояние бактерицидной и лизоцимной активности плазмы
крови свиней в изменяющихся условиях внешней среды………………………. 151
4.1.8. Рост и развитие свиней до 100 кг………………………………….
4.2. Становление физиологоиммунного статуса свиней с возрастом
в холодный период года и его коррекция тимозином-α1 (2 серия опыта).
4.2.1. Состояние природно-климатических условий в зоне обитания
животных в холодный период года…………………………………………
4.2.2. Состояние микроклимата в животноводческих помещениях
в холодный период года……………………………………………………..
4.2.3. Оценка морфофизиологического состояния разводимых свиней
в холодный период года……………………………………………………..
4.2.4. Влияние холодного периода года на физиологическое
состояние организма свиней………………………………………………..
4.2.5. Динамика морфологического состава крови свиней
в холодный период года……………………………………………………..
4.2.6. Становление биохимического состава крови свиней
в холодный период года……………………………………………………..
4.2.6.1. Динамика концентрации общего белка и его фракций у свиней
разных генотипов в холодный период года………………………………………
4.2.6.2. Количественные изменения минеральных веществ и резервной
щелочности в крови свиней в холодный период года…………………………...
4.2.7. Изменение ферментативной системы свиней разных генотипов
в холодный период года…………………………………………………….
4.2.8. Становление клеточных факторов резистентности свиней
в холодный период года……………………………………………………..
4.2.9. Становление гуморальной резистентности свиней
в постнатальном онтогенезе в холодный период года…………………….
4.2.10. Интенсивность роста и развития свиней в постнатальном
онтогенезе в холодный период года………………………………………..
4.2.11. Динамика поверхностного натяжения сыворотки крови свиней
крупной белой породы в холодный период года…………………………..
4.3 Сравнительный анализ показателей физиологического,
биохимического и иммунологического статуса свиней, выращенных
в теплый и холодный периоды года………………………………………..
3
156
163
165
169
173
175
179
190
191
197
203
208
219
231
235
244
5. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ………………………………………...
ВЫВОДЫ……………………………………………………………………..
ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ……………………………………….
СВЕДЕНИЯ О ВНЕДРЕНИИ……………………………………………….
ЛИТЕРАТУРА………………………………………………………………..
ПРИЛОЖЕНИЯ………………………………………………………………
4
248
270
275
276
277
318
1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
Актуальность
темы
исследований.
Изучение
особенностей
индивидуального развития организма занимает важное место в современной
биологической науке, главная цель которой – раскрыть механизмы
закономеностей многообразия иммунологических факторов, участвующих
в развитии и интеграции процессов развития и жизнедеятельности организма.
С
их
участием
происходит
передача
наследственной
информации,
регулируется рост и развитие организма, поддерживается гомеостаз
и продуктивность сельскохозяйственных животных (А.И. Кузнецов, 2002,
2003; В.И. Максимов, 2002, 2008).
Организм животных и его жизнедеятельность находятся во взаимосвязи
с окружающей внешней средой. Наука и практический опыт показывают, что
эти взаимоотношения тем сложнее, чем выше генотипический потенциал
животного (Е.С. Воронин, А.М. Петров, М.М. Серых и др. 2002;
В.Д.
Баранников,
Н.К.
Кириллов,
2006).
Генетический
потенциал
продуктивности сельскохозяйственных животных в условиях содержания на
современных промышленных комплексах реализуется не более 50-60%
(В.Г. Козловский с соавт., 1984, 1987). Поэтому при разведении
свиней
следует обратить особое внимание на выведение таких пород и генотипов
животных, которые обладают высокими адаптивными, продуктивными
и репродуктивными функциями, а также имеют значительный уровень
неспецифической резистентности и жизнеспособности организма.
В свою очередь иммунологические факторы подвержены значительным
изменениям в связи с воздействием на организм животного внешней среды,
условий его существования. Ф.И. Василевич (2009), А.С. Степановский
(2001), А.Ф. Кузнецов и соавт. (2002, 2003) отмечают, что содержание
сельскохозяйственных животных в условиях интенсивной технологии
сопровождается влиянием на них биотических (внутривидовых, межвидовых,
поведенческих и др. эффектов) и абиотических (воздушный, водный,
5
тепловой, радиационный и др. режимы) факторов естественной среды и все
увеличивающейся зависимости организма от искусственного воздействия
созданной среды обитания (неудовлетворительные природно-климатические
условия, условия микроклимата, несбалансированное кормление и т.п.).
Однако искусственно созданные условия часто нарушаются, что,
несомненно, сказывается на механизмах как кратковременной, так и
долговременной
адаптации
животного.
По
данным
А.В.
Жарова,
В.П. Шишкова (1998), Г.З. Идрисова (1998) комплексно на уровне
воздействия
или
патогенетически
в
процессе
развития
нарушений
сочетаются предрасполагающие и сопутствующие, эндогенные и экзогенные
причины болезней дисадаптации, нарушений обмена веществ, токсикопатий,
эндокринных
заболеваний, послеродовых
и других органопатологий.
Морфофункциональная основа восприимчивости к этим патологическим
последствиям определяется состоянием иммунной системы и ее связью с
другими системами организма.
По данным В.М. Юрко (1988), В.Д. Гуркиной (1983), М.П. Ухтверова
(2008) сигналом для реализации генотипического потенциала воспроизводительной и продуктивной функции у животных являются изменяющиеся по
сезонам года факторы окружающей природной среды, среди которых
наибольшее
значение
имеют
гелиогеофизические,
климатические
и
микроклиматические параметры, но чтобы пользоваться этими закономерностями для прогнозирования и разработки конкретных превентивных мер,
необходимо иметь системную модель морфофункциональных параметров
организма с учетом видовых, породных, возрастных других особенностей
животных. Для конструирования такой модели имеющихся в литературе
сведений недостаточно.
Отдельные сведения по изучению становления физиологического,
биохимического и иммунологического статуса ФБИС свиней с возрастом при
использовании биогенных корректоров в различные фазы постнатального
онтогенеза
с
целью
повышения
защитных
6
сил
организма
и
их
продуктивности
приведены
В.Г.
и
Морозова
соавт.
в
работах
Г.И.
(2000), Э.К.
Боряева
(1997,
2005),
Бороздина и
соавт.
(2002);
В.Х. Хавинсона и соавт. (2000), Ю.П. Фомичева (2004), А.Н. Беловола,
И.И. Князьковой (2008).
Авторы В.И. Усенко (2005), Т.В. Балагула, Ф.И. Василевич (2009),
А.М. Смирнов и соавт.(2001), Ю.Н. Федоров (2005), В.С. Григорьев,
В.И. Максимов (2007), В.В. Алексеев, А.А. Шуканов (2007) и др.
утверждают, что научное обоснование принципов управления механизмами
формирования
морфологической,
функциональной,
биохимической,
этологической и генетической адаптацией организма растений и животных с
учетом, гелиогеофизических и климатических условий обитания, является
актуальной проблемой современной биологической науки и биотехнологии.
В связи с этим вполне очевидна актуальность и целесообразность
изучения становления физиологического, биохимического и иммунологического
статуса
чистопородных
гелиогеофизических,
свиней
с
природно-климатических
возрастом,
и
с
учетом
микроклиматических
условий и его коррекции тимозином-α1 в условиях промышленной
технологии.
Цель работы – определить становление ФБИС чистопородных свиней
разных
генотипов
гелиогеофизических,
в
постнатальном
климатических
онтогенезе
и
в
зависимости
микроклиматических
от
условий
окружающей среды (активность солнечной энергии, геомагнитное поле,
концентрация О2, СО2, концентрация вредных газов (SО2, СО, NO2),
атмосферное давление, влажность, скорость движения воздуха, а также
состояние микроклимата в животноводческих помещениях) в теплый и
холодный периоды года и его коррекция тимозином-α1.
Задачи:
1. Определить
динамику
гелиогеофизических,
климатических
и
микроклиматических параметров в теплый и холодный периоды года в зоне
Среднего Поволжья.
7
2. Выявить особенности ФБИС свиней разных пород в постнатальном
онтогенезе в зависимости от гелиогеофизических и природно-климатических
факторов Среднего Поволжья, в том числе физиологические показатели,
морфофизиологические, биохимические и иммунологические показатели
крови, поверхностное натяжение сыворотки крови и другие.
3. Установить характер и степень влияния иммунокорректора тимозин-α1
на ФБИС свиней разных пород в постнатальном онтогенезе при влиянии
условий окружающей среды, в том числе физиологические показатели,
морфофизиологические, биохимические и иммунологические показатели
крови, поверхностное натяжение сыворотки крови и другие.
4. Обосновать оптимальные возрастные сроки применения иммунокорректора тимозина-α1 на свиньях разных пород при влиянии условий
окружающей среды.
Научная новизна работы. Получены новые данные, дополняющие
сведения
о
причинно-наследственной
морфофизиологического,
биохимического,
связи
физиологического,
иммунологического
статуса
организма чистопородных свиней разных генотипов с гелиогеофизическими
и климатическими факторами Среднего Поволжья.
Оценена
степень
совершенства
динамики
механизмов
ФБИС
чистопородных свиней крупной белой, дюрок и йоркшир по периодам года
и в зависимости от возраста.
Впервые установлены сроки эффективного использования иммунокорректора тимозина-α1 при выращивании свиней разных генотипов до мясной
кондиции.
Установлена зависимость формирования, развития систем клеточной
и гуморальной резистентности у свиней разных генотипов в онтогенезе
в зависимости от физиологической зрелости и продуктивной способности
организма.
8
Теоретическая и практическая значимость работы.
Выполненное исследование носит фундаментальный характер и
содержит решение актуальной научной проблемы – выяснение специфики
становления
и
совершенствования
систем,
функций
организма
чистопородных свиней в постнатальном онтогенезе. Знание особенностей
индивидуального развития и становление ФБИС, раскрытие механизмов
гуморальной и клеточной резистентности в разные фазы под влиянием
изменяющихся
факторов гелиогеофизических, природно-климатических
и микроклиматических условий является новым направлением в физиологии
и биохимии сельскохозяйственных животных.
Установленные особенности становления ФБИС и факторов клеточной
и гуморальной резистентности чистопородных свиней разных генотипов
в постнатальный период развития организма под влиянием изменяющихся
факторов гелиогеофизических, природно-климатических и микроклиматических необходимы для решения практических задач по созданию
нормальных условий содержания, обеспечивающих полное проявление
генетических потенциальных возможностей животных.
Проведена комплексная оценка сезонности возрастных особенностей
роста, развития, параметров показателей крови, факторов резистентности
разводимых пород свиней в условиях Среднего Поволжья в постнатальном
онтогенезе на фоне применения иммунокорректора тимозина-α1. Научнообоснована целесообразность применения тимозина-α1 в рационе свиней
с целью повышения их продуктивности.
Определена схема применения тимозина-α1 с целью повышения
факторов клеточной и гуморальной резистентности организма животного,
находящегося в условиях интенсивной технологии содержания.
С учетом результатов выполненных научно-исследовательских работ
разработаны мероприятия адаптивных возможностей животных, в условиях
изменяющихся гелиогеофизических и климатических факторов Среднего
Поволжья.
9
Основные положения, выносимые на защиту:
1. Морфофизиологический и биохимический статус свиней зависит от
гелиогеофизических,
природно-климатических
и
микроклиматических
условий в разные периоды года (теплый и холодный).
2. Для каждой фазы постнатального периода онтогенеза свиней разных
пород свойственны определенные морфофункциональные особенности
формирования, развития и функционирования систем гуморальной и
клеточной защиты организма в зависимости от гелиогеофизических,
природно-климатических и микроклиматических условий периода года
(теплый и холодный).
3. Иммунокорректор тимозин-α1 влияет на динамику роста, развития
и ФБИС свиней разных пород.
Апробация работы и публикации. Основные материалы диссертации
доложены
и
обсуждены
на:
ежегодных
научно-производственных
конференциях ФГБУ ВПО СГСХА в 1999…2011 гг.; заседании XII
межвузовского координационного совета по свиноводству (пос. Персиановка, 2003); научно-технической конференции фармакологов Российской
Федерации (Троицк, 2007); XX Съезде Физиологического общества имени
И.П. Павлова (Москва, 2007); II и III съезде физиологов СНГ «Физиология
и здоровье человека» (Кишинэу, 2008; Ялта, 2011); II съезде ветеринарных
фармакологов и токсикологов России (Казань, 2009); на XXI Съезде
Физиологического
общества
имени
И.П.
Павлова
(Калуга,
2010);
Всероссийской научно-практической конференции молодых ученных «Вклад
молодых ученых в инновационное развитие АПК России» ФГОУ ВПО
«Пензенская государственная сельскохозяйственная академия» (Пенза, 1996,
1999, 2009), VІІ съезде Казахского физиологического общества с международным участием (Алматы, 2011); Международных научно-практических
конференциях: посвященной памяти профессора А.Ф. Блинохватова (Пенза,
2008); «Достижения супрамолеку-лярной химии и биохимии в ветеринарии и
зоотехнии» (Москва, 2008); «Проблемы увеличения производства продуктов
10
животноводства и пути их решения» (Дубровицы, 2008); Проблемы
производства свинины в Российской Федерации (Ставрополь, 2008);
посвященной 100-летию со дня рождения П.Г. Петовского (Киров, 2009);
Самарской
НИВС
Россельхозакадемии
(Самара,
2009,
2010,
2011);
посвященной 90-летию МГАВМиБ им. Скрябина (Москва, 2009); «Кадровое
и научно-практическое обеспечение инновационного развития отрасли
животноводства» (Казань, 2010, 2011); «Ветеринарная медицина XXІ века:
инновации, опыт, проблемы и пути их решения» (Ульяновск, 2011);
«Инновационные подходы в ветеринарии, биологии и экологии» (Троицк,
2011).
Публикации. По теме диссертации опубликовано 51 работ, из них 16
в ведущих рецензируемых научных журналах и изданиях, определенных
ВАК России.
Структура и объем диссертации. Работа включает следующие
разделы: общая характеристика работы (7 с.), обзор литературы (49 с.),
собственные исследования (167 с.), обсуждение результатов исследований
(22 с.), выводы (5 с.), предложения производству (1 с.), список литературы
(41 с.) и приложений.
Диссертация изложена на
страницах компьютерного исполнения,
содержит 56 таблиц, 32 рисунков. Список литературы включает 434
источников, в том числе 115 зарубежных.
11
2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
В современном животноводстве важной и нерешенной проблемой
является высокая заболеваемость, гибель и низкая продуктивность сельскохозяйственных животных. Такая ситуация обусловлена следствием слабой
устойчивости животных к воздействиям постоянно изменяющихся факторов
внешней среды организма.
Организм
животных
и
его
жизнедеятельность
находятся
во
взаимосвязи с окружающей внешней средой. Наука и практический опыт
показывают, что эти взаимоотношения тем сложнее, чем выше генетической
потенциал животного.
Применение промышленной технологии в животноводстве не позволило массово использовать потенциальные продуктивные и репродуктивные
возможности сельскохозяйственных животных. Генетический потенциал
продуктивности животных реализуется не более 50-60%. Вынужденная
выбраковка основной массы маточного стада до наступления периода их
максимальной продуктивности и достижения рентабельности, нарушения
технологий содержания, кормления животных, повышение интенсивности их
использования снижают резистентность организма.
Механизмы резистентности играют ведущую роль в защите организма
от неблагоприятных факторов внешней среды. Резистентность организма
является наиболее общей чертой механизма адаптации, нацеленной на
выполнение определенного класса задач по поддержанию структурнофункционального гомеостаза организма.
2.1. Иммунный статус организма животных в постнатальном онтогенезе
Иммунитет (от лат. Immunitas – освобождение от чего-либо)
невосприимчивость организма к воздействию болезнетворных агентов,
продуктов их жизнедеятельности, а также генетически чужеродных веществ,
обладающих антигенными свойствами. Иммунитет рассматривается как
12
способность организма отличать чужеродный материал от «своего»
(например: «чужой» белок от «своего»), что жизненно важно для сохранения
гомеостаза (В.Т. Шитиков, 1981).
Иммунитет – комплексная реакция, направленная на защиту организма
от живых тел и веществ, отличающихся от него наследственно чужеродными
свойствами (Б.В. Петровский, 1984).
Иммунный статус осуществляется лимфоидной системой организма.
В состав этой системы входят костный мозг, тимус (вилочковая железа),
селезенка, пейеровы (лимфоидные) бляшки кишечника, лимфатические узлы.
Все
они
связаны
между
собой
в
единую
систему
кровеносных
и лимфатических сосудов. Отдельные образования, входящие в состав
лимфоидной системы, неоднородны по функциональной нагрузке и делятся
на центральные и периферические. Выработка антител и окончательное
созревание лимфоцитов происходит в периферических органах (селезенке,
лимфатических узлах), развитие и постоянное функционирование которых
зависит от центральных лимфоидных образований – костного мозга
и тимуса. В косном мозге находятся стволовые клетки – родоначальники
различных видов клеток крови. Они выполняют важнейшие функции,
обеспечивая самообновление иммунобиологической системы – положения
и состояния иммунного статуса организма животного. В центральных
органах
иммунной
системы
идут
процессы
пролиферации
клеток-
предшественников, их дифференцировка и созревание, вплоть до выхода
в циркуляцию и заселения периферических органов иммунобиологической
системы зрелыми иммунокомпетентными клетками (А.М. Прогоров, 1985;
Ю.К. Федоров и соавт., 2000).
В широком понимании иммунобиологическая адаптация – это система
защитных реакций организма против факторов внешней среды (в т.ч.
микробных),
нарушающих
функциональную
целостность
организма.
В выполнении этой защиты участвуют как механизмы неспецифической
защиты, так и специфический иммунный ответ на конкретные антигены
13
(И.К. Тутов, 1997; N.T. Gormann, 1995). Специфический иммунный ответ
усиливает механизмы неспецифической защиты, деятельность которых более
целесообразна (Я.Е. Колянов, 1986; M. Juiius, C. Maroun, L. Haughul, 1993).
Работами А.М. Никитенко (1987), В.С. Григорьева, Г.В. Моляновой
(2009) и других исследователей доказано, что структурное состояние
центральных органов иммунной системы влияет на функционирование
иммунобиологической системы в целом.
По мнению А. Ройта (1991), И.С. Фрейдлина (1995) и др. в настоящее
время защитные факторы иммунобиологической системы можно разделить
на клеточные и гуморальные, которые в свою очередь могут быть
неспецифическими и специфическими.
К числу внутренних клеточных факторов неспецифической защиты
организма относится фагоцитарная реакция. Явление фагоцитоза было
открыто И.И. Мечниковым в 1883 г. Он установил, что фагоцитоз это
врожденная реакция организма, проявляющаяся в способности клеток
(фагоцитов) захватывать проникающие в тело животного инородные
частицы, в т.ч. микроорганизмы, с последующим их ферментативным
перевариванием.
Клеточный (клеточно-опосредованный) специфический иммунный
ответ подразумевает накопление в организме клона Т-лимфоцитов, несущих
специфические для данного антигена антиген-распознающие рецепторы и
ответные за клеточные реакции иммунного воспаления – гиперчувствительности замедленного типа, в которых кроме Т-лимфоцитов участвуют
макрофаги (Е.И. Соколов, 1998).
Гуморальными неспецифическими факторами называют потому, что
они были обнаружены в жидкой среде организма животных (лимфа, плазма
крови и прочее). К ним относится лизоцим, бактерицидная активность крови,
комплемент и др. (В.М. Скорляков, С.А. Пигалев, 1986).
Основную
В-лимфоциты,
роль
в
которые
реализации
под
гуморального
влиянием
14
ответа
антигенного
играют
стимула
дифференцируются в антителопродуценты. Однако В-лимфоциты, как
правило, нуждаются в помощи Т-хелперов и антиген-презентующих клеток
(Ю.Н. Федоров, 1981; В.Г. Галактионов, 2005).
В
настоящее
время
иммунобиологические
факторы
адаптации
организма животных понимают как многокомпонентную полифункциональную систему гомеостаза, участвующую не только в первой линии защиты
организма от всего генетически чужеродного, но и наделенную широкими
регуляторными функциями (А.М. Земсков и соавт., 1994; Ф.П. Петрянкин,
Н.К.
Кириллов,
2004).
Иммунобиологическая
система
контролирует
качественное постоянство генетически детерминированного клеточного и
гуморального состава организма (Д.Н. Лазарева и соавт., 1985; И.М. Карпуть,
1985; М.Р. Сапин, Л.Е. Энтиген, 1996; К.А. Лебедев, И.Д. Понякина, 1990;
Б.Д. Брондз, 1987; 2000).
Центральные органы иммунной системы на органном уровне представлено костным мозгом и тимусом, основной функцией которых является
контроль
над
созреванием
и
функциональной
активностью
Т-
и
В-лимфоцитов. Селезенка, лимфоузлы, кровь и скопления лимфоидной
ткани,
встречающиеся
по
всему
организму,
являются
вторичными
лимфоидными образованиями, обеспечивающими течение иммунологической реакции (А.Я. Кульберг, 1985; М.С. Ломакин, 1990).
Костный мозг является источником стволовых клеток, образующих
самоподдерживающуюся популяцию, дающую начало всем клеткам крови
иммунной системы (Р.В. Петров, 1983). От степени функционирования
костного мозга и активации популяции стволовых клеток зависит количественное и качественное состояние эритопоэтических и лейкопоэтических
клеток, а также элементов мегакариобластического ряда, формирующих
кровяные пластинки (Р.Н. Айзман, В.М. Шаргимова, 2002; М. Р. Сапин,
Л.Н. Плившев, 1986).
Многие ученые (Ш.Д. Галустян, 1949; Н.Б. Лихачев, 1964) вилочковую
(зобную) железу – тимус рассматривают как лимфоидное образование,
15
а в трудах Е.А. Лурия (1964), А.Я. Фриденштейна с соавт. (1969) вилочковая
железа представляет собой регулятор иммунологических реакций организма.
З.С. Кацнельсон и соавт. (1962), М.Е. Пилипенко (1972) вилочковую железу
характеризуют как специализированный орган, обеспечивающий организм
нуклеопротеидами в течение позднего плодного и раннего постнатального
периодов жизни животного.
В.И. Георгиевский (1963), В.А. Куликова (1967) утверждают, что тимус
является как лимфоидным органом, так и эндокринной железой, в которой
образуются гормоны тимозин, тимулин, Т-активин.
Miller I. F. A. P. (1961, 1962) сторонник клеточной теории, считает, что
лимфоциты коркового вещества тимуса дают клеточную популяцию,
обеспечивающую, благодаря своему размножению и трансформациям,
иммунные реакции организма в течение всей жизни.
Тимус оказывает кардинальное влияние на состояние всей иммунобиологической системы и корректирует нарушения иммунобиологического
гомеостаза организма (Э.К. Бороздин, К.В. Клееберг, 1987; В.И. Усенко,
2000).
Экспериментально доказано, что тимоэктомия у новорожденных ведет
не только к иммунодефициту, но и к развитию других симптомов – задержке
роста, полового созревания, к выраженным атрофическим изменениям кожи,
слизистых, внутренних органов, снижению репоративной регенерации
и иных процессов, связанных с клеточной пролиферецией (С.Г. Мамонов,
С.М. Кремли, 1983; Ю.И. Бандашевский и соавт., 1994) и ускоряет развитие
иммунной недостаточности (I.F. Miller, 1980).
Причины возрастной инволюции вилочковой железы полностью не
выяснены. Считают, что она связана с уменьшением лимфопоэза в железе с
возрастом. Однако в любом случае она не зависит от уменьшения числа
родоночальных
клеток,
от
которых
(А.А. Ярилин, 1989, 1991).
16
происходят
лимфоциты
А. Поликар (1965), В.Н. Никитин (1975) высказывают предположение
о том, что нормальную инволюцию вилочковой железы можно связать с
увеличением продукции других эндокринных желез, в особенности половых.
В
тимусе
преобладающими
клеточными
элементами
являются
лимфоциты. Различают три самостоятельных типа тимоцитов: Т-хелперы,
Т-эффекторы (киллеры) и Т-супрессоры. Каждый из этих типов лимфоцитов
имеет свободный набор поверхностных аллоантигенов. При созревании
предшественников Т-лимфоцитов происходит изменение
лимфоцитарной
мембраны
(И.В.
Мирошниченко
и
компонентов
соавт.
1987;
М.Ф. Никонова с соавт. 1987, 1988; Е.К. Олейник и соавт. 1990; Б.Н. Сафонов
и соавт. 1997; Р.М. Хаитов 2000; A.G. Clarke and al.,1994; M.P. Dabrowshi
1991; A. Landsberger, 1987).
В настоящее время из тимуса выделен ряд биологически активных
веществ: тимозин, тимулин, тимопоэтин и множество других. Их строению
и воздействию на дифференцировку тимоцитов посвящен ряд обзоров
и монографий (М.И. Карпуть, 1997; В.Ю. Серебров с соавт., 1993;
B. Marchetti and al., 1990; G. Millington and al., 1992; U.M. Moll, 1997).
Фабрициева сумка у птиц признана центральным лимфатическим
органом. Контроль гуморальных реакций осуществляется В-лимфоцитами,
продуцируемыми бурсой, а клеточных – Т-клетками, происходящими из
тимуса птиц. У млекопитающих фабрициевой сумки нет. Однако Р.В. Петров
(1983), Ю.Н. Федоров с соавт. (2000) и другие считают, что эквивалентом
бурсы у млекопитающих является GALT-лимфоидная ткань, ассоциированная со слизистой оболочкой кишечника. Совокупность лимфатических
фолликулов располагается в стенках кишечника.
Лимфатические
узлы.
Исследователями
структуры
и
функций
лимфатических узлов занимались многие ученые (Л. Ашоф, 1928;
Д.А. Жданов, 1960, 1962; И.И. Мечников, 1900; W. Flemming, 1885).
В дальнейшем познания о лимфатических узлах значительно расширились.
Лимфатические узлы – специальные органы лимфатической системы,
17
скопления лимфоидной ткани, расположенные по ходу лимфатических
сосудов. При клеточном типе иммунного ответа паракортикальная зона
лимфатического узла значительно увеличивается, что свидетельствует об
участии этой зоны в функционировании Т-системы иммунитета. При
развитии
иммунного
ответа
по
гуморальному
типу,
связанному
с
деятельностью В-системы и выработкой антител, резко возрастает число
центров размножения. В медулярной области накапливаются плазматические
клетки, которые будут синтезировать антитела той специфичности, на
которую был запрограммирован лимфоцит-предшественник (А. Ройт, 1991).
В работе В.М. Скорякова (1998) показано, что изменения структуры
лимфатических узлов приводит к снижению уровня иммуноглобулинов
сыворотки крови у телят.
По мнению многих авторов, основными структурными элементами
селезенки является селезеночная долька. В ней нет лимфатических сосудов,
но в строме селезенки, как и в лимфатических узлах, обнаруживают
лимфоидные скопления – лимфатические фолликулы с зародышевыми
центрами,
содержащими
лимфоидные
элементы
различных
стадий
созревания. Лимфоидная ткань этого органа участвует преимущественно в
иммунных реакциях гуморального типа, обеспечивая накопление больших
количеств плазматических клеток, синтезирующих антитела (Я.Е. Коляков,
1986).
Печень кроме депо эритроцитов является еще и регуляторным органом,
она синтезирует ряд белков крови, обладающих иммуносупрессорными и
другими функциями. Купферовы клетки печени участвуют в фагоцитозе
(Н.А. Налетов и др., 1991; Р.Х. Кармолиев, 1991).
К периферическим тканям иммунобиологической системы относится и
кровь. В ней циркулируют кроветворные стволовые клетки и лимфоциты
обоих типов. Ее морфологический состав является важным показателем
состояния
защитно-приспособительных
механизмов
организма.
Кровь
представляет собой как бы ту внутреннюю среду, в которой происходит
18
развитие
и
жизнедеятельность
организма.
Отличаясь
относительным
постоянством видовых, породных и индивидуальных особенностей, состав
крови довольно лабилен в качестве механизма адаптации колебаний
к условиям жизни (Е.Е. Нечитайло, У.А. Одабашьян, 1984; О. Шахбазова,
1995; Ю.В. Зориков, А.А. Зорикова, 1998; L. Andersson еt al., 1993).
Клетки иммунной системы. Иммунную систему можно рассматривать как совокупность лимфоцитов, макрофагов, фагоцитов, базофилов,
тучных и дендридных клеток, а также как специализированные эпителиальные клетки, активно участвующие в иммунном ответе. Из этих клеток только
лимфоциты
обладают
определенной
специфичностью к
чужеродным
субстанциям и иммунологической памятью, способностью распознавать по
системе «свой/чужой». Им принадлежит ведущая роль во всех реакциях
приобретенного иммунитета. Все остальные типы иммунных клеток также
играют немаловажную роль в приобретенном иммунном ответе, посылая
определенные сигналы для активации лимфоцитов, повышая эффективность
устранения чужеродных антигенов с помощью фагоцитоза или секретируя
различные воспалительные медиаторы. Во время иммунного ответа лимфоциты продуцируют разнообразные небольшие белковые молекулы, называемые цитокинами. Эти молекулы действуют как иммунорегуляторные гормоны и играют важную роль в регуляции иммунного ответа (В.А. Флоренсов‚
1966; А. Ройт‚ Д.Ж. Бростофф‚ Д. Мейд‚ 2000).
Способность организма отвечать практически на любой антиген
обеспечивается
наличием
весьма
большого
числа
различных
групп
лимфоцитов, каждая из которых имеет специфические рецепторы для
определенных антигенов. Таким образом, лимфоциты различаются между
собой не только по специфичности своих рецепторов, но также и по их
функциональным свойствам (У. Пол‚ А. Сильверстайн‚ М. Купер‚ 1987).
Клетки
иммунобиологической
системы
происходят
от
общего
предшественника – стволовых клеток, находящихся в костном мозге
и постоянно самообновляющихся в течение всей своей жизни.
19
Считают, что из гемопоэтической стволовой клетки развивается общая
миелоидная и общая лимфоидная клетки-предшественники. Лимфоидный
предшественник порождает Т- и В-лимфоциты, NK-клетки, миелоидный –
мегалоциты (предшественники тромбоцитов), гранулоциты (нейтрофилы,
эозинофилы, базофилы, полиморфноядерные лейкоциты), тучные клетки и
моноциты, которые превращаются в макрофаги. Эритроцитарная линия
продуцирует красные клетки крови.
Макрофаги
постоянно
созревают
из
циркулирующих
в
крови
моноцитов. Покидая кровяное русло, созревающие макрофаги мигрируют в
различные ткани организма (М. Juiius et al., 1993). Макрофаги находятся во
всех органах и связанных с ними тканях и имеют специальные названия в
зависимости от их места локализации. Например, в органах центральной
нервной системы (мозге) они называются микроглия, в васкулярных
синусоидах кишечника – купферовыми клетками, в альвеолах легких –
альвеолярными макрофагами. Многоядерные фагоциты в костном мозге
называются остеокластами (А. Abbas, A.N. Lichtman, J.S. Pober, 2000).
Макрофаги
фагоцитируют
чужеродные
частицы
(микроорганизмы,
макромолекулы) и собственные ткани (поврежденные или мертвые клетки,
стареющие эритроциты и т.п.) лизосомными ферментами (В.И. Андрианов,
А.В. Бадикова, А.В. Котов, 1999; А. Ройт, Дж. Бостофф, Д. Мейл, 2000;
В.Р. Гофман, Н.М. Калинина, С.А. Кетнинская, 2000; В.Т. Долгих, 2000;
А.Ф. Романова, Я.И. Ваговская, В.Е. Логинский, 2000).
Секретируемые макрофагами молекулы выполняют эффекторные и
регуляторные функции. При формировании специфического иммунного
ответа, макрофаги выполняют функцию представления антигена. Кроме того,
секретируемые
макрофагами
цитокины,
в
частности
интерлейкин-1,
способствуют активации Т-лимфоцитов при их ответе на антиген. Известно,
что способность макрофагов и лимфоцитов стимулировать функции друг
друга приводит к значительному усилению механизмов специфического
иммунитета.
Макрофаги
принимают
20
участие
в
эффекторной
фазе
гуморального иммунного ответа, захватывая и уничтожая, патогенные
бактерии, опсонизированные специфическими антителами и комплементом
(Hull В., Jioner К. 1991).
В иммунном ответе могут участвовать и другие лейкоциты крови:
гранулоциты или полиморфноядерные лейкоциты. Эти клетки составляют
первую линию неспецифической противомикробной защиты. Они первыми
мобилизуются в очаг воспаления или инфекции и от их фагоцитарной
активности зависит элиминация возбудителей.
Нейтрофилы обладают всеми функциями фагоцитирующих клеток:
адгезивностью, подвижностью, способностью к хемотаксису, способностью
захватывать бактерии и другие частицы, убивать захваченные микроорганизмы с помощью кислород-зависимых и кислород-независимых механизмов и
переваривать захваченные объекты фагоцитоза. Нейтрофилы могут быть
активированы цитокинами, продуцируемыми макрофагами или эндотелиальными клетками (Г.Т. Сухих, Л.В. Ванько, В.И. Кулаков, 1997; В. Н. Кокряков, 1990, 2006; S. Gompertz, 2000; A.P. Samson, 2000). В отличие от
макрофагов, нейтрофилы поглощают и переваривают преимущественно
бактерии (Ю.А. Мазинг, 1991; Э.Б. Мирзаев, 2000; А. Lopez et al., 1992;
L. J. Gershwin, S. Krakowka, 1995; Y. Ishibashi, 1999).
При оценке фагоцитоза главным показателем функционального
состояния этой системы является способность фагоцитов поглощать и
убивать микробы. При изучении фагоцитоза важным этапом является
определение количества нейтрофилов и моноцитов в периферической крови,
их способности к аттракции микроба, поглощению и заключительной стадии
переваривания (И.С. Фрейдлин, 1998). В переваривании принимают участие
лизоцим (H.W. Leich, 1984), фагоцитин (R.T. Cheney et al., 1984.) и другие
ферменты клеток.
Ключевым
этапом
фагоцитарной
реакции
является
деградация
фагоцитированных частиц. В настоящее время эта реакция рассматривается
по двум направлениям: умерщвление (киллер-эффект) и деградация
21
нежизнеспособных частиц.
Фагоцитозу способствуют нормальные или иммунные антитела,
комплемент, пропердин, лизоцим. Кроме того, фагоцитоз, осуществляемый
макрофагами, является первой фазой специфической иммунной реакции при
многих инфекционных заболеваниях (А.В. Герасимчук, 1986; Р.М. Шмидт
и др., 1990; N.C. Jain, 2001).
Любая
форма
иммунного
ответа
начинается
с
распознавания
чужеродного антигена, т.е. его связывания со специфическим рецептором на
мембране зрелого лимфоцита. Такие специфические рецепторы существуют
на мембранах лимфоцитов до встречи с антигеном (С.А. Janewey, Р. Travers,
1996).
Лимфоциты – это единственные клетки организма, способные
специфически распознавать и различать разные антигены и отвечать
активацией на контакт с определенным антигеном. Лимфоциты составляют
исключительно неоднородную популяцию клеток. Они различаются между
собой не только по специфичности своих рецепторов, но также и по своим
функциональным свойствам (M.F. Garaves, 1973; В.Е. Пирагалевский, 1983;
Р.Ф. Эшмен, 1987; Д.В. Стефани, Ю.Е. Вельтищев, 1996; Н.В. Медуницин,
1999; В.Т. Долгих, 2000).
Ряд авторов считают, что В-лимфоциты распознают "чужое" антигенспецифическими рецепторами иммуноглобулиновой природы, которые по
мере созревания экспрессируются на их мембранах. Взаимодействие
антигена с такими рецепторами является сигналом активации В-лимфоцитов,
и их антигензависимой дифференцировки в плазматические клетки, активно
продуцирующие и секретирующие специфические для данного антигена
антитела – иммуноглобулины (I. Chen, F. Alt, 1992; E. Benjamini, G. Sunshine,
S. Leskowitz, 1996). Особенность Т-клеточного рецептора − способность
распознавать чужеродный антиген только в комплексе с собственным
клеточным
антигеном
на
поверхности
вспомогательных
антиген-
представляющих клеток (дендритные или макрофаги). В отличие от
22
В-лимфоцитов, способных распознавать антиген в растворе и связывать
белковые и прочие антигены, Т-лимфоциты могут распознавать только
короткие пептидные фрагменты белковых антигенов, представленные на
мембране других клеток в комплексе с собственными антигенами главного
комплекса гистосовместимости (В.А. Малыжев, 1977; В.Н. Минеев, 2005,
2006; A.К. Abbas et al., 2000). Недифференцированные лимфоциты после
нескольких делений превращаются в клетки памяти, способные переживать в
организме 20 лет и более и поддерживать состояние иммунологической
памяти в отношении конкретного антигена.
Бактерицидная активность сыворотки крови является интегральным
фактором естественной резистентности гуморального типа. Бактерицидность
крови связана с наличием в сыворотке особых растворимых веществ,
убивающих и растворяющих микробные клетки. Важнейшими компонентами
бактерицидной системы сыворотки крови исследователи называют лизоцим,
комплемент, пропердин и многочисленные антитела.
Инициатором проявления бактерицидной активности в сыворотке
крови считается IgМ, как наиболее комплемент-зависимый, а в секретах
слизистых – IgА, как наиболее лизин-зависимый (В.М. Скорляков, 1998).
Одним
из
важнейших
гуморальных
факторов,
определяющих
состояние естественной резистентности, является лизоцим, который по своей
природе – фермент с мураминидазной активностью. Его активность
проявляется в гидролизе бета-(1-4)-гликозидной связи полиаминосахаров
клеточной
стенки,
преимущественно
грамположительных
бактерий
(Ш.М. Рузнов, 1989; W.C. Ellis, 1983).
Нормальное содержание лизоцима в крови на 3/4 обеспечивается
производящими его клетками крови (макро- и микрофагами). Установлено,
что одна нейтрофильная клетка повышает активность лизоцима сыворотки на
0,004-0,144%, а одна моноцитарная − на 0,0363-0,118% (А.А. Бухарин,
А.В. Васильев, 1974). Причем макрофаги синтезируют лизоцим постоянно
в процессе жизнедеятельности, а микрофаги выделяют его только после
23
повреждения (L.H. Mushel et al., 1977). Считается, что с участием лизоцима
разрушаются и перевариваются фагоцитированные лейкоцитами бактерии
(В.Н. Денисенко, 1995).
Кроме основного антибактериального действия, лизоцим оказывает
иммуностимулирующее и иммунорегулирующее воздействие на общие
защитные механизмы макроорганизма, что играет большую роль в
предупреждении заболеваний и в благоприятном исходе инфекционного
процесса (В.П. Царев, Н.В. Бородинов, 1980; Э.Г. Щербакова и др., 1983).
При сравнении лизоцима различных видов животных, разных органов
тканей и жидкостей одного животного или одних и тех же органов разных
животных
установлено,
что
он
имеет
качественно
одинаковую
биологическую активность (А.В. Васильев, 1976).
Белки сыворотки крови выполняют множество функций – они
регулируют онкотическое давление, рН крови, транспортируют углеводы,
липиды, гормоны и другие вещества для синтеза органов и тканей.
И.Ф.
Храбустовский
(1970)
отмечает,
что
белки
являются
материальной основой для создания высокой резистентности к заболеваниям.
Содержание общего белка в сыворотке крови свиней отражает
обеспеченность организма пластическими веществами. Количественное
определение уровня белка и белковых фракций в сыворотке крови
необходимо в практических условиях для осуществления контроля состояния
белкового
обмена
(Л.А.
Воронцова
и
др.,
1980;
В.П.
Волжанин,
А.С. Бибикова, 1980; А.М. Вислогузов, 2004; Р.Х. Кармолиев, 1988).
Одним
из
важнейших
элементов
гуморальной
специфической
иммунной системы организма является иммуноглобулины.
Определение количественного уровня иммуноглобулинов позволяет
судить не только о нормальном функционировании В-системы, но и косвенно
о Т-системе иммунитета (Б.Б. Першин, 1994). Так, повышенный уровень IgЕ
может указывать на усиление синтеза ИЛ-4 и, следовательно, об усилении
функции Т-хелперов 2 порядка.
24
Иммуноглобулины. Иммуноглобулины, синтезируемые плазматическими клетками, представляют собой крупные белковые молекулы глобулинов. Их иммунологическая функция позволила употреблять вместо термина
«антитела» термин «иммуноглобулин». Антитела способны к специфическому соединению с антигеном, вызвавшим их образование. Эти белки
составляют около 1% массы крови, т.е. в 1 л крови их содержится около 10 г.
Насчитывается огромное количество молекул антител – 2∙1020 (Р.В. Петров,
1983).
Основная
функция
молекул
иммуноглобулинов
сводится
к
специфическому связыванию с чужеродными молекулами (антигенами),
приводящему к инактивации или удалению токсина, микроорганизма,
паразита или каких-либо веществ из организма (У. Пол, 1987; Е.И. Соколов,
1992).
Известно пять классов иммуноглобулинов IgG, IgМ, IgA, IgЕ, Ig D –
они обладают выраженной специфичностью. Уровень иммуноглобулинов
основных классов у животных отличается большой вариабельностью
(M.R. Williams et al., 1978; Д.Н. Евнин, 1980).
Основную массу сывороточных иммуноглобулинов 70-80% составляет
иммуноглобулин класса G, 10-15% – класс А, 5-10% – класс М и около
0,2% – иммуноглобулины классов Е и D (А. Ройт, 1991; Р. Porter, 1973).
У свиней наиболее изучены иммуноглобулины класса G, М и А.
В
структурном
и
функциональном
отношении
наиболее
изучены
иммуноглобулины класса G. В количественном отношении они доминируют
и составляют по разным данным (I. Kacskovics et al., 1994; L.J. Gershwin et al.,
1995) 70-80% общего содержания иммуноглобулинов.
Иммуноглобулины класса G являются доминирующими в сыворотке
крови человека и домашних животных, составляя 70-85% всех глобулинов.
Молекулярная масса IgG до 160 000 дальтон. Время полураспада IgG в
организме крупного рогатого скота 20-25 суток, у других видов животных –
до 20 суток (Я.Е. Коляков, 1986).
Иммуноглобулины класса G стимулируют вторичный иммунный ответ.
25
Основная биологическая функция – защита организма от возбудителей
инфекции и продуктов их жизнедеятельности путем фиксации комплемента,
опсонизации или активации фагоцитов.
Иммуноглобулины класса G в большом количестве присутствуют в
сыворотке крови всех млекопитающих и птиц. Иммуноглобулины G
наиболее активны в реакции преципитации и связывания комплемента
(И.К. Тутов, 1997; С.А. Павлович, 1998; W.R. Brown, J.E. Butler, 1994).
Определение иммуноглобулина класса G представляет определенную
диагностическую ценность, так как при снижении его общего уровня и
субклассов
повышается
предрасположенность
к
инфекционным
заболеваниям. Так, например, дефицит, связанный с IgG, а также с IgА, ведет
к повышению заболеваемости респираторными инфекциями (J. Sun,
J.E. Butler, 1997).
В ходе иммунного ответа вначале появляются иммуноглобулины
класса М. У новорожденных первые антитела также относятся к этому классу
иммуноглобулинов. Они играют важную роль в патогенезе некоторых
аутоиммунных заболеваний и служат основными рецепторами для антигенов
на поверхности зрелых В-клеток, где находятся в виде мономеров (S.M. Fu et
al., 1975). В сыворотке крови молекулы IgM существуют в виде пентамеров с
молекулярной массой 950 000. IgM составляют 5-10% от всех сывороточных
иммуноглобулинов, период полураспада равен 5 суткам. IgM следует
рассматривать
как
наименее
изменчивый
класс
иммуноглобулинов
(R.L. Wasserman, L.D. Capra 1978).
Иммуноглобулины класса M имеют молекулу с пятью и более
активными центрами и являются в организме сильными активаторами
комплементарной системы (А. Ройт, 1991). Также Ig М эффективен в
реакциях гемолиза и лизиса бактерий. Основной источник IgM у всех
млекопитающих – селезенка. Клетки, вырабатывающие IgM в ответ на один
антиген, могут синтезировать этот класс иммуноглобулинов постоянно.
Иммуноглобулин
М
особенно
эффективен
26
против
вторжения
микроорганизмов, способствует перевариванию антигенов макрофагами.
Иммуноглобулины класса М весьма эффективны в реакциях агглютинации, опсонизации, хорошо активируют комплемент по классическому
пути. У большинства видов животных IgM не переходят через плаценту от
матери к плоду. Различают два подкласса IgM по способности Fc-фрагмента
связывать комплемент: IgMl связывает его, IgM2 не связывает (А.Е. Коляков,
1986).
Иммуноглобулины класса Е содержатся в сыворотке в очень
небольших
количествах,
однако
они
являются
главным
классом
иммуноглобулинов, подготавливающим тучные клетки и базофилы к
участию в аллергических реакциях (C. Prussin, 2003).
Иммуноглобулины класса D входят в состав рецепторных клеток
(Р.В. Петров, А.А. Михайлова, 1983), в частности В-лимфоцитов, и играют
важную роль в процессе их дифференциации под влиянием антигена.
Выявлена способность IgD активировать комплемент по альтернативному
пути.
Иммуноглобулинам класса А отводится ведущая роль в местной
иммунологической защите (W.R. Brown et al., 1995) – это так называемые
секреторные антитела. Они содержатся преимущественно в различных
секретах:
молозиве,
молоке,
слезе,
слюне,
содержимом
кишечника.
Иммуноглобулин А снижает адгезию бактерий и вирусов на поверхности
эпителиальных клеток, а в комплексе с лизоцимом может активировать
систему комплемента.
Естественные
состояние
антитела.
гуморального
Одним
иммунитета,
из
показателей,
является
отражающих
содержание
в
крови
нормальных (естественных) антител, выявляемых при отсутствии инфекции
и иммунизации. Эти антитела впервые описали в 1894 г. Abel и Wasserman.
В 1930 г. Gibs обнаружил у 9 видов млекопитающих животных и человека
нормальные антитела-агглютинины к 12 видам бактерий (цитировано по
В.М. Шубик, М.Я. Левин, 1982).
27
Согласно гипотезе датского иммунолога, в организме всех животных в
небольшом количестве имеются естественные (т.е. присущие от рождения)
антитела ко всем возможным антигенам; другие авторы (П.А. Емельяненко,
1987; Р.П. Маслянко, 1987) считают, что появление нормальных антител
можно объяснить тем, что с момента рождения, организм новорожденных
животных заселяется многочисленными представителями разнообразной
микрофлоры, которая обитает в воздухе помещений, кормах, молоке, воде,
составляя нормальную аутофлору животных. Как мертвые, так и живые
клетки бактерий, кокков и др. микрофлоры вместе с молоком и водой
постоянно поступают в желудочно-кишечный тракт животных, подвергаясь
при этом разрушению пищеварительными ферментами; освобождающиеся
антигенные компоненты всасываются в кровь и оказывают соответствующее
воздействие на органы иммунной системы, индуцируя их к образованию
антител. Поэтому в организме животных появляются нормальные, т.е.
возникающие спонтанно, без искусственной иммунизации
антитела. Эти
антитела выполняют функцию неспецифической защиты организма животных, основная их роль – фиксация антигенов. Титр их невысок (по реакции
агглютинации – 1:10-1:40). Чаще всего они взаимодействуют с микрофлорой
слизистых оболочек дыхательного и пищеварительного трактов. Обычно
принято относить естественные антитела к иммуноглобулинам класса М.
В- и Т-лимфоциты. Различают два основных класса лимфоцитов:
В-лимфоциты, которые служат предшественниками антителообразующих
клеток, и Т- или тимусзависимые лимфоциты. Т-лимфоциты подразделяются
на ряд подклассов. Часть из них опосредует важные регуляторные функции,
в частности может «помогать» развитию иммунного ответа (хелперы) и
«подавлять» его (супрессоры), в том числе подавлять образование антител.
Другие
Т-лимфоциты
выполняют
эффекторные
функции,
например,
вырабатывают разнообразные цитокины, запускающие воспалительные
реакции, или осуществляют прямое разрушение клеток, несущих на себе
антигены («киллерная» функция). Таким образом, Т-клеточная система
28
состоит из следующих субпопуляций: Т-хелперы, Т-супрессоры, цитотоксические Т-лимфоциты, или Т-киллеры, а также Т-клетки, участвующие в
реакции замедленной гиперчувствительности и связанных с нею иммунологических явлений. Кроме лимфоцитов этих двух главных классов известны
еще лимфоциты, осуществляющие некоторые неспецифические цитотоксические реакции. К ним относятся так называемые натуральные киллеры,
способные убивать некоторые виды опухолевых клеток, используя при этом
совершенно иные системы распознавания по сравнению с теми, которые
используются Т- и В-лимфоцитами (R. Rulssell, 1994; J. Sabroe et al., 2003;
M. W. Hess‚ 1968; M.A. Cooper, 2001).
Источником Т-клеток является общий лимфоцитарный предшественник, комитирование которого в сторону протимоцита происходит в костном
мозге. Хемотаксис предшественников Т-лимфоцитов из костного мозга в
субкортикальную зону тимуса обеспечивается тимозином (В.Ф. Чеботарев,
А.В. Антоненко, З.А. Антипова и др., 1985), тимопоэтином (Д.Н. Лазарева,
Е.К. Алехин, 1985), продуктами активированных зрелых тимоцитов и
макрофагов (W. Savino, 2002, 2004).
Обучение протимоцитов в тимусе происходит внутри эпителиальных
«клеток-нянек». Последние продуцируют гормоны, которые, обеспечивая
процесс дифференцировки‚ сменяют друг друга в порядке: тимопоэтин‚ β3- и
β4-тимозины‚ α1-‚ α5-‚ α7-тимозины и тимический сывороточный фактор.
В
процессах
внутритимической
дифференцировки
также
участвуют
синтезируемые в тимусе ИЛ-2‚ ИЛ-1‚ простогландины‚ продукты клеток
ретикулума
тимуса‚
тимотиреоидный
и
антитиреоидный
гормоны
(ВП. Лозовой‚ С.М. Шергин‚ 1981; И.А. Безвершко‚ 1985).
Процессы постнатального развития иммунной системы молодых
животных антигензависимы (И.И. Сидорчук‚ И.М. Павлюк‚ Е.И. Тищенко‚
1990; И.Б. Куваева‚ К.С. Ладодо‚ 1991).
Развитие В-лимфоцитов также разделяется на антигеннезависимый
и антигензависимый этапы дифференцировки. Эмбриональная печень‚
29
а в постнатальном периоде – костный мозг и селезенка служат у
млекопитающих аналогом фабрициевой сумки птиц‚ в которой происходит
развитие В-клеток. В костном мозге происходит образование пре-В-клеток и
их превращение в незрелые Во-лимфоциты. Дифференцировка незрелых
В-клеток совершается как в костном мозге‚ так и в селезенке‚ куда эти
клетки мигрируют (Б.Д. Брондз‚ О.В. Рохлин‚ 1987; Р.П. Маслянко‚ 1987;
J.J. Owen, M.D. Cooper, M.C. Raff, 1974).
В-лимфоциты, как и все другие клетки крови, возникают из
плюропотентных
стволовых
кроветворных
клеток
(J.
Odle,
1997).
У млекопитающих образование В-клеток начинается в эмбриональной
печени, а затем перемещается в костный мозг, когда тот становится
важнейшим кроветворным органом (М.A. Cooper, 2001). К завершению
своего созревания В-клетки покидают костный мозг, проникая в кровеносные
сосуды,
расселяются
в
различных
лимфоидных
тканях
(селезенка,
лимфатические узлы, пейеровые бляшки и др.). До настоящего времени не
открыто образование типа фабрициевой сумки и не установлен орган с
бурсоподобной функцией, но принято считать, что подобную роль
выполняют групповые лимфатические фолликулы (пейеровы бляшки),
червеобразный отросток (аппендикс), тонзиллы и лимфоидная ткань в
илеоцекальной области. По разным литературным данным, в периферической крови примерно от 5 до 15% циркулирующих с кровью лимфоидных
клеток составляют В-лимфоциты, выявляемые по наличию поверхностных
иммуноглобулинов (Ig). Молекулы Ig синтезируются конститутивно: они
встроены в цитоплазматическую мембрану клетки и функционируют как
антигенспецифические рецепторы. Большинство В-клеток периферической
крови экспрессируют на своей поверхности иммуноглобулины двух изотопов
IgМ и IgD. Менее 10% В-клеток экспессируют IgG, IgA и IgЕ, но в
определенных областях тела такие клетки встречаются с большей частотой.
Кроме иммуноглобулиновых рецепторов, В-клетки экспрессируют ряд
других молекулярных маркеров. Так, большая часть В-клеток несет
30
на поверхности МНС класса II, которые важны для кооперативных
взаимодействий с Т-клетками. Существенная роль в контактах взаимодействий между Т- и В-клетками принадлежит маркеру CD-40 (J. Banchereau,
F. Rousset, 1991).
Установлено, что сигнал, возникающий при перекрестном сшивании
мембранного CD-40, индуцирует выработку В-клетками ИЛ-1, ИЛ-6, ИЛ-10,
ФНО-α,
ФНО-β,
ГМ-КСФ.
Сшивание
мембранных
молекул
CD-40
обеспечивает переключение изотопов иммуноглоглобулинов в стимулированных «наивных» В-клетках, причем набор изотопов может быть
модифицирован различными цитокинами (T. Kawade, T. Naka, K. Yoshida et
al. 1994). Наконец, через CD-40 подается сигнал к дифференцировке
В-клеток, причем кратковременный сигнал обеспечивает созревание памяти
(C. Arpin, J. Dechanet, van C. Kooten et al. 1995). В-клетки памяти – это
относительно долгоживущие клетки, которые активируются при повторной
стимуляции
антигеном
быстрее,
чем
исходные
В-клетки
(У.
Пол,
А. Сильверстайн, М. Купер, 1987). На последнем этапе дифференцировки
В-клетки превращаются в зрелые плазматические клетки. У активированных
В-лимфоцитов постепенно исчезают поверхностные иммуноглобулины, и
вместо них они начинают синтезировать антитела к определенному антигену.
В процессе развития первичного иммунного ответа, активированные
антигеном В-клетки, синтезируют в основном антитела класса IgМ, причем
иммунная реакция на антиген развивается примерно за 14 дней.
Из главных субпопуляций Т-лимфоцитов выделяют две – Т-хелперы и
Т-супрессоры. Т-клетки, способные к одновременному распознаванию
продуктов собственных МНС-генов вместе с чужеродными антигенами,
могут подвергаться в тимусе положительному отбору. Одна из наиболее
важных регуляторных функций Т-лимфоцитов – это их способность
стимулировать
В-клетки
к
пролиферации
и
дифференцировке
в
антителообразующие клетки. Хелперная функция Т-клеток в активации
В-клеток может осуществляться также путем образования растворимых
31
хелперных факторов, часто называемых цитокинами. При взаимодействии
Т-
и
В-клеток
Т-лимфоциты
могут
секретировать
ряд
цитокинов,
оказывающих сильное действие на В-клетки. Такими цитокинами служат
ИЛ-2 (индуктор пролиферации Т- и В-клеток), ИЛ-4 (действует на ранней
стадии активации и пролиферации В-клеток), ИЛ-5 (мощный активатор
В-клеток у мыши, но не человека) и ИЛ-6 (эффективный стимулятор
В-клеточной дифференцировки) (А. Ройт, Дж. Бротофф, 2000; Е.С. Воронин‚
А.М. Петров‚ М.М. Серых и др. 2002).
Другая важная регуляторная функция Т-клеток состоит в их
способности угнетать иммунный ответ. Это супрессорная активность –
свойство популяции супрессорных Т-клеток. Функция Т-супрессоров
заключается в подавлении пролиферации и дифференцировки В-лимфоцитов,
что приводит к торможению выработки антител различных классов,
обеспечении эффекта конкуренции антигенов, угнетении развития реакций
гиперчувствительности замедленного типа, формировании цитотоксических
Т-лимфоцитов, а также поддержании иммунологической толерантности
(А. Ройт и др., 2000).
Цитотоксические Т-лимфоциты выполняют в иммунном ответе важные
эффекторные функции. Их функция состоит в том, что они лизируют клетки,
несущие на своей поверхности те антигены, к которым специфичны данные
лимфоциты. В частности, они распознают клетки, на поверхности которых
имеются чужеродные для данного организма антигены: чужеродные
антигены гистосовместимости, опухолевые антигены и вирусоспецифические
антигены на зараженных вирусом клетках (R. Heberman, 1980; Р.А. Henkart,
1985).
Лизис клетки-мишени цитотоксическими Т-лимфоцитами – процесс
сложный. Для индукции цитотоксических Т-лимфоцитов необходим контакт
циркулирующих лимфоцитов с антигеном и МНС класса I или МНС класса
II, находящимся на поверхности клеток. Отдельная цитотоксическая клетка
32
способна вызвать гибель клетки-мишени за 3-4 ч (R. Heberman, 1980).
По литературным данным, в селезенке присутствует примерно 10%
естественных киллерных клеток – ЕКК, в лимфоузлах – 2-7% и в легких 30%
от общей популяции лимфоцитов (T.L. Whiteside, R. B. Herberman, 1990).
Они также присутствуют в коже, кишечнике и плаценте (P.A. Linnermeyer,
M.S. Hammilton, 1990). Наибольшее количество ЕКК (до 50%) было
обнаружено в печени здорового человека (К. Hata, D.H. et al., 1991; M. GarciaBareina et al. 1995).
Несмотря на то, что ЕКК относят к лимфоцитам, они не обладают
свойствами ни зрелых В-, ни зрелых Т-клеток. У ЕКК нет поверхностных
IgМ и рецепторов СЗ, характерных для В-лимфоцитов, и отсутствуют
аллоантигены Lyt 1.2.3 зрелых Т-клеток. Биологическая роль естественных
киллеров заключается в иммунологическом надзоре, препятствующем
возникновению опухолевых клеток в организме.
Показатели клеточного и гуморального иммунитета, определенные в
периферической крови, отражают функциональное состояние иммунной
системы в целом (Б.В. Пинегин, А.П. Чередеев, 1999).
Анализируя литературные данные по вопросу значения оценки
состояния морфологической и функциональной иммунобиологической
системы организма животных, считаем, что изучение данного вопроса имеет
важное значение. В связи с этим и была поставлена цель изучения
морфофункционального
состояния
иммунобиологической
системы
организма свиней в изменяющихся природно-климатических и микробиологических факторов в разные периоды года в Среднем Поволжье.
2.2. Формирование факторов резистентности организма животных
в постнатальном онтогенезе
Одной из важнейших сторон защитной силы организма является
изучение ее возрастных особенностей. Реактивные свойства в растущем
организме складываются постепенно и окончательно формируются лишь
33
на определенном уровне общефизиологического созревания. Поэтому
молодой и взрослый организм обладают неодинаковой восприимчивостью
к заболеваниям (В.И. Азалиев, 2000).
Резистентность организма (от лат. resisto – противостою, сопротивляюсь), устойчивость организма к действию физических, химических и
биологических агентов, вызывающих патологическое состояние. В отличие
от иммунитета резистентность организма охватывает более широкий круг
явлений сопротивляемости. Она отражает потенциальные адаптивные
возможности организма, способного противостоять действию патогенных
агентов в конкретных условиях существования.
Резистентность
организма
изменялась
в
процессе
филогенеза;
например беспозвоночные резистентны к бактериальным токсинам, а у
теплокровных отмечается выраженная чувствительность к ним. Резистентность организма тесно связана с деятельностью органов и систем, зависит от
вида животного, его пола, возраста, конституции, анатомо-физиологических
особенностей, уровня организации и развития ретикулоэндотелиальной
системы и лимфоидной системы. У животных в зрелом возрасте отмечается
наиболее выраженная резистентность организма, в старости она снижается.
Различают естественную (врожденную) и приобретенную резистентность организма. Врожденная резистентность организма наследуется. Так, к
сибирской язве более резистентны алжирские овцы, чем европейские.
Приобретенная резистентность обуславливается видовыми или индивидуальными особенностями организма при определенных воздействиях на него, т.е.
при
иммунизации
против
возбудителей
инфекционных
болезней.
Резистентность организма во многом определяется активностью гипофиза,
коры надпочечников, щитовидной и половых желез, функция которых
регулируется центральной нервной системой. В основе резистентности
организма лежат его структурные и функциональные приспособления:
барьерные функции тканей, наличие в крови биологически активных
веществ,
фагоцитоз.
Переутомление,
34
очень
высокая
продуктивность,
неудовлетворительные условия содержания и вредные факторы внешней
среды снижают резистентность организма животных и предрасполагают
к развитию болезней (Я.Р. Коволенко, М.А. Сидоров, 1972).
Установлено, что тимус, как центральный орган иммунобиологической
системы, определяет в эмбриональном периоде развития лимфоидной ткани
в периферических органах иммунитет, а также способность организма
к иммунным реакциям (Л.Д. Лиознер, 1982).
По данным Р. Nieuwenhuis (1984) в лимфатических узлах с возрастом
происходит инволюция лимфоидной ткани. Она проявляется таким образом,
что одни узлы, наиболее мелкие, замещаются соединительной тканью,
другие срастаются друг с другом, что в конечном итоге ведет к уменьшению
числа узлов в регионарных группах и к их укрупнению (М Р. Сапин,
Л.Е. Этинген, 1996).
Результаты
исследований
Ю.И.
Банджевского
и
др.
(1994)
свидетельствуют о том, что на 20 сутки постнатального развития в селезенке
белых крыс обнаруживают зрелые лимфоидные узелки. В дальнейшем, как и
в других иммунных органах, происходит возрастная физиологическая
инволюция лимфоидной ткани.
Таким образом, общим для всех органов иммунной системы, как
центральных, так и периферических, является ранняя их закладка в
эмбриогенезе, быстрое созревание и ранняя инволюция в постнатальный
период онтогенеза (В.С. Григорьев, В.И. Максимов, 2007).
Иммунологическую
первые
дни
резистентность новорожденных
постнатального
развития
определяет
животных
в
количество
неспецифических и специфических защитных факторов, содержащихся в
молозиве матери (Н.М. Алтуханов и др., 1989; Ю.Н. Федоров, 1981).
Установлено, что при соблюдении технологии кормления, содержания
и эксплуатации животных рождается нормально развитый приплод и в
молочной
железе
свиноматок
образуется
высококачественное
и
иммунологически полноценное молозиво, в нем содержится большое
35
количество иммуноглобулинов 95,1±2,70 г/л и лейкоцитов 7,2±12,8 109/л,
высокая активность лизоцима и лактоферрина (И.М. Карпуть, 1981).
У новорожденных поросят в крови до приема молозива отмечается
небольшое количество лейкоцитов, среди лимфоцитов преобладают Т-клетки
и почти отсутствуют иммуноглобулины.
По данным D.L. Watson (1984), у жеребят и поросят Ig G и Ig М
абсорбируются предпочтительнее, в то время как Ig А остается в кишечнике.
Ряд авторов считают, что продолжительность абсорбции варьирует.
Как правило, абсорбция всех классов иммуноглобулинов через 24 ч резко
снижается (С.И. Плященко и др., 1991). Лейкоциты и иммуноглобулины
проникают в кровь в неизмененном виде. Клеточные факторы иммунной
защиты также передаются с молозивом.
По данным Н.М. Гриценко (1977), количество иммуноглобулинов,
полученных поросятами в первые сутки жизни, с молозивом колебалось от
1,76 до 95,4 г на голову. У свиней с 2 суток жизни снижается общее
количество
эритроцитов
и
гемоглобина,
т.е.
начинает
развиваться
алиментарная анемия, в силу того, что новорожденные поросята являются
менее физиологически зрелыми, чем жвачные животные (Л.М. Пивовар,
1991).
В.П. Урбан и др. (1990), И.М. Карпуть (2000), исследуя кровь
новорожденных поросят после приема молозива, выявили, что к концу
первых суток увеличивается количество лейкоцитов с 6,2±1,1 109/л до
8,3±0,5 109/л. Несколько большим стало процентное содержание Т- и
В-лимфоцитов. Одновременно повышается содержание общего белка:
67,8±2,5 г/л против 26,5±1,3 г/л у новорожденных и иммуноглобулинов
с 1,9±0,54 до 32,4±2,1 г/л.
Некоторыми исследователями
установлен значительный рост в
онтогенезе клеточных факторов резистентности, причем прирост их
происходит до 6-месячного возраста, после чего уровень клеточных факторов
в основном стабилизируется и в дальнейшем их количество увеличивается
36
медленнее (А.Т. Семенюта, 1979).
Исследования В.А. Кухарева (2001) подтверждают этот факт. Так,
у свиней с 21-суточного возраста до 6 месяцев фагоцитарная активность
лейкоцитов увеличилась на 6%, а количество лейкоцитов на 6,48-10%. Эти
показатели возрастали равномерно.
Э.Э. Дорохина и др. (1998), считают, что клеточные факторы защиты
формируются у поросят уже к 3-4-месячному возрасту.
С 10-суточного до месячного возраста ряд авторов отмечали снижение
содержания гуморальных факторов неспецифической резистентности. В это
время наблюдалось возрастание показателей клеточной защиты, особенно
В-лимфоцитов. Это связано с изменением состава молока свиноматок
и указывает на недостаточность собственного синтеза специфических белков
(П.А. Емельяненко, 1987).
По мере роста и развития животных лизоцимная активность сыворотки
крови равномерно повышается, достигая пика в возрасте 6 месяцев.
Бактерицидная активность обнаружила более сложную возрастную динамику
с последовательным чередованием роста и уменьшения в различные периоды
жизни (Г.Н. Сердюк, и др., 2000).
Исследуя бактерицидную и лизоцимную активность сыворотки крови
свиней крупной белой породы, В.И. Степанов (2000) и Н.Т. Корольков (2001)
наблюдали рост этих показателей с 3 месяцев. Наивысшие результаты были
у животных в 6 месяцев.
По данным L. Jaroskova et al. (1982), в 2-месячном возрасте
концентрация иммуноглобулинов класса G возрастает в 2 раза по сравнению
с 10-суточным возрастом. Эти данные согласуются со значительным
увеличением процентного содержания В-лимфоцитов. По мнению Е.А.
Васильевой (2000) это связано с тем, что к 2-месячному возрасту
налаживается собственный синтез иммуноглобулинов и специфических
белков, т.е. наступает иммунологическая зрелость животных.
Анализируя данные научной литературы по формированию факторов
37
резистентности в различные возрастные периоды животных, считаем, что в
изучении данного вопроса до настоящего времени многие аспекты
возрастного
формирования
факторов
резистентности
выяснены
не
достаточно. Системных исследований по этой проблеме практически не
проводилось.
чистопородных
В
связи
и
с
этим
помесных
изучение
свиней,
факторов
резистентности
содержащихся
в
условиях
промышленной технологии по мере их взросления, является необходимым
условием в свиноводстве.
Мнение
исследователей
относительно
наличия
или
отсутствия
особенностей естественной защиты у разнополых организмов неоднозначно.
О существовании половых различий по отдельным факторам резистентности
у свиней сообщают З.Т. Никольченко (1987), А.А. Павлуненко и др. (1990),
Н.Н. Белкина и др. (1995).
Как указывают Г.Н. Сердюк, О.А. Лозачева (1986) половые различия
проявляются по факторам естественной резистентности у свиней впервые в
возрасте
5-6
мес.,
то
есть
в
момент
половой
дифференциации
физиологических процессов и затем увеличиваются с возрастом животных.
Однако В.В. Новиков, В.В. Дмитриенко (1993) указывают, что различий,
обусловленных полом, по иммунобиологической активности организма
у клинически здоровых свиней не обнаружили.
Естественная резистентность организма тесно связана с протекающими
в нем физиологическими процессами, поэтому не только в период полового
созревания, но и в течение вынашивания потомства защитные свойства крови
самок претерпевают
значительные изменения. Колебания естественной
резистентности во время супоросности отмечают В.И. Георгиевский с соавт.
(1984), И.А. Бурков, Т.П. Трубицина (1989), Н.Н. Белкина, В.В. Федюк
(1995).
Г.М. Топурия с соавт. (2007) определили, что показатели клеточных
факторов защиты у свиноматок наиболее высоки в первой половине
супоросности и минимальны у холостых. Для второй половины супоросности
38
характерны средние значения. Указанная закономерность наблюдалась у
маток
первого
и
второго
периодов
супоросности
по
показателям
гуморальных факторов.
Ю.И. Федоров (2005) при сравнении показателей естественной
резистентности свиней трех пород установили, что более высоким уровнем
резистентности организма характеризовались животные пород дюрок. У них
были самые высокие показатели лизоцимной и бактерицидной активности
плазмы крови. Самые низкие показатели гуморальной неспецифической
защиты были у крупной белой породы, а северокавказские занимали
промежуточное положение.
Ю. Бургу (2001) установил, что с возрастом у свиней количество
общего белка сыворотки крови возрастает, особенно интенсивно у помесных
животных. Содержание его в крови опытных групп увеличивалось с 50,69 в
возрасте 2 мес. до 81,88 г/л в возрасте 6 мес., или на 38%. Несколько меньше
этот показатель был у помесных животных северокавказских × крупной
белой.
Величина каждого из показателей резистентности у одного и того же
животного
существенно
изменяется
с
течением
времени,
защитные
возможности растущего организма постепенно возрастают, а в стареющем
организме также постепенно угасают (М.С. Борец, 1966; Н.А. Деркач, 1971;
Berru M., Larsen P.,1992).
Многие авторы сообщают, что в ранний постнатальный период
развития у большинства млекопитающих неспецифичные факторы защиты
проявляются слабее, чем после полового созревания (Л. Зильбер, 1978;
А.М, Смирнов, М.Ф. Васильев, 1980). Особенности
резистентности
организма на ранних этапах постнатального онтогенеза обуславливают
возникновение заболеваний, которые протекают у молодняка иначе, чем у
взрослых животных.
Известно большое количество факторов, которые показывают, что
организм обладает защитными механизмами еще в период внутриутробного
39
развития, однако проявления резистентности существенно различаются у
плода, новорожденного и взрослого организма. Недостаточное развитие
гуморальных факторов защиты на ранних этапах развития поросят отмечают
А.А. Коломыцев с соавт. (1990), Г.К. Григорьев (1986), Н.Т. Ноздрин,
А.Ф. Сагло (1990).
При благоприятных условиях уровень резистентности новорожденных
поросят позволяет им эффективно противостоять возбудителям многих
инфекционных заболеваний (Л.Ю. Карпенко;1990; А.И. Карелин и соавт.
1974, 1992).
Н. Белкина, А. Павлуненко (1991) установили, что у свиней различных
пород стабилизация гуморальных показателей наступает уже в возрасте 2-3
месяца. Показатели фагоцитоза окончательно формируются позже, в возрасте
5-6 месяцев.
Большинство авторов указывают именно этот возраст, как срок
окончательного формирования неспецифичных систем защиты у свиней, как
биологического вида (Г.М. Бажов, Л.А. Бахирова, 1989; А.А. Павлуненко,
С.В. Шаталов, 1990 и др.). О более раннем становлении противомикробной
защиты организма сообщают Н. Попова и соавт. (1987), В. Немилов,
Е. Сафронов (1989). В.А. Сафронова (2009), напротив, считает, что
формирование защитных сил организма свиней продолжается и после
полового
созревания,
например,
у
молодых
свиноматок
показатели
фагоцитоза и бактерицидность сыворотки крови достоверно ниже, чем у
трех-, четырехлетних свиней. Некоторые иммунологические показатели
связаны с фазами полового цикла (В. И. Георгиевский с соавт., 1984;
Э. К. Бороздин, К. В. Клееберг, 1987).
Другой серьезной проблемой стало то, что на фоне общего снижения
резистентности многократно возросла смертность животных в так называемые «критические периоды онтогенеза» (А.А. Кудрявцев, Л.А. Кудрявцев,
1972).
40
Одним из показателей, определяющих физиолого-биохимический
статус организма животных в онтогенезе, является значение поверхностного
натяжения (ПН) биологических жидкостей.
Естественная резистентность организма определяется оптимальным
соотношением определенных биологически-активных веществ и других
соединений в клетках, тканях и органах животных. Многие из этих веществ
обладают
поверхностно-активными
свойствами,
т.е.
способны
адсорбироваться на границах раздела фаз и влиять на ПН биологических
жидкостей.
В одной из первых работ, посвященных изучению ПН биологических
жидкостей организма Поляни (1911 г.) измерил ПН спинномозговой
жидкости человека ( Л.Н. Адамушкина, 2005).
По данным Е.Н. Зарудной (2009) у 6-месячных поросят значения
параметров σ0, σ1, σ2, σ3 на 8,9; 9,4; 14,2 и 13,9% соответственно, достоверно
выше; значение λ0 и λ1 на 87,7 и 64,2% достоверно ниже по сравнению с
2-3-суточными поросятами.
Антонов В.Я. (1974) установил, что ПН крови животных подвержено
значительным колебаниям при различных заболеваниях, например при
патологических
процессах
в
печени
ПН
сыворотки
крови
сильно
уменьшается, т.к. в кровь усиленно поступают соли и продукты выполнения;
аналогичные изменения наблюдается при анафилактическом шоке.
Динамическое поверхностное натяжение (ДПН), т.е. ПН при разных
временах «жизни» поверхности было изучено на примере сыворотки крови
лошадей
сотрудниками
ФГБОУ
ВПО
МГАВМиБ
(С.Ю.
Зайцев,
В.И. Максимов, И.В. Милаева и др., 2010).
Исследования, проведенные сотрудниками Донецкого государственного медицинского университета, позволили установить значения ДПН
сыворотки крови и мочи для людей разного пола и возраста и выявили, что
существует прямая и обратная корреляционная связь между отдельными
41
биохимическими показателями и ДПН для различных времен существования
поверхности (Н.Г. Абдуллаев, 1984; В.Н. Казаков, 2000).
Изменение содержания определенных химических веществ (белков,
липидов, углеводов, электролитов и др.) в биологических жидкостях
организма свиней в период роста, развития и адаптации животных к
изменяющимся гелиогеофизических, климатических и микроклиматических
условиям окружающей среды влияет на ДПН этих жидкостей.
Анализ литературы по данному вопросу показывает, что определение
ДПН в комплексе с обычными клиническими исследованиями для оценки
резистентности
организма
животных
является
перспективным
и
эффективным методом в периоды проведения массовой вакцинации,
введения племенной работы, для ранней диагностики патологических
процессов и контроля над проведением лечебных мероприятий у животных.
Факторы защиты организма развиваются неравномерно, с периодами
подъема и спада, обусловленными влиянием технологий выращивания
животных, сменой сезонов года, возрастной перестройкой органов и систем.
Например, у поросят-сосунов ослабление защиты организма неизбежно
возникает в возрасте двух-трех недель, когда исчерпан запас антител,
полученных с молозивом матери. Высок риск заболеваемости молодняка во
время перехода на самостоятельное питание без материнского молока.
Имеющиеся сведения о породных и половых различиях свиней по
показателям естественной резистентности неоднозначны, многие результаты
статистически недостоверны, сведения о новых породах далеко не полны,
накоплено мало данных о защитных факторах организма свиней новых
мясных типов и пород, не разработаны эффективные способы подбора и
отбора высокорезистентных животных. Уточнение этих вопросов даст
возможность для создания высокорезистентных внутрипородных линий и
семейств.
42
2.3. Значение гелиогеофизических и климатических факторов
для жизнедеятельности живых организмов
Организм животного непрерывно взаимодействует с внешней средой. От
того, насколько успешно организм приспосабливается к динамично
меняющимся условиям среды, зависит не только его здоровье, но и сама
жизнь (А.Г. Шахов, 1997; И.М. Донник, П.Н. Смирнов, 2001).
Термин «погода» означает физическое состояние атмосферы у
поверхности Земли в данный момент времени. Физическое состояние
атмосферы характеризуется метеорологическими величинами (температура,
давление, влажность, ветер, облачность, осадки) и атмосферными явлениями
(гроза, туман, пыльная буря, метель и т.д.). Понятие климата связано с
режимом температуры и осадков (совокупность атмосферных условий по
данной территории за длительный период времени), т.е. климат – это «синтез
погод». Нет общепринятого определения масштаба времени, разделяющего
синоптические процессы формирующие погоду, и процессы формирования
климата, поэтому при обсуждении проблем изменений климата следует
уточнить о каком масштабе времени (и каких атмосферных условиях) идет
речь. Проблемы различий и изменений климата привлекали к себе внимание,
так как от климатических условий зависит продуктивность животных и
урожайность сельскохозяйственных культур.
В процессе жизни организм животного подвергается воздействию
весьма разнообразных факторов внешней среды, из которых приоритетное
значение имеют гелиогеофизические и климатические факторы.
В настоящее время надежно установленным является факт влияния
солнечной активности на широкий круг явлений, происходящих на Земле.
Гипотеза А.Л. Чижевского получила убедительное подтверждение о том, что
такое влияние представляет собой общебиологическую закономерность
(цитировано Н.И. Хорсева, 2007).
Согласно представлениям солнечно-земной физики, Солнце воздействует на процессы, происходящие вблизи Земли и у её поверхности – на
43
магнитосферу
Земли,
посредством
электромагнитного
излучения
(испускаемого Солнцем практически во всех диапазонах длин волн) и
корпускулярных
потоков
(Ю.И.
Ермолаев
и
соавт.,
2007).
Спектр
электромагнитного излучения, преодолевающего расстояние до Земли со
скоростью света, простирается от радиоволнового до рентгеновского
диапазона.
Подавляющее большинство явлений солнечной активности наблюдается в ограниченных по площади регионах − активных областях. Обычно
наблюдаемое в белом свете явление в активных областях − пятна. Пятен в
активных областях чаще всего бывает несколько. Как известно, пятна
выглядят темными на фоне фотосферы из-за более низкой температуры газа в
них, что обусловлено наличием магнитного поля, значения, индукции
которого достигают десятых долей теслы. Число активных областей,
наблюдаемых на диске, их размеры, изменяются в широких масштабах: в
некоторые месяцы разных лет не видно ни одной области, даже слабой, в
другие интервалы времени, напротив, изо дня в день видны сразу несколько.
В таких вариациях солнечной активности обнаруживается богатый набор
периодов. Несомненно, одним из выдающихся периодов является 11-летний
(В. Афанасьев и соавт., 2006).
Одиннадцатилетние циклы для удобства пронумерованы, номер цикла
соответствует подъему активности после минимума 1755 г. С 1996 г.
продолжается 23-й цикл.
В качестве меры степени солнечной активности пользуются условными
числами Вольфа и потоком радиоизлучения на волне 10,7 см (частота
2800 МГц) (А.П. Дубров, 1979).
Числа Вольфа. Относительные числа солнечных пятен, обозначаются
в международной классификации как R, W. Наблюдаются посредством
фотогелиограммы. Физическим смыслом является отражение средней
запятненности всей поверхности Солнца. Индекс определяется ежедневно
посредством многих обсерваторий. Наблюдения за этим индексом ведутся
44
с 1749 г., его изменения происходят в пределах от 0-3 до 150-З00 ед.
Поток радиоизлучения на длине волны 10,7 см. По международной
классификации является записью радиоизлучения Солнца. Выражают в
солнечных единицах потока (с.е.п.) 1022 Вт/м2. Физический смысл
характеризует изменения температуры и плотности на всей площади всех
активных областей видимого диска. Особенностью индекса является то, что
его временные изменения хорошо коррелируют с изменением R и S, суммой
солнечных пятен. Индекс определяется многими радиоастрономическими
учреждениями и изменяется в пределах 50-300 с.е.п., обычно приводятся
средние значения за сутки.
Земля находится в гигантской оболочке – магнитосфере, которая
защищает её от солнечного ветра. С одной стороны на границу магнитосферы давит магнитное поле Земли, а с другой – частицы солнечного ветра и
равенство этих воздействий удерживает эту границу в равновесии. Так что
Земля в каком-то смысле похожа на комету с хвостом из магнитных линий,
которые
вытянуты
от
Солнца
(Н.А.
Темурьянц
и
соавт.,
1992;
Б.М. Владимирский и соавт., 2000).
В динамике процессов на поверхности Солнца фундаментальную роль
играют магнитные поля. Именно в них накапливается энергия, превращающаяся затем в кинетическую энергию движущихся масс вещества и
ускоренных частиц, в рентгеновское, ультрафиолетовое и радиоизлучения
(М.Н. Гневышев, 1978; В.А. Аристархов, 1978; А.Л. Дубров, 1979).
Изменение космической радиоволновой нагрузки на Землю может
прямо и опосредованно влиять на протекание биологических процессов,
учитывая специфическое биоинформационное значение электромагнитного
излучения радиоволнового диапазона и способность радиоволн влиять на
физические процессы в атмосфере Земли (В.П. Казначеев, Л.П. Михайлова,
1985, И.Н. Семененя, 1997).
Геомагнитное поле состоит из постоянного и переменного полей.
Переменное геомагнитное поле может изменяться – это спокойные
45
и возмущенные вариации, амплитуды и фазы которых изменяются в течение
суток и на протяжении года в зависимости от солнечной активности.
К наиболее использующимся в экспериментальной практике индексам
геомагнитной
активности
относятся:
планетарная
среднесуточная
эквивалентная амплитуда вариации магнитного поля Земли (Ар).
Самые большие изменения напряженности геомагнитного поля,
обусловленные возмущением токовых систем, происходят во время сильных
магнитных бурь. Такие бури фиксируются спустя 40-50 ч после сильной
вспышки на Солнце.
Пути передачи солнечной активности на биосферу рассматривают по
средствам факторов внешней среды: изменения атмосферного давления и
состояния климатических параметров. Таким образом, «космическая погода»
может воздействовать на живые организмы: они реагируют на эти изменения,
хотя, как правило, такие изменения очень малы (П.Е. Григорьев,
Н.И. Хорсева, 2001).
Жизнь на Земле зарождалась и развивалась под влиянием электромагнитных волн, поэтому электромагнитное поле (ЭМП) земли является
естественным экологическим фактором для всех живых организмов,
отсутствие, уменьшение или увеличение интенсивности которого за пределы
нормы негативно отражается на их жизнеспособности (М.Т. Александров и
соавт., 1991; Н.К. Белишева и соавт., 1993; С.М. Чибисов и соавт., 2001).
О высокой чувствительности многих животных к ЭМП свидетельствует наличие геомагнитного тропизма, т.е. использование геомагнитного поля
Земли в качестве ориентира. Такая способность обнаружена у многих живых
организмов: простейших (планарии, парамеции, улитки и др.), насекомых
(майские жуки, мухи, термиты, пчелы, бабочки) ракообразных, амфибий и
рептилий (тритоны, пещерные саламандры, крокодилы, черепахи), рыб
(угри, лещи и др.), птиц (F.A. Braun, 1965; А.Г. Поддубный, 1971;
Л.А. Шидлаускайте, 1973; J.B. Phillips и соавт., 1978). Повышенной
чувствительностью к ГМП обладают мигрирующие на дальние расстояния
46
животные – птицы, рыбы, насекомые и т.д. (У.Ф. Тоун и соавт., 1989;
Д.Е. Прести, 1989; Ю.И. Неголюк и соавт., 2006; Н.Ю. Холодная, 2001).
Кроме того, многие животные используют ГМП для осуществления
дистантных взаимосвязей, обеспечивающих согласованное выполнение
двигательных маневров в стаях рыб и птиц, в стадах млекопитающих; в
скоплениях насекомых и одноклеточных организмов (А.С. Пресман, 1997).
Проявления геомагнитного тропизма экспериментально обнаружено и у
растений – семена, высаженные параллельно силовым линиям геомагнитного
поля прорастают быстрее, чем при перпендикулярном или беспорядочном
расположении, такая ориентация семян усиливает не только их рост, но и
интенсивность различных физиологических процессов, что приводит к
повышению урожайности (Ю.И. Новицкий, 1968).
Изучение данных племенных конезаводов выявило, что приплод
кобылок и жеребчиков разный в годы с разной солнечной активностью. У
соболей в разные фазы солнечной активности меняется не только их
численность, но и окраска меха. Повышение солнечной активности в момент
зачатия у овец приводит к увеличению веса новорожденных ягнят, причем
этот эффект сохраняется в течение 4-5 месяцев после рождения: у ярочек он
возрастает на 2,5 кг, а у баранчиков – на 1,6 кг по сравнению с ягнятами,
зачатыми
при
низкой
солнечной
активности.
Как
предполагают
исследователи, этот феномен в первую очередь может быть связан с
изменениями качества семени при искусственном оплодотворении. Кроме
того, было отмечено, что в человеческой популяции максимальное число
зачатий
наблюдается
в
периоды
минимумов
магнитной
активности
(С.А. Корытин, 1972; Д.И. Маликов, 1972; А.М. Максимов, 1984).
В исследованиях влияния космофизической активности на продуктивность коров, было отмечено, что в дни неблагоприятной геомагнитной
обстановки (магнитные бури) удой животных снижался на 3-5%, а в период
благоприятной магнитной обстановки, удои у животных оставались
стабильными.
47
Динамику в продуктивности коров также рассматривает А.Ю. Шитиков
и соавт., (2003). Скорость раздоя и динамика среднесуточных удоев коров за
период лактации положительно коррелирует с солнечной активностью,
выраженной в числе Вольфа. Соответственно R=0,387, р<0,9975; R=0,189,
р<0,95.
И.Д. Газдиев (2003) установил высокую корреляционную связь
продуктивности коров с солнечной активностью за 10 лет наблюдений.
R=0,817, при р<0,995; наибольшая положительная связь наблюдается в годы
максимальной солнечной активности.
При
изучении
сексуализации
куриных
зародышей
обнаружен
удивительный эффект: оказалось, что соотношение полов зависит от
ориентации яиц по сторонам света во время их инкубации, например, при
ориентации головного отдела эмбриона на север повышалась вероятность
появления мужских особей. Кроме того, оказалось, что изменяется не только
соотношение полов, но и скорость их развития (В.В. Аброськин, 1966, 1970,
1975).
Подобный эффект был найден и для растительных объектов. При
ориентации зародышевых корешков огурца на север, женских цветов на
растении оказывалось больше, чем при ориентации корешков на юг.
В опытах с семенами кукурузы ориентация зародышевых корешков на юг
приводила к увеличению надземной массы растения, а ориентация на север –
корневой системы (П.П. Чуваев, 1967).
Отрицательное влияние снижения геомагнитной активности (так же
как
и
ее
повышения)
на
внутриутробно
развивающийся
организм
продемонстрировано с помощью метода кардиотокографии по интегральному показателю состояния плода (О.И. Шумилов и соавт., 2003).
В экспериментах показано, что экранирование геомагнитного поля в 600 раз
приводит к торможению роста кроликов, снижению их двигательной
активности, развитию дистрофических изменений в печени, миокарде,
желудке, кишечнике, снижению активности ключевых ферментов цикла
48
трикарбоновых кислот и пентозофосфатного цикла (В.И. Копанов и соавт.,
1979).
У
мышей
вдвое
снижается
двигательная
активность
(А.Д. Стрижижевский, 1978), куры в этих условиях прекращают нести яйца
(Н. И. Головин и соавт., 2002). Инкубирование яиц в гипомагнитных
условиях нарушает развитие куриных эмбрионов, многие из них погибают, а
у вылупившихся цыплят отмечаются дистрофические изменения внутренних
органов, парезы крыльев и ног и др. (В.П. Казначеев, Л.П. Михайлова, 1985),
у пчел, мух, других насекомых и птиц нарушается ориентация в пространстве
(Дж. Киршвинка и соавт., 1989).
Анализ немногочисленных исследований в этой области, дает
возможность предположить, что воздействие гелиогеофизических факторов
на развитие организмов, осуществляется посредством изменения геофизических показателей: температура, влажность, давление, ультрафиолетовое
излучение, акустические воздействия, изменение геомагнитного фона Земли
и т.д. Для нормальной жизнедеятельности существует, видимо, некоторый
оптимальный уровень ЭМП. Его существенное понижение или повышение
оказывают неблагоприятное влияние на рост и развитие организмов.
2.4. Влияние микроклиматических факторов на формирование и
функционирование естественной резистентности организма животных
Здоровым можно считать животное, дающее оптимальное количество
ожидаемой продукции в ответ на создание ему природой и человеком
благоприятных условий для существования. Однако условия существования
домашних, в том числе сельскохозяйственных животных, могут существенно
меняться в силу различных факторов (естественных и искусственных).
Поэтому состояние здоровья свиней должно рассматриваться с учетом
экологических факторов, т.е. в соответствии с условиями существования
живых организмов и их взаимосвязи между собой и средой, в которой они
обитают (Э.Б. Мирзаев, 2007).
49
Согласно
определению,
данному
Всемирной
организацией
здравоохранения: «Здоровье – это состояние полного физиологического,
психологического и социального благополучия, а не только отсутствие
болезней или физических дефектов». Следовательно, чтобы сохранить
биологические, физиологические, поведенческие особенности доместицированных животных разных видов, обеспечить максимальную продолжительность их продуктивного периода, необходимо создать животным
соответствующие условия, которые не должны превышать их адаптационных
возможностей и поддерживать гомеостаз организма за счет саморегуляции.
Условия
содержания,
режим
производственных
процессов
и
микроклимат в зоне находящихся животных представляют комплекс
постоянно действующих на организм факторов, которые могут оказывать
неблагоприятное воздействие, обуславливая иногда возникновение болезней
и снижение продуктивности. Поэтому интерес мировой науки и практики к
этим важным элементам технологии не ослабевает.
Микроклимат оказывает комплексное влияние на организм животных
посредством физических, химических, биологических и механических
воздействий.
Физические
параметры
микроклимата
дают
право
судить
о
комфортности среды обитания животных. Химический состав воздуха в
помещениях, его бактериальная загрязненность и запыленность свидетельствуют о ветеринарно-санитарной культуре любого животноводческого
предприятия (И.М. Комаров, Ф.Г. Торпаков, 1964; Г.В. Голубев, 1971;
В.М. Юрко, 1988; А.В. Шилов, 2006; S. Okulaovegyk, 1989).
Свиньи
наиболее
чувствительны
к
температурно-влажностному
режиму и скорости движения воздуха. Особенно в раннем возрасте поросята
обладают
слабой
терморегуляторной
способностью, и
несоблюдение
температурного режима в зоне их обитания может обуславливать снижение
температуры тела на 1-2°С и на этом фоне возникновение в их организме
негативных последствий.
50
У поросят снижаются показатели защитных сил организма, возникают
массовые желудочно-кишечные расстройства с синдромом профузной
диареи, которые, как правило, сопровождаются повышенным их отходом
(J. Stolpe, 1984).
Поросятам в первые дни жизни в зоне их нахождения необходима
температура 32-30°С, если в это время температуру окружающего воздуха
снизить до 21°С, то поросята заметно снижают свою активность и высасывают молозиво на 25% меньше. А это значит, что материнский опыт защиты
поросят с помощью колостаральных антител значительно снижается, т.е. не
достигается должного эффекта специфической профилактики поросят
посредством иммунизации супоросных свиноматок (N. Avram, D. Draghici,
J. Caraivan, 1986).
Из долголетнего практического опыта и научных исследований стало
известно, что ведущим предрасполагающим фактором в возникновении
легочных заболеваний является неблагоприятный микроклимат. Чаще всего
клинические признаки болезни (кашель, абдоминальный тип дыхания,
повышение температуры тела в диапазоне 40,1-40,5°С) проявляется у
молодняка свиней в 3-5-месячном возрасте. Подобные массовые заболевания
возникают, как правило, когда в станках сыро, в помещении повышенная
относительная влажность воздуха – свыше 85%, температура +12…+16°С и
скорость движения воздуха выше 0,3-0,5 м/с (В.Д. Гуркина, 1983).
В литературе имеются сообщения о большом значении оптимального
микроклимата на формирование резистентности и иммунобиологической
реактивности свиней. Так, А.Ф. Кузнецов и соавт. (2001), Н. Евдокимов
(2006),
наблюдали
заметное
снижение
фагоцитарной
активности
нейтрофилов периферической крови и титра лизоцима у поросят-отъемышей
при содержании их в условиях повышенной температуры и высокой
относительной влажности окружающей воздушной среды.
Снижение иммунобиологической реактивности у поросят с живой
массой 23-25 кг при содержании в условиях высокой температуры
51
+30…+ 32°С и относительной влажности 75-95% установили А.И. Карелин,
В.М. Емельянов, 1974; R. Cutler, 1984 отметив при этом, что понижение
температуры тела на 1°С закономерно сопровождалось повышением затрат
кормов на 10 г в сутки на 1 гол. Поросята, содержавшиеся при температуре
16°С, потребляли кормов на 50 г больше по сравнению с аналогами в
условиях температурного режима 21°С.
В.М. Юрко (1988); R. Claus (1987) разносторонними исследованиями
доказали необходимость строгого соблюдения светового режима для
различных возрастных групп свиней в целях обеспечения их хорошего
здоровья и высокой продуктивности.
Аммиак свыше 15-20 мг/м³ вызывает раздражение слизистых оболочек
глаз и верхних дыхательных путей, в крови снижается уровень гемоглобина
(Г. К. Волков, 1987; 1993).
Очень важно выявить закономерности повышенного накопления пыли
и микробов на определенных технологических этапах производственных
процессов, что бы разумно воздействовать на снижение уровня показателей
вредных факторов микроклимата (А.И. Карелин, О.А. Филатов, 1988).
Приведенные аналитические данные в обзоре литературы о значении
микроклимата при получении и выращивании свиней акцентируют внимание
на необходимости строгого соблюдения зоогигиенических требований в
поддержании всех его параметров на нормативном уровне на важнейших
технологических этапах получения и выращивания свиней (В.Г. Козловский,
1984; Ф.А. Гучь, М.Ф. Гуменный,1989; Н.Д. Темшенко, 1994).
2.5. Использование биогенных препаратов в животноводстве
По данным А.Г. Шахова, В.С. Бузламы (2000), организм животных
живет в окружении различных тел и явлений природы. К ним относятся:
почва, содержащая воду, минеральные вещества, гумус; атмосферные
явления (тепло, холод, свет, осадки); различные формы рельефа (горы,
низменности, долины, скалы) и другие организмы. Из внешней среды
52
организмы получают все необходимое для жизни, а в нее выделяют продукты
своей жизнедеятельности. При этом одни элементы могут быть безразличны
организму, другие – необходимы, а третьи – оказывать отрицательное
воздействие (В.А. Черников и соавт., 2000).
В
современных
благоприятные
условиях
условия
для
ведения
животноводства
распространения
факторных
создаются
инфекций
(неудовлетворительный микроклимат, не всегда обоснованные перегруппировки животных, высокая плотность поголовья; неоднородность его
иммунологического статуса), который способствует созданию оптимальных
условий
среды
обитания
для
микроорганизмов
и
повышению
их
вирулентности (Ю.О. Раушенбах, 1985; К.В. Судаков, 1992; А.В. Черекаев,
1997; Н.А. Уразаев 1998; С.М. Сулейманов, 2000; Ю.И. Фёдоров, 2005).
По данным Н.Р. Бородюка (1991), В.И. Усенко (2005), В.А. Черникова
и соавт. (2000), А.М. Смирнова и соавт. (2001), В. Янченко (2005) и других,
при рыночных формах сельскохозяйственного производства содержание
животных сопровождается все меньшим их обеспечением биотическими
(внутривидовые,
межвидовые,
поведенческие
и
другие
эффекты)
и
абиотическими (воздушный, водный, тепловой режимы почвы, химический
состав воды, солнечная радиация и т.д.) факторами окружающей природной
среды и одновременно все большим воздействием на организм факторов
искусственной среды обитания (неудовлетворительный микроклимат, частые
перегруппировки, несбалансированное кормление, плохие теплотехнические
качества ограждающих конструкций и т.п.).
В этих условиях невозможно обеспечить получение жизнеспособного
приплода и выращивание высокорезистентного молодняка сельскохозяйственных животных без учета воздействия на них окружающей среды и
особенностей реакции организма на нее. При этом, не зная адаптивных
возможностей той или иной породы или группы животных, их устойчивости
к
экологическим
факторам
нельзя
правильно
организовать
научно
обоснованную систему содержания (Б.П. Мохов, В.Ф. Красота, 1998;
53
В.Г. Скопичев, 2004).
Исходя из вышесказанного, исследованиями последних лет научно
обоснована эколого-адаптационная стратегия реализации адаптивного,
продуктивного, репродуктивного потенциала животных и продления срока
их полноценной эксплуатации (В.Ф. Фурдуй, 2004; А.А. Шуканов,
А.В.
Панихина,
2005;
Р.М.
Хазиахметов,
2002;
В.Д.
Баранников,
Н.К. Кириллов, 2006).
Заболевания, возникающие у новорожденных животных, как правило,
протекают
на
фоне
иммунодифицитов,
а
инфекционные
являются
полиэтиологичными, что создает большие трудности в специфической их
профилактике (П.Н. Смирнов и соавт., 2005; В.И. Максимов и соавт., 2008).
По мнению А.А. Шуканова и соавт. (1996), В.Ф. Фурдуя и соавт.
(2004), здоровье животного надо рассматривать как состояние, при котором
оно полностью адаптировано к условиям внешней среды. Вряд ли в
обозримом будущем нам удастся адаптировать животных к изменяющимся
условиям окружающей среды. Поэтому ее следует прогнозировать по
отношению к физиологическим требованиям организма.
Если фактор внешней среды превышает определенный предел
толерантности, то он действует как стресс-фактор (F. Kovacs, 1978;
К. Шмидт-Ниельсен, 1982). При этом в организме животного происходят
изменения некоторых биофизических и биохимических процессов, что
проявляется, прежде всего, в изменении двигательного поведения животного
и ведет в конечном итоге к ухудшению состояния здоровья и снижению
продуктивности.
Гомеостаз, по мнению А.Н. Голикова (1985) представляет собой как
относительное динамическое постоянство внутренней среды (кровь, лимфа,
внеклеточная жидкость), так и устойчивость основных физиологических
функций
организма
(терморегуляция,
пищеварение,
кровоснабжение,
кровяное давление, дыхание, обмен веществ, содержание в них белка,
соотношение форменных элементов крови и др.), которые обеспечивают
54
нормальное состояние организма и характеризуют его приспособительные
реакции к конкретным факторам среды.
Важную роль в поддержании гомеостаза и его регуляции принадлежит
нервной системе. Следует отметить, что адаптация и дезадаптация во многом
поддерживаются также уровнем активности желез внутренней секреции.
(Р.М. Хаитов, 2000).
Г. Селье (1972) было доказано существование нового, более
совершенного состояния гомеостаза – гетеростаза. Высокая степень защиты
организма осуществляется экзогенной фармакологической стимуляцией
предшествующих адаптивных механизмов. Как гомеостаз, так и гетеростаз
направлены на восстановление равновесия путем усиления собственных
защитных сил opганизма.
Благодаря достижениям в области физиологии адаптации продуктивных
животных
и
дальнейшему
развитию
биотехнологии
появилась
возможность контролировать среду и создать для животных такие условия,
которые максимально обеспечивают реализацию их продуктивности в
соответствии с генетическим потенциалом (Ю.К. Свечин и соавт., 1985;
С. И. Кононенко, 2000; Т.А. Егорова и соавт., 2003, Л.Б. Леонтьев, 2006).
Отсюда,
важными
задачами,
стоящими
перед
физиологами,
иммунологами, зоогигиенистами, генетиками, морфологами, экологами на
ближайшую перспективу, выведение целенаправленно селекционированных
по направлениям продуктивности пород скота птицы, способных эффективно
метаболизировать питательные вещества кормов и трансформировать их
биологические компоненты для использования человеком в питании и в
различных
промышленных
высокопродуктивного
технологиях.
животноводства
Поэтому
успешное
предусматривает
ведение
применение
широкого арсенала биологических и химиотерапевтических средств (Castillo
Blum, Ваrmа-Веhrens N., 2000; T.A. Meyer et al., 2000; M.S. Carlson et al.,
2000; С.L. Case and M.S. Carlson 2000, 2001; A.A. Шyканов, А.В. Панихина,
2005; В.В. Алексеев и соавт., 2008). В настоящее время существует
55
значительное
количество
препаратов,
т.е.
адаптогенов
способных
стимулировать защитные силы организма и тем самым повышать его
сопротивляемость к неблагоприятным факторам среды.
К адаптогенам относятся группы веществ растительного, животного
происхождения,
а
так
же
грибы,
микроорганизмы,
синтетические,
химические соединения (Э.Н. Солошенко, 2003; С.А. Тихонов и соавт., 2005;
А.А. Шматов, 2002; А.Д. Шушарин, 2002). Эффект действия этих
адаптогенов
связывают
с
более
ранней
активизацией
аэробных
окислительных процессов и нормализацией обмена веществ. Так экстракт
крапивы, приготовленного на основе солей пароконденсата дистиллированной воды включает микроэлементы (молибден, барий, кобальт, ванадий,
цинк, олово, хром, титан, медь, железо), активизирующие метаболические
процессы и улучшающие физиологическое состояние поросят-сосунов.
Экспериментально доказано, что фитопрепарат «Люцевит» – экстракт
люцерны, содержащий 20 незаменимых аминокислот, витамины С, В1 В2, В6,
Е, К, микро и макроэлементы (железо, титан, медь, кобальт, молибден,
марганец, хром, калий), хлорофилл, гидрооксикислоты, карбоновые и
фенолкарбоновые кислоты, белки, углеводы, сапонины, изофлавоны,
регулирует обменные процессы, повышает резистентность организма,
обладает интерфероногенным и бактерицидным действием при вирусных
инфекциях, нормализует микрофлору кишечника. Из препаратов животного
происхождения заслуживает внимание пантокрин, полученный из пантов
марала; рантарин – из пантов северного оленя; апилак, выделяемый из
пчелиного маточного молочка, а также препараты из стекловидного тела и
экстракта плаценты. К адаптогенам животного происхождения следует
также отнести препараты из вилочковой железы (тактивин, тималин,
тимоптин, имунофан,
тимунокс
и
др.).
Сотрудниками
Башкирского
госагроуниверситета разработан иммуностимулятор «Биостим», который
изготавливается из селезенки крупного рогатого скота
Ю.В.
Кирилова,
2002).
Препарат
56
обладает
(Е.П. Дементьев,
ростостимулирующим
и иммунотропным эффектами.
В качестве иммуностимулирующих средств широкое применение
получили выделенные из различных микроорганизмов и дрожжей вещества
(пицибанил, продигиозан, зимозан, бестатин и др.). По своей химической
природе они являются либо полисахаридами, либо нуклеиновыми кислотами
(А.В.
Санин,
2005).
Установлено,
что
некоторые
бактериальные
полисахариды характеризуются выраженным корригирующим влиянием на
фагоцитарные или Т- и В-лимфоцитарные звенья иммунной системы
организма,
обусловливая
повышение
уровня
его
сопротивляемости.
R. Seljelid et. al. (1984) считают, что наибольшей активностью обладает
нерастворимый глюкан дрожжевых клеток. Причем стимулирующее влияние
глюкана может быть опосредовано компонентами комплимента.
Иммуностимулирующий эффект назначения телятам раннего возраста,
бычкам при выращивании, доращивании и откорме достима установлен в
исследованиях Ф.П. Петрянкина (1998; 2004); И.А. Федяниной (1994);
А.Ф. Доронина, Б.А. Шендерова (2002).
E.B.
Перуновой,
Г.А.
Трифоновым
(1998)
испытаны
новые
органические селеносодержащие препараты: «СП-1» 9-фенил-октагидроселеноксантен (содержит 24% селена); «ДАФС-25» – диацетофенонилселенид
(содержит 25% селена). Внутримышечное введение этих биогенных соединений свиноматкам в дозе 0,1 мг/кг массы тела способствовало улучшению
оплодотворяемости животных на 20-25%, повышению массы новорожденных
поросят на 1,7-2,4 кг и поросят-отъемышей на 17-32 кг; повышению
интенсивности роста молодняка на 5-13%, сохранности поросят на 3,7-4,0%.
Важнейшими биологически активными веществами, оказывающими
положительное влияние на метаболические процессы в организме, являются
макро- и микроэлементы (G.M. Lolas et al., 1976; M.A. Giesemann et al., 1992).
Дефицит кормов и недостаток в рационе одного или нескольких
питательных элементов привели к широкому использованию в животноводстве кормовых средств промышленного производства, в т.ч. продуктов
57
микробиологического синтеза, включая ферменты и пробиотики – биологические препараты из разных живых культур симбиотных микроорганизмов
или продуктов их ферментации (М.В. Roberfroid et. al., 1997).
В настоящее время создание пробиотиков и продуктов функционального питания на основе пробиотических штаммов микроорганизмов,
обладающих специфическим позитивным действием на организм, зарубежные и отечественные учёные рассматривают как стратегический путь в
медицине и ветеринарии, направленный на поддержание и восстановление
здоровья человека и животных (W.H. Holzapfel, U. Shillinger, 2002; F.Holm,
2003; R. Wyers, 2004; E.А. Романов, 2005).
Наряду с пробиотиками в медицине и ветеринарии широко используют
пребиотики – субстраты, стимулирующие естественную микрофлору. Среди
пребиотиков
наиболее
популярны
поли-
и
олигофруктаны,
соевые
моносахариды, галактоолигосахариды, получаемые биотехнологическим или
генетическим методом (R. Tanaka et al., 1983; M.D. Collins, 1999; G.R. Gibson,
R. Fuller, 2000).
Ряд органов животных вырабатывает регуляторы иммунного ответа:
иммунорегуляторные клетки костного мозга – В-супрессоры, селезенки и
лимфатических
узлов
–
иммуностимулирующие
иммунопептиды
(медиаторы) тимуса – Т-активин – смесь пептидов (Михайлова А.А. и соавт.,
1985; Поляновский O.Л. и др., 1985; Пинчен Б.В., Карсонова М.И., 1985).
Иммуномодулирующее действие пептидов тимуса выражается в
адекватном изменении функционального состояния клеток Т-системы
иммунитета. При введении полипептидов тимуса восстанавливается баланс
субпопуляций Т-лимфоцитов и их функциональная активность. При этом
сниженные показатели увеличиваются, гиперактивные процессы среди
отдельных субпопуляций Т-лимфоцитов возвращаются до значений, близких
к нормальному уровню (В.Х. Хавинсон и соавт., 2000).
Все тимусные факторы относятся к низкомолекулярным пептидам. В
пределах тимуса активны тимусный гуморальный фактор и тимостимулин,
58
содержащий несколько активных фракций, под контролем данных пептидов
происходит разделение тимоцитов на сублинии хелперного и супрессорного
типа.
Тимозин и его варианты α- и β-пептиды, а также тимопоэтины Ι и ΙΙ
действуют на ранних этапах дифференцировки претимоцитов. Функция
α-пептида распространяется на более поздние этапы дифференцировки
пре-Т клеток. Максимально высокая концентрация тимозина-α1 находится в
тимусе, но его присутствие обнаруживается в циркулирующей крови,
селезенке, легких, мозге, почках и ряде других тканей.
В мире выпускается порядка 20 препаратов, полученных из вилочковой
железы животных или их синтетических аналогов. К препаратам первого
поколения относятся
Тималин, Тимоптин, Тимактид, Тимостимулин,
Велозен, Тактивин, Тимомодулин, Тимуровак, как правило, представляющие
собой комплекс пептидов, экстрагированных из тимуса животных, чаще КРС.
Препараты первого поколения представляют собой неразделенную смесь
биологически активных пептидов и их трудно стандартизировать. Препараты
2 и 3 поколений представляют собой синтетические аналоги естественных
гормонов тимуса тимозина-α1 и тимопоэтина или фрагментов этих гормонов,
обладающих биологической активностью (В.Г. Морозов и соавт., 2000;
А.Н. Беловол, И.И. Князькова, 2008).
В России в качестве средства для повышения роста и сохранности
молодняка (Э.К. Бороздин и соавт., 2002) рекомендуют использовать
тимоген, доказывая, что в разные возрастные периоды живая масса
обработанных препаратом ягнят превосходила контрольную группу на 1227%, а отход снизился в первый год жизни на 31%.
Г.А. Ноздрин, В.С. Соколов (1997) предлагают для лечения желудочнокишечных
болезней
молодняка
сельскохозяйственных
животных
использовать препарат «Диацетин» в состав которого наряду с антибактериальным, противовоспалительными компонентами входит тималин. Опыты
проводили на телятах и выяснили, что лечебный эффект при использовании
59
средства составляет 100%, в 2-2,5 раза сокращает продолжительность
лечения, а также позволяет сократить падеж на 15-20%.
В птицеводстве для повышения иммунного статуса и эффективности
вакцинации у цыплят одновременно с бифидумбактерином в эмбрионы на
18 сутки рекомендуют вводить тималин, что позволяет увеличить
селезеночный индекс в 1,66 раза (Н.Д. Прибыдайло, З.Ф. Джанова,
В.В. Шорников, 1998). Увеличение селезеночного индекса свидетельствует о
стимуляции лимфоидной системы цыпленка.
Результаты анализа научной литературы указывают, что использование
биологически активных веществ в животноводстве повышает продуктивность до 10% и более.
60
3. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
3.1. Условия проведения исследований
В работе обобщены результаты научных исследований, проведенных с
2000 по 2011 гг. в соответствии с планом кафедры физиологии ФГБОУ ВПО
«Московская
государственная
академия
ветеринарной
медицины
и
биотехнологии» и кафедры физиологии и биохимии ФГБОУ ВПО
«Самарская государственная сельскохозяйственная академия».
Исследования выполняли в рамках межвузовского координационного
плана по программе «Свинина» тема «Создать специализированные линии и
типы свиней для производства высокопродуктивных гибридов (о.т. 1.25.27)»
и
согласно
межвузовской
теме
«Усовершенствовать
племенные
и
продуктивные качества свиней крупной белой породы методом межпородной
селекции (№ госрегистрации 02960.010.214)».
Работа посвящена изучению особенностей
физиологического и
иммунобиологического статуса свиней разных генотипов в постнатальном
онтогенезе
на
клеточном
и
молекулярном
уровнях
под
влиянием
изменяющихся факторов климатических и микроклиматических условий
Среднего Поволжья по периодам года, а также обоснованию применения
иммуностимулятора
тимозин-α1.
Опыт
проводили
в
условиях
ЗАО
«СВ-Поволжское» филиал «Племзавод» «Гибридный» Самарской области.
Хозяйство благополучно по инфекционным и инвазионным заболеваниям
животных.
Лабораторные
анализы
выполнялись
на
базе
научно-
производственного центра НПЦ ЗАО «СВ-Поволжское» и в научноисследовательских лабораториях ФГБОУ ВПО МГАВМиБ, ФГБОУ ВПО
СГСХА.
Свинокомплекс
«СВ-Поволжское»
является
промышленным
предприятием с законченным циклом производства, предназначенным для
воспроизводства, выращивания и откорма 216 тыс. свиней в год, что
соответствует производству 25200 т свинины в живом весе. Предприятие
61
работает по единому производственно-технологическому ритму с 1980 г.
В комплексе основой технологии производства свинины является
промышленный поточный метод непрерывного, равномерного распределения
(в течение всего года) воспроизводства поголовья и откорма свиней. Эта
технология
предусматривает:
ритмичность
производства,
интенсивное
использование поголовья, искусственное осеменение свиноматок, ремонт
маточного поголовья промышленного стада, осуществляемого за счет
ремонтного молодняка, выращенного на племенной ферме, ежегодную
выбраковку основных свиноматок, которая составляет 40%, ремонтных
свинок и проверяемых маток от числа поступивших из племенной фермы,
составляющую 53%.
В условиях комплекса особое значение приобретает обеспечение его
высокопродуктивным жизнестойким поголовьем. Размеры помещений,
станков, фронт кормления, особенности внутренней планировки наиболее
рентабельны при содержании однородных групп свиней. Отклонения
морфологических и физиологических показателей животных от стандартных
являются
нежелательными.
Каждые
два
дня
формируются
группы
отъемышей и откормочных подсвинков по 1200 голов в каждой. Через день
группа откормленных животных реализуется на убой.
Проектная мощность комплекса рассчитана на строгое соблюдение
всех этих стандартов. Организационная структура комплекса должна
отвечать двум условиям: формированию однородных групп животных,
применению метода непрерывного воспроизводства.
Проектные показатели комплекса: число опоросов на свиноматку в год
– 2-2,5, выход деловых поросят на свиноматку в год – 22,5, максимальная
нагрузка на хряка (число покрытий в год) – 270, возраст достижения
поросятами живого веса 38 кг – 3,5 месяца, среднесуточный прирост живой
массы – 637 г.
Для обеспечения запланированной на комплексе производительности
продукции
необходимо
ежедневно
62
осеменять
88
свиноматок
при
оплодотворяемости 75%.
В корпус цеха осеменения поступают свиноматки после отъема
поросят, свиноматки с выявленной неоплодотворенностью и ремонтные
свинки. Каждая свиноматка содержится в этом цехе 22 суток. За это время
она должна быть покрыта. Покрытые животные переводятся во второй
корпус и находятся там 30 суток. В последующем свиноматок по 37-38 голов
переводят на 80 суток в цех содержания животных второго периода
супоросности и затем в цех опороса и содержания подсосных маток.
Поросята
под
маткой
находятся
до
27-суточного
возраста.
Отход
новорожденных животных составляет 5%. С 27 суток поросята передаются в
цех доращивания поросят-отъемышей. После 80-суточного содержания
поросят-отъемышей переводят в цех откорма на 116 суток. Откормочных
свиней живым весом 112 кг реализуют на убой.
Технология
воспроизводства
следующая:
оплодотворяемость
свиноматок осуществляется методом искусственного осеменения, сперму
получают от хряков-производителей на пункте искусственного осеменения в
цехе репродукции комплекса.
Филиал «Племзавод» «Гибридный» свинокомплекса «СВ-Поволжское»
является уникальным крупнейшим многопрофильным предприятием России,
технология производства выстроена по замкнутому циклу, спецификой
которого
является
выведение
специализированного
и
получение
высокопродуктивного товарного гибрида.
Селекционно-гибридный центр введен в эксплуатацию в 1981 г. и
рассчитан на содержание 46000 свиней. В настоящее время, объем
производства племенных свиней составляет 74000 голов в год, часть которых
реализуется в специализированные свиноводческие хозяйства Российской
Федерации.
На
предприятии
создана
благоприятная
ветеринарная
обстановка, накоплен собственный банк криоконсервированной спермы,
ведется научно-исследовательская работа по созданию новых специализированных линий с высоким генетическим потенциалом продуктивности,
63
который позволит фермерам разводить здоровых свиней при наименьших
затратах для производства мяса высокого качества.
Учет скота на племзаводе осуществляется с 1999 г. при помощи
компьютерной программы для зоотехнической и племенной службы. На
производственных
участках
вводятся:
паспортные
данные,
средняя
продуктивность, классность отца и матери; показатели роста, развития
ремонтного молодняка на разных этапах (все данные хранятся в
информационных базах).
В племенных стадах насчитывается 3350 чистопородных свиноматок,
в том числе: крупная белая порода – 3000; порода йоркшир – 60; порода
дюрок – 120.
Крупная белая порода характеризуется высоким многоплодием,
отличными
материнскими
качествами,
адаптирована
к
местным
климатическим условиям, приспособлена к промышленной технологии.
Порода
дюрок
характеризуется
стрессоустойчивостью,
высокой
конверсией корма, имеет отличное качество мяса, стойкое проявление
мясных качеств в потомстве.
Порода йоркшир отличается высокой энергией роста, имеет беконные
качества туш и устойчивость к промышленной технологии хозяйства.
Программа
кормления
и
обеспеченность
рациона
основными
питательными веществами рассчитаны на получение в среднем 550-600 г
ежедневного прироста (табл. 1). Поросят в возрасте от 60-и до 120-суточного
возраста кормили комбикормом К-52, в возрасте 120-200 суток с живой
массой 40-80 кг – К-55, в возрасте 200-260 суток – К-57. Основу
комбикормов всех марок составлял ячмень 40,0-51,0%, пшеница – 25-32%,
жмых подсолнечника – 3,0-10,0%. Также в состав комбикорма для поросятотъемышей были введены мясокостная мука, белково-витаминная добавка,
премикс П 51-7 а.
Подсвинки крупной белой породы потребляли корм по 1,59 кг в сутки,
в последние дни – 3,75 кг. Подсвинки дюрок и йоркшир в среднем на 200 г
64
(или на 8,2-9,5%) больше, чем крупной белой породы.
Таблица 1
Рецепты комбикормов, %
Компоненты
К-52
47,0
29,0
10,0
5,0
7,5
0,5
1,0
-
Ячмень
Пшеница
Отруби пшеничные
Жмых подсолнечный
Мясокостная мука
БВД
Соль поваренная
Овес
Дрожжи кормовые
Известковая мука
Кальций фосфат
Премикс П 51-7 а
Просо
Марка комбикорма
К-55
40,0
32,0
2,0
0,5
10,0
2,0
0,5
0,5
1,0
5,0
К-57
51,0
25,0
10,0
3,0
0,5
0,3
0,3
10,0
Кормление поросят с 15-суточного возраста до достижения ими живой
массы 38 кг проводилось сухими полнорационными кормами вволю. Все
остальное поголовье потребляло жидкие корма согласно нормам кормления
(табл. 2‚ 3).
Таблица 2
Состав комбикормов свиней
Компоненты‚ %
1
Кукуруза
Ячмень
Пшеница
Отруби пшеничные
Шрот подсолнечный
Сухое обезжиренное молоко
Мука рыбная
Трикальций фосфат
Мел кормовой
Соль поваренная
Премикс П-1
Премикс П-2
Сухое вещество‚ г
Сырой протеин‚ г
Кормовые единицы
Пороста
Поросята
30-59 суток
60-90 суток
2
3
35
20
22
32
20
16
1,0
16
10
10
5,0
1,0
0,5
0,5
0,1
0,5
0,4
1,0
1,0
В 1 кг корма содержится
860
865
170
190
1,20
1,23
65
Свиньи
91-210 суток
4
15
35
24
5,0
18
1,0
0,5
0,5
1,0
868
190
1,32
Окончание табл.2
1
Обменная энергия‚ МДж
Сырой жир‚ г
Клетчатка‚ г
Лизин‚ г
Метионин + цистин‚ г
Триптофан‚ г
Кальций‚ г
Фосфор‚ г
Натрий‚ г
2
12,6
32
53
4,6
5,4
1,9
6,5
6,6
1,7
3
13,6
31
43
9,6
7,2
2,3
8,7
7,9
2,2
4
13,8
30
56
10,2
7,8
2,6
8,8
9,1
2,6
Таблица 3
Обеспеченность животных в питательных веществах
Поросята
Поросята
Свиньи
30-59 суток
60-90 суток
91-210 суток
потреб- обеспе- потреб- обеспе- потребобеспеность ченность ность ченность ность
ченность
2200
2254
2150
2150
3390
3360
230
241
279
278
3217
3220
2,3
2,39
29
3,1
3,6
3,8
2,7
3,2
3,2
3,5
3,7
3,8
30
32
30
31
30
30
287
340
160
190
172
179
15,2
16,7
14,4
15,1
160
17,0
10,3
12,4
8,0
8,3
1,0
11,7
4,4
4,9
1,6
2,3
2,3
2,4
16
16,8
18
19
15
16
14
16,6
13,0
14,1
12,0
12,8
1,6
1,8
1,6
2,9
3,0
3,1
35
44
24
24,14
17
12,31
101
105
114
138,6
110
118
174
186
170
190,6
159
161
187
162
128
158,0
104
108
3,0
3,1
2,4
2,67
2,2
2,67
0,6
0,6
0,4
0,46
0,4
0,46
25
27
12,2
29,6
14,2
29,6
12,1
11,9
6,4
7,32
6,4
7,32
1,2
1,12
0,8
1,80
1,30
1,80
Показатели
Сухое вещество‚ г
Переваримый протеин‚ г
Кормовые единицы
Обменная энергия‚ МДж
Сырой жир‚ г
Клетчатка‚ г
Лизин‚ г
Метионин + цистин‚ г
Триптофан‚ г
Кальций‚ г
Фосфор‚ г
Натрий‚ г
Медь‚ мг
Марганец‚ мг
Железо‚ мг
Цинк‚ мг
Кобальт‚ мг
Йод‚ мг
Каротин‚ мг
Витамин А‚ МЕ
Витамин D, МЕ
Параметры микроклимата в помещениях поддерживаются системами
вентиляционно-отопительных
установок: шахтные приточно-вытяжные‚
приточно-отопительные‚ установки отсоса воздуха из-под щелевых полов.
Микроклимат
в
помещениях
удовлетворительный.
Температура
воздуха колебалась от 17‚5 до 19‚70С‚ относительная влажность – от 70‚8 до
80‚5%, скорость движения воздуха – от 0‚27 до 0‚37 м/с‚ содержание
углекислого газа – от 0‚15-0‚21 мг/м3. Основные показатели температурно66
влажностного
режима
были
близки
к
рекомендуемым
ОНТП-2-77
(А.П. Онегов, Ю.И. Дудырев, М.А. Хабибулов, 1984).
СХЕМА ОПЫТОВ
Объект исследований
свиньи
Порода
Крупная
белая
Дюрок
Йоркшир
Научно-хозяйственные опыты
Возраст животных,
Группа
Период года Иммунокорректор
сутки
животных
1, 5, 10, 20, 30, 60,
90, 120, 180, 210
1, 5, 10, 20, 30, 60,
90, 120, 180, 210
1, 5, 10, 20, 30, 60,
90, 120, 180, 210
контроль
Iа
опыт
Iб
контроль
IIа
опыт
IIб
контроль
IIIа
опыт
IIIб
теплый
холодный
теплый
холодный
теплый
холодный
теплый
холодный
теплый
холодный
теплый
холодный
Основной рацион
Основной рацион
+ тимозин-α1
Основной рацион
Основной рацион
+ тимозин-α1
Основной рацион
Основной рацион
+ тимозин-α1
Методы исследований
Физиологические
Гематологические
Биохимические
Иммунологические
Зоотехнические
Гелиогеофизические
Климатические
Микроклиматические
Внедрение результатов научных исследований в:
производственную
деятельность
Самарская Московская Чувашская Чувашский Ульяновская СХП разных типов и форм
ГСХА
ГАВМиБ
ГСХА
ГПУ
ГСХА
собственности
учебный процесс
Объектами исследований были чистопородные свиньи крупной белой
породы, дюрок и йоркшир с момента рождения (2-6 ч после рождения) и до
210-суточного возраста. Научно-производственный опыт проводили в две
67
серии: в теплый и холодный периоды года. Для этого были подобраны шесть
групп чистопородных свиней по принципу аналогов (Ιа – КБП контроль, ΙΙа –
Д контроль, ΙΙΙа – Й контроль; Ιб, ΙΙб, ΙΙΙб – опыт) с учетом клиникофизиологического состояния, живой массы и пола новорожденных поросят
по 30 голов в каждой.
Опытным животным вводили внутримышечно тимозин-α1 в дозе 0,16
мг на одного поросенка с 1- до 30-суточного возраста 2 раза в неделю; с 31по 90-суточный возраст – по 0,8 мг на голову один раз в неделю; с 91- по 210суточный возраст – по 1,6 мг на голову один раз в неделю.
Тимозин-α1 (синтетический гормон тимуса) – ацетилированный
полипептид, состоящий из 28 аминокислот – активизирует процесс
дифференциации Т-лимфоцитов, способствует их созреванию, оказывает
влияние на клеточный и гуморальный иммунитет и на неспецифическую
резистентность организма. Тимозин-α1 допущен к использованию в
животноводстве ЛС-002023 от 12.10.2007.
В работе использовали следующие условные сокращения: ФБИС –
физиолого-биохимико-иммунологический статус, КБП – свиньи крупной
белой породы, Д – свиньи породы дюрок, Й – свиньи породы йоркшир,
АлАТ – аланинаминотрансфераза; АсАТ – аспартатаминотрансфераза, ПДК –
предельно допустимая максимальная разовая концентрация химического
вещества в зоне обитания свиней, мг/м3, ПН – поверхностное натяжение, σ0 –
значение ПН при времени «жизни» («существования») поверхности,
стремящемся к нулю, σ1 – значение ПН, соответствующее 0,02с «жизни»
(«существования») поверхности, σ2 – значение ПН соответствующее 1 с
«жизни» («существования») поверхности, σ3 – значение равновесного ПН, λ0
– коэффициент наклона тензиограммы в области малых времен «жизни»
(«существования») поверхности, λ1 – коэффициент наклона тензиограммы в
области
больших
времен
«жизни»
(«существования»)
Достоверность: * – р < 0,05; ** – р < 0,01; *** – р < 0,001.
68
поверхности.
3.2. Определение природно-климатических и микроклиматических
параметров в зоне расположения свинокомплекса
Природно-климатические
факторы
внешней
среды:
температура
окружающего воздуха, влажность и скорость движения воздуха, атмосферное
давление и газовый состав атмосферного воздуха изучены на базе
Тольяттинской специализированной гидрометеорологической обсерватории
(СГМО) и
на базе агрометеостанции
«Усть-Кинельский» (лицензия
Р/2005/0044/100/Л от 25 мая 2005 года).
Метеорологические
наблюдения
проводили
в
соответствии
с
методикой Федеральной службы по гидрометеорологии и мониторингу
окружающей среды.
Для наблюдений за температурой и влажностью воздуха установлены и
оборудованы психрометрическая будка и будка самописцев. Использовали
максимальный ТМ-1 и минимальный ТМ-2 термометры для измерения
экстремальных значений температуры воздуха между сроками наблюдений
(2 раза в сутки в 6 и 18 ч московского времени), стационарный психрометр
(два термометра ТМ-4) для измерения характеристик влажности воздуха
выше -10ºС, волосной гигрометр и низкоградусный термометр ТМ-9 для
измерения в зимнее время.
Количество
осадков
измеряли
в
каждый
срок
наблюдений
осадкометром Третьякова, ветровые характеристики определяли с помощью
флюгера станционного, установленного на мачте высотой 12 м, атмосферное
давление – с помощью ртутного чашечного барометра в гектопаскалях и
переводили эти значения в миллиметры ртутного столба.
Сведения
об
изменении
параметров
внешней
среды:
индекс
интенсивности магнитного поля Земли, интенсивность радиоизлучений
Солнца на длине волны 10,7 см, числа Вольфа – по данным сайта
http://www.izmiran.ru/services/saf/forecast.
69
3.3. Определение состояния микроклимата в животноводческих
помещениях
В животноводческих помещениях состояние микроклимата определяли
по
применяемым
общепринятым
в
зоогигиене
методикам
в
стандартным
приборам
соответствии
с
согласно
«Методическими
рекомендациями по исследованию систем микроклимата в промышленном
животноводстве и птицеводстве» (1977). Температуру воздуха – обычным
спиртовым
термометром,
а
суточную
амплитуду
ее
колебаний
регистрировали с помощью недельных и суточных термографов (М-16А) с
последующим анализом термограмм. Гигрометрические показатели воздуха
рассчитывали на основании показателей «сухого» и «влажного» термометров
аспирационного термометра Асмана типа МВ-4В с помощью специальных
психрометрических таблиц (согласно инструкции прибора). Скорость
движения воздуха вентиляционных приточных трубах замеряли с помощью
крыльчатого анемометра МС-13, а в зоне нахождения свиней использовали
шаровой кататермометр. Концентрацию аммиака определяли универсальным
газоанализатором УГ-2, содержание углекислого газа в воздухе – по Гессу
(А.Ф. Кузнецов и соавт., 2001).
Бактериальную загрязненность воздушной среды в помещениях
определяли с помощью аппарата Кротова, через который пропускали
определенный объем воздуха на чашку Петри, затем ее ставили в термостат,
выдерживали при 37°С 48 ч, после чего подсчитывали число колоний
микробных клеток и вычисляли их общее количество в кубическом метре
воздуха.
3.4. Определение физиологического состояния свиней
Физиологический статус свиней оценивали общепринятым методом в
зависимости от возраста свиней по температуре тела, частоте дыхательных
движений, ритму дыхания и частоте сердечных сокращений (В.Ф. Лысов,
1977, 2004). Определение частоты дыхания проводили по результатам
70
подсчета дыхательных движений в одну минуту. С учетом беспокойства
животных, для более объективной оценки, подсчет осуществляли в течение
2 мин с последующим вычислением среднего показателя. Ритм дыхания
изучали по чередованию фаз вдоха и выдоха. Температуру тела измеряли
ртутным термометром со шкалой, градуированной по Цельсию от 34 до 42°С
с делением 0,1°С. Измерение температуры тела у животных осуществляли в
прямой кишке. Артериальный пульс исследовали пальпацией хвостовой
артерии.
Оценку физиологической зрелости новорожденных животных определяли по системе интегральных показателей‚ включающих их внешний вид‚
массу тела, количество молочных зубов, телосложение, упитанность,
поведение‚ реакцию на внешние раздражители‚ цвет внешних слизистых
оболочек‚ состояние кожи (В.Ф. Лысов‚ 1977; А.И. Кузнецов‚ В.Н, Лузин‚
В.Г. Лукошкина‚ 1984).
3.5. Определение гематологических показателей крови животных
Материалом исследований служила цельная кровь и плазма крови.
Кровь
для
исследования
брали
до
кормления
физиологического статуса свиней и изучение
животных.
Оценку
адаптационного действия
иммунокорректора тимозин-α1 на организм животных осуществляли по
гематологическим, биохимическим и иммунологическим показателям.
Эритроциты. Подсчет эритроцитов производили в 1 мм3 крови в
камере Горяева. Клетки считали в 5 больших квадратах (80 маленьких) по
диагонали под микроскопом (окуляр 10‚ объектив 40). Вычисление
количества эритроцитов в 1 мм3 производили по формуле
Х  ( Н  4000  200)  80,
где Х – количество клеток в 1 мм3‚ Н – количество подсчитанных
эритроцитов‚ 4000 – множитель перевода к объему 1 мл крови‚ 200 –
разведение крови‚ 80 – количество малых квадратиков‚ для определения
71
12
числа эритроцитов в 1 л крови (Х) использовали формулу Х  Н  10 .
Получали величину Е/л‚ где Г – гига‚ равна 1012.
Гемоглобин.
Гемоглобин
определяли
гемоглобин-цианидным-
колориметрическим методом (Г.А. Симонян‚ Ф.Ф. Хисамутдинов‚ 1995;
А.М. Петров‚ Е.С. Воронин‚ 1995; 1999).
Для анализа брали опытную‚ стандартную и контрольную пробы. Для
подготовки опытной пробы к 5 мл трансформирующего раствора добавляли
20 мкл (0‚02 мл) испытуемой крови‚ тщательно перемешивали и оставляли на
10 мин. Затем колориметрировали при зеленом светофильтре (длина волны
500-560 нм) в кювете толщиной слоя 10 мм против контрольной пробы‚
в качестве которой брали трансформирующий раствор. Стандартная проба –
это стандартный раствор гемоглобинцианида.
Количество гемоглобина (Hb‚ г на 100 мл) определяли по формуле
Hb 
Eоп  С  К  0,001
,
Ест
где Еоп – оптическая плотность опытной пробы‚ Ест – оптическая плотность
стандартной пробы‚ С – концентрация гемоглобинцианида в стандартном
растворе (59‚75 мг на 100 мл)‚ 0‚001 – коэффициент для пересчета 1 мг в 1 г;
К – коэффициент разведения крови.
Для установления количества гемоглобина в 1 л крови полученную
цифру умножали на 10.
Лейкоциты. Для определения количества лейкоцитов кровь набирали
в смеситель для лейкоцитов до метки 0‚5 и разводили в 20 раз жидкостью
Тюрка‚ насасывая ее до метки 11. Разбавленной кровью заполняли камеру
Горяева и считали количество лейкоцитов в 100 больших квадратах под
микроскопом (окуляр 10‚ объектив 40). Количество лейкоцитов определяли
по формуле
Х  ( Н  4000  200)  1600,
где Х – количество лейкоцитов в 1 мм3 крови‚ Н – количество подсчитанных
72
лейкоцитов, 4000 – множитель перевода к объему 1 мл крови, 200 –
разведение крови, 1600 – количество малых квадратов.
Для определения числа лейкоцитов в 1 л крови Х использовали
формулу
Х  Н  5  10 7 ,
где Н – число лейкоцитов‚ найденных в 100 больших квадратах. Получили
величину Г/л‚ где Г – гига‚ равна 109.
При подсчете форменных элементов крови были использованы
автоматические
кондуктометрические
счетчики
типа
СФЭК-Ц-04
(отечественный) и «Пикосель – PS-4» (Венгрия) – электронные приборы‚
служащие для определения числа диспергированных частиц в единице
объема электропроводящей жидкости. Подсчет эритроцитов и лейкоцитов
крови основан на кондуктометрическом методе. Определенное количество
крови, разведенной изотоническим раствором натрия хлорида или другим
электролитом, пропускают через микроотверстие. Подходящая клетка
увеличивает сопротивление между электродами‚ возникающий импульс
передается на счетное устройство с цифровой индикацией.
Ход исследования соответствует инструкции‚ приложенной к прибору.
Лейкограмма. Лейкограмму определяли на мазках крови. Мазки
фиксировали метиловым спиртом‚ окрашивали по Романовскому-Гимза‚
клеточный состав изучали и подсчитывали по общепринятой методике
(Г.А. Симонян‚ Ф.Ф. Хисамутдинов‚ 1995; Е.С. Воронин‚ 2003) в четырех
условных зонах‚ разделенных поперечной и продольной осевыми линиями‚
визуально проведенными через центр мазка. В каждой зоне сосчитали 25%
клеток от требуемого количества (100 или 200).
Найденные и идентифицированные клетки регистрировали с помощью
11-клавишного механизма счетчика и лейкограмму выражали в процентах.
73
3.6. Определение биохимических показателей крови свиней
Концентрацию общего белка определяли рефрактометром ИРФ-22 и
биуретовым методом‚ белковые фракции – турбидиметрическим методом
(Б.И. Антонов‚ Т.Ф. Яковлева, Б.И. Дерябин, 1991).
Содержание
общего
кальция
устанавливали
по
реакции
с
о-крезолфталеин-комплексом и по восстановлению фосфорномолибденной
кислоты (А.М. Капитаненко‚ И.И. Дочкин‚ 1988).
Неорганический фосфор определяли с ванадат-молибдатным реактивом
(Б.И. Антонов‚ Т.Ф. Яковлева‚ В.И. Дерябин‚ 1991).
Резервную щелочность крови устанавливали диффузионным методом
(М.Г. Шубин‚ Б.С. Нагаев‚ 1980).
3.7. Определение поверхностного натяжения сыворотки крови
Динамическое поверхностное натяжение (ДПН) сыворотки крови
свиней проводили с помощью прибора ВРА-1Р (Maximum Bubble Pressure
Tensiometer) (Sinterface Technologies, ФРГ), позволяющего получать значения
ДПН во временном интервале «жизни» поверхности от 0,01 до 10 секунд с
воспроизводимостью
не
менее
0,2%
(±0,1
мН/м)
(А.И.
Русанов,
В.А. Прохоров, 1994). Принцып работы ВРА-1Р основан на измерении
максимального давления в пузырке, растущем на конце тонкого капилляра,
опущенного в исследуемую жидкость. На экране компьютера полученные
данные отображаются в виде графика и таблицы, строится тензиограмма –
график зависимости поверхностного натяжения () от времени (t).
3.8. Определение активности ферментов
Щелочную фосфатазу определяли с помощью набора реактивов
Лахема
–
диагностика
выделяющихся
с
последующим
спектрофотометрированием
n-нитрофенола и фосфата‚ а каталитическую активность
фермента (Е) в пробе рассчитывали по формуле
74
Е  7,899  А (МККАТ / л),
где А  А1  А2 , А1 и А2 – оптическая плотность опытной и контрольной проб
(В. В. Меньшиков, 1987).
Активность АсАТ и АлАТ (К.Ф. 2.6.1.1) и (К.Ф. 2.6.1.2) определяли
методом
колориметрии
стандартного
набора
по
Гайтману-Френкелю
«БИО-ЛА-ТЕСТ»
(В.Дж.
с
использованием
Маршал,
2000).
Переаминирование под действием аланин- и аспаратаминотрансферазы
приводит к образованию пировиноградной и щавелевой кислот. Последняя в
процессе ферментативной реакции также превращается в пировиноградную
кислоту.
При
добавлении
2,4-динитрофенилгидразина
образуется
окрашенный гидразон пировиноградной кислоты.
3.9. Определение иммунологических показателей
3.9.1. Определение клеточных факторов резистентности
Определение фагоцитарной активности, емкости, фагоцитарного числа
и индекса лейкоцитов осуществляли постановкой опсонофагоцитарной
реакции с использованием инактивированной культуры белого стафилококка
(музейный штамм Staphylococcus saprophyticus 209-6) (Е.С. Воронин и соавт.,
2002); лизоцимной активности плазмы крови – по методике В.Г.
Дорофейчука
(1968)
(музейный
штамм
Micrococus
lysodeileticus);
бактерицидной активности плазмы крови – по методике О.В. Смирновой,
Т.А. Кузминой (1966), нефелометрическим способом на ФЭК 56-М
(музейный штамм E.Coli К-12).
Постановка опсонофагоцитарной реакции (Е.С. Воронин, 2001).
В качестве тест-пробы использовали инактивированную культуру белого
стафилококка‚ штамм 209-б.
Реакцию ставили сразу после взятия крови. Для этого в стерильные
пробирки‚ каждая из которых содержала по 0‚25 мл 2% раствора
лимоннокислого натрия‚ добавляли по 0‚5 мл двухмиллиардной суточной
75
взвеси тест-культуры‚ убитой путем нагревания при 700С в течение 30 мин,
тщательно перемешивая содержимое. Затем пробирки ставили на 30 мин в
термостат при температуре 370С. По истечении времени из содержимого
каждой пробирки готовили мазок‚ который фиксировали метиловым спиртом
и
окрашивали
по
Романовскому-Гимза.
Подсчет
фагоцитированных
микробов производили в 100 лейкоцитах. Из показателей фагоцитоза
учитывали: а) фагоцитарную активность – процент фагоцитирующих
лейкоцитов к числу подсчитанных; б) фагоцитарное число – среднее
количество фагоцитированных микробных клеток‚ приходящихся на один из
просмотренных лейкоцитов; в) фагоцитарный индекс – среднее количество
микробных
г)
клеток
фагоцитарную
фагоцитированных
емкость
–
одним
активным
количество
лейкоцитом;
микробных
клеток‚
фагоцитированных лейкоцитами 1 мм3 крови.
Определение количества Т-лимфоцитов в периферической крови
животных реакцией спонтанного розеткообразования с эритроцитами
барана (Е-РОК) (В.П. Лозовой В.С. Кожевников И.В. Волчек 1986). Метод
основан
на
способности
выделенных
Т-клеток
самопроизвольно
агрегироваться с эритроцитами барана (не менее трех эритроцитов с одним
Т-лимфоцитом) (M. Jendal, G.Holm, E.H. Wigrell, 1972; Е.С. Воронин‚
А.М. Петров‚ М.М. Серых‚ Д.А. Девришов‚ 2002).
Тимусзависимые Т-лимфоциты имеют рецепторы для эритроцитов
барана,
рецепторы
выступают
специфическим
маркером
для
их
распознавания (Е-РОК: Erythrocyte – розеткообразующие клетки).
Для приготовления эритроцитарных маркеров кровь от соответствующих животных-доноров дефибринировали путем встряхивания в флаконе со
стеклянными бусами в течение 15 мин. Затем эритроциты фильтровали через
капроновый фильтр и отмывали трижды средой 199‚ центрифугируя при
400g в течение 10 мин. Из осадка эритроцитов готовили 1,5% взвесь в среде
199.
76
Учет реакции проводили путем подсчета 100 (200) розеткообразующих
клеток (РОК) нескольких полей зрения микроскопа под иммерсией. Для
мазка окрашивали азур-эозином после предварительной фиксации в метаноле
по методике Н.И. Блинова (1980). Полученную сумму‚ равную 200, делили
на 2 и определяли процент РОК. Абсолютное число РОК рассчитывали по
формуле
х
аб в
,
10000
где х – абсолютное число Т-лимфоцитов в 1 л крови‚ а – количество
лейкоцитов
в
исходной
крови‚
в
–
процент
розеткообразующих
Т-лимфоцитов.
При выделении мононуклеарных клеток (МНК) использовали раствор
фиколл-верографина
с
плотностью
1‚077
г/см.
Стабилизированную
гепарином кровь в количестве 5 мл наслаивали на градиент плотности.
Пробирки с содержимым центрифугировали 40 мин при 1500 об/мин‚
температуре 18-200С и силе разделения в интерфазе 400g. Интерфазный слой‚
состоящий из МНК‚ отсасывали пастеровской пипеткой и переносили в
другую пробирку. Затем добавляли среду 199 и отмывали лимфоциты от
градиента плотности трехкратным центрифугированием в течение 7-10 мин с
ускорением 200g. К осадку отмытых лимфоцитов добавляли 1 мл среды 199,
осадок ресуспензировали. Из полученной взвеси брали 0‚1 мл МНК и
смешивали с 4‚9 мл 3% раствора уксусной кислоты и подсчитывали
количество лимфоцитов в камере Горяева. Для постановки реакции
использовали суспензию лимфоцитов в концентрации 4×106 клеток в 1 мл.
Жизнеспособность лимфоцитов определяли по суправитальной окраске
0‚1% раствором трипанового синего. Для этого брали 0‚25 мл суспензии
лимфоцитов‚ добавляли 1-2 капли красителя и заправляли камеру Горяева.
При этом подсчитывали на менее 100 клеток в поле зрения. Среди них
выделяли процент жизнеспособных лимфоцитов (прозрачные клетки).
В суспензии количество живых клеток составило 90% и более.
77
3.9.2. Определение гуморальных факторов резистентности
Определение
бактерицидной
активности
сыворотки
крови
(И.Ф. Храбустовский‚ В.В. Никольский‚ Ю.М. Марков‚ 1974). В качестве
тест-культуры
использовали
кишечную
палочку
(суточной
агаровой
культуры E.Coli штамма К-12).
В пробирку с 4,5 мл стерильного МПБ добавляли по 1 мл испытуемой
сыворотки. Затем пастеровской пипеткой во все пробирки вносили по одной
капле в 2 млрд. взвеси суточной культуры кишечной палочки. Контролем
служила пробирка с бульоном и культурой‚ а вместо сыворотки в нее
добавляли равное количество 0‚9% раствора хлористого натрия. Содержимое
пробирок перемешивали и после измерения исходной оптической плотности
смеси ставили их в термостат при 370С на три часа‚ после чего производили
повторное измерение оптической плотности.
Экстинкцию определяли при 540 нм на ФЭК‚ в кюветах шириной 5 мм
и зеленом светофильтре.
Расчет активности вели по формуле
 Е  Еоп

А  100   о
 100 ,
 ео  е

где А – бактерицидная активность сыворотки крови‚ %; Ео – оптическая
плотность после 3 ч инкубации; Еоп – оптическая плотность перед
инкубацией; ео – оптическая плотность холостой пробы после 3 ч инкубации;
е – оптическая плотность холостой пробы перед инкубацией.
Определение
лизоцимной
активности
сыворотки
крови
(П.А. Емельяненко‚ В.Н. Грызлов‚ В.Н. Денисенко (1980); Е.С. Воронин‚
А.М. Петров‚ М.М. Серых‚ Д.А. Девришов (2002). Чтобы определить
лизоцимную активность крови, суточную агаровую культуру микрококка
смывали стерильным 0‚9% раствором хлористого натрия и готовили взвесь‚
оптическая плотность которой на колориметре ФЭК 56-М составляла 20%
в рабочей кювете шириной 3 мм при зеленом светофильтре. После этого
78
в стерильные пробирки разливали по 1‚47 мл приготовленной взвеси микробов‚ добавляли в каждую по 0‚03 мл исследуемой сыворотки крови‚
помещали в термостат при температуре 370С на 2 ч‚ затем колориметрировали и после установления оптической плотности вычитали из нее
контроль. Получали лизоцимную активность плазмы крови в процентах.
В-лимфоциты идентифицировали методом спонтанного розеткообразования с эритроцитами мыши. Для этого к 0‚2 мл взвеси лимфоцитов
добавляли 0‚2 мл 1‚5% взвеси эритроцитов мыши. Смесь осаждали при
1000 об/мин в течение 5 мин‚ а затем инкубировали при 370С 5 мин, при 40С
– 16-18 ч (В.П. Лозовой‚ В.С. Кожевников‚ И.А. Волчек‚ 1986). Оборудование и реактивы применяли те же, что для метода определения Т-лимфоцитов
(Е.С. Воронин, А.М. Петров, М.М. Серых, Д.А. Девришов (2002)).
3.10. Определение иммуноглобулинов
Концентрацию иммуноглобулинов G-, M- и А-классов в плазме крови
свиней определяли по следующей методике – простая радиальная иммунодиффузия с использованием моноспецифических антисывороток и моноклональных антител (G. Manchini, O.A. Carbonara, J.F. Hermans, 1965;
Е.С.
Воронин, А.М. Петров, М.М. Серых, Д.А. Девришов, 2002)‚ применение
моноспецифических антисывороток к иммуноглобулинам свиней‚ стандартных препаратов‚ контрольных сывороток‚ агар Дифко‚ предметных стекол.
На поверхность предметного стекла наносили равномерный слой геля‚
содержащего 5% моноспецифической антисыворотки. В лунки‚ образованные с помощью штампа-пробойника в остывшем геле‚ вносили 2 мкл
сыворотки‚ содержащей антиген. Для определения IgM сыворотку разводили
в 2 раза‚ для определения IgG – в 6 раз. Реакцию проводили во влажной
камере. Процесс иммунодиффузии на IgG завершался через 3 дня, на IgM –
через 5 дней. Молекулы антигены диффундировали в гель из лунок и
образовывали кольца преципитации с соответствующими антителами.
Диаметр колец преципитанции увеличивался до тех пор, пока не истощался
79
объем антигена. К моменту завершения диффузии наблюдалась прямая
линейная зависимость между исходной концентрацией антигена и площадью
преципитации. Для построения калибровочного графика брали логарифм
концентрации антигена и, как функцию от него, площадь преципитата,
квадрат диаметра зоны преципитата или логарифмы преципитата.
3.11. Оценка роста и развития свиней
Рост свиней определяли по живой массе‚ её абсолютному и
относительному
приросту
(В.И.
Степанов‚
Н.В.
Михайлов‚
1986;
А.И. Кузнецов‚ Л.И. Москвина‚ 1986; А.С. Смирнов‚ П.Я. Конопелько‚
В.С. Постников‚ 1988). Живую массу устанавливали путем индивидуального
взвешивания животных в 1-, 5-, 10-, 20-, 30-, 60-, 90-, 120-, 180-,
210-суточном возрасте. Абсолютный среднесуточный прирост живой массы
рассчитывали по формуле
А
Wt  Wo
,
t
где A – среднесуточный прирост‚ г; Wo – начальная живая масса‚ кг; Wt –
конечная живая масса‚ кг; t – время (суток) между двумя взвешиваниями.
Основные
цифровые
материалы,
полученные
в
эксперименте,
обработаны биометрическими методами с вычислением общепринятых
констант (Е.К. Меркурьева 1970, Г.Ф. Лакин, 1990) и с помощью ПЭВМ, с
использованием стандартных программ и рекомендаций (Г.Ф. Лакин, 1990).
80
4. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
Термин «погода» означает физическое состояние атмосферы у
поверхности Земли в данный момент времени. Физическое состояние
атмосферы характеризуется метеорологическими величинами (температура,
давление, влажность, ветер, облачность, осадки) и атмосферными явлениями
(гроза, туман, пыльная буря, метель и т.д.). Понятие климата связано с
режимом температуры и осадков (совокупность атмосферных условий по
данной территории за длительный период времени), т.е. климат — это
«синтез погод». Нет общепринятого определения масштаба времени,
разделяющего синоптические процессы формирующие погоду, и процессы
формирования климата, поэтому при обсуждении проблем изменений
климата следует уточнить о каком масштабе времени (и каких атмосферных
условиях) идет речь. Проблемы различий и изменений климата привлекали к
себе внимание, так как от климатических условий зависит продуктивность
животных и урожайность сельскохозяйственных культур.
Среднее
Поволжье
характеризуется
умеренно
континентальным
климатом с жарким летом и продолжительной зимой. Особенностями
климата являются температурные контрасты, дефицит влаги, интенсивная
ветровая
деятельность,
высокая
инсоляция,
а
также
значительная
изменчивость метеовеличин как в течение одного года, так и по годам.
Физиологическое состояние животных, их адаптационные способности
и продуктивные показатели находятся в прямой связи от изменяющихся
природно-климатических и микроклиматических факторов.
С учетом вышеописанного, были проведены 2 серии опыта в теплый и
холодный периоды года.
81
4.1. Становление физиологоиммунного статуса свиней с возрастом
и его коррекция тимозином-α1 в теплый период года
(1 серия опыта)
Опыт проводили на 6 группах чистопородных свиней (группы животных сформировали по принципу аналогов 1 апреля в течение 2-6 ч после
рождения по 30 гол. в каждой) содержащихся в условиях ЗАО
«СВ-Поволжское» «Племзавод» «Гибридный» Самарской области.
4.1.1. Состояние природно-климатических условий в зоне расположения
животноводческих помещений
Теплый период года по среднегодовым данным Среднего Поволжья
длится 210 дней (с 4 апреля по 31 октября), когда температура воздуха выше
0ºС. Такие природно-климатические условия благоприятно влияют на
организм животных. Чтобы более полно охарактеризовать изменяющиеся
природно-климатические параметры приведем краткую характеристику
теплого периода 2007-2009 гг. В последние 3 года весна наступала в разные
сроки: в 2007 г. – 20 марта с переходом среднесуточной температуры через
0ºС, это раньше среднемноголетних сроков на 15 дней, 8 мая вместе с
переходом температуры воздуха через +10ºС началось лето; в 2008 г. –
16 марта, это на 19 дней раньше среднемноголетних сроков. Переход
температуры воздуха через +5ºС произошел также раньше обычного на
25 дней – 25 марта, то есть рано начавшийся теплый период 2008 г.
характеризовался активным нарастанием температур, 4 апреля вместе с
переходом температур воздуха через +10ºС началось лето. Апрель и май
были умеренно теплыми, температура воздуха находилась в пределах нормы
(отклонение составило 0,5-1,8ºС). В конце мая теплая погода сменилась
резким похолоданием. Средняя температура первой декады июня составила
всего 12,4ºС при норме 17,7ºС. В результате переход температуры воздуха
через +15ºС произошел лишь 10 июня, что на 3 недели позже обычных
82
сроков. Самыми жаркими днями со среднесуточной температурой воздуха
выше +25ºС были 22 июня, 16-20 и 23-24 июля, 16-17 августа.
Осенний переход среднесуточной температуры воздуха через +10ºС в
сторону понижения зафиксирован уже 30 сентября, что позже на 5 дней
среднемноголетнего срока (25 сентября).
По количеству осадков 2008 г. оказался более влажным, чем
«средний».
Наибольшее количество осадков выпало в июне и июле
(82 и 68 мм), что составило 145% от нормы. В апреле и мае количество
осадков примерно соответствовало среднемноголетним значениям.
Весна в 2009 г. наступила 27 марта с переходом среднесуточной
температуры воздуха через 0ºС, это на 8 дней раньше среднемноголетних
сроков, 28 апреля вместе с переходом температуры воздуха через +10ºС
началось лето. В 2009 г. максимальные температуры (32,5;
36,9ºС) не
достигали абсолютных значений и были отмечены в традиционно теплые
месяцы (июнь, июль, август). Самым теплым месяцем оказался июнь со
средней температурой +22,4ºС, в то время как среднее многолетнее значение
было 18,7ºС.
Количество осадков за 2009 г. составило 400,8 мм, что близко к норме
(410,0 мм или 97,8%). В течение года осадки выпадали крайне неравномерно.
Исключительно дождливыми были март, август, октябрь, однако май и июнь
характеризовались недобором осадков. Минимальная относительная влажность воздуха имела место в летние месяцы (май, июнь, июль и август) и
колебалась от 33 до 83%, тогда же её среднесуточный дефицит составил
8,7-11,5 гПа.
Средняя скорость ветра в теплое время года находилась на уровне 1,51,9 м/с. Наиболее сильные ветра были отмечены в мае и июне с преобладающим северным и северно-восточным направлениями, повторяемость
которых составила 49%.
Период с 22 марта по 4 июня характеризовался низким атмосферным
давлением (ниже 745 мм рт. ст.).
83
В таблице 4 приведены данные природно-климатических условий
изменяющихся по декадам
в зоне расположения свинокомплекса ЗАО
«СВ-Поволжское» Ставропольского района Самарской области. Свинокомплекс находится в 50 км от крупного промышленного города Тольятти и в
100 км от г. Самара.
Таблица 4
Природно-климатические показатели 2006-2008 гг.
Апрель
10
20
30
Природно-климатические показатели
Температура воздуха Т на высоте 2 м над земной
6,7
8,2
8,4
поверхностью, °С
Ветер на высоте 10-12 м над земной
4,7
3,9
4,3
поверхностью, м/с
Относительная влажность воздуха f на высоте 2
69,2
58,5
60,2
м над земной поверхностью, %
Атмосферное давление Po, мм рт. ст.
759,4
758,4
758,5
Содержание (концентрация) кислорода O2 в
299,3
297,0
296,4
воздухе, г/м3
Показатели
10
Май
20
30
9,4
15,3
19,5
4,2
4,0
4,2
48,7
58,6
65,9
759,2
757,0
755,4
294,7
288,2
285,0
Продолжение табл. 4
Июнь
Июль
10
20
30
10
20
30
Природно-климатические показатели
Температура воздуха Т на высоте 2 м
15,1
19,9
20,0
19,4
21,9
17,8
над земной поверхностью, °С
Ветер на высоте 10-12 м над земной
4,3
3,6
4,2
3,9
3,6
4,0
поверхностью, м/с
Относительная влажность воздуха f
на высоте 2 м над земной
61,9
62,3
70,0
72,3
71,6
72,0
поверхностью , %
Атмосферное давление Po,
756,9 755,5 752,1 753,4 754,5 754,4
мм рт. ст.
Содержание (концентрация)
287,5 281,1 279,1 280,5 277,2 282,4
кислорода O2 в воздухе, г/м3
10
Август
20
30
19,4
22,8
21,3
3,5
3,1
3,6
71,8
64,6
68,4
755,2
759,3 755,8
281,8
280,7 280,7
Показатели
Окончание табл. 4
Показатели
Сентябрь
10
20
30
Природно-климатические показатели
Температура воздуха Т на высоте
2 м над земной поверхностью, °С
Ветер на высоте 10-12 м над земной
поверхностью, м/с
Относительная влажность воздуха f на
высоте 2 м над земной поверхностью, %
Атмосферное давление Po, мм рт. ст.
Содержание (концентрация) кислорода O2 в
воздухе, г/м3
10
Октябрь
20
30
19,6
10,8
9,8
7,3
4,5
4,5
4,1
4,3
3,8
3,3
3,8
3,2
66,3
78,3
70,4
68,6
76,9
78,5
756,7
756,3
761,6
763,6
760,2
767,3
285,5
292,2
296,2
298,4
300,0
304,1
Таким образом, весенний переход от 0 до +10оС в исследуемые года
происходил очень быстро, в течение 20-27 дней. Температура воздуха весной
84
характеризовалась резким колебанием в течение суток и составляла в
среднем +7…+15оС. Особенностью температурного режима являются резкие
похолодания в начале мая, которые, в свою очередь, характеризуются
снижением относительной влажности воздуха, атмосферного давления и
концентрации кислорода.
Скорость движения воздуха в начале весны находится на уровне 3,94,2 м/с (что благоприятно сказывается на климате региона), но в отдельные
дни может усиливаться до 15-17 м/с.
В весенний период влажность воздуха была минимальной (составляла в
среднем 77,4-48,7%) относительно оптимальных показателей. Оптимальной
считается относительная влажность 60-70%, при повышенной температуре
допустима влажность 50%, пониженной – 80%. Атмосферное давление
соответствовало норме 757,0-760,8 мм рт. ст. Концентрация кислорода в
воздухе находилась на уровне 31,0-28,5%, что также соответствовало норме.
В годы исследований летний период характеризовался контрастностью
температур, резким снижением концентрации кислорода в воздухе и
повышенной влажностью. Температура воздуха в первый месяц лета
составляла в среднем 18,3оС, в июле и августе (в самые жаркие дни)
достигала +33…+35оС, скорость движения воздуха снижалась до 1-3 м/с.
Влажность воздуха составляла 70,0%. Наблюдалось уменьшение атмосферного давления до 752,0 мм рт. ст. и содержание кислорода в атмосфере
воздуха – до 27%.
Состояние загрязнения атмосферного воздуха в теплый период
года. Основными источниками загрязнения атмосферы служат предприятия
автомобилестроения, нефтехимии, по производству химических удобрений и
стройматериалов, ТЭЦ и котельные, автомобильный и железнодорожный
транспорт, речной порт.
Наибольший вред атмосфере Ставропольского района причиняют
отходы
производства
ОАО
«АВТОВАЗ»,
ООО
«Тольяттикаучук»
(г. Тольятти: формальдегид – 3,7 ПДК; диоксид азота – 1,1 ПДК;
85
бенз(а)пирен – 1,9 ПДК; гидрофторид – 1,2 ПДК; аммиак – 1,7 ПДК) и
выбросы выхлопных газов, являющиеся причиной превышения допустимых
концентраций токсичных веществ.
Наблюдения показали, что в 2006-2008 гг. уровень загрязнения
атмосферного воздуха в Ставропольском районе Самарской области был
повышенный – основным загрязняющим веществом являлся диоксид азота.
Подекадное изменение концентрации вредных газов в атмосферном воздухе
в теплый период 2008 г. представлено в таблице 5.
Таблица 5
Содержание вредных газов в атмосферном воздухе 2006-2008 гг.
Содержание газа
ПДКмр*
в воздухе, г/м3
SO2
0,5
СO
5
NO2
0,2
10
0,002
2,0
0,07
Апрель
20
30
0,003 0,002
2,5
1,2
0,07
0,04
10
0,005
1,6
0,14
Июль
20
0,006
1,8
0,15
10
0,005
2,1
0,05
Май
20
0,003
2,5
0,12
10
0,008
1,5
0,08
Август
20
0,005
2,0
0,14
30
0,004
1,3
0,10
10
0,004
1,8
0,13
Июнь
20
0,006
1,4
0,14
30
0,007
1,3
0,12
Продолжение табл. 5
Содержание газа
ПДКмр*
в воздухе, г/м3
SO2
0,5
СO
5
NO2
0,2
30
0,006
1,8
0,13
30
0,005
2,3
0,10
Сентябрь
10
20
30
0,002
0,009
0,004
1,4
1,7
2,9
0,10
0,05
0,03
Окончание табл. 5
Содержание газа в воздухе, г/м
SO2
СO
NO2
3
ПДКмр*
0,5
5
0,2
10
0,009
1,5
0,06
Октябрь
20
0,005
1,7
0,05
30
0,002
2,4
0,03
Примечание: *ПДКмр – предельно допустимая максимальная разовая
концентрация химического вещества в воздухе населенных мест, мг/м³. Эта концентрация
при вдыхании в течение 20-30 мин не должна вызывать рефлекторных реакций в
организме человека и животного.
Солнечная и геомагнитная активность. Действия солнечных
вспышек на защитные оболочки Земли вызывают ряд взаимосвязанных
изменений в окружающей среде. В качестве основных характеристик
солнечной активности использовали следующие показатели: число пятен на
солнце (число Вольфа) и поток радиоизлучения на волне 10,7 см (частота
2800 МГц), а также усредненный планетарный Аp-индекс, характеризующий
возмущения магнитного поля Земли (табл. 6).
86
Таблица 6
Количество пятен на Солнце (число Вольфа)
Год
2006
2007
2008
Среднее
апрель
30,2
3,4
2,9
12,2
май
22,3
11,7
3,2
12,4
Sun-spots Sum (теплый период года)
июнь
июль
август
13,9
12,2
12,9
12,1
9,7
6,7
3,4
0,5
0,5
9,8
7,47
6,7
сентябрь
14,4
2,4
1,1
5,9
октябрь
10,5
0,9
2,9
4,8
Магнитное поле солнца имеет цикл активности 11 лет, повторяющийся
с той или иной степенью точности; 2006 г. являлся завершающим в
23 периоде (это номер цикла с начала наблюдений) 11-летнего цикла
солнечной активности, 2007 г. – началом 24 периода солнечной активности.
В течение 2007-2008 гг. на Солнце не наблюдалось заметной
активности и, соответственно, воздействие его на Землю не носило такого
динамичного характера, как это бывает в годы максимума солнечной
активности.
Снижение солнечной активности может дать начало очень сложной
цепочке явлений, воздействие которых на климат может произойти с
число Вольфа
запаздыванием.
35
30
25
20
15
10
5
0
4
5
6
7
8
9
10
месяцы
2006
2007
2008
Рис. 1. Число Вольфа в теплый период 2006-2008 гг.
87
За годы исследований выявлено, что максимальное число солнечных
пятен в теплый период года приходится на март, апрель, май и
характеризуется повышением солнечной активности, проявляющейся в виде:
– прямого воздействия активности солнца на живой организм;
– воздействия на геомагнитную обстановку по периодам года;
– воздействия на геомагнитную обстановку по периодам года, а затем на
организм животного.
Таблица 7
Показатели солнечной и геомагнитной активности в теплый период года
Апрель
Май
10
20
30
10
20
Солнечная и геомагнитная активность
Поток радиоизлучения на волне 10,7
77,8
72,6
73,4
75,4 69,7
см (частота 2800 МГц)
Усредненный планетарный
11,6
9,0
9,6
7,0
5,8
Аp-индекс, (nT)
Показатели
Июнь
20
30
10
30
71
73,9
69,9
69,4
8,5
6,5
7,1
6,1
Продолжение табл. 7
Показатели
Поток радиоизлучения на волне 10,7
см (частота 2800 МГц)
Усредненный планетарный
Аp-индекс, (nT)
10
Июль
20
30
Август
10
20
69
73,9
72
72
5,1
6,9
7
7,8
Сентябрь
20
30
30
10
71
68,9
70,5
69,8
69,8
6,8
6,2
8,8
5,3
8,3
Окончание табл. 7
Показатели
Октябрь
20
10
Поток радиоизлучения на волне 10,7 см
(частота 2800 МГц)
Усредненный планетарный
Аp-индекс, (nT)
30
74,6
76,9
73,1
6,1
7,9
8,5
Магнитная обстановка Земли (планетарный Ар-индекс) характеризуется максимальным возмущением магнитного поля, приходящимся на
весенние месяцы 2006 г., в этот период наблюдались магнитные бури и
максимальная
солнечная
активность,
признаками
которой
являлось
увеличение количества солнечных пятен и повышение радиоизлучения,
измеряемого на волне 10,7 см (табл. 7).
В летний период отмечалось снижение геомагнитного заряда. Таким
образом, увеличения солнечной и геомагнитной активности приблизительно
88
совпадали. Пик активности солнца приходился на весенний период года, а
минимум активности – на летний.
Оценка
состояния
микроклимата
в
животноводческих
помещениях. Условия содержания, режим производственных процессов и
микроклимат в зоне нахождения животных представляют комплекс
постоянно действующих на организм факторов, которые могут оказывать
неблагоприятное воздействие, обуславливая иногда возникновение болезней
и снижение продуктивности.
Технология производственных процессов и гигиены содержания
свиней лежит в основе формирования здоровья животных и получения от них
максимальной
продуктивности.
Это
возможно,
когда
технология
физиологична и отвечает всем биологическим потребностям свиней. В этой
связи одним из условий удовлетворения физиологических потребностей
животных является микроклимат.
Микроклиматом
называют
окружающую
воздушную
среду
в
помещениях для животных. Он оказывает комплексное влияние на организм
животных
посредством
физических,
химических,
биологических
и
механических воздействий. Состояние микроклимата в разные периоды года
в животноводческих помещениях отличается, что сказывается на состоянии
организма животных. Особенно важно поддержание оптимального микроклимата в животноводческих помещениях в первые дни после рождения
поросят, так как в раннем возрасте они не обладают терморегуляторной
способностью и могут быть подвержены переохлаждению.
Таблица 8
Температурный режим в свинарниках в теплый период года, ºС
Показатель
Возраст
животных, сут
Температура,
ºС
Значения показателя
1
5
10
25
25
24
24-29 20-29 20-29
20
30
60
90
120
180
210
20
18
17
18
16
16
18
18-22 15-20 15-20 15-18 14-18 15-18 15-20
89
Из приведенных данных (табл. 8) видно, что в теплый период года
колебания температуры воздуха в помещениях находились в пределах
зоогигиенических требований, хотя температура воздуха во внешней среде в
июне была +15,1 до +20,0ºС, июле – от +23 до +24ºС.
Процессы теплопродукции и теплоотдачи организма животных, повидимому, находятся в зависимости и от температурного режима воздуха во
внешней среде. Так, обмен веществ и формирование защитных сил
организма свиней в теплый период года значительно выражен. Выравненность температур снаружи и внутри животноводческих помещений положительно влияла на организм свиней.
В обеспечении здоровой среды обитания животных не менее важным
является поддержание нормативной влажности. Оптимальный уровень
относительной влажности в помещениях для свиней, по зоогигиеническим
требованиям, – 60-70% (табл. 8).
Высокая влажность в среде обитания животных в сочетании с низкой
нестабильной температурой может служить предрасполагающим фактором
возникновения внутренних незаразных болезней животных. Кроме того,
высокая влажность при низкой температуре повышает теплоотдачу и
негативно влияет на приросты живой массы.
Таблица 9
Влажность воздуха в свинарниках в теплый период года, %
Показатель
Возраст
животных,
сутки
Значения показателя
1
5
10
20
30
60
90
120
180
210
76
74
74
70
74
75
72
74
68
71
Влажность,
62  74 60  80 70  74 70  78 70  82 70  72 70  78 70  80 70  78 72  76
%
В оценке технологии большое значение имеет контроль концентрации
диоксида углерода в помещении. Данный показатель входит в расчетную
формулу для определения мощности вентиляции. Накопление диоксида
углерода в помещениях свыше предельно допустимой верхней границы
90
указывает на его переполненность животными или несовершенность работы
вентиляции.
Избыток диоксида углерода в воздушной среде (свыше 0,2%) приводит
к ацидотическому состоянию животных, понижает усвояемость корма и
увеличивает его расход на единицу прироста живой массы. Замедление
обменных процессов в организме одновременно негативно влияет на
состояние резистентности. Результаты исследований по определению
концентрации диоксида углерода в воздушной среде на различных
технологических этапах выращивания свиней представлены в таблице 10.
Таблица 10
Концентрация диоксида углерода в воздухе свинарников в теплый период
года, %
Показатель
Возраст
животных, сутки
Концентрация
СО2, %
Значения показателя
1
5
10
20
30
0,08
0,08  0,10
0,08
0,08  0,10
0,12
0,10  0,14
0,12
0,10  0,14
0,16
0,14  0,16
Окончание табл. 10
Показатель
Возраст
животных, сутки
Концентрация
СО2, %
Значения показателя
60
90
120
180
210
0,14
0,12  0,16
0,20
0,16  0,24
0,18
0,16  0,20
0,20
0,16  0,24
0,20
0,16  0,24
О санитарном состоянии любой животноводческой фермы судят по
концентрации аммиака в воздушной среде. Уровень содержания аммиака
характеризует состояние канализационной системы по удалению производственных отходов. Аммиак является чрезвычайно вредным газом, особенно
для поросят раннего возраста. Он обуславливает снижение гемоглобина в
крови и развитие малокровия у поросят. Концентрация аммиака в воздушной
среде помещений, где содержатся поросята-сосуны, по зоогигиеническим
требованиям, не должна превышать 10 мг/м3.
Результаты исследований по содержанию аммиака в животноводческих
91
помещениях отражены в таблице 11.
Таблица 11
Концентрация аммиака в воздухе свинарников в теплый период года, мг/м3
Показатель
Значение показателя
Возраст
животных,
сутки
NН3,
мг/м3
1
5
10
10
8
8
6  10 6  10 8  12
20
30
60
90
120
180
210
12
12
12
12
10
10
8
6  10 8  12 8  12 10  14 10  14 10  14 10  14
Накопление аммиака в животноводческих помещениях также зависит
от скорости ветра во внешней среде. В теплый период года наиболее низкая
скорость ветра в атмосфере стала причиной повышения концентрации
аммиака в помещениях где содержатся свиньи, а это потребовало затрат
средств для обеспечения лучшей вентиляции.
В процессе оценки микроклимата важным показателем являлась
бактериальная загрязненность воздушной среды в животноводческих
помещениях. По ее уровню можно прогнозировать вероятность вспышки
инфекционных болезней, поскольку не исключается возможность наличия
инфекционных агентов в составе регистрируемых микробных колоний. Что
явилось предпосылкой для определения бактериальной загрязненности
воздушной среды в зоне нахождения животных в разные периоды года.
Результаты исследований представлены в таблице 12.
Анализируя
данные
таблицы
12,
необходимо
отметить,
что
бактериальная загрязненность воздушной среды имеет тенденцию к
повышению по мере увеличения срока пребывания животных в секции и по
мере повышения их живой массы.
Таблица 12
Бактериальная загрязненность воздушной среды свинарников
в теплый период года, тыс. М.Т./м3
Показатель
Возраст
животных, сут
Значения показателя
1
146,2
Бактериальные
132,4−
160,0
загрязнения,
5
10
20
30
150,2
100,4  200,0
160,4
150,0  200,8
160,4
140,2  180,6
160,4
140,4  180,4
92
тыс. М.Т./м3
Окончание табл. 12
Показатель
Возраст
животных, сут
Значения показателя
60
Бактериальные
140,6
загрязнения,
130,2  151,0
тыс. М.Т./м3
90
120
160,4
150,0  200,8
201,5
183,5  219,5
180
210
210,5
258,1
190,6  230,4 240,8  275,4
В свинарниках температура воздуха колебалась от 17,0 до 25,0ºС,
относительная влажность – от 68 до 76%, скорость движения воздуха – от
0,27 до 0,37 м/с, концентрация углекислого газа составляла от 0,08 до 0,20%,
а аммиака – от 8 до 12 мг/м3, то есть основные показатели влажностнотемпературного режима были близки к рекомендуемым ОНТП-2-77
(А.П. Онегов и др., 1984).
В теплый период года в животноводческих помещениях повышается
бактериальная загрязненность воздушной среды, что неблагоприятно
сказывается на здоровье животных, им требуются затраты энергии на
образование
дополнительных
защитных
белков
против
различных
патогенных микроорганизмов.
В заключении необходимо отметить, что теплый период года отличался
менее
благоприятными
изменяющимися
природно-климатическими
и
микроклиматическими параметрами в зоне содержания животных, что и
характеризовало количественные и качественные изменения морфологического, биохимического, иммунобиологического, состава крови и активности
ферментов в зависимости от возраста свиней.
4.1.2. Оценка физиологического состояния чистопородных свиней пород:
крупная белая, дюрок, йоркшир
Физиологические показатели: температура тела, частота пульса и
дыхания изменяются в зависимости от возраста свиней, а так же от
изменяющихся природно-климатических и микроклиматических показателей
93
в зоне обитания животных в теплый период года. Состояние микроклимата
в животноводческих помещениях поддерживается таким образом, чтобы
удовлетворять физиологическим потребностям животных, но изменяющиеся
природно-климатические
условия,
состояние
солнечной
активности,
электромагнитных сил, атмосферного давления, скорости и направления
движения ветра регулировать невозможно.
Показатель температуры тела свиней отражает характер теплопродукции и теплоотдачи организмом животных и, одновременно, уровень
обмена
веществ.
Изменяющиеся
параметры
в
окружающей
среде
непосредственно оказывают влияние на гомеостаз организма. Состояние
постоянства внутренней среды организма свиней зависит от породных
особенностей разводимых животных, а также от их возраста в постнатальном
периоде развития. С целью оценки общего физиологического состояния
животных были изучены изменения температуры тела, частоты пульса
и дыхания свиней крупной белой породы, породы дюрок и йоркшир.
Контрольные
и
опытные
группы
животных
были
однородны.
Кормились и содержались в одинаковых условиях, однако животным
опытной группы внутримышечно вводили иммунокорректор тимозин-α1 в
дозе 0,16 мг на одного поросенка с суточного до 30-суточного возраста 2 раза
в неделю на каждый четвертый день (всего 9 раз); с 31 и до 90 суток жизни
тимозин-α1 вводили по 0,8 мг на голову внутримышечно один раз в неделю,
(всего 9 раз); с 91 и по 210 сутки тимозин-α1 вводили один раз в неделю
в дозе 1,6 мг на голову.
Контрольные и опытные группы животных формировали физиологически зрелыми поросятами в день рождения, имеющими массу при рождении
больше 1 кг и длину тела 20 см и более, 8 хорошо развитых молочных зубов
(4 клыка‚ 4 латеральных резца) и 2 вентральных резца‚ находящихся в стадии
прорезывания. У зрелых поросят отмечалось хорошее развитие костяка и
мышц‚ как правило‚ голова крупная‚ шея короткая‚ грудная клетка широкая
и глубокая‚ ребра крупные‚ с относительно широкими межреберными
94
промежутками‚ спина и поясница длинные‚ круп широкий‚ конечности
сильные‚ с широкими суставами и относительно массивными мышцами.
Упитанность
хорошая‚
реже
удовлетворительная,
животные
характеризуются округлыми контурными линиями тела‚ хорошим скрытием
костей под эластичной и тугой кожей‚ хорошим прикрытием кожных ямок
жировой прослойкой.
Темперамент физиологически зрелых поросят живой, что характеризовалось рядом рефлексов общего и местного характера. В их поведении
четко прослеживались две главных мотивации – пищевая и терморегуляционная, которые и обусловливали особенности поведения животных. Были
хорошо развиты пищеварительный и терморегуляционный рефлексы: через
несколько минут после рождения вставали на ноги и начинали искать сосок
молочной железы, что позволяло им принять первые порции молозива через
20-30 мин. Через 1-2 ч после рождения поросята реагировали на температуру,
свет, движущийся предмет и проявляли ориентировочные рефлексы на звуки
(зов матери). При наличии в станке обогревательных приборов животные
быстро привыкали к ним, если обогревательные приборы отсутствовали, то
поросята большую часть времени находились рядом с матерью. Первые
5-7 суток жизни поросята на сон затрачивали 16-18 ч, т.е. в сутки время
лежания составляло 71,45±1,34%, стояния – 18,24±0,64%, приема корма и
воды – 8,25±1,12%, дефекации – 1,13±0,16%, агрессивного поведения –
0,30±0,05%, кратности сосания – 12-13 раз в сутки.
Видимые слизистые оболочки рта, носа, конъюнктивы глаз были
бледно-розовые. Кожа эластичная, упругая, бледно-розового цвета, покрыта
равномерно короткой, блестящей и эластичной щетиной.
С ростом и развитием новорожденных поросят в фазы молочного и
молочно-растительного питания отмечается дальнейшее совершенствование
сформировавшихся ранее и формирование новых функциональных систем,
что обусловливает изменения в общем физиологическом состоянии.
Поросята к 10 суткам жизни меньше спят, больше и активнее двигаются
95
по площадке станка. Животные полностью приспосабливаются к условиям
внеутробного существования, хорошо осваивают окружающую обстановку,
пробуют подкормку, а в 15-суточном возрасте принимают ее в качестве
пищевой добавки. С 20-25 сутки жизни у них постепенно затухают рефлексы
сосания и биологической осторожности, формируются и совершенствуются
социальный, оборонительный, исследовательский, сторожевой, игровой,
стадный рефлексы, а также подражания и доминирования. Высокой степени
развития достигает слуховая и обонятельная рецепция.
Температура тела, частота пульса и дыхания свиней отражают их
физиологическое состояние и реакцию организма на изменяющиеся факторы
природно-климатических и микроклиматических условий. Данные параметры изменяются с возрастом животных в период постнатального онтогенеза.
Установлено, что в первые сутки жизни животных температура тела
контрольных и опытных групп находилась примерно на одинаковом уровне –
от 38,6±0,03 до 38,7±0,06ºС. У поросят породы йоркшир данный показатель в
день рождения был ниже на 0,2ºС (относительно такового у животных КБП),
поэтому их необходимо содержать в более теплых микроклиматических
условиях, чтобы обеспечить поддержание гомеостаза организма. Частота
дыхания во всех группах находилась в пределах от 75,8±2,19 до 77,1±
±3,11 дых. движ./мин. Этот показатель был выше у породы йоркшир на
1,3±0,94 дых. движ./мин относительно такового крупной белой породы.
Частота пульса опытных суточных поросят изменялась от 186,7±11,7 до
189,4±13,2 уд./мин. У поросят породы йоркшир она была ниже на 0,8 уд./мин
относительно таковой животных крупной белой породы как в контроле, так
и опыте.
Физиологические показатели в день рождения поросят находились
в пределах нормы, потому что внутриутробное развитие происходило
в организме здоровых матерей в холодный период года.
Поросятам опытных групп через 10 ч после рождения вводили
внутримышечно иммунокорректор в дозе 0,16 мг на голову согласно
96
вышеописанной методике. Введение тимозина-α1, несомненно, оказывало
влияние на физиологические показатели животных.
Результаты возрастных изменений физиологических показателей
чистопородных свиней приведены в таблице 13.
На 5 сутки жизни животных было отмечено, что температура тела у
опытных поросят пород КБП и дюрок снизилась на 0,2ºС, породы йоркшир –
на 0,4ºС относительно таковой у контрольных. Также у животных опытных
групп наблюдалось снижение частоты дыхания на 1,1 дыхательных
движений. Величина частоты пульса в опыте оказалась ниже на 3 уд./мин у
поросят крупной белой породы; на 3,1 – у породы дюрок; на 1,3 – у породы
йоркшир соответственно относительно данного показателя в контроле. На
основании определения физиологических показателей у 5-суточных поросят
контрольных
и
опытных
групп
установлено,
что
иммунокорректор
тимозин-α1 оказывал положительное влияние на физиологическое состояние
животных в период молозивного питания. Молоко матери все еще богато
питательными веществами, но внутримышечное введение тимозина-α1, как
иммунокорректора и как белкового вещества, по-видимому, оказало
положительное влияние и на поддержание жизни на более высоком уровне
относительно животных контрольных групп, используемых в опыте пород
свиней. Внутримышечное введение тимозина-α1 в молочный и молочнорастительный периоды питания поросят повторяли на каждые 4 сутки их
жизни.
На 10 сутки у поросят опытных групп температура тела находилась на
уровне от 38,1±0,06 до 38,4±0,07ºС, то есть была ниже от 0,1 до 0,6ºС
относительно таковой в контроле. Частота дыхания в опытной группе КБП
уменьшилась
на
2,3
дыхательных
движения
относительно
таковой
у контрольных животных, такое же значение данный показатель имел во
всех остальных опытных группах. Частота дыхания на 10 сутки жизни
животных уменьшалась как в контроле, так и опыте по сравнению с таковой
у 5-суточных поросят. Отмечено значительное снижение частоты пульса
97
у 10-суточных животных по сравнению с 5-суточными (%): у контрольных
поросят КБП и породы дюрок – на 13,3, породы йоркшир – 12,5; в опытных
группах: крупной белой – 12,4, дюрок – 12,9, йоркшир – 12,5. Результаты
исследований указывают на то, что возрастные изменения частоты дыхания
происходят равномерно как в контрольных, так и в опытных группах
поросят. Не было отмечено резких отличий по определению частоты пульса
у животных контрольных и опытных групп. Так в среднем данный
показатель находился на уровне 161,8±11,3 удара в минуту. У 20-суточных
поросят во всех группах температура тела находилась в пределах
физиологической нормы, но отмечалось снижение частоты дыхания и пульса,
так в опытной группе крупной белой породы уменьшение частоты дыхания
составило 13,92% относительно 10-суточных поросят. На 30 сутки жизни
прекращается молочно-растительный период питания и животные переходят
на полноценную форму растительного питания. В данный возрастной период
у поросят контрольных групп отмечали повышенную температуру тела
(39,2±0,11ºС), у опытных – незначительное повышение данного показателя
(от 0,3 до 0,6ºС). Наблюдалась повышенная частота дыхания в контрольных
группах до 5,2%, а в опытных – оставалась на уровне таковой у 20-суточных
поросят. Частота пульса у 30-суточных поросят снижалась относительно
данного показателя 20-суточных и составляла в 1 контрольной группе
140,8±12,13 ударов в минуту, а в 4 опытной – 136,9±11,34 удара в минуту, т.е.
была ниже на 3,9 удара в минуту.
Внутримышечное введение тимозина-α1 поросятам в теплый период
года позволяет поддержать физиологическое состояние их организма на
более высоком уровне по сравнению с таковым поросят контрольной группы.
С 60- и до 90-суточного возраста животным скармливали комбикорм
К-52, но их рост и развитие происходили в период высоких температур
воздуха
внешней
среды
(30-35ºС),
низкого
атмосферного
давления
(745 мм. рт. ст.), относительной влажности воздуха – от 65,9 до 72,0%,
содержания в воздухе SО2
в пределах от 0,004 до 0,006 мг/м³,
98
СО – 1,5-1,8 мг/м³ , NО2 – 0,12-0,14 мг/м³, количеств пятен на Солнце (число
Вольфа) – 12,2-22,3, потока радиоизлучения на волне 10,7 см (частота
2800 МГц) – 69,0-72,0, Ар-индекс (пТ) – 7,0-6,1. Данный возраст свиней
совпадал со снижением геомагнитного заряда и солнечной активности.
Изменяющиеся факторы природно-климатических условий оказывают
влияние на состояние микроклимата в животноводческих помещениях и на
физиологическое состояние животных.
Микроклимат в более теплые периоды года (июль, июнь, август)
характеризовался повышением в воздухе концентрации аммиака до 12 мг/м³,
диоксида углерода – 0,20%, температуры воздуха – 18ºС, бактериальной
загрязненности воздушной среды – 148,4 тыс.М.Т./м³. Приведенные данные
изменяющихся факторов окружающей среды и микроклиматических условий
оказывали влияние на общие физиологические показатели как контрольных,
так и опытных групп свиней в период доращивания.
Таблица 13
Возрастные изменения физиологических показателей контрольных и
опытных животных в теплый период года
Группа животных
Показатели
1
1
КБП
2
Температура
38,7±0,06
тела, 0С
Частота
дыхания,
75,3±2,17
дых. движ./мин
Частота пульса,
187,5±12,6
уд./мин
контрольная
2
3
дюрок
йоркшир
3
4
1 сутки
4
КБП
5
опытная
5
дюрок
6
6
йоркшир
7
38,7±0,06
38,6±0,04
38,6±0,04
38,6±0,03
38,7±0,05
76,1±3,06
77,1±3,11
75,8±2,19
76,4±2,22
76,6±2,15
189,4±13,2
186,7±11,7
187,6±13,5
188,3±12,5 187,4±13,2
5 суток
Температура
38,5±0,04
тела, 0С
Частота
дыхания,
71,2±2,21
дых. движ./мин
Частота пульса,
187,3±10,8
уд./мин
38,6±0,05
38,6±0,07
38,3±0,05
38,4±0,04
38,2±0,06
71,3±2,17
68,9±2,16
70,1±2,12
70,3±2,34
70,2±2,14
188,2±11,2
186,7±11,6
184,3±11,2
185,1±10,6 185,4±12,1
38,2±0,05
38,1±0,06
10 суток
Температура
тела, 0С
38,7±0,04
38,7±0,07
38,5±0,05
99
38,4±0,07
Продолжение табл. 13
1
2
Частота
дыхания,
68,4±0,20
дых. движ./мин
Частота пульса,
162,4±11,5
уд/мин
3
4
5
6
7
66,8±0,25
66,4±0,24
64,7±0,27
63,6±0,21
64,8±0,24
163,2±11,4
163,4±11,3
161,6±11,4
161,1±11,2 162,4±11,5
38,2±0,01
38,1±0,07
38,4±0,06
55,7±2,31
54,2±2,25
54,1±2,27
20 суток
Температура
38,6±0,04
38,7±0,05
38,4±0,06
тела, 0С
Частота
дыхания,
56,4±3,01
56,7±2,44
57,1±2,52
дых. движ./мин
Частота пульса,
158,6±12,34 156,6±13,10 158,8±12,17
уд/мин
30 суток
Температура
39,1±0,16
39,0±0,11
39,2±0,11
тела, 0С
Частота
дыхания,
58,1±0,22
59,7±0,32
58,5±0,34
дых. движ./мин
Частота пульса,
140,8±12,13 142,9±10,14 149,6±13,11
уд./мин
60 суток
Температура
38,9±0,18
38,7±0,22
38,9±0,18
тела, 0С
Частота
дыхания,
34,8±0,36
36,9±0,21
33,8±0,35
дых. движ./мин
Частота пульса,
126,8±9,56 128,7±9,17 125,5±9,13
уд./мин
90 суток
Температура
38,7±0,17
38,6±0,14
38,8±0,18
тела, 0С
Частота
дыхания,
32,8±0,17
32,6±0,25
32,8±0,12
дых. движ./мин
Частота пульса,
120,6±10,35 119,7±11,19 120,6±10,54
уд/мин
120 суток
Температура
38,5±0,14
38,6±0,28
38,6±0,22
тела, 0С
Частота
дыхания,
32,5±0,26
32,5±0,15
33,2±0,24
дых. движ./мин
Частота пульса,
117,4±13,1 117,6±12,6 118,0±11,8
уд./мин
180 суток
Температура
38,7±0,10
38,6±0,14
38,6±0,18
тела, 0С
Частота
дыхания,
32,6±0,18
32,5±0,20
32,8±0,16
дых. движ./мин
100
141,9±11,13 147,4±10,16 145,6±12,17
38,5±0,11
38,7±0,16
38,7±0,17
54,5±0,21
56,9±0,19
56,5±0,21
136,9±11,34 140,7±13,01 134,4±11,48
38,5±0,20
38,5±0,21
38,7±0,17
34,6±0,34
33,4±0,24
34,6±0,31
125,4±10,18 124,3±11,17 124,8±10,01
38,3±0,11
38,5±0,11
38,4±0,21
32,5±0,21
32,4±0,21
32,7±0,18
118,6±11,15 118,2±9,96 118,4±12,04
38,4±0,13
38,5±0,20
38,5±0,24
33,8±0,22
32,8±0,24
32,8±0,26
117,2±12,4
116,2±10,2 117,4±12,4
38,5±0,12
38,4±0,11
38,4±0,12
32,6±0,14
32,2±0,18
32,4±0,18
Окончание табл. 13
1
2
Частота пульса,
117,4±12,3
уд./мин
3
4
5
6
7
117,2±11,8
117,5±11,4
115,6±10,2
116,4±10,6 115,5±11,5
210 суток
Температура
38,4±0,10
тела, 0С
Частота
дыхания,
32,4±0,12
дых. движ./мин
Частота пульса,
116,6±10,5
уд./мин
38,6±0,12
38,6±0,14
38,4±0,12
38,5±0,10
38,4±0,17
32,4±0,16
32,6±0,14
32,6±0,16
32,4±0,17
32,5±0,16
116,4±12,6
118,2±15,3
116,4±12,1
115,4±12,4 114,2±11,8
Животным опытных групп с 31 и до 90 сутки жизни вводили тимозинα1 по 0,8 мг на голову внутримышечно один раз в неделю (всего 9 раз).
Влияние препарата на температуру тела свиней отображено на рисунке 2.
Установлено, что на 60 сутки жизни контрольных поросят температура тела
снижалась и была у КБП 38,9±0,18ºС, дюрок – 38,7±0,22, йоркшир –
38,9±0,18ºС. Данный физиологический показатель в опытных группах
животных составил от 38,5±0,20 до 38,7±0,17ºС. Частота дыхания
значительно уменьшалась по сравнению с таковой 30-суточных поросят (%):
КБП – на 40,2; дюрок – 38,2; йоркшир – 42,2; у опытных животных – на 36,5;
41,42; 38,8 соответственно.
°С
39,2
39
38,8
38,6
38,4
38,2
38
1
5
10
20
30
60
90
120
180
210
Возраст, сутки
контроль
опыт
Рис. 2. Возрастные изменения температуры тела у свиней
крупной белой породы в теплый период года
Использование тимозина-α1 в виде инъекции свиньям способствовало
более равномерному снижению частоты дыхания (рис. 3) с возрастом, тем
101
самым обеспечивая поддержание постоянства внутренней среды организма
животных на более высоком уровне по сравнению с контрольными
Число дыханий в минуту
животными.
80
75
70
65
60
55
50
45
40
35
30
1
5
10
20
30
60
90
120
180
210
Возраст, сутки
контроль
опыт
Рис. 3. Возрастные изменения частоты дыхания в минуту
у свиней крупной белой породы
На 90 сутки жизни свиней стабилизировалась частота пульса и в
контрольных группах находилась в пределах от 119,6±11,19 до 120,6±
±10,54 ударов в минуту, в опытных – 118,2-118,6 ударов в минуту.
Показатели температуры тела, частоты дыхания и частоты пульса
находились примерно на одинаковом уровне в обеих группах.
Данный возраст животных совпадает со снижением температуры
воздуха в окружающей среде, повышением скорости его движения,
снижением солнечной активности и геомагнитных показателей. С изменением
природно-климатических
показателей
снижается
концентрация
вредных газов в окружающей среде и в животноводческих помещениях,
также снижается бактериальная загрязненность воздуха в помещениях, где
содержатся свиньи. Животные адаптируются к растительной пище, но
рацион взрослых свиней на откорме меняется в зависимости от возраста и
наличия
заготавливаемых
и покупаемых
кормов. Рацион животных
сбалансирован по основным показателям питательных веществ, витаминов,
минеральных веществ.
У 180- и 210-суточных свиней физиологические показатели больших
отличий не имели. Температура тела в контрольных группах составляла у
102
КБП от 38,4±0,10 до 38,7±0,10ºС, породы дюрок – 38,6±0,12, йоркшир –
38,6±0,14, в опытных – от 38,4±0,12 до 38,5±0,12; от 38,4±0,1 до 38,5±0,10;
от 38,4±0,17ºС соответственно, частота дыхания как в контроле, так и в
опыте находилась в пределах от 32,4±0,12 до 32,6±0,14 дыхательных
движений в минуту, частота пульса – от 115,4±12,4 до 117,5±11,4 ударов в
минуту (табл. 13).
Животные опытных и контрольных групп родились в начале апреля,
когда температура воздуха окружающей среды по среднегодовым данным
переходит на положительную (температура воздуха на 20 марта 2009 г.
составила +1,2ºС).
Период интенсивного роста и развития поросят, то есть откорм животных, совпадал с окончанием теплого периода года, когда среднедневная
температура воздуха опускалась ниже 0ºС, что совпадало со среднегодовыми
показателями и соответствовало концу октября.
Поросята, полученные от матерей, осемененных в первые дни зимы,
рождаются в теплый период года, когда показатели природно-климатических
условий и микроклимата в животноводческих помещениях более комфортны,
по сравнению с холодным периодом года.
Таким
образом,
внутримышечное
введение
иммунокорректора
тимозина-α1 позволяет формировать наиболее высокий уровень защитных
сил организма, что, несомненно, оказывает положительное влияние на общее
физиологическое состояние животных.
4.1.3. Морфологический профиль крови
Простой клинический осмотр животных не позволяет выявить всю
серьезность негативных последствий изменяющихся факторов природноклиматических и микроклиматических условий на организм. К наиболее
объективным физиологическим параметрам, характеризующим состояние
здоровья животных, можно отнести гематологические показатели. Анализ
крови,
благодаря
своей
достоверности,
103
является
самым
важным
пожизненным показателем, отражающим изменения состояний организма
под влиянием тех или иных факторов внешней среды.
Кровь выполняет в организме важные физиологические функции и
обмен веществ. Она доставляет к клеткам всех органов и тканей организма
животных питательные вещества и удаляет продукты их метаболизма.
Обеспечивает поддержание необходимой для жизнедеятельности организма
физико-химической среды, а также участвует в процессах терморегуляции. В
поддержании нормального физиологического уровня общих показателей
состава крови не последнее место принадлежит факторам природноклиматических и микроклиматических условий, в которых пребывает на
данный момент организм.
Результаты исследований по определению эритроцитов, гемоглобина и
лейкоцитов в крови свиней контрольных и опытных групп в постнатальном
онтогенезе приведены в таблице 14. Теплый период года по среднегодовым
данным многолетних наблюдений начинается при переходе через 0ºС с 4
апреля и заканчивается 31 октября, то есть длится 213 дней.
В день рождения в крови поросят контрольной группы крупной белой
породы число эритроцитов составляло 9,33±0,12·1012/л, породы дюрок –
8,24±0,26·1012/л, йоркшир – 8,14·1012/л, то есть в крови животных КБП было
выше на 12,76% относительно такового породы дюрок. Свиньи пород дюрок
и йоркшир в условиях Среднего Поволжья, по-видимому, не достаточно
акклиматизировались, на что указывает низкий уровень эритроцитов в крови
новорожденных. Поросятам опытных групп внутримышечно вводили
иммунокорректор тимозин-α1. На 5 сутки жизни животных было отмечено
существенное различие по количественному содержанию эритроцитов в
крови контрольных и опытных групп поросят. В контрольной группе свиней
крупной белой породы данный показатель составил 7,62±0,20·1012/л, а в
опытной – 8,30·1012/л (р<0,01) или выше на 8,9%. В крови поросят дюрок
число эритроцитов в опытной группе выше на 15,15%, породы йоркшир –
11,10%. Поросята завезенных пород свиней более интенсивно реагировали на
104
введение тимозина-α1, это обеспечило более полное усвоение питательных
веществ корма и насыщение кислородом всего организма.
Таблица 14
Количественные изменения форменных элементов в крови у свиней
в теплый период года
Возраст,
сут
1
Группа животных
дюрок
контроль
опыт
4
5
12
Эритроциты, 10 /л
9,42±0,19
8,24±0,26
8,31±0,25
8,30±0,12** 7,13±0,21 8,03±0,21**
14,51±0,31** 13,39±0,26 14,20±0,27*
13,48±0,24* 12,80±0,26 13,67±0,26*
9,24±0,31*
8,46±0,18
9,08±0,22*
6,96±0,12** 6,34±0,16
6,83±0,12*
7,06±0,21*
6,02±0,16 6,96±0,12***
7,13±0,12
6,68±0,21
7,09±0,18
7,36±0,19
7,10±0,21
7,27±0,13
7,41±0,26
7,06±0,18
7,33±0,22
Гемоглобин, г/л
82,02±1,03 82,23±0,98 82,09±0,75
57,64±1,02* 54,01±0,77 56,08±0,56*
49,28±1,04* 46,04±1,12 49,12±1,03*
99,85±1,31* 96,17±1,04 99,36±1,01*
98,68±0,69* 96,06±1,02 98,61±0,81*
108,91±2,02* 103,06±1,36 107,96±2,08*
110,12±1,51* 105,01±2,05 109,62±1,14*
108,0±1,08** 102,11±1,98 106,29±2,05
111,21±2,42 105,18±2,07 108,64±2,62
112,04±2,61 106,21±2,32 109,12±2,15
Лейкоциты, 109/л
5,13±0,12
5,13±0,17
5,14±0,12
5,88±0,18** 5,16±0,14 5,68±0,17*
5,61±0,14*
5,14±0,11 5,53±0,12*
6,05±0,18** 5,16±0,26 5,92±0,21*
6,56±0,20*
6,02±0,18 6,48±0,12*
14,11±0,21* 13,09±0,22 14,08±0,36*
13,69±0,21* 13,02±0,21 13,62±0,20*
13,51±0,26* 12,42±0,22 13,06±0,18*
крупная белая
контроль
опыт
2
3
1
5
10
20
30
60
90
120
180
210
9,33±0,12
7,62±0,20
13,41±0,27
12,84±0,21
8,34±0,26
6,47±0,15
6,12±0,34
6,97±0,27
7,10±0,22
7,11±0,25
1
5
10
20
30
60
90
120
180
210
82,16±1,17
55,08±0,82
46,07±1,21
96,18±1,19
96,16±1,02
104,31±1,16
106,31±1,21
103,21±1,15
109,19±2,52
110,21±2,09
1
5
10
20
30
60
90
120
5,12±0,14
5,33±0,09
5,21±0,08
5,24±0,21
6,06±0,11
13,31±0,22
13,06±0,24
12,68±0,31
йоркшир
контроль
опыт
6
7
8,14±0,12
7,05±0,24
13,22±0,23
12,56±0,21
8,31±0,26
6,13±0,21
5,88±0,21
6,54±0,25
7,07±0,18
6,89±0,25
8,24±0,13
7,93±0,23**
14,09±0,18**
13,16±0,22*
9,28±0,21**
6,73±0,17*
6,98±0,43*
7,02±0,11
7,19±0,21
7,15±0,18
82,79±0,85
53,62±0,64
46,01±1,14
96,08±0,73
95,48±1,08
102,12±2,06
102,24±2,11
100,42±2,07
103,15±1,07
105,06±2,01
82,18±1,21
55,68±0,78*
48,98±0,81*
99,17±1,19*
97,84±0,51*
106,73±0,86*
106,33±2,81
103,12±2,45
108,21±2,07*
109,13±2,19
5,11±0,12
5,05±0,21
5,09±0,10
5,08±0,24
5,82±0,15
13,06±0,32
12,72±0,20
12,06±0,19
5,12±0,11
5,63±0,11*
5,45±0,12*
5,88±0,18**
6,24±0,13*
13,96±0,28*
13,38±0,26*
13,01±0,31**
Окончание табл. 14
1
180
2
13,07±0,28
3
13,87±0,19*
4
5
6
13,04±0,18 13,89±0,21** 12,24±0,21
105
7
13,09±0,21
210
12,93±0,21
13,75±0,39
13,05±0,67
13,15±0,28
11,75±0,52
12,45±0,52
Число эритроцитов в крови увеличивается с возрастом животных,
наивысшее их количество отмечено у поросят 10-суточного возраста
(от 13,22±0,27 до 13,41±0,27·1012/л) – контрольная группа, а в опытной
(от 14,09±0,18 до 14,51±0,31·1012/л) (р<0,01). Так, число эритроцитов в крови
поросят породы дюрок было ниже на 2,2%, йоркшир – 2,9% соответственно
относительно такового свиней крупной белой породы. У 30-суточных
поросят данный показатель уменьшался во всех группах относительно
такового животных 10- и 20-суточного возраста и составил в крови животных
контрольных групп от 8,31±0,26 до 8,34±0,26·10 12/л, а в крови животных
опытных групп – от 9,24±0,31 до 9,28±0,24·1012/л (р<0,01). Результатом
внутримышечного введения тимозина-α1 является достоверное увеличение
числа эритроцитов в крови опытных животных и лучшие показатели по
количественному содержанию эритроцитов в крови до 210-суточного
возраста. Наибольшее число эритроцитов отмечено в крови свиней в период
молочно-растительной формы питания. У 90-суточных свиней (контроль)
крупной белой породы в крови данный показатель составлял 6,12±0,34·1012/л,
дюрок – 6,02±0,6·1012/л, йоркшир – 6,54±0,25·1012/л; у поросят опытных
групп число эритроцитов соответственно было выше на 15,35; 14,85; 13,7%
относительно такового у животных контрольных групп.
На графике (рис. 4) четко прослеживается численные изменения
эритроцитов в крови контрольных и опытных групп чистопородных свиней
породы дюрок. В крови опытных групп свиней породы дюрок число
эритроцитов значительно выше и это просматривается с 5- и до
210-суточного возраста животных.
В теплый период года, особенно в мае, в крови 60-суточных поросят
контрольных групп содержание эритроцитов было значительно ниже
относительно такового животных опытных групп.
106
Рис. 4. Динамика эритроцитов в крови опытных и контрольных
групп свиней породы дюрок
Данные, приведенные в таблице 14, отражают возрастные изменения в
крови количества эритроцитов, породные особенности, а также положительное влияние иммунокорректора тимозина-α1 на морфологический состав
крови свиней.
Гемоглобин – основной белок, служащий для переноса кислорода по
организму, также количественно изменяется в зависимости от возраста
животных, породной принадлежности, от введения иммунокорректора и
природно-климатических и микроклиматических условий в течение года.
В первый день жизни поросят в крови наблюдалась высокая
концентрация гемоглобина (от 82,03±1,03 до 82,23±0,98 г/л) во всех группах,
её снижение происходило на 5 сутки жизни животных. Так в контрольной
группе поросят крупной белой породы содержание гемоглобина составляло
55,06±0,82 г/л, а опытной – 57,64±1,02 г/л, то есть внутримышечное введение
иммунокорректора
тимозина-α1
позволило
повысить
концентрацию
гемоглобина в крови на 6,52%. Данный показатель у 10-суточных опытных
поросят породы дюрок составил 49,12±1,03 г/л (р<0,05), породы йоркшир –
48,98±0,81 г/л (р<0,05), что соответственно выше на 3,06 и 2,97 г/л такового
у контрольных животных. При переходе поросят на молочно-растительную
форму кормления, в связи с улучшением теплового режима воздуха в
окружающей среде и в животноводческих помещениях концентрация
гемоглобина в крови повышалась, на 30 сутки жизни поросят в контроле
107
составляла от 95,48±1,08 до 96,16±1,02 г/л, в опыте у породы крупной белой
в 2,62%,
дюрок – 2,65%, йоркшир – 2,17%, то есть концентрация
гемоглобина в среднем повышалась более чем в 2,5% относительно таковой в
контроле. В период доращивания, когда животные переходили на
растительную форму кормления, изучаемый гематологический параметр
увеличивался, стабилизировался и находился примерно на одинаковом
уровне (во всех группах) до 210-суточного возраста свиней (рис. 5).
г/л
115
105
95
85
75
65
55
45
1
5
10
20
30
60
90
120
180
210
Возраст, сутки
Контроль
Опыт
Рис. 5. Возрастные изменения концентрации гемоглобина
в крови у свиней породы йоркшир
Если при гематологических исследованиях у поросят регистрируется
низкое содержание гемоглобина в крови, то причину следует связывать с
дефицитом микроэлементов в организме и, прежде всего, с недостатком
железа. Алиментарная анемия может развиваться у поросят как при рационе
обедненном микроэлементами, так и при лишении моциона и пастбища
поросят и свиноматок в теплое время года. Немаловажное значение имеет
состояние микроклимата в животноводческих помещениях. При высокой
концентрации аммиака в помещении, где содержатся животные, анемия
наблюдается у откормочного молодняка свиней. Аммиак, поступающий
через легкие в кровь, соединяется с гемоглобином и превращает его в
щелочной гематин, при этом изменяется картина крови в сторону
характерную для малокровия.
108
Количественное содержание лейкоцитов в крови животных также
изменялось в зависимости от возраста, породы, природно-климатических и
микроклиматических условий.
Число лейкоцитов в первые сутки после рождения во всех группах
находилось на одинаковом уровне (от 5,11±0,12 до 5,14±0,12·10 9/л).
Несколько выше было у 5-суточных поросят контрольной группы крупной
белой породы (5,33±0,09·109/л). Самое низкое значение данного показателя
наблюдалось у суточных поросят породы йоркшир. Внутримышечное
введение иммунокорректора тимозина-α1 способствовало увеличению числа
лимфоцитов в опытных группах в крови 5-суточных поросят крупной белой
породы на 10,30%, породы дюрок – 10,07%, породы йоркшир – 11,48%.
Количество лейкоцитов более равномерно увеличивалось в крови поросят в
период молочно-растительной формы питания. На 30 сутки жизни крупной
белой породы в крови опытных групп число лейкоцитов составило
6,56±0,20·109/л (р<0,05), породы дюрок – 6,48±0,12·109/л (р<0,05), породы
йоркшир – 6,24±0,13·109/л (р<0,05), то есть наблюдалось достоверное увеличение данного показателя под влиянием иммунокорректора тимозина-α1.
У поросят на 60 и 90 сутки жизни отмечено наивысшее содержание
лейкоцитов во всех группах. У 60-суточных животных крупной белой
породы
количество
лейкоцитов
в
контрольной
группе
составило
13,31±0,22·109/л, а в опытной – 14,11±0,21·109/л (р<0,05). Такие же изменения
данного показателя наблюдались у породы дюрок и йоркшир. В период
откорма животных в теплое время года – это конец августа, сентябрь,
октябрь – регистрировалось высокое число лейкоцитов в крови 90-, 120-, 180и 210-суточных свиней. В таблице 14 приведены данные результатов
исследований крови свиней по количественному содержанию лейкоцитов.
Число которых в контрольных группах 180-суточных животных крупной
белой породы составило 13,07±0,28·109/л, дюрок – 13,04±0,18·109/л, йоркшир
–
12,96±0,21·109/л,
в
опытных
группах
данный
показатель
был
соответственно выше на 6,12; 6,51; 6,94% относительно такового в контроле.
109
Таким образом, животные породы йоркшир наиболее активно реагировали на
тимозин-α1.
Πεησλόςΰςϋ οπξβεδεννϋυ θρρλεδξβΰνθι οξκΰηΰλθ, χςξ βνσςπθμϋψεχνξε
ρξοπξβξζδΰλξρό οξβϋψενθεμ κξνφενςπΰφθθ γεμξγλξαθνΰ θ χθρλΰ τξπμεννϋυ
ύλεμενςξβ β κπξβθ.
ξρξαεννξρςει ζθβξςνϋυ βΰζνξε
ηνΰχενθε θμεες θησχενθε βξηπΰρςνϋυ ξρξαεννξρςει λεικξφθςΰπνξι τξπμσλϋ β
-κλθμΰςθχερκθυ θ μθκπξκλθ-
4.1.3.1. Характеристика изменений лейкограммы свиней в теплый
период года в зависимости от изменяющихся факторов внешней среды
Современные представления о механизмах индукции физиологической
реакции, помимо нервной и эндокринной составляющих, рассматривают
также и гематологический компонент в качестве узлового звена в
формировании физиологического статуса организма при экстремальных
воздействиях и как генерализованную реакцию гематологического стресссиндрома системы крови (Ю.Г. Камскова, 2004).
В связи с тем, что под воздействием факторов окружающей среды
изменяются морфологические показатели крови, были проведены исследования лейкоцитарного профиля крови у свиней в постнатальном онтогенезе
под
влиянием
изменяющихся
факторов
природно-климатических
и
микроклиматических условий в животноводческих помещениях и их
коррекцию тимозином-α1 в теплый период года.
Основная роль лейкоцитов – участие в защитных и восстановительных
процессах организма. Лейкоциты способны продуцировать различные
антитела, разрушать и удалять токсины белкового происхождения, фагоцитировать микроорганизмы.
110
В таблице 15 приведены результаты определения лейкограммы крови
свиней разных генотипов в теплый период года. Установлено, что в день
рождения свиней во всех группах количественное содержание зрелых и
незрелых клеток в лейкограмме находится на одинаковом уровне.
В лейкограмме лимфоциты составляли от 78,91±2,04 до 79,79±1,61%,
сегментоядерные
нейтрофилы
–
от
10,83±1,41
до
12,59±2,14%,
палочкоядерные – от 2,25±0,16 до 2,64±0,12%, юные нейтрофилы – от
0,75±0,09 до 0,90±0,02%.
Таблица 15
Возрастная динамика и коррекция лейкограммы крови свиней в теплый
период года
Показатели
1
КБП
Дюрок
Йоркшир
КБП
контрольная группа
2
3
Дюрок
Йоркшир
опытная группа
4
5
6
7
1 сутки
Базофилы
1,22±0,22
0,10±0,14
1,01±0,10
1,17±0,02
1,12±0,05
1,20±0,05
Эозинофилы
3,83±0,14
3,64±0,21
3,38±0,09
3,54±0,17
3,45±0,19
3,35±0,13
Ю. нейтрофилы 0,75±0,09
0,82±0,05
0,90±0,03
0,85±0,09
0,76±0,04
0,81±0,05
П. нейтрофилы
2,29±0,15
2,64±0,12
2,45±0,15
2,53±0,08
2,59±0,13
2,25±0,16
С. нейтрофилы
10,83±1,41 11,39±1,50
12,59±2,14
11,24±2,14
11,71±2,11
12,27±2,10
Лимфоциты
79,79±1,61 79,30±1,24
78,32±1,24
79,41±1,34
79,31±1,21
78,91±2,04
Моноциты
1,30±0,05
1,35±0,06
1,26±0,05
1,06±0,05
0,74±0,03
1,11±0,08
5 суток
Базофилы
1,81±0,02
1,32±0,03
1,66±0,05
1,74±0,04
1,46±0,02***
1,57±0,03
Эозинофилы
4,02±0,21
4,39±0,17
4,15±0,24
3,14±0,14**
4,12±0,14
4,06±0,17
Ю. нейтрофилы 1,38±0,08
1,58±0,18
1,69±0,41
1,72±0,23
1,81±0,36
1,61±0,19
П. нейтрофилы
3,35±0,22
3,25±0,16
3,44±0,42
3,36±0,26
3,24±0,13
3,27±0,24
С. нейтрофилы
12,98±0,76 13,05±0,57
12,68±1,02
11,14±0,58*
10,42±1,04* 10,45±0,52*
Лимфоциты
75,09±1,02 75,19±1,07
75,15±0,81
77,76±0,86*
77,85±0,81* 77,95±1,08*
Моноциты
1,37±0,04
1,23±0,04
1,14±0,04***
1,22±0,10
1,10±0,03
1,09±0,05*
10 суток
Продолжение табл. 15
1
2
3
4
5
6
7
Базофилы
2,43±0,34
2,53±0,31
2,82±0,21
2,21±0,31
2,35±0,28
2,19±0,23*
Эозинофилы
4,52±0,27
4,54±0,22
4,63±0,36
4,64±0,22
4,68±0,24
4,82±0,27
Ю. нейтрофилы 2,31±0,32
2,53±0,32
2,62±0,42
2,01±0,32
2,61±0,38
2,67±0,41
111
П. нейтрофилы
6,78±0,41
6,01±0,53
6,04±0,36
6,36±0,55
5,32±0,46
5,18±0,39
С. нейтрофилы
19,83±0,41 19,73±1,03
20,03±1,02
17,32±1,07*
17,24±0,69*
18,14±0,87
Лимфоциты
62,32±1,18 62,13±1,32
61,54±1,06
65,83±1,32*
65,24±0,87* 64,63±1,17*
Моноциты
1,81±0,31
2,32±0,17
1,63±0,26
2,56±0,12
2,37±0,23
2,53±0,27
20 суток
Базофилы
1,86±0,24
1,54±0,14
1,64±0,18
1,48±0,12
1,61±0,16
1,82±0,13
Эозинофилы
3,88±0,22
3,79±0,14
3,97±0,12
3,96±0,30
3,80±0.18
3,54±0,18
Ю. нейтрофилы 2,63±0,06
2,75±0,08
2,54±0,12
2,46±1,34
2,81±0,26
2,57±1,03
П. нейтрофилы
6,36±0,24
6,89±0,12
7,86±0,16
6,56±0,28
6,09±0,18*** 6,72±0,32**
С. нейтрофилы
26,76±1,04 26,61±1,08
26,02±0,56
24,03±0,56*
24,11±0,62* 24,14±0,74*
Лимфоциты
56,19±1,06 56,16±1,02
55,69±1,04
59,33±1,18*
59,32±1,04* 58,91±1,13*
Моноциты
2,32±0,16
2,28±0,18
2,18±0,12
2,26±0,21
2,30±0,17
2,26±0,24
30 суток
Базофилы
1,54±0,24
1,71±0,04
1,84±0,04
1,15±0,05
1,68±0,12
1,61±0,14
Эозинофилы
4,60±0,11
4,56±0,24
4,68±0,18
4,07±0,14*
4,86±0,10
4,51±0,24
Ю. нейтрофилы 1,63±0,03
1,77±0,05
1,91±0,04
1,10±0,05***
1,75±0,01
1,82±0,08
П. нейтрофилы
6,53±0,31
6,22±0,37
6,52±0,36
6,76±0,52
6,64±0,56
6,45±0,41
С. нейтрофилы
24,42±1,09 25,72±1,12
25,10±0,66
22,81±1,04
22,41±1,12* 22,46±0,75**
Лимфоциты
59,61±1,14 58,01±1,09
57,90±1,17
62,65±1,02*
61,12±1,11* 61,42±1,31*
Моноциты
1,65±0,18
1,98±0,06
1,46±0,12
1,57±0,46
1,82±0,32
1,91±0,16
60 суток
Базофилы
0,56±0,06
0,69±0,03
0,64±0,09
0,62±0,05
0,62±0,08
0,70±0,04
Эозинофилы
4,22±0,16
4,27±0,14
5,30±0,15
4,38±0,14
4,11±0,18
5,26±0,12
Ю. нейтрофилы 1,13±0,04
1,13±0,13
1,13±0,05
1,12±0,04
1,11±0,06
1,21±0,08
П. нейтрофилы
8,78±1,14
9,36±1,14
8,92±1,26
8,87±0,22
9,09±1,27
9,42±1,26
С. нейтрофилы
33,23±1,14 33,47±0,76
31,15±0,86
31,12±0,75
31,24±0,85* 28,19±1,04*
Лимфоциты
48,23±0,85 49,02±1,01
48,36±0,94
50,87±1,04*
50,57±0,82* 51,44±1,24*
Моноциты
3,65±0,16
4,50±0,18
3,02±0,08***
3,26±0,16
3,78±0,14**
4,06±0,18
90 суток
Базофилы
0,75±0,08
0,75±0,04
1,00±0,08
0,67±0,08
0,68±0,05
0,84±0,07
Эозинофилы
4,48±0,41
5,04±0,19
4,27±0,26
4,21±0,15
4,00±0,11
4,02±0,21
Ю. нейтрофилы 1,22±0,07
1,27±0,04
1,18±0,10
1,24±0,07
1,15±0,03*
1,17±0,04
П. нейтрофилы
9,02±1,21
9,02±1,41
8,68±0,18
8,90±0,19
8,71±1,35
8,05±0,54
Окончание табл. 15
1
2
3
4
5
6
7
32,1±1,00*
С. нейтрофилы
32,95±1,14 33,04±1,64
35,01±1,07
30,02±0,96*
32,76±1,23
Лимфоциты
48,24±1,18 47,01±1,04
45,97±1,52
52,09±1,48*
49,99±1,04* 49,55±1,28*
Моноциты
3,61±0,26
3,55±0,24
3,07±0,19
3,91±0,16
112
3,12±0,16***
3,61±0,16
120 суток
Базофилы
0,85±0,09
0,76±0,09
1,06±0,05
Эозинофилы
5,22±0,16
5,13±0,22
4,16±0,19
Ю. нейтрофилы 1,76±0,28
1,16±0,16
1,17±0,07
1,16±0,12*
1,12±0,18
1,15±0,14
П. нейтрофилы
8,77±1,42
8,95±1,24
8,52±1,06
8,23±1,14
8,36±1,16
8,69±1,16
С. нейтрофилы
31,12±0,76 31,17±1,02
32,82±0,66
32,09±1,04
32,79±1,15
31,27±1,01
Лимфоциты
48,26±1,09 48,90±1,19
48,66±0,78
51,23±1,05*
51,79±0,87* 51,97±1,17*
Моноциты
4,02±0,18
3,61±0,18
2,56±0,04***
1,96±0,03** 2,85±0,09***
3,93±0,28
0,77±0,04
0,70±0,03
0,96±0,06
3,96±0,12*** 3,28±0,22*** 3,11±0,12***
180 суток
Базофилы
0,85±0,04
0,87±0,06
0,91±0,07
0,76±0,05
Эозинофилы
5,26±1,28
5,25±0,32
5,23±0,19
4,11±0,26
Ю. нейтрофилы 1,09±0,07
1,14±0,07
1,05±0,06
0,86±0,11
1,09±0,04
1,04±0,03
П. нейтрофилы
8,29±0,47
8,34±1,35
8,46±1,88
8,09±1,34
8,20±0,96
7,94±1,41
С. нейтрофилы
34,91±0,75 34,92±1,08
34,77±0,79
32,25±1,02*
32,38±0,64* 32,07±1,07*
Лимфоциты
46,35±1,12 46,26±1,09
45,92±1,86 50,88±1,52**
50,39±1,41* 50,62±1,31*
Моноциты
3,25±0,12
3,66±0,14
3,05±0,05*** 3,39±0,02*
3,22±0,01
3,05±0,03
0,76±0,04
0,79±0,05
4,13±0,07*** 4,15±0,13***
210 суток
Базофилы
0,80±0,22
0,84±0,06
0,91±0,07
0,75±0,24
0,75±0,16
0,81±0,12
Эозинофилы
5,27±1,13
4,86±1,05
4,55±0,25
4,10±0,06
4,74±1,09
3,92±0,03*
Ю. нейтрофилы 0,98±0,34
1,03±0,10
1,25±0,04
0,92±0,07
1,12±0,14
0,97±0,12*
П. нейтрофилы
7,66±1,27
7,03±1,17
7,80±1,23
7,74±0,19
7,78±1,35
7,13±0,32
С. нейтрофилы
34,70±1,04
35,17±0,5
34,94±0,65
32,17±0,76* 31,36±1,04*** 32,52±1,04*
Лимфоциты
47,24±1,32 47,56±1,08
47,25±1,45
51,29±1,24*
Моноциты
3,35±0,21
3,30±0,14
3,03±0,05
3,71±0,16
51,25±1,04* 51,40±1,44*
3,00±0,18*
3,25±0,06
Животным опытных групп вводили внутримышечно тимозин-α1 как
иммунокорректор, что привело к изменению лейкограммы опытных
животных. Особенно чувствительными оказались свиньи породы дюрок.
Число базофилов у 5-суточных поросят крупной белой породы контрольной
группы составило 1,81±0,02, дюрок – 1,32±0,03%, йоркшир – 1,66±0,05%,
этот же показатель в опытной группе животных крупной белой породы выше
в 4,02%, дюрок – 10,60%, йоркшир – 5,73%. С возрастом поросят увеличивается число эозинофилов в лейкограмме во всех группах животных: в
контроле – от 4,02±0,21 до 4,39±0,17%, а в опыте – от 3,14±0,14 (р<0,01) до
4,12±0,14%.
113
Общее число нейтрофилов в крови поросят крупной белой породы
составило 17,71% в контроле, а после коррекции тимозином-α1 – 16,22%, то
есть снизилось на 8,14% относительно такового в опыте. Значительное
снижение данного показателя отмечено у свиней породы дюрок и йоркшир.
Молочный
период
питания
поросят
до
10-суточного
возраста
характеризуется увеличением числа клеток базофилов в лейкограмме как в
опытных, так и контрольных группах. Однако число базофилов в опытных
группах 10-суточных животных крупной белой породы было ниже на 9,50%,
дюрок – 7,65%, йоркшир – 28,76% относительно такового в контрольных
группах. Таким образом, в крови опытных поросят отмечено увеличение
эозинофилов, общего числа нейтрофилов и уменьшение лейкоцитов. В крови
контрольных животных крупной белой породы незрелые лейкоциты
составляли 64,13%, зернистые – 35,87%. Из зернистых лейкоцитов
преобладающей формой клеток были сегментоядерные нейтрофилы –
19,83±0,41%, клетки функционально приспособленные к фагоцитозу, однако
их число несколько ниже в крови опытных групп.
%
50
45
40
35
30
25
20
15
10
1
5
10
20
30
60
90
120
180
210
Возраст, сутки
Контроль
опыт
Рис. 6. Возрастные изменения нейтрофилов у свиней крупной белой породы
в контрольных и опытных группах в теплый период года
Число моноцитов в крови животных находилось приблизительно на
одинаковом уровне во всех группах животных (от 1,63±0,26 до 2,56±0,12%).
Наибольшее количество лимфоцитов регистрировалось у новорожденных животных, с возрастом их число в крови уменьшалось, стабилизируясь
114
на 60 сутки жизни животного и сохраняясь примерно на одном уровне до
210 суток. В крови опытных поросят крупной белой породы данный
показатель был выше, чем таковой в крови контрольных. Увеличение числа
лимфоцитов в крови опытных животных отражает реакцию организма на
внутримышеч-ное введение иммунокорректора тимозина-α1 (рис. 7).
На 60 сутки жизни животных породы йоркшир в контрольной группе в
крови эозинофилы составляли 5,30±0,15%, а опытной – 5,26±0,12%,
снижение числа эозинофилов, видимо, связано с повышением антитоксической функции элементов крови и фагоцитарной активности других клеточных
%
элементов, в частности нейтрофилов.
85
80
75
70
65
60
55
50
45
40
1
5
10
20
30
60
Контроль
Опыт
90
120
180
210
Возраст, сутки
Рис. 7. Возрастная динамика лимфоцитов в крови у свиней породы дюрок
контрольной и опытной групп в теплый период времени
К концу опыта в крови 210-суточных поросят число базофилов
находилось в пределах от 0,75±0,16 до 0,84±0,06%, эозинофилов –
от 3,92±0,03 (р<0,05) до 5,27±1,13%, сегментоядерных лейкоцитов –
от 31,36±1,04 (р<0,01) до 34,44±0,65%, лимфоцитов – от 47,24±1,32 до
51,40±1,44%, моноцитов – от 3,00±0,18 до 3,75±0,16%.
В таблице 15 приведена динамика лейкограммы крови контрольной и
опытной групп животных. Анализируя приведенный цифровой материал
необходимо отметить, что животные породы дюрок и йоркшир на внутримышечное введение тимозина-α1 реагировали более активно, об этом свидетельствовало повышенное содержание лимфоцитов в крови.
115
Результаты проведенных исследований свидетельствуют о том, что
изменяющиеся природно-климатические факторы и микроклиматические
условия в зоне обитания свиней выступают в качестве достаточно сильного
стресс-фактора и вызывают определенные сдвиги в лейкоцитарной формуле
крови. Парентеральное введение тимозина-α1 животным позволило повысить
число эозинофилов в крови, которые выполняют важную роль в разрушении
и обезвреживании токсинов белкового происхождения и чужеродных белков.
Под влиянием последних число эозинофилов в крови увеличивается.
В настоящее время считается, что эозинофилы имеют отношение к течению
аллергических реакций, главным образом, немедленного типа. Все это
позволяет считать, что продукция эозинофилов, так же как и их перераспределение (поступление в ткани), зависит от иммунологического состояния
организма (Г.С. Азаубаева, 2004).
Динамика базофилов, участвующих в аллергических реакциях немедленного и замедленного типов, позволяет считать, что продукция базофилов
определяет напряженность иммуногенеза в организме, достоверное снижение
их числа с возрастом животных наблюдается в опытных группах.
Значительную часть лейкоцитов у свиней составляют лимфоциты,
играющие важную роль в развитии защитных реакций и сохранении
целостности организма. Лимфоциты обладают удивительной способностью
различать в организме «свое» и «чужое», основанное на антигенных
различиях белков собственных тканей организма и чужеродных белков. При
этом следует отметить, что если вышеприведенные элементы белой крови
несут в основном неспецифические защитные функции, то лимфоциты
играют основную роль в специфических защитных реакциях.
Результаты исследований дают основание считать, что количественные
изменения лимфоцитов в крови животных под влиянием тимозина-α1
связаны с формированием неспецифических защитных сил организма на
воздействие неблагоприятных факторов внешней среды.
116
4.1.4. Особенности биохимического состава крови свиней
в теплый период года
Сельскохозяйственные животные даже одного вида имеют неодинаковую устойчивость к воздействию неблагоприятных факторов окружающей
среды. Устойчивость зависит от кормления, возраста, пола, упитанности,
наследственных конституциональных особенностей животного, состояния
здоровья и других факторов (В. Калашников, В. Левахин, 2004; Ф.Г. Каюмов,
М.П. Дубовская, А.В. Кузин, 2006).
Одной из наиболее характерных особенностей живых организмов
является способность поддерживать постоянство внутренней среды вопреки
внешним условиям. Даже при различных условиях и в самых разнообразных
обстоятельствах физическое состояние и химический состав жидкостей и
тканей организма остаются почти неизменными. Например, температура тела
долго не меняется, даже если организм находится в среде с очень низкой или
очень высокой температурой. Точно так же состав пищи не влияет
существенным образом на состав крови. Однако организм выдерживает
самые различные отклонения лишь в определенном интервале времени. Пока
колебания невелики, они компенсируются небольшими модификациями
некоторых жизненных функций организма, причем до серьезных расстройств
дело не доходит. Такое состояние еще не стресс, а гомеостаз.
В принципе, как при гомеостазе, так и при реакции тревоги речь идет о
включении одних и тех же систем регуляции – нервной и гуморальной.
Поэтому между гомеостазом и реакцией тревоги нет четкой границы.
Стадия тревоги, или стадия мобилизации – это первая кратковременно
протекающая фаза стресса, представляет собой общую мобилизацию
организма для противодействия отрицательным факторам среды.
К сожалению, до настоящего времени особенности изменений
важнейших жизненных функций, обеспечивающих выживание животных в
изменяющихся природно-климатических факторов и микроклиматических
условий, остаются недостаточно изучены. Так, важная составляющая часть
117
крови – белки, как один из условий показателя гомеостаза организма
животных, представлена в плазме крови в основном альбуминами и
глобулинами. Белки участвуют в формировании структуры клетки, в реакциях обмена веществ в качестве мощных катализаторов химических реакций
– ферментов. Белки принимают участие в сократительных процессах,
транспорте газа кровью, свертыванию крови, защиты организма от
чужеродного белка (иммуноглобулины), осуществляют взаимосвязь между
органами и тканями (гормоны). Белки постоянно обновляются, так как в
организме непрерывно происходит распад белка и синтез новых белковых
структур.
4.1.4.1. Изменения концентрации общего белка и его фракций
в крови свиней в теплый период года
В таблице 16 приведены результаты исследований количественного
определения общего белка и его фракций. Концентрация общего белка в
крови суточных поросят крупной белой породы в контрольной группе
составляла 59,62±1,63 г/л, опытной – 60,02±0,69 г/л, в то время как у свиней
пород дюрок была ниже на 2,49%, йоркшир – 2,68%, то есть от свиноматок,
недостаточно полно адаптированных к природно-климатическим условиям
Среднего Поволжья, рождается потомство, требующее стимулирования
процессов синтеза белка и иммунной системы в организме.
Таблица 16
Динамика общего белка и его фракций у свиней разных генотипов
в теплый период года
Показатели
КБП
Дюрок
Йоркшир
КБП
контрольная группа
1
2
3
Дюрок
Йоркшир
опытная группа
4
5
6
7
1 сутки
Общий белок‚ г/л
59,62±1,63
58,14±0,67
58,06±0,55
60,02±0,69
58,29±0,36
58,14±0,47
Альбумины‚ %
48,67±1,31
48,24±0,56
48,17±0,37
49,12±1,43
48,14±0,45
48,12±0,43
118
α-глобулины‚ %
22,12±0,38
22,66±0,44
23,11±0,29
21,32±0,35
22,90±0,52
23,34±0,41
β-глобулины‚ %
16,59±0,51
16,32±0,48
16,18±0,34
17,05±0,39
16,54±0,42
16,21±0,33
γ-глобулины‚ %
12,62±0,24
12,78±0,31
12,54±0,18
12,51±0,28
12,42±0,34
12,33±0,34
78,62±0,87*
77,14±0,68*
5 суток
Общий белок‚ г/л
75,52±0,51
76,24±0,73
75,12±0,66
79,84±0,86*
Альбумины‚ %
29,72±1,04
28,72±0,24
27,19±0,36
30,14±0,38
α-глобулины‚ %
32,07±0,24
34,04±0,31
35,31±0,24
β-глобулины‚ %
18,04±0,18
17,62±0,24
17,94±0,18
18,56±0,18*
γ-глобулины‚ %
20,17±0,18
20,02±0,31
19,56±0,62
21,36±0,34**
21,12±0,25** 20,87±0,21***
29,83±0,13*** 28,37±0,25**
29,94±0,18*** 30,81±0,23*** 32,52±0,34***
18,24±0,24
18,24±0,33
10 суток
Общий белок‚ г/л
74,36±0,54
74,13±0,39
73,36±0,52
75,95±0,36**
75,63±0,45**
74,91±0,55*
Альбумины‚ %
34,74±0,37
33,52±0,49
32,07±0,36
35,05±0,55
34,69±0,47
33,70±0,72*
α-глобулины‚ %
24,97±0,24
26,73±0,71
27,90±0,54
23,26±0,34***
β-глобулины‚ %
18,12±0,18
18,34±0,21
19,14±0,14
18,64±0,18*
γ-глобулины‚ %
22,17±0,36
21,41±0,17
20,89±0,21
23,05±0,24*
22,14±0,18** 22,02±0,25***
24,61±0,61* 25,11±0,36***
18,56±0,21
19,28±0,19
20 суток
Общий белок‚ г/л
64,42±0,49
63,82±0,58
63,68±0,62
66,55±0,85*
65,60±0,67*
65,43±0,64*
Альбумины‚ %
37,64±0,25
37,30±0,37
36,34±0,56
36,46±0,37**
36,32±0,46
35,22±0,51
α-глобулины‚ %
22,83±0,25
23,46±0,18
25,88±0,41
21,66±0,26** 22,42±0,21*** 24,66±0,24**
β-глобулины‚ %
21,19±0,24
21,16±0,21
20,42±0,24
22,32±0,28**
γ-глобулины‚ %
18,34±0,20
18,08±0,24
17,36±0,31
19,56±0,17*** 19,18±0,19*** 18,55±0,17***
22,08±0,16** 21,50±0,27**
30 суток
Общий белок‚ г/л
63,41±0,57
63,26±0,44
63,14±0,32
65,12±0,38*
64,99±0,35** 64,87±0,48**
Альбумины‚ %
34,67±0,35
34,54±0,79
35,71±0,44
33,29±0,27**
α-глобулины‚ %
31,62±0,16
31,15±0,19
31,43±0,81
33,47±0,59** 32,30±0,27***
32,18±0,62
β-глобулины‚ %
19,54±0,53
20,44±0,20
19,58±0,23
17,93±0,19**
19,85±0,21*
19,51±0,56
γ-глобулины‚ %
14,17±0,20
13,87±0,18
13,28±0,23
15,31±0,25***
14,37±0,13* 14,76±0,17***
33,48±0,54
33,55±0,39***
60 суток
Общий белок‚ г/л
55,32±0,29
54,03±0,46
53,38±0,46
56,95±0,74*
55,61±0,55*
54,91±0,57*
Альбумины‚ %
48,65±0,36
47,61±0,52
46,54±0,61
47,32±0,32**
46,66±0,36
45,57±0,65
α-глобулины‚ %
21,10±0,36
23,15±0,41
24,21±0,33
20,15±0,26*
21,28±0,47*
23,04±0,25**
β-глобулины‚ %
12,91±0,28
12,12±0,21
12,10±0,21
14,34±0,21*** 14,04±0,24*** 13,54±0,27**
Окончание табл. 16
1
2
3
4
γ-глобулины‚ %
17,34±0,21
17,12±0,18
17,15±0,16
5
6
7
18,19±0,20** 18,02±0,18*** 17,84±0,17**
90 суток
Общий белок‚ г/л
54,54±0,69
54,42±0,49
54,16±0,37
56,47±0,55*
55,69±0,37
55,34±0,47*
Альбумины‚ %
33,27±0,30
33,32±0,24
33,25±0,22
33,52±0,43
34,12±0,44
34,75±0,46**
α-глобулины‚ %
26,61±0,31
28,15±0,35
27,59±0,41
24,87±0,34*** 25,79±0,27*** 25,34±0,59**
β-глобулины‚ %
19,86±0,25
20,51±0,14
19,99±0,13
20,78±0,16**
20,95±0,13*
20,35±0,47
γ-глобулины‚ %
20,26±0,19
18,02±0,18
19,17±0,17
20,83±0,12**
19,14±0,31**
19,56±0,11*
119
120 суток
Общий белок‚ г/л
64,02±0,64
62,02±0,45
61,32±0,75
65,68±0,55*
63,64±0,34**
63,28±0,63
Альбумины‚ %
44,01±0,49
44,13±0,81
43,64±0,86
44,94±0,61
43,82±0,37
43,27±0,57
α-глобулины‚ %
20,08±0,19
21,78±0,21
23,14±0,22
18,86±0,20*** 20,89±0,24** 21,79±0,21***
β-глобулины‚ %
16,56±0,12
15,45±0,18
15,15±0,20
15,14±0,15*** 16,12±0,15** 16,10±0,19***
γ-глобулины‚ %
19,35±0,24
18,64±0,17
18,04±0,15
21,06±0,18***
19,17±0,21*
18,84±0,20**
180 суток
Общий белок‚ г/л
72,41±1,03
72,05±0,70
71,22±0,82
74,82±0,68*
73,98±0,66*
73,65±0,76*
Альбумины‚ %
35,14±0,74
34,16±0,68
34,02±0,43
36,58±0,53
35,29±0,45
35,07±0,24*
α-глобулины‚ %
29,35±0,31
30,70±0,24
30,79±0,24
25,97±0,22*** 27,56±0,24*** 28,06±0,18***
β-глобулины‚ %
15,33±0,22
15,02±0,24
15,14±0,21
16,21±0,18*** 16,06±0,19***
γ-глобулины‚ %
20,18±0,24
20,12±0,18
20,05±0,24
21,24±0,21*** 21,09±0,20*** 20,98±0,18**
15,89±0,21*
210 суток
Общий белок‚ г/л
75,01±0,62
74,03±0,74
73,12±0,51
76,98±0,74*
75,98±0,64*
74,95±0,75
Альбумины‚ %
41,66±0,54
40,24±0,48
40,08±0,56
42,54±0,53
41,75±0,34**
41,22±0,32
α-глобулины‚ %
16,64±0,17
18,60±0,21
19,55±0,18
17,22±0,21*
18,32±0,20
19,11±0,18
β -глобулины‚ %
23,34±0,24
23,04±0,22
22,79±0,24
21,17±0,26*** 21,07±0,24*** 21,06±0,28***
γ-глобулины‚ %
18,36±0,18
18,12±0,20
17,58±0,18
19,07±0,21**
18,86±0,24* 18,61±0,24***
Концентрация альбумина была выше в крови суточных поросят
крупной белой породы (от 48,67±1,31 до 49,12±1,43%), а в крови поросят
породы дюрок и йоркшир (от 48,12±0,43 до 48,24±0,5%). Из глобулиновой
фракции содержание α-глобулина в крови наивысшее – от 22,12±0,44 до
23,34±0,41%, β-глобулина – от 16,18±0,34 до 17,05±0,39%, γ-глобулина – от
12,33±0,34 до 12,78±0,31%. Альбумино-глобулиновое отношение составляло
в крови суточных поросят крупной белой породы 1,05, дюрок и йоркшир –
1,07, то есть данный показатель находился в пределах физиологической
нормы.
В конце молозивной формы питания поросят, то есть в крови
5-суточных контрольных животных концентрация общего белка (%)
относительно аналогичных показателей суточных животных была повышена:
крупной белой породе – на 26,66, дюрок – 31,13, йоркшир – 29,38; в опытных
группах крупной белой породы – 33,02, дюрок – 34,87, йоркшир – 32,67.
120
Величина общего белка у 5-суточных поросят увеличилась в опытных
группах крупной белой породы на 5,72%, дюрок – 3,12%, йоркшир – 2,68%,
относительно данного показателя в контрольных группах животных.
Синтез белков в организме поросят опытных групп после введения
тимазина-α1 происходил более интенсивно у крупной белой породы, менее
интенсивно – у породы дюрок и слабо – у породы йоркшир.
Возрастные особенности выражались снижением концентрации альбуминов в контрольной группе 5-суточных поросят крупной белой породы на
38,98%, опытной – 49,79%, относительно таковой суточных животных и
увеличением концентрации глобулиновой фракции белков: в частности,
γ-глобулин повышался в контрольной группе на 37,48%, в опытной – 41,44%,
такие же изменения отмечены и в крови поросят породы дюрок и йоркшир.
Молочный
период
питания
поросят
сопровождался
небольшим
снижением концентрации общего белка в крови как контрольных, так и
опытных групп; в крови 20-суточных поросят породы дюрок в контроле
данный показатель снизился на 16,15%, в опыте – 16,29%, относительно
такового у 10-суточных животных.
Молочно-растительное питание поросят характеризовалось снижением
концентрации общего белка в крови во всех исследуемых группах, повышением концентрации альбуминов и незначительным снижением концентрации
γ-глобулинов.
Конец молочно-растительной формы питания характеризовался тем,
что в крови 30-суточных поросят контрольной группы концентрация общего
белка была 63,41±0,57 г/л, альбуминов – 34,67±0,35%, α-глобулинов –
31,62±0,16, β-глобулинов – 19,34±0,53, γ-глобулинов – 14,17±0,20%,
по данным показателям опыт превосходил контроль соответственно:
на 65,12±0,38 г/л (р<0,05); 33,29±0,27 (р<0,01); 33,47±0,59 (р<0,01);
17,93±0,19 (р<0,01); 15,31±0,25% (р<0,001).
С переходом на растительную форму питания, под влиянием изменяющихся природно-климатических и микроклиматических условий, в теплый
121
период года происходило уменьшение концентрации общего белка в крови
животных и увеличение концентрации альбуминов.
На рисунке 8 приведены данные о процентном содержании фракций
белков в период доращивания свиней, то есть в период скармливания
животным полноценного рациона.
17,34
альбумины‚ %
12,91
48,65
α-глобулины‚ %
β - глобулины‚ %
γ -глобулины‚ %
21,1
Рис. 8. Процентное содержание фракций белков в крови контрольной группы
у поросят крупной белой породы в возрасте 60 суток
Период откорма свиней, с 90- по 120-суточный возраст, совпадает с
наиболее
высокой
температурой
окружающего
воздуха,
снижением
концентрации кислорода и повышением в воздухе концентрации вредных
газов, снижением активности солнечной радиации. Организм животных
реагирует на изменения природно-климатических факторов соответствующими изменениями концентрации общего белка и его фракций в плазме
крови, а это оказывает влияние на формирование защитных сил организма.
Применение иммунокорректоров, в частности тимозина-α1, дает возможность коррекции защитных сил организма.
Период откорма животных характеризовался уменьшением концентрации общего белка в крови 90-суточных, относительно 60-суточных поросят.
Затем наблюдалось повышение данного показателя в крови с 120- до
210-суточного возраста животных. Наивысшая величина γ-глобулина, как
основного защитного белка, отмечалась в крови 90-суточных свиней, затем
плавно уменьшалась до 120 суток жизни животных. Но более высокий
122
уровень γ-глобулина сохранялся в группах свиней, которым вводили
внутримышечно тимозин-α1 на протяжении всего опыта (рис. 9, 10).
Рис. 9. Динамика общего белка в крови свиней в теплый период года
Рис. 10. Динамика γ-глобулина в крови свиней в теплый период года
В таблице 16 приведены результаты определения концентрации общего
белка и его фракций у свиней разных генотипов.
Наивысшая концентрация общего белка в крови была отмечена в 5-,
10-, 180- и 210-суточном возрасте; 5 и 10 сутки жизни животных совпадают
с молозивным и молочным периодом питания, когда поросята получали
с
молоком
матери
полноценный
белок
по
питательности
и
иммуноглобулинам; 180-, 210-суточные свиньи содержались в более
благоприятных
природно-климатических
123
условиях
для
организма,
в
организме животных во многом изменились процессы переваривания и
усвоения питательных веществ корма, синтез защитных белков.
Двестидесятые сутки жизни характеризовались содержанием в крови
свиней контрольных групп общего белка от 73,12±0,51 до 75,01±0,62 г/л, при
этом его концентрация у животных породы дюрок была ниже на 1,32%,
йоркшир – 2,52% относительно таковой животных крупной белой породы.
В опытной группе данный показатель был выше у крупной белой породы на
2,62%, дюрок – 2,63%, йоркшир – 2,50%, то есть внутримышечное введение
тимозина-α1 способствовало повышению и выравниванию концентрации
общего белка. Соответственно, выравнивалась концентрация альбуминов и
глобулинов в крови животных, при этом белковый коэффициент в опытных
группах животных составил у крупной белой породы 1,35, дюрок – 1,39,
йоркшир – 1,42.
На основании полученных результатов исследований по определению
концентрации общего белка и его фракций в организме необходимо
отметить, что внутримышечное введение свиньям тимозина-α1 увеличивает в
организме
концентрацию
общего
белка
и
нормализует
белковый
коэффициент, что очень важно для повышения физиологического состояния
организма и адаптации животных к изменяющимся факторам природноклиматических и микроклиматических показателей.
4.1.4.2. Динамика концентрации минеральных веществ в крови свиней
в постнатальном онтогенезе в теплый период года
Роль минеральных веществ заключается в поддержании осмотического
давления плазмы крови, кислотно-щелочного равновесия, проницаемости
различных мембран, регуляции активности ферментов, сохранении структур
биомолекул, включая белки и нуклеиновые кислоты, в поддержании
моторной и секреторной функции пищеварительного тракта. Важным
является как абсолютное количество, так и соотношение в тканях и тканевых
жидкостях между отдельными химическими элементами.
124
В
количественном
главенствующим
отношении
минералом
общий
организма
кальций
животного
является
(С.Ю.
Зайцев,
Ю.В. Конопатов, 2004). Кальций – внеклеточный элемент, играет важную
«регуляторную» роль в поддержании внутриклеточного осмотического
давления внутри клеток. Он необходим для процессов свертывания крови,
сокращения сердечной мышцы и мышечной ткани, для передачи нервных
импульсов, для секреции гормонов и активации ферментов.
В плазме крови животных концентрация общего кальция в норме
в среднем составляет 2,25-2,80 ммоль/л. Снижение данного показателя
в плазме крови приводит к нарушению физиологоиммуного статуса
организма животных.
Фосфор присутствует во всех органах и тканях, как в виде
минеральных солей, так и в виде различных органических соединений.
Важнейшей
ролью
фосфора
является
его
участие
в
синтезе
макроэргитических соединений (АТФ, УТФ, ГТФ, ЦТФ, керотин-фосфат)
в реакциях окислительного фосфорилирования.
Обмен фосфора сопряжен с обменом кальция. Соотношение кальция к
фосфору в плазме крови млекопитающих в норме 2:1. В клинической
биохимии используют показатель неорганического фосфора в плазме крови.
В результате исследований установлены возрастные особенности
минерального состава плазмы крови и резервной щелочности в зависимости
от изменяющихся гелиогеофизических и природно-климатических условий в
зоне содержания животных. Установлено влияние иммунокорректора
тимозина-α1 на концентрацию минеральных веществ в крови свиней. В день
рождения поросят концентрация общего кальция в плазме крови крупной
белой породы составляла 3,14±0,05, дюрок – 3,12±0,03, йоркшир – 2,95±
±0,04 ммоль/л. В таких же пределах данный показатель находился и в крови
поросят опытной группы. У 5-суточных животных концентрация кальция
снижалась во всех контрольных группах относительно суточных. На 5 сутки
жизни данный показатель у опытных поросят крупной белой породы был
125
выше на 5,13%, у дюрок – 2,3%, йоркшир – 4,64% относительно такового
контрольных поросят. В опытных группах 5-суточных животных содержание
общего кальция в крови было выше относительно данного показателя в
контроле и составляло от 2,96±0,07 до 3,22±0,06 ммоль/л (р<0,05), то есть
внутримышечное введение тимозина-α1 привело в среднем к увеличению
уровня кальция на 4,03% (табл. 17).
Таблица 17
Динамика количественного содержания минеральных веществ в плазме
крови у свиней различных генотипов в теплый период года
Породы
поросят
Общий
кальций,
ммоль/л
Резервная
Неорганический
щелочность,
фосфор, ммоль/л
об% СО2
Общий
кальций,
ммоль/л
контрольная группа
1
2
3
Неорганический
фосфор, ммоль/л
Резервная
щелочность,
об% СО2
опытная группа
4
5
6
7
1 сутки
КБП
3,14±0,05
1,85±0,02
54,4±0,15
3,16±0,07
1,89±0,05
55,02±0,31
Дюрок
3,12±0,03
1,84±0,04
54,59±0,22
3,13±0,05
1,86±0,08
54,53±0,41
Йоркшир
2,95±0,04
1,80±0,06
53,13±0,31
3,02±0,06
1,83±0,10
53,56±0,36
5 суток
КБП
3,05±0,04
1,73±0,06
53,26±0,27
3,22±0,06*
1,90±0,06*
54,72±0,46*
Дюрок
2,90±0,05
1,65±0,08
52,67±0,12
2,98±0,06*
1,85±0,13*
53,91±0,52*
Йоркшир
2,83±0,08
1,62±0,04
51,72±0,34
2,96±0,07
1,84±0,10*
52,45±0,11*
10 суток
КБП
2,77±0,08
1,63±0,05
53,12±0,19
2,97±0,07*
1,79±0,05*
53,97±0,31*
Дюрок
2,26±0,05
1,63±0,04
52,01±0,17
2,84±0,13*
1,77±0,05*
52,84±0,37*
Йоркшир
2,48±0,06
1,49±0,09
50,48±0,23
2,74±0,04*
1,78±0,06**
51,42±0,36*
20 суток
КБП
2,53±0,05
1,57±0,08
48,23±0,34
2,68±0,04**
1,77±0,05*
49,58±0,09***
Дюрок
2,34±0,09
1,51±0,04
48,74±0,12
2,64±0,11*
1,67±0,06*
48,74±0,11**
Йоркшир
2,25±0,03
1,38±0,08
47,09±0,28
2,49±0,06***
1,59±0,11
47,09±0,56*
30 суток
КБП
2,71±0,03
1,85±0,04
44,75±0,18
2,82±0,03*
2,01±0,02**
46,86±0,82**
Дюрок
2,69±0,04
1,89±0,06
44,61±0,54
2,80±0,04*
2,14±0,05**
46,94±0,94*
Окончание табл. 17
1
Йоркшир
2
3
4
5
6
7
2,70±0,05
1,69±0,07
44,69±1,01
2,81±0,03**
2,08±0,06***
46,78±1,01*
60 суток
126
КБП
3,33±0,06
2,07±0,10
47,14±1,09
3,63±0,04***
2,32±0,05*
49,69±0,65*
Дюрок
3,31±0,04
1,96±0,11
47,03±1,05
3,57±0,05***
2,25±0,06*
49,46±0,52*
Йоркшир
3,26±0,06
1,88±0,05
46,76±0,68
3,52±0,05***
2,12±0,03*
49,04±0,94*
90 суток
КБП
3,38±0,07
2,06±0,11
48,85±0,90
3,60±0,06*
2,41±0,11*
50,98±0,32*
Дюрок
3,26±0,08
1,98±0,08
48,13±1,02
3,59±0,11*
2,31±0,14*
50,52±0,65*
Йоркшир
3,15±0,10
1,95±0,12
48,02±0,94
3,57±0,18*
2,29±0,11*
50,46±1,02
120 суток
КБП
3,55±0,06
2,47±0,11
51,06±0,87
3,86±0,13*
2,93±0,15**
52,98±0,34*
Дюрок
3,50±0,08
2,38±0,07
50,26±0,56
3,84±0,09**
2,83±0,22*
52,75±1,07*
Йоркшир
3,43±0,06
2,31±0,17
50,16±0,67
3,56±0,14*
2,72±0,11*
51,92±0,57*
180 суток
КБП
3,03±0,17
2,57±0,28
51,31±1,03
3,39±0,09*
3,00±0,18
53,85±0,63*
Дюрок
2,94±0,06
2,31±0,10
50,75±0,67
3,31±0,15*
2,53±0,04*
53,49±1,02*
Йоркшир
2,91±0,09
2,34±0,08
50,11±0,95
3,28±0,12**
2,66±0,06**
52,91±1,01*
210 суток
КБП
3,00±0,06
1,79±0,27
52,08±0,61
3,22±0,09*
2,12±0,17*
54,52±1,01*
Дюрок
2,82±0,09
1,70±0,12
52,02±0,58
3,09±0,10*
2,02±0,04**
53,98±0,74*
Йоркшир
2,81±0,03
1,65±0,05
52,05±1,02
3,06±0,13*
1,93±0,24**
53,58±1,16
С переходом животных на молочную форму питания концентрация
общего кальция в крови контрольных и опытных животных снижается и
продолжает снижаться до конца молочно-растительной формы питания.
Данный период также совпадает со временем повышения температуры
воздуха во внешней среде, повышением влажности и изменением газового
состава воздуха в сторону ухудшения показателей. В таких природноклиматических условиях содержание животных в теплый период года
характеризовалось следующими параметрами: содержание в крови общего
кальция находилось в пределах от 2,69±0,04 до 2,71±0,03 ммоль/л
в контрольных группах, от 2,80±0,04 до 2,82±0,03 ммоль/л (р<0,05) –
в опытных.
Переход животных на полноценный растительный рацион сопровождался повышением концентрации общего кальция. Так, у 60-суточных
контрольных поросят крупной белой породы данный показатель составил
3,33±0,06 ммоль/л, в опытной группе – 3,63±0,04 ммоль/л (р<0,001). У 120127
суточных свиней в плазме крови отмечено самое высокое содержание
общего кальция, имеющее значение в контроле у крупной белой породы –
3,55±0,06 ммоль/л, в опыте – 3,86±0,13 ммоль/л (р<0,05) (рис. 11).
На 180, 210 сутки жизни свиней происходит снижение данного
показателя в крови свиней как контрольных, так и опытных групп. Так, у
210-суточных животных содержание общего кальция в крови крупной белой
породы составило 3,00±0,06, дюрок – 2,82±0,09, йоркшир – 2,81±
±0,03 ммоль/л, в опытных группах данный показатель был выше
соответственно на 7,06; 9,93; 9,16% (р<0,05) относительно такового в
контрольных.
Необходимо отметить, что концентрация кальция, как основного
электролита в организме животного, изменяется в зависимости от природноклиматических и микроклиматических условий (табл. 17), также на изменение уровня данного показателя оказывает влияние тимозин-α1.
ммоль/л
4
3,5
3
2,5
2
1
5
10
20
30
60
90
120
180
210
Возраст, сутки
Контроль
Опыт
Рис. 11. Динамика концентрации общего кальция в крови свиней породы дюрок
Концентрация фосфора, как основного минерального элемента в
плазме крови контрольных и опытных животных изменяется с возрастом,
зависит
от
кормления
и
перемены
природно-климатических
и
микроклиматических условий в зоне обитания.
Содержание неорганического фосфора в крови суточных поросят как в
контроле, так и в опыте находилось в пределах от 1,80±0,06 до 1,89±
±0,05 ммоль/л. Концентрация неорганического фосфора в крови поросят
128
плавно снижалась у 5-, 10- и 20-суточных поросят. На 20 сутки жизни
данный показатель в контрольной группе крупной белой породы составлял
1,57±0,08, дюрок – 1,51±0,04
йоркшир – 1,38±0,08 ммоль/л. В опытных
группах поросят крупной белой породы содержание фосфора было выше
относительно такового в контроле и составляло 1,77±0,05 (р<0,05), дюрок –
1,67±0,06 (р<0,05), йоркшир – 1,59±0,11 ммоль/л (рис. 12).
Концентрация неорганического фосфора повышалась у 30-суточных
поросят и в контрольных группах находилась в пределах от 2,69±0,05 до
ммоль/л
2,71±0,03 ммоль/л, в опытных – от 2,08±0,06 до 2,14±0,05 ммоль/л (р<0,01).
3
2,5
2
1,5
1
1
5
10
20
30
60
90
120
180
210
Возраст, сутки
Контроль
Опыт
Рис. 12. Динамика концентрации неорганического фосфора
в плазме крови у свиней породы дюрок
У 60-суточных поросят крупной белой породы в крови повышалось
содержание неорганического фосфора: в контрольной группе – 2,07±
±0,10 ммоль/л, в опытной – 2,32±0,05 ммоль/л (р<0,05), то есть у животных,
обработанных тимозином-α1, данный показатель был выше на 11,83%.
Концентрация неорганического фосфора сохранялась на таком же уровне в
крови свиней до 90-суточного возраста.
У животных на откорме содержание неорганического фосфора
повышалось и на 180 сутки жизни в контрольных группах составляло от
2,31±0,10 до 2,57±0,28 ммоль/л, в опытных – от 2,53±0,04 (р<0,05) до 3,00±
±0,08 ммоль/л, то есть было выше на 12,83% в крови опытных групп
относительно такового в контрольных.
129
По результатам определения концентрации неорганического фосфора в
организме свиней разных генотипов необходимо отметить, что на наиболее
высоком уровне находилось содержание неорганического фосфора в крови
местных, хорошо адаптированных свиней крупной белой породы; данный
показатель ниже у свиней породы йоркшир. Свиньи породы дюрок, повидимому, более адаптированы к природно-климатическим условиям
Среднего Поволжья, о чем свидетельствует незначительное изменение
данного показателя относительно животных крупной белой породы.
Не менее важное значение при изучении обмена минеральных веществ
имеет состояние резервной щелочности в организме животных.
Резервная
щелочность
суточных
поросят
контрольных
групп
составляла от 53,13±0,31 до 54,59±0,22 об%СО2. С внутримышечным
введением тимозин-α1 опытным группам было установлено повышение
данного показателя в крови животных. Так, у 5-суточных поросят крупной
белой породы в опытных группах резервная щелочность составила
54,72±0,46, дюрок – 53,91±0,52, йоркшир – 52,45±0,11 об%СО2 (р<0,05).
Установлено, что резервная щелочность с возрастом животных
снижалась, так у 30-суточных поросят в контрольных группах – от
44,61±0,54 до 44,75±0,18 об%СО2, в опытных группах – от 46,78±1,01 до
46,94±0,94 об%СО2 (р<0,05). В конце опыта отмечалась высокая резервная
щелочность и ее содержание в контрольных группах свиней находилось в
пределах 52,08±0,61 об%СО2, а в опытных – от 53,58±1,16 до 54,52±1,01об%
СО2 (р<0,05).
По результатам полученного цифрового материала, приведенного в
таблице 17, можно предположить, что на концентрацию минеральных
веществ в организме животных влияет кормление, изменяющиеся природноклиматические факторы и микроклиматические условия в зоне обитания
животных, а на повышение содержания концентрации данных показателей –
внутримышечное введение тимозина-α1.
130
4.1.5. Состояние ферментативной системы в организме свиней
Существование организма животных неразрывно связано с множеством
химических реакций клеточного метаболизма. Эти реакции протекают под
действием специфических белков-ферментов, наделенных каталитическими
свойствами. Для осуществления контакта двух реагирующих веществ в
химической реакции необходимым условием является наличие в этих
веществах достаточного запаса кинетической энергии.
Ферменты обладают всеми свойствами, присущим катализаторам:
специфичность действия, зависимость от рН и температуры среды,
активность в чрезвычайно малых концентрациях.
Ферменты амилотрансферазы (трансаминазы) переносят аминогруппу
аминокислот
на
кетокислоту,
в
результате
чего
образуется
новая
аминокислота и новая кетокислота. В практике часто используют активность
аланинаминотрансферазы (АлАТ) и аспартатаминотрансферазы (АсАТ), эти
показатели выражают уровень синтеза белков в организме животных и
характеризуют напряженность обмена веществ.
Были изучены количественные изменения АсАТ и АлАТ, щелочной
фосфатазы в плазме крови у чистопородных свиней с суточного и до
210-суточного возраста. Процесс определения активности изученных
ферментов проводился с учетом возрастных особенностей, влияния
изменяющихся
и
гелиогеофизических, природно-климатических
микроклиматических
условий
в
животноводческих
факторов
помещениях.
Установлены особенности влияния иммунокорректора тимозина-α1 при
внутримышечном введении животным на активность ферментов.
В день рождения поросят как контрольных, так и опытных групп
активность АсАТ составила от 0,21±0,04 до 0,24±0,02 ммоль/(чл), АлАт – от
0,23±0,01 до 0,26±0,04 ммоль/(чл), а щелочная фосфатаза – от 211,2±7,31 до
224,1±5,91 Е/л (табл. 18). Межпородные различия были незначительные,
однако наибольшая активность ферментов переаминирования и щелочной
131
фосфатазы наблюдались в плазме крови чистопородных новорожденных
поросят крупной белой породы (13,04% и 1,04 Е/л) относительно дюрок и
йоркшир.
Таблица 18
Динамика активности ферментов крови свиней в теплый период года
Показатели, %
1
КБП
Дюрок
Йоркшир
КБП
контрольная группа
2
3
Дюрок
Йоркшир
опытная группа
4
5
6
7
1 сутки
АсАТ‚ ммоль/(чл)
0,23±0,01
0,22±0,03
0,22±0,02
0,24±0,02
0,21±0,04
0,23±0,01
АлАТ‚ ммоль/(чл)
0,26±0,04
0,24±0,01
0,23±0,01
0,25±0,05
0,25±0,03
0,24±0,03
Щелочная
фосфатаза‚ Е/л
211,2±7,31
217,1±7,04
213,4±5,51
224,1±5,91
221,4±6,36
219,3±6,51
5 суток
АсАТ‚ ммоль/(чл)
0,35±0,02
0,33±0,02
0,32±0,02
0,42±0,02*
0,40±0,01**
0,38±0,02*
АлАТ‚ ммоль/(чл)
0,35±0,01
0,32±0,02
0,30±0,02
0,40±0,02*
0,38±0,04*
0,36±0,02*
Щелочная
фосфатаза‚ Е/л
246,4±5,39
228,6±6,01
219,7±6,08
265,6±6,04*
252,3±5,47**
238,1±5,77*
10 суток
АсАТ‚ ммоль/(чл)
0,42±0,02
0,40±0,01
0,37±0,02
0,47±0,01*
0,45±0,02*
0,42±0,01*
АлАТ‚ ммоль/(чл)
0,43±0,02
0,40±0,01
0,38±0,02
0,50±0,02*
0,47±0,03*
0,45±0,02*
Щелочная
фосфатаза‚ Е/л
291,4±5,34
286,4±6,21
277,6±5,31 325,1±6,54***
305,2±6,17*
294,5±6,11*
20 суток
АсАТ‚ ммоль/(чл)
0,62±0,02
0,58±0,02
0,57±0,02
0,72±0,03**
0,66±0,02**
0,65±0,03*
АлАТ‚ ммоль/(чл)
0,55±0,03
0,52±0,03
0,50±0,02
0,63±0,02*
0,60±0,02*
0,57±0,02*
Щелочная
фосфатаза‚ Е/л
412,6±7,31
405,7±7,56
404,3±7,12
435,5±7,13*
428,1±7,67*
424,5±7,74*
30 суток
АсАТ‚ ммоль/(чл)
0,67±0,02
0,59±0,02
0,55±0,02
0,75±0,03*
0,73±0,04**
0,61±0,02*
АлАТ‚ ммоль/(чл)
0,56±0,04
0,55±0,02
0,53±0,04
0,65±0,02*
0,63±0,02**
0,68±0,03**
Щелочная
фосфатаза‚ Е/л
397,7±7,15
376,5±7,22
365,1±7,15
425,7±7,34**
406,7±7,59**
395,1±7,08**
Окончание табл. 18
1
2
3
4
5
6
7
60 суток
АсАТ‚ ммоль/(чл)
0,72±0,03
0,69±0,04
0,65±0,03
0,86±0,03***
0,79±0,03*
0,75±0,04*
АлАТ‚ ммоль/(чл)
0,74±0,04
0,71±0,03
0,70±0,02
0,85±0,03**
0,83±0,04*
0,82±0,05*
Щелочная
фосфатаза‚ Е/л
79,13±2,09
77,81±1,21
74,32±1,79
85,95±1,61**
82,87±1,51**
81,14±1,37**
132
90 суток
АсАТ‚ ммоль/(чл)
0,70±0,03
0,68±0,02
0,65±0,03
0,82±0,04*
0,77±0,04*
0,76±0,04*
АлАТ‚ ммоль/(чл)
0,64±0,04
0,61±0,04
0,58±0,05
0,83±0,03***
0,74±0,03**
0,71±0,04*
Щелочная
фосфатаза‚ Е/л
73,54±2,15
71,62±2,09
70,28±1,41 82,68±1,56***
80,14±1,54**
78,23±2,27**
120 суток
АсАТ‚ ммоль/(чл)
0,67±0,03
0,66±0,02
0,62±0,03
0,77±0,03*
0,74±0,03*
0,73±0,10***
АлАТ‚ ммоль/(чл)
0,59±0,02
0,58±0,02
0,56±0,03
0,72±0,03***
0,69±0,04*
0,65±0,04*
Щелочная
фосфатаза‚ Е/л
63,31±2,31
63,02±2,01
61,82±2,25 75,13±2,03*** 74,11±2,71***
72,44±2,34**
180 суток
АсАТ‚ ммоль/(чл)
0,75±0,04
0,69±0,03
0,67±0,04
0,85±0,03*
0,82±0,04**
0,79±0,03*
АлАТ‚ ммоль/(чл)
0,67±0,03
0,64±0,04
0,61±0,03
0,76±0,03*
0,74±0,03*
0,71±0,04*
Щелочная
фосфатаза‚ Е/л
49,54±2,15
45,92±2,04
43,74±1,85
57,09±2,03**
55,61±1,94***
52,11±1,78**
210 суток
АсАТ‚ ммоль/(чл)
0,64±0,03
0,62±0,02
0,61±0,03
0,75±0,02**
0,73±0,04*
0,72±0,02**
АлАТ‚ ммоль/(чл)
0,63±0,02
0,61±0,03
0,57±0,03
0,72±0,02**
0,69±0,02*
0,65±0,02*
Щелочная
фосфатаза‚ Е/л
43,09±1,54
41,52±1,74
38,93±1,73 51,31±1,28*** 48,09±0,94***
46,45±1,66**
В конце молозивного периода питания активность ферментов
переаминирования повышалась, одновременно увеличивалась активность
щелочной фосфатазы. Отличаются результаты активности ферментов
в плазме крови контрольных и опытных групп свиней. На 5 сутки жизни
поросят активность АсАТ в плазме крови контрольных групп находилась
в пределах от 0,32±0,02 до 0,35±0,02 ммоль/(чл), а в опытных – увеличилась
относительно контроля на 15-20%. Внутримышечное введение тимозин-α1
способствовало повышению активности ферментных систем, что необходимо
для синтеза пластических и защитных белков в организме животных.
Повышение активности ферментов переаминирования осуществляется
в организме поросят до конца молочно-растительной формы питания. На 30
сутки жизни поросят активность АсАТ составила в плазме крови
контрольных животных крупной белой породы 0,67±0,02 ммоль/(чл), АлАТ –
0,56±0,04 ммоль/(чл), данный показатель был ниже в плазме крови поросят
породы дюрок соответственно на 13,55; 1,81%. Активность АсАТ в плазме
133
крови опытных поросят крупной белой породы выше на 11,94%, дюрок –
23,72%, йоркшир – 10,90% относительно данного показателя в контроле.
Аналогичное увеличение происходило в организме поросят опытных групп
по активности АлАТ.
Переход животных на растительную форму питания совпадает с
потеплением температуры
воздуха окружающей среды, повышением
влажности, накоплением в атмосфере вредных газов и снижением
концентрации кислорода. Хотя условия микроклимата поддерживаются в
более или менее удовлетворительном состоянии, то есть зоогигиенические
условия в животноводческих помещениях отвечают физиологическим
потребностям
животных,
но
изменяющиеся
природно-климатические
параметры оказывают влияние на организм свиней. А эти изменения
выражаются повышением активности ферментов АсАТ и АлАТ, у
60-суточных поросят крупной белой породы активность АлАТ составила
0,72±0,03 ммоль/(чл), АсАТ – 0,74±0,04 ммоль/(чл). При этом происходило
достоверное увеличение активности ферментов переаминирования в крови
опытных групп животных. АсАТ у 60-суточных поросят крупной белой
породы – 0,86±0,03 ммоль/(чл) (р<0,001), дюрок – 0,79±0,03 ммоль/(чл)
(р<0,05), йоркшир – 0,75±0,04 ммоль/(чл) (р<0,05).
Показатель активности щелочной фосфатазы у 60-суточных поросят в
крови имел наивысшее значение в контрольных группах – от 74,32±1,79 до
79,13±2,09 Е/л, а в опытных выше от 17,14 до 21,53% относительно
контрольных. Активность фермента АлАТ также была выше в крови
опытных поросят.
Основные параметры влияния изменяющихся факторов природноклиматических и микроклиматических условий на активность ферментов
приведены в таблице 18. Необходимо отметить, что активность ферментов
переаминирования АсАТ и АлАТ со сменой формы кормления и факторов
природно-климатических условий повышается или снижается. Установлено,
что равномерное повышение активности ферментов переаминирования
134
происходило в период молозивной, молочной, молочно-растительной форм
питания и на 60 сутки жизни, когда свиньям скармливали полноценный
рацион в технологический период доращивания, что совпадало с более
благоприятным теплым периодом года. На основании вышесказанного
можно сделать вывод, что интенсивный синтез белков в организме и
усвоение питательных веществ происходит до 60-суточного возраста
поросят. С переводом свиней на откорм, то есть с 90-суточного возраста,
активность ферментов изменяется циклично. Так, понижение активности
ферментов переаминирования с 90 суток жизни животного продолжается до
120-суточного возраста. В период интенсивного откорма, то есть на 180
сутки жизни свиней активность ферментов переаминирования повышается и
АсАТ составляет от 0,67±0,04 до 0,75±0,04 ммоль/(чл) в контрольных
группах, а в опытных – от 0,79±0,03 до 0,85±0,03 ммоль/(чл) (р<0,05). На 210
сутки жизни свиней, когда масса тела достигала 100-110 кг, отмечалось
снижение активности ферментов переаминирования (табл. 18).
Щелочная фосфатаза в крови животных находилась на высоком уровне
у поросят в период молочно-растительной формы питания. С переходом на
растительную форму питания уровень щелочной фосфатазы снижался, а в
конце откорма в крови животных щелочная фосфатаза находилась на уровне
от 38,93±1,37 до 51,31±1,28 Е/л (р<0,001). Активность щелочной фосфатазы
более выражена в периоды интенсивного роста и развития организма и
снижается по мере повышения массы тела животных, когда организм
адаптирован к воздействиям изменяющихся вредных факторов внешней
среды на достаточно высоком уровне.
4.1.6. Формирование и становление клеточных факторов
резистентности свиней разных генотипов в теплый период года
Важнейшим фактором в клеточной защитной системе организма
являются фагоциты. Фагоцитоз у высших позвоночных осуществляют в
основном нейтрофилы. Клеточный тип иммунного ответа обусловлен
образованием специальных клеток, реагирующих на чужеродные клетки. В
135
связи с этим изучение общей резистентности организма – это определение
уровня фагоцитарной активности лейкоцитов, фагоцитарного индекса и
фагоцитарного числа в крови свиней разных генотипов в постнатальном
онтогенезе.
В день формирования опытных и контрольных групп животных
фагоцитирующая способность лейкоцитов находилась приблизительно на
одинаковом уровне. У поросят крупной белой породы в первые сутки жизни
фагоцитарная активность лейкоцитов в контрольной группе составила
12,95±0,12%, дюрок – 12,75±0,21, йоркшир 12,74±0,15%. В суточном
возрасте данный показатель у поросят, полученных от свиноматок местной
селекции, адаптированных к природно-климатическим условиям Среднего
Поволжья, был выше на 1,56%, чем таковой у поросят, полученных от
свиноматок,
завезенных
контрольных
поросят
из
западных
крупной
белой
стран.
Фагоцитарная
породы
емкость
составляла
12447±
±1004 микробных тел при фагоцитарном индексе 1,58±0,08 микробных тел,
примерно на таком же уровне находилась в опытных группах поросят.
С первого дня жизни опытным поросятам вводили внутримышечно
иммунокорректор тимозин-α1, что оказывало положительное влияние на
фагоцитарную активность лейкоцитов. Установлено, что у 5-суточных поросят крупной белой породы она составила в контрольной группе 14,56±0,34%
(р<0,01), дюрок – 14,35±0,25%, йоркшир – 14,12±0,26 (р<0,05). В опытных
группах данный показатель был выше у поросят крупной белой породы на
16,14%, дюрок – 16,58%, йоркшир – 16,43% относительно такового в контроле. Из анализа приведенных данных следует, что тимозин-α1 оказывает
положительное влияние на фагоцитарную активность лейкоцитов, особенно
на лейкоцитарную систему крови слабо адаптированных животных, завезенных из стран западной Европы. Регулярное использование тимозина-α1 как
иммунокорректора оказывало положительное влияние на формирование и
становление защитных сил организма животных в ответ на изменяющиеся
факторы природно-климатических и микроклиматических условий.
136
Переход животных на молочно-растительную форму питания в 20суточном возрасте совпадал с потеплением климатических условий,
повышением влажности воздуха и изменением накопления вредных газов в
воздушной среде, особенно в микроклиматических условиях, которые
оказывают негативное влияние на организм животных.
Из приведенных данных таблиц 19 и 20 видно, что фагоцитарная
активность лейкоцитов в 20-суточном возрасте повышена как в контрольных
группах животных, так и опытных, соответственно относительно данного
показателя 1-, 5- и 10-суточных поросят.
Таблица 19
Фагоцитарная активность лейкоцитов крови свиней контрольных групп
в постнатальном онтогенезе в теплый период года
Показатели
Порода
животных
1
фагоцитарная
активность
лейкоцитов, %
2
КБП
Дюрок
Йоркшир
12,95±0,12
12,75±0,21
12,73±0,15
КБП
Дюрок
Йоркшир
14,56±0,34
14,35±0,25
14,12±0,26
КБП
Дюрок
Йоркшир
17,21±0,24
17,05±0,21
16,85±0,30
фагоцитарный
индекс,
микробных тел
3
1 сутки
1,58±0,08
1,46±0,06
1,39±0,05
5 суток
1,66±0,08
1,54±0,06
1,48±0,08
10 суток
1,86±0,12
1,58±0,11
1,49±0,13
фагоцитарная
емкость,
микробных тел
4
фагоцитарное
число,
микробных тел
5
12447±1004
11577±1003
12656±1105
0,96±0,04
0,86±0,05
0,88±0,05
14561±1035
13653±2005
14651±2143
1,12±0,19
1,18±0,16
1,08±0,22
16789±1285
17951±1650
17826±1570
1,40±0,26
1,36±,21
1,32±0,26
Окончание табл. 19
1
КБП
Дюрок
Йоркшир
КБП
2
4
5
22,23±0,21
20,54±0,33
20,58±0,38
3
20 суток
2,26±0,14
2,06±0,12
2,10±0,12
18656±1096
1845±1184
19336±1240
1,11±0,38
1,10±0,32
1,30±0,28
24,74±0,28
30 суток
3,23±0,15
20646±2748
1,48±0,24
137
Дюрок
24,17±0,36
3,14±0,10
18756±2913
1,56±0,12
Йоркшир
23,59±0,46
23620±2823
1,38±0,18
КБП
Дюрок
Йоркшир
38,67±0,58
37,41±0,51
35,40±0,53
24346±2004
21656±3017
23567±2340
2,17±0,30
2,36±0,28
2,42±0,26
КБП
Дюрок
Йоркшир
49,31±0,25
46,41±0,32
43,92±0,22
3,00±0,14
60 суток
2,46±0,21
2,36±0,16
3,12±0,12
90 суток
3,54±0,27
3,48±0,32
3,56±0,36
24567±9360
24824±2416
24647±2386
2,28±0,16
2,24±0,14
2,14±0,18
25451±3525
26359±3364
26422±3211
1,68±0,12
1,71±0,14
1,66±0,21
120 суток
3,38±0,32
3,28±0,26
3,26±0,24
180 суток
КБП
Дюрок
Йоркшир
51,16±0,42
48,81±0,54
47,74±0,71
КБП
Дюрок
Йоркшир
50,31±0,34
47,92±0,34
46,81±0,25
3,48±0,11
3,56±0,12
3,38±0,13
210 суток
26127±3456
26487±3364
28564±3603
1,66±0,11
1,70±0,12
1,58±0,11
КБП
Дюрок
Йоркшир
49,25±0,28
46,91±0,37
45,91±0,37
3,22±0,24
3,18±0,18
3,14±0,17
25439±2384
26672±4456
26824±3467
1,36±0,14
1,30±0,12
1,32±0,21
Таблица 20
Влияние на фагоцитарную активность лейкоцитов свиней внутримышечного
введения тимозина-α1 в зависимости от возраста в теплый период года
Показатели
Порода
животных
1
КБП
фагоцитарная
активность
лейкоцитов, %
2
12,90±0,13
фагоцитарный
индекс,
микробных тел
3
1 сутки
1,57±0,08
фагоцитарная
емкость,
микробных тел
4
фагоцитарное
число,
микробных тел
5
12454±1004
0,95±0,04
Окончание табл. 20
1
Дюрок
Йоркшир
2
12,74±0,21
12,73±0,15
КБП
Дюрок
Йоркшир
16,91±0,21***
16,73±0,24**
16,44±0,38***
3
1,48±0,07
1,41±0,03
5 суток
4
11876±1146
12204±1124
5
0,86±0,05
0,87±0,05
1,83±0,23
1,63±0,26
1,69±0,24
15644±2047
14464±2096
15320±2140
1,24±0,12
1,22±0,16**
1,09±0,20
138
10 суток
КБП
Дюрок
Йоркшир
18,56±0,26**
18,29±0,34**
18,04±0,18***
КБП
Дюрок
Йоркшир
23,48±0,35**
23,12±0,34**
22,33±0,32***
КБП
26,99±0,12***
Дюрок
Йоркшир
26,60±0,43***
25,55±0,31***
КБП
Дюрок
45,30±0,37***
43,71±0,37***
Йоркшир
42,01±0,36***
КБП
Дюрок
50,52±0,38**
47,12±0,28*
Йоркшир
44,68±0,24*
КБП
Дюрок
Йоркшир
52,65±0,56*
50,33±0,44*
50,21±0,64*
КБП
Дюрок
Йоркшир
51,13±0,38
49,12±0,35*
47,43±0,43
3,76±0,42
120 суток
4,08±0,26
4,16±0,44
4,24±0,32
180 суток
4,20±0,11
4,30±0,16**
4,56±0,14*
50,17±0,47
48,25±0,42*
46,93±0,52
210 суток
4,15±0,11
4,19±0,10*
4,30±0,12
КБП
Дюрок
Йоркшир
1,79±0,36**
1,82±0,23
1,69±0,24*
20 суток
2,10±0,26
2,06±0,20**
2,14±0,36
30 суток
3,22±0,18
20646±2748
19149±1646
24120±2140
1,34±0,28
1,24±0,24
1,34±0,26
19246±1124
18756±1240
195201347
1,46±0,24
1,36±0,26
1,42±0,18
21085±1849
1,46±0,22
3,24±0,12
3,27±0,10
60 суток
2,82±0,24
2,66±0,18
19240±1754
23620±2823
1,37±0,25
2,000,12
25363±2017
22773±2640
2,24±0,16
1,81±0,22
2,56±0,16
90 суток
3,82±0,32
3,66±0,36
25603±2618
1,98±0,26
25483±2042
28422±2420*
2,18±0,28
2,16±0,14
28996±1940**
2,04±0,26**
27441±2342
28109±2459
29146±2567
2,15±0,15**
2,12±0,24
1,84±0,16**
28384±2127
27619±1918
31108±2434
2,42±0,12
2,36±0,16**
2,31±0,12
28441±1967
27816±2436
28396±1840
1,43±0,14
1,56±0,15
1,36±0,12**
На 20 сутки жизни контрольных поросят фагоцитарная активность
лейкоцитов находилась в пределах от 20,54±0,33 до 22,23±0,21% (р<0,01), а в
опытных группах данный показатель был выше у животных крупной белой
породы на 5,4%, дюрок – 4,74%, йоркшир – 4,58%. Поросят отнимали от
матерей в возрасте 30 суток, когда еще недостаточно сформированы
защитные силы в ответ на неблагоприятные факторы, действующие на
139
организм животных. Так, у 30-суточных поросят контрольной групп
фагоцитарная
активность
лейкоцитов
составляла
от
23,59±0,46
до
24,74±0,28% (р<0,05), а опытных – от 25,55±0,31 до 26,99±0,12% (р<0,01),
при этом фагоцитарный индекс в контрольной группе животных был от
2,10±0,12 до 2,26±0,14 микробных тел, таким образом данный показатель
выше у опытных животных на 29,82% (р<0,001). Анализ результатов
исследований дает основание считать, что для формирования клеточного
иммунного ответа важно своевременное и целенаправленное использование
%
при выращивании молодняка свиней иммунокорректора тимозина-α1.
55
50
45
40
35
30
25
20
15
10
1
5
10
20
30
60
90
120
180
210
Возраст, сутки
Контроль
Опыт
Рис. 13. Динамика фагоцитарной активности лейкоцитов у свиней крупной белой
породы в теплый период года
С 30- по 90-суточный возраст поросят кормили полноценным
рационом, рекомендованным ВИЖ РФ, однако природно-климатические
факторы
и
факторы
микроклимата
резко
изменялись,
повышалась
температура окружающего воздуха, снижалась концентрация кислорода в
воздухе, в нем и в животноводческих помещениях накапливались вредные
газы. Природно-климатические условия теплого периода года, описанные
выше, по-видимому, негативно влияли на организм животных, что
потребовало увеличения активности защитных сил организма, то есть
больших затрат энергии на повышение клеточных и гуморальных факторов
резистентности. Фагоцитарная активность лейкоцитов у 90-суточных
животных опытных групп составляла от 44,68±0,24 до 50,52±0,38%, данные
140
показатели были выше показателей контрольных групп от 1,26 до 1,73%.
Стимулирование фагоцитарной активности лейкоцитов у 90-суточных
свиней высоких результатов не дало.
Так, у 120-суточных свиней фагоцитарная активность лейкоцитов в
контрольных группах породы дюрок была ниже на 4,81% и составляла
48,81±0,54% относительно таковой животных крупной белой породы, у
породы йоркшир данный показатель понизился на 7,16% соответственно.
При стимулировании животных тимозином-α1 фагоцитарная активность
лейкоцитов у 120-суточных свиней породы йоркшир повышалась на 4,92%
относительно контроля.
В теплый период года – август, сентябрь и октябрь месяцы
отрицательная температура воздуха регистрировалась, но в очень редких
случаях, таким образом, этот промежуток теплого периода года являлся
благоприятным для физиологического развития свиней. Животные набрали
живую массу соответствующую возрасту за счет скармливания им
полноценных рационов.
Не было установлено больших различий по фагоцитарной активности
лейкоцитов между контрольными и опытными группами животных. Имелась
межпородная разница, так у свиней породы йоркшир опытной группы
показатель фагоцитарной активности лейкоцитов был ниже в 180-суточном
возрасте на 3,7%, в 210-суточном – на 3,9% относительно такового у свиней
крупной белой породы. У поросят породы дюрок разница составляла 2,01%
и 1,91 соответственно (рис. 13).
Выявлено, что у свиней, разводимых в условиях Среднего Поволжья,
фагоцитарная активность лейкоцитов низкая до 90-суточного возраста.
Поэтому требуется коррекция иммунной системы животных, особенно
завезенных с западных стран Европы.
4.1.6.1. Количественные изменения Т-лимфоцитов в крови у свиней
в постнатальном онтогенезе в теплый период года
141
В процессе исследований установлено, что в первые сутки жизни в
постнатальном онтогенезе во всех группах поросят в крови содержание
лейкоцитов составляло от 5,11±0,12 до 5,14±0,12·109/л, из них лимфоцитов –
от 4,04±0,13 до 4,09·109/л, Т-лимфоцитов (из числа лимфоцитов) – от
2,27±0,21 до 2,48±0,10·109/л или от 55,50±1,46 до 61,50±1,46%, то есть
клеточный иммунитет у новорожденных животных сформирован (табл. 21).
С возрастом у поросят происходит количественное изменение Тлимфоцитов, что и отражается в возрастных особенностях клеточной
иммунной системы в зависимости от изменяющихся факторов природноклиматических и микроклиматических условий (табл. 21).
По количественному содержанию Т-лимфоцитов у 5-суточных поросят
контрольных групп по сравнению с суточными животными различий нет, но
в опытных группах поросят, которым внутримышечно вводили тимозин-α1
число Т-лимфоцитов было выше в крови животных крупной белой породы на
15,11%, дюрок – 14,95%, йоркшир – 16,42% относительно такового в
контроле.
У 10-суточных поросят в крови увеличивалось число лимфоцитов и
составляло от 61,54±1,06 до 62,32±1,18% в контрольных группах, в опытных
– от 64,63±1,17 до 65,83±1,32% (р<0,05), что объясняется увеличением числа
Т-лимфоцитов в крови как контрольных, так и опытных животных от общего
числа лимфоцитов. Так, в контрольной группе поросят крупной белой
породы количество Т-лимфоцитов составило 67,08±1,33%, породы дюрок –
67,71±1,42%, породы йоркшир – 68,05±1,42%, данный показатель достоверно
повышался
в
опытных
группах
животных
и
процент
увеличения
Т-лимфоцитов соответственно составил 4,89; 4,85; 3,81%.
Таблица 21
Количественные изменения Т-лимфоцитов в крови свиней разных генотипов
в теплый период года
Показатели
КБП
Дюрок
Йоркшир
КБП
контрольная группа
1
2
3
Дюрок
Йоркшир
опытная группа
4
142
5
6
7
1 сутки
Лейкоциты, 10 /л
5,12±0,14
5,13±0,17
5,11±0,12
5,13±0,12
5,14±0,12
5,12±0,11
Лимфоциты, 109/л 4,09±0,16
%
79,79±1,61
4,07±0,18
79,30±1,24
4,00±0,16
78,32±1,24
4,07±0,15
79,41±1,34
4,08±0,18
79,31±1,21
4,04±0,13
78,91±2,04
2,37±0,19
58,23±2,04
2,46±0,09
61,50±1,46
2,31±0,14
56,76±1,82
2,41±0,24
59,06±1,14
2,48±0,10
61,39±1,23
9
Т-лимфоциты:
ТЕ–РОК, 109/л
%
2,27±0,21
55,50±1,17
5 суток
Лейкоциты, 10 /л
5,33±0,09
5,16±0,14
5,05±0,21
5,88±0,18**
5,68±0,17*
5,63±0,11*
Лимфоциты, 109/л 4,00±0,20
%
75,09±1,02
3,88±0,18
75,19±1,07
3,79±0,21
75,15±0,81
4,57±0,18
77,76±0,86*
4,42±0,20
77,85±0,81*
4,39±0,22
77,95±1,08*
2,22±0,13
57,26±1,21
2,24±0,12
59,10±1,46
2,78±0,12*
60,83±1,82
2,61±0,14*
59,05±1,44
2,68±0,12*
61,04±1,52
9
Т-лимфоциты:
ТЕ–РОК, 109/л
%
2,39±0,11
59,75±1,34
10 суток
Лейкоциты, 109/л
5,21±0,08
5,14±0,11
5,09±0,10
5,61±0,14*
5,53±0,12*
5,45±0,12*
Лимфоциты, 109/л 3,25±0,14
%
62,32±1,18
62,13±1,32
3,19±0,15
61,54±1,06
3,13±0,20
65,83±1,32*
3,69±0,16
65,24±0,87*
3,61±0,15
64,63±1,17*
3,52±0,18
2,16±0,10
67,71±1,42
2,13±0,12
68,05±2,01
2,68±0,15*
72,63±1,45
2,57±0,08***
71,19±2,13
2,49±0,13*
70,74±2,11
Т-лимфоциты:
ТЕ–РОК, 109/л
%
2,18±0,13
67,08±1,33
20 суток
Лейкоциты, 10 /л
5,24±0,21
5,16±0,26
5,08±0,24
6,05±0,18**
5,92±0,21*
5,88±0,18**
Лимфоциты, 109/л 2,94±0,11
%
56,19±1,06
2,90±0,09
56,16±1,02
2,83±0,12
55,69±1,04
3,59±0,13
59,33±1,18*
3,51±0,07
59,32±1,04*
3,46±0,10
58,91±1,13*
2,30±0,14
79,31±2,32
2,28±0,11
80,56±2,46
2,79±0,12*
77,71±2,42
2,69±0,11*
76,64±2,31
2,70±0,14*
78,03±2,20
9
Т-лимфоциты:
ТЕ–РОК, 109/л
%
2,32±0,18
78,91±2,24
30 суток
Лейкоциты, 109/л
6,06±0,11
6,02±0,18
5,82±0,15
6,56±0,20*
6,48±0,12*
6,24±0,13*
Лимфоциты, 10 /л 3,27±0,14
%
54,02±1,08
3,22±00,12
53,51±1,34
3,11±0,0,13
53,59±1,36
3,73±0,16
56,92±0,98*
3,69±0,12
56,98±1,08*
3,56±0,09
57,12±1,12*
2,56±0,09
78,50±1,21
2,31±0,10
74,27±1,35
3,30±0,15*
88,47±1,22
2,86±0,12*
79,51±1,24
2,85±0,17**
80,05±1,19
9
Т-лимфоциты:
ТЕ–РОК, 109/л
%
2,84±0,17
86,85±1,24
60 суток
Окончание табл. 21
1
2
3
4
5
6
7
13,31±0,22
13,09±0,22
13,06±0,32
14,11±0,21*
14,08±0,36*
13,96±0,28*
Лимфоциты, 109/л 6,42±0,21
%
48,23±0,85
6,41±0,12
49,02±1,01
6,32±0,19
48,36±0,94
7,18±0,21
50,87±1,04*
7,12±0,18
50,57±0,82*
7,18±0,22
51,44±1,24*
3,68±0,17
57,41±1,91
3,52±0,12
55,69±2,01
4,45±0,19**
61,79±1,91
4,38±0,18**
61,51±1,71
4,33±0,21***
60,30±1,62
13,69±0,21*
13,62±0,20*
13,38±0,26*
Лейкоциты, 10 /л
9
Т-лимфоциты:
ТЕ–РОК, 109/л
%
3,81±0,11
59,34±1,34
90 суток
Лейкоциты, 109/л
13,06±0,24
13,02±0,21
12,72±0,20
143
Лимфоциты, 109/л 6,30±0,18
%
48,24±1,18
Т-лимфоциты:
ТЕ–РОК, 109/л
%
4,18±0,13
66,35±2,31
6,12±0,12
47,01±1,04
5,84±0,19
45,97±1,52
7,13±0,20
52,09±1,48*
6,80±0,17
49,99±1,04*
6,63±0,15
49,55±1,28*
4,08±0,13
66,66±2,12
4,02±0,14
68,83±2,34
4,56±0,12*
64,09±2,42
4,50±0,11*
66,17±2,24
4,39±0,12*
66,21±2,32
120 суток
Лейкоциты, 10 /л
12,68±0,31
12,42±0,22
12,06±0,19
13,51±0,26*
13,06±0,18*
13,01±0,31**
Лимфоциты, 109/л 6,12±0,17
%
48,26±1,09
6,07±0,21
48,90±1,19
5,87±0,15
48,66±0,78
6,92±0,17
51,23±1,05*
6,76±0,18
51,79±0,87*
6,76±0,14
51,97±1,17*
4,27±0,17
70,35±2,22
4,18±0,18
71,21±2,32
4,87±0,21*
70,37±2,19
4,86±0,25*
71,89±2,26
4,76±0,23*
70,41±2,18
9
Т-лимфоциты:
ТЕ–РОК, 109/л
%
4,32±0,12
70,58±2,12
180 суток
Лейкоциты, 109/л
13,07±0,28
13,04±0,18
12,96±0,21
13,87±0,19*
13,89±0,21**
13,09±0,21
Лимфоциты, 10 /л 6,05±0,12
%
46,35±1,12
6,03±0,18
46,26±1,09
5,95±0,14
45,92±1,86
7,06±0,15
50,88±1,52**
6,99±0,19
50,39±1,41*
6,62±0,11
50,62±1,31*
4,34±0,21
71,97±2,42
4,23±0,21
71,09±2,27
5,10±0,26*
72,23±2,40
4,97±0,23*
71,10±2,32
4,85±0,20*
73,26±2,21
9
Т-лимфоциты:
ТЕ–РОК, 109/л
%
4,46±0,10
73,71±2,36
210 суток
Лейкоциты, 109/л
12,07±0,28
13,05±0,67
11,75±0,52
13,75±0,39
13,15±0,28
12,45±0,52
Лимфоциты, 109/л 5,70±0,12
%
47,24±1,32
6,20±0,14
47,56±1,08
5,55±0,09
47,25±1,45
7,05±0,21
51,29±1,24*
6,74±0,15
51,25±1,04*
6,39±0,18
51,40±1,44*
4,34±0,23
70,01±2,43
4,25±0,25
76,57±2,32
5,12±0,31
72,62±2,41
4,88±0,20
72,40±2,31
5,02±0,22*
78,56±2,12
Т-лимфоциты:
ТЕ–РОК, 109/л
%
4,48±0,24
78,59±2,11
По результатам количественного определения Т-лимфоцитов в крови
10-суточных поросят надо отметить, что данный возраст животных требует
коррекции клеточного иммунитета для формирования достаточной защитной
силы организма на воздействие вредных факторов внешней среды.
У 30-суточных контрольных поросят в крови лейкоцитов – от 5,82±0,15
до 6,06±0,11·109/л, у опытных – от 6,24±0,02 до 6,56±0,20·109/л (р<0,05)
лейкоцитов. Лимфоциты составляли от 53,51±1,34 до 57,12±1,12% (р<0,05).
Число Т-лимфоцитов в контрольных группах поросят крупной белой породы
было 86,85±1,24%, дюрок – 79,50±1,21%, йоркшир – 74,27±1,35%,
превосходство по данному показателю наблюдалось в крови опытных
животных у крупной белой породы на 1,86%, дюрок – 1,28%, йоркшир –
7,23% относительно такового в контроле.
144
С
30-суточного
возраста
поросята
полностью
переходили
на
растительную форму питания и это характеризовалось увеличением в крови
общего числа лейкоцитов. Так, у 60-суточных животных в контрольных
группах оно составляло от 13,06±0,32 до 13,31±0,22·109/л, а в опытных
группах – от 13,08±0,36 до 14,11±0,21·109/л (р<0,05). Число лимфоцитов в
крови свиней контрольных групп – от 48,23±0,85 до 49,02±1,01%, а в
опытных – от 60,30±1,62 до 61,76±1,91%. Т-лимфоцитов в контроле было от
55,69±2,01 до 59,34±1,34%, в то время как содержание Т-лимфоцитов в крови
поросят породы дюрок снижалось на 3,97%, йоркшир – 6,16% относительно
такового у свиней крупной белой породы. В опытных группах животных в
кови количество Т-лимфоцитов увеличивалось и составляло у крупной белой
породы 61,79±1,91%, дюрок – 61,51±1,71, йоркшир – 60,30±1,62% (рис. 14).
Рис. 14. Динамика Т-лимфоцитов в крови у свиней контрольных групп
в теплый период года
В таблице 21 приведены данные по возрастным изменениям
количественного состава Т-лимфоцитов в крови свиней разных генотипов в
зависимости от факторов природно-климатических и микроклиматических
условий в зоне обитания в теплый период года. У 180- и 210-суточных
свиней в количественном содержании Т-лимфоцитов больших колебаний не
было, но в опытных группах свиней
данный показатель выше у свиней
крупной белой породы на 14,28%, дюрок – 12,96%, йоркшира – 18,11%,
145
относительно такового в контроле. В заключении надо отметить, что к концу
опытного периода количество Т-лимфоцитов в крови стабилизируется, а
внутримышечное введение тимозина-α1 позволяет повысить число Тлимфоцитов (в зависимости от породных особенностей) до 18,11%, что дает
возможность организму животных на более высоком уровне формировать
ответные реакции на воздействие факторов внешней среды.
4.1.7. Становление гуморальных факторов резистентности у свиней
в теплый период года
Гуморальная
резистентность
организма
животных
связана
с
В-лимфоцитами и иммуноглобулинами: IgM, IgG, IgA и др. Термин В-клетки
образован по первой букве названия органа, в котором они формируются –
Фабрицева сумка (barsa of Fabricius) у птиц и костный мозг (bone marrow) у
млекопитающих. В-клетки, как и все другие клетки крови, возникают из
плюрипотентных стволовых клеток (S.Malsolm, 1982). Последовательность
формирования различных клонов В-клеток генетически запрограммирована
(Ozer H., Strelkaus A.J., Callery R.T., 1979).
Взаимодействие Т- и В-клеток делает возможным переключение
синтеза иммуноглобулинов: в начале ответа образуется плазматические
клетки, секретирующие IgM, а затем и иммуноглобулины других классов
(IgG, IgA, IgЕ).
Иммуноглобулины,
представляют
собой
иммунологическая
синтезируемые
крупные
функция
плазматическими
белковые
позволяет
молекулы
употреблять
клетками,
глобулинов,
вместо
их
термина
“антитела” термин “иммуноглобулин”.
4.1.7.1. Возрастная динамика В-лимфоцитов и иммуноглобулинов
в крови свиней разных генотипов в теплый период года
Основные
параметры
динамики
количественного
изменения
В-лимфоцитов и иммуноглобулинов отражены в таблице 22. В процессе
146
исследований установлено, что в первые сутки жизни поросят число
В-лимфоцитов как в контрольных, так и опытных группах животных
находилось на одинаковом уровне – от 0,47±0,03 до 0,51±0,02·109/л (или от
11,75±0,16 до 12,46±0,19% от общего числа лимфоцитов). Наблюдалась
наивысшая концентрация IgG – от 33,05±1,19 до 33,61±1,13 г/л, концентрация IgM составляла от 1,64±0,04 до 1,85± 0,04 г/л, IgA – от 1,15±0,04 до
1,18±0,04 г/л. Поросятам опытной группы вводили внутримышечно тимозинα1, что оказывало положительное влияние на количественное содержание
В-лимфоцитов, которых было больше в опытной группе поросят крупной
белой породы на 10,71%, дюрок – 15,38%, йоркшир – 16,00% относительно
таковых животных контрольных групп. На 5 сутки в крови контрольных
свиней крупной белой породы снизилась концентрация
породы дюрок
IgM на 12,19%,
– 8,02%, породы йоркшир – 1,25%, в опытных группах
животных соответственно – 3,79; 0,57; 5,21%. У 5-суточных поросят
концентрация IgM уменьшалась в контроле у крупной белой породы на
12,19%, а в опыте – 3,79% относительно данного показателя суточных
животных. Концентрация
IgG снижалась в крови 5-суточных поросят
относительно таковой у суточных, но увеличивалась в опыте у крупной
белой породы на 9,51%, дюрок – 7,37%, йоркшир – 5,44% относительно
данных 5-дневных контрольных животных.
На основании полученных
результатов исследований необходимо отметить, что возраст поросят 5 суток,
это определяющий возраст по формированию иммунной системы в
организме,
а
увеличе-нию
внутримышечное
числа
введение
В-лимфоцитов
и
тимозина-α1
одновременному
способствует
повышению
концентрации IgM и IgG, IgА в крови животных.
У 10-суточных поросят отмечалось увеличение В-лимфоцитов и
концентрации иммуноглобулинов, особенно в крови опытных животных.
Содержание
IgM (рис. 15) у 10-суточных поросят контрольной группы
крупной белой породы составляло 2,21±0,07 г/л, IgG – 24,31±1,12 г/л, IgА –
2,24±0,14 г/л,
показатели в крови опытных поросят были следующими:
147
IgM – 2,48±0,08 г/л (р<0,05), IgG – 27,54±1,08 г/л (р<0,05), IgА – 2,71±0,19 г/л
(р<0,05).
На 30 сутки у поросят наблюдалось дальнейшее увеличение числа
В-лимфоцитов и иммуноглобулинов как в контроле, так и опыте. Величина
IgG в опытных группах крупной белой породы была выше на 9,98%, дюрок –
7,64,% йоркшир – 5,30% относительно показателей контрольных групп
животных.
Таким образом, поросятам в периоды молозивного, молочного и
молочно-растительного питания необходимо вводить иммунокорректор
тимозин-α1 – это способствует повышению в крови числа В-лимфоцитов и
иммуноглобулинов, что важно для формирования защитной силы организма
на
действие
изменяющихся
факторов
природно-климатических
и
микроклиматических условий в зоне обитания свиней.
г/л
7
6
5
4
3
2
1
1
5
10
20
30
60
90
120
180
210
Возраст, сутки
Контроль
Опыт
Рис. 15. Динамика IgM в крови у свиней крупной белой породы
в теплый период года
У 60-суточных поросят число В-лимфоцитов в крови контрольных
животных составляло в среднем 1,01·109/л, IgM – 2,80 г/л, IgG – 16,81 г/л, в
опытных группах животных В-лимфоцитов было 1,27·109/л (р<0,05), IgM –
4,76 г/л (р<0,01), IgG – 18,03 г/л IgG. С 90- по 180-суточный возраст свиньи
развивались в самое теплое время года, которое характеризовалось высокой
температурой воздуха, низкой концентрацией кислорода, накоплением
вредных газов и повышением бактериальной обсемененности воздуха в
148
животноводческих помещениях. Перечисленные природно-климатические
факторы влияли на показатели иммунной системы организма.
Период интенсивного откорма совпадал со снижением числа дней с
высокой температурой воздуха, концентрации вредных газов в воздухе и
бактериальной загрязненности воздушной среды свинарников. Так, у
180-суточных свиней число В-лимфоцитов в контрольной группе крупной
белой породы – 1,18±0,05·109/л, а в опытной – 1,35±0,06·109/л (р<0,05),
концентрация IgM в контрольной группе составляла 5,54±0,16 г/л,
25,16±0,34,
IgG –
IgА – 2,34±0,06 г/л. В опытных группах животных данные
показатели выше относительно таковых в контроле соответственно на 14,40;
13,35; 6,36; 21,36%.
Таблица 22
Возрастная динамика В-лимфоцитов и иммуноглобулинов в крови у свиней
разных генотипов в теплый период года
Показатели
КБП
Дюрок
Йоркшир
КБП
контроль
Дюрок
Йоркшир
опыт
1 сутки
1
2
3
4
5
6
7
В-лимфоциты:
ТЕ-РОК, 109/л
%
0,51±0,02
12,46±0,19
0,48±0,04
11,79±0,17
0,47±0,03
11,75±0,16
0,50±0,02
12,28±0,18
0,48±0,03
11,76±0,16
0,49±0,03
12,13±0,15
Ig M, г/л
1,84±0,05
1,75±0,05
1,62±0,04
1,85±0,04
1,76±0,04
1,64±0,06
Ig G, г/л
34,31±1,12
33,61±1,13
33,05±1,19
34,25±1,10
33,75±1,09
32,86±1,12
Ig A, г/л
1,15±0,04
1,16±0,02
1,18±0,04
1,18±0,03
1,16±0,02
1,16±0,02
0,62±0,01**
13,56±0,19
0,60±0,02*
13,57±0,21
0,58±0,03*
13,21±0,20
5 суток
В-лимфоциты:
ТЕ-РОК, 109/л
%
0,56±0,02
14,00±0,20
0,52±0,03
13,40±0,18
0,50±0,02
13,19±0,21
Продолжение табл. 22
1
2
3
4
5
6
7
Ig M, г/л
1,64±0,04
1,62±0,04
1,60±0,04
1,68±0,05
1,65±0,05
1,73±0,08
Ig G, г/л
33,09±1,11
32,51±1,21
31,32±1,08
37,51±1,21**
36,24±1,31*
34,65±1,12*
Ig A, г/л
1,12±0,05
1,08±0,06
1,04±0,03
1,26±0,02**
1,25±0,04*
1,18±0,06*
10 суток
В-лимфоциты:
ТЕ-РОК, 109/л
%
0,55±0,02
16,92±0,21
0,53±0,02
16,61±0,22
0,51±0,03
16,28±0,24
Ig M, г/л
2,21±0,07
2,18±0,07
2,12±0,08
149
0,67±0,03*** 0,65±0,03*** 0,62±0,02**
18,15±0,25
18,00±0,22
17,61±0,26
2,38±0,08
2,32±0,09
2,28±0,10
Ig G, г/л
24,31±1,12
24,05±1,04
22,86±1,08
27,54±1,08*
26,72±0,84*
26,05±1,12*
Ig A, г/л
2,24±0,14
2,18±0,15
2,09±0,11
2,71±0,19*
2,58±0,12*
2,45±0,14*
20 суток
В-лимфоциты:
ТЕ-РОК, 109/л
%
0,50±0,02
20,08±0,22
0,47±0,02
16,21±0,24
0,44±0,04
15,55±0,24
0,58±0,03*
16,15±0,21
0,55±0,03*
15,67±0,20
0,53±0,02*
17,05±0,25
Ig M, г/л
3,10±0,12
3,08±0,08
3,02±0,11
3,26±0,12
3,23±0,15
3,14±0,10
Ig G, г/л
7,45±0,12
7,36±0,07
7,32±0,08
7,92±0,18*
7,79±0,16*
7,59±0,10*
Ig A, г/л
1,77±0,06
1,72±0,07
1,67±0,06
1,94±0,04*
1,90±0,05*
1,87±0,06*
30 суток
В-лимфоциты:
ТЕ-РОК, 109/л
%
0,64±0,02
19,57±0,20
0,60±0,03
18,63±0,21
0,57±0,03
18,32±0,24
0,73±0,04*
19,57±0,23
0,68±0,02*
18,43±0,22
0,66±0,03*
18,54±0,21
Ig M, г/л
3,22±0,08
3,16±0,06
3,15±0,07
3,31±0,09
3,26±0,10
3,21±0,11
Ig G, г/л
7,61±0,24
7,54±0,18
7,42±0,12
8,37±0,28*
8,12±0,22*
7,94±0,21*
Ig A, г/л
1,72±0,06
1,68±0,08
1,57±0,12
1,98±0,10*
1,97±0,12*
1,93±0,09*
60 суток
В-лимфоциты:
ТЕ-РОК, 109/л
%
1,05±0,08
16,35±0,21
1,01±0,09
15,75±0,22
0,98±0,06
15,51±0,24
1,31±0,03**
18,24±0,24
1,27±0,08*
17,84±0,22
1,23±0,11*
17,13±0,21
Ig M, г/л
4,24±0,17
4,16±0,11
4,04±0,18
4,46±0,16
4,37±0,21
4,25±0,18
Ig G, г/л
16,95±0,36
16,87±0,34
16,62±0,41
18,14±0,31*
18,00±0,38** 17,96±0,34*
Ig A, г/л
1,94±0,08
1,74±0,10
1,65±0,12
2,21±0,07*
2,18±0,06*** 2,02±0,08**
90 суток
В-лимфоциты:
ТЕ-РОК, 109/л
%
1,06±0,09
16,82±0,27
1,03±0,06
16,83±0,24
0,82±0,08
14,06±0,25
1,31±0,07*
18,37±0,22
1,28±0,09*
18,82±0,28
1,15±0,05***
17,35±0,27
Ig M, г/л
4,56±0,08
4,37±0,12
4,25±0,10
4,72±0,11
4,68±0,16
4,43±0,11
Ig G, г/л
18,85±0,32
18,61±0,23
18,34±0,28
19,78±0,31*
Ig A, г/л
1,97±0,04
1,85±0,09
1,70±0,06
2,28±0,04*** 2,20±0,04*** 2,10±0,08***
19,51±0,32** 19,34±0,34*
120 суток
Окончание табл. 22
1
2
3
4
5
6
7
В-лимфоциты:
ТЕ-РОК, 109/л
%
1,20±0,10
19,60±0,26
1,15±0,06
18,94±0,25
1,05±0,08
18,06±0,27
1,45±0,08*
20,95±0,27
1,40±0,11*
20,71±0,25
1,32±0,08*
19,53±0,24
Ig M, г/л
4,74±0,14
4,70±0,12
4,66±0,13
5,05±0,12
4,92±0,11
4,74±0,10
Ig G, г/л
20,15±0,24
20,46±0,33
20,38±0,35 21,85±0,34*** 21,70±0,21** 21,66±0,23**
Ig A, г/л
2,00±0,04
1,98±0,06
1,72±0,08
180 суток
В-лимфоциты:
150
2,36±0,07***
2,21±0,06** 2,15±0,07***
ТЕ-РОК, 109/л
%
1,18±0,05
19,50±0,25
1,08±0,07
17,91±0,23
0,93±0,07
15,63±0,24
1,35±0,06*
19,12±0,26
1,28±0,15*** 1,22±0,08**
18,31±0,24
18,43±0,24
Ig M, г/л
5,54±0,16
6,41±0,12
6,27±0,11
5,98±0,12*
Ig G, г/л
25,12±0,34
25,26±0,28
25,04±0,35 26,72±0,34*** 26,53±0,36** 26,38±0,27**
Ig A, г/л
2,34±0,06
2,18±0,06
2,04±0,08
6,55±0,12
6,39±0,09
2,64±0,07***
2,36±0,06*
2,33±0,10**
210 суток
В-лимфоциты:
ТЕ-РОК, 109/л
%
1,16±0,06
20,35±0,27
1,14±0,05
18,38±0,25
1,08±0,07
19,46±0,22
1,32±0,04*
18,72±0,24
1,30±0,04*
19,29±0,25
1,28±0,05*
20,03±0,26
Ig M, г/л
5,27±0,19
5,16±0,18
5,05±0,12
5,56±0,07
5,24±0,08
5,16±0,10
Ig G, г/л
22,92±0,21
22,73±0,22
22,33±0,34
23,56±0,26*
23,42±0,21*
23,17±0,20*
Ig A, г/л
2,21±0,09
2,12±0,09
1,93±0,06
2,50±0,05**
2,41±0,04**
2,18±0,06**
Число В-лимфоцитов и концентрация иммуноглобулинов в крови у
210-суточных свиней находилось примерно на уровне таковых показателей у
180-суточных животных.
Надо отметить, что недостаточность иммунного ответа организма
животных на действие изменяющихся факторов окружающей среды можно
устранить
внутримышечным
введением
животным
иммунокорректора
тимозина-α1.
4.1.7.2. Состояние бактерицидной и лизоцимной активности плазмы
крови свиней в изменяющихся условиях внешней среды
Из гуморальных факторов естественной резистентности имеет важное
значение бактериальная и лизоцимная активность плазмы крови.
Бактериальная активность плазмы крови, характеризующая состояние
естественной резистентности организма, отражает все суммарные противомикробные процессы, происходящие в организме. Степень бактерицидной
активности плазмы крови – величина динамическая, она зависит от условий
содержания,
кормления,
физиологического
состояния
организма,
от
изменяющихся факторов природно-климатических и микроклиматических
условий в зоне обитания животных. В связи с этим, представляется крайне
интересным вопрос определения состояния бактериальной активности
151
плазмы крови животных в постнатальном онтогенезе в зависимости от
формы питания и условий обитания.
Широко распространенный фермент – лизоцим, обладает свойством
лизировать живые и мертвые клетки Micrococcus Lysodeicticus и целый ряд
других (в основном граммположительных) микроорганизмов. Высокое
содержание лизоцима в биологических жидкостях и в тех органах, которые
являются барьером на пути проникновения микробов в организм животного,
следует рассматривать как фактор неспецифического иммунитета. Лизоцим
стимулирует естественную резистентность живого организма и выполняет
важную роль в предупреждении заболеваний и в благоприятном исходе
воспалительного процесса.
В таблице 23 приведены результаты по определению бактерицидной и
лизоцимной активности плазмы крови свиней в постнатальном онтогенезе. В
1 сутки жизни поросят крупной белой породы бактерицидная активность
плазмы крови в контроле и опыте находилась в пределах от 12,09±0,24 до
12,11±0,21%. У поросят породы дюрок и йоркшир наблюдалось снижение
данного показателя от 2,44 до 10,99% относительно такового у крупной
белой породы.
Таблица 23
Динамика бактерицидной и лизоцимной активности плазмы крови свиней
в теплый период года
Породы
поросят
1
КБП
Бактерицидная
активность, %
Лизоцимная
активность, %
контрольная группа
2
3
1 сутки
12,11±0,21
–
Бактерицидная
активность, %
Лизоцимная
активность, %
опытная группа
4
5
12,09±0,24
–
Окончание табл. 23
1
Дюрок
Йоркшир
2
10,91±0,32
10,65±0,24
КБП
Дюрок
16,24±0,18
15,22±0,24
3
–
–
5 суток
4,66±0,18
4,24±0,21
152
4
10,88±0,12
10,72±0,18
5
–
–
17,11±0,12**
16,36±0,31**
5,85±0,16***
5,12±0,14***
Йоркшир
14,02±0,31
КБП
Дюрок
Йоркшир
22,61±0,28
22,52±0,26
19,59±0,22
КБП
Дюрок
Йоркшир
29,49±0,41
29,14±0,32
28,12±0,41
КБП
Дюрок
Йоркшир
32,75±0,44
31,46±0,34
30,86±0,36
КБП
80,74±0,68
Дюрок
Йоркшир
80,15±0,64
78,46±0,51
КБП
83,62±0,68
Дюрок
Йоркшир
78,11±0,62
76,44±0,74
КБП
Дюрок
Йоркшир
83,32±1,11
82,41±1,17
81,32±1,31
КБП
Дюрок
84,28±1,61
83,19±1,34
Йоркшир
81,57±1,42
КБП
Дюрок
Йоркшир
87,21±1,34
83,70±1,99
82,80±1,44
4,17±0,17
16,17±0,22***
4,84±0,24*
23,64±0,21**
23,38±0,17**
20,68±0,20***
6,89±0,14**
6,56±0,15*
6,64±0,18**
31,31±0,33***
30,66±0,27***
30,07±0,44**
8,76±0,23**
8,46±0,17***
7,78±0,20**
8,05±0,18
7,88±0,14
7,68±0,14
60 суток
34,40±0,27
34,95±0,35***
33,46±0,46***
32,21±0,42**
8,55±0,13**
8,39±0,15**
8,28±0,11***
84,84±1,12**
38,05±0,44***
32,48±0,42
31,50±0,34
90 суток
35,86±0,36
82,93±1,04*
80,56±0,77**
36,90±0,37***
35,45±0,28***
86,18±0,72**
38,68±0,34***
34,66±0,44
32,51±0,36
120 суток
40,91±0,48
39,30±0,44
38,51±0,27
180 суток
42,90±0,47
41,90±0,36
81,41±0,84**
78,56±0,42*
36,85±0,44***
34,52±0,34***
94,31±1,14***
92,62±1,28***
91,24±1,18***
42,55±0,56*
40,90±0,36**
40,02±0,38**
95,35±1,96***
93,83±1,41***
44,80±0,28***
43,70±0,34***
91,84±1,31***
42,90±0,56**
98,83±1,98***
94,74±1,14***
93,17±1,24***
50,64±0,54**
46,20±0,31**
45,90±0,36***
10 суток
6,24±0,14
6,11±0,12
6,03±0,11
20 суток
7,93±0,21
7,17±0,18
6,98±0,20
30 суток
41,10±0,27
210 суток
48,72±0,48
44,91±0,34
44,34±0,21
Пятые сутки жизни поросят отличался тем, что в плазме крови
установлено наличие и определена активность лизоцима. Лизоцимная
активность в контрольной группе животных – от 4,17±0,17 до 4,66±0,18%.
В опытной группе животных данный показатель был выше и составлял от
4,84±0,24 (р<0,05) до 5,85±0,16% (р<0,001). Бактерицидная активность в
153
плазме крови в опытных группах была выше у поросят крупной белой
породы на 5,35%, дюрок – 7,42%, йоркшир – 13,33% относительно
показателей контрольной группы. Поросята породы дюрок и йоркшир на
внутримышечное введение тимозина-α1 реагировали интенсивнее, чем
поросята крупной белой породы в 5-суточном возрасте.
В молочный период питания (20 суток) значительно возрастала
бактерицидная активность плазмы крови и у поросят крупной белой породы
находилась на уровне 29,49±0,41%, у поросят опытной группы – 31,31±0,33%
(р<0,001). Одновременно повышалась и лизоцимная активность плазмы
крови, так в контрольной группе 20-суточных поросят крупной белой породы
она увеличивалась на 27,08%, а в опытной – 27,14% относительно таковых
показателей 10-суточных животных.
На 30 сутки жизни контрольных животных бактерицидная активность
плазмы крови повышалась от 30,86±0,36 до 32,75±0,44%, в опытной –
от 32,21±0,42 (р<0,01) до 34,95±0,35% (р<0,001).
Момент отъема поросят от матерей – это день перехода с молочнорастительной формы кормления на растительную, совпадал с повышением
температуры воздуха, снижением концентрации кислорода в атмосферном
воздухе и накоплением вредных газов, особенно в животноводческих
помещениях.
Бактерицидная активность плазмы крови у 30-суточных поросят в
контрольной группе крупной белой породы составляла 32,75±0,44%, а в
опытной – 34,95±0,35% (р<0,001), увеличивалась на 6,72% относительно
таковой в контроле. Бактерицидная и лизоцимная активность плазмы крови
животных, получающих инъекции иммунокорректора тимозина-α1, находились на более высоком уровне.
С повышением температуры воздуха в окружающей среде в зоне
обитания свиней в животноводческих помещениях увеличивалась бактериальная загрязненность воздушной среды, что сопровождалось повышением
защитных сил организма, в частности, бактерицидной и лизоцимной
154
активности плазмы крови. Так у 60-суточных поросят в контрольной группе
бактерицидная активность составляла от 78,46±0,51 до 80,74±0,68%, а в
опытной – от 80,56±0,77 (р<0,01) до 84,84±1,12% (р<0,01). Лизоцимная
активность в контроле была от 31,50±0,34 до 34,40±0,27%, а в опыте – от
%
35,45±0,28 (р<0,001) до 38,05±0,44% (р<0,001).
100
90
80
70
60
50
40
30
20
10
1
5
10
20
30
60
90
120
180
210
Возраст, сутки
Контроль
Опыт
Рис. 16. Динамика бактерицидной активности плазмы крови
у свиней крупной белой породы
На 90 сутки жизни свиней бактерицидная активность плазмы крови
повышалась относительно данного показателя у 60-суточных животных, но
динамика увеличения показателей в группах, дополнительно принимающих
иммунокорректор тимозин-α1, сохранялась. Так, в контрольных группах
крупной белой породы бактерицидная активность плазмы составляла
83,62±0,68%, дюрок – 78,11±0,62, йоркшир – 76,44±0,74%, в опытных
группах наблюдалось превышение по данному показателя соответственно на
3,06; 4,22; 2,77% (рис. 16).
Лизоцимная активность плазмы крови как у 60-, так и 90-суточных
свиней находилась приблизительно на одинаковом уровне.
На 120 и 180 сутки жизни свиней бактерицидная и лизоцимная
активность плазмы крови повышалась. Так, у свиней крупной белой породы
на 120 сутки в контрольной группе лизоцимная активность плазмы крови
составила 40,91±0,48%, в опытной группе – 42,55±0,56% (р<0,05) то есть
была выше соответственно на 14,08 и 10% относительно показателей 90суточных животных.
155
С июлем, августом месяцами совпадал 120- и 180-суточный возраст
свиней,
когда
отмечались
окружающей среды,
самые
высокие
показатели
температуры
значительно снижалась концентрация кислорода в
атмосферном воздухе, одновременно увеличивалось содержание вредных
газов и бактериальная обсемененность воздуха в животноводческих
помещениях, все эти факторы требовали большего напряжения защитных сил
организма, чем и объяснялось повышение гуморальной резистентности
свиней.
У 210-суточных свиней отмечена наивысшая бактерицидная и
лизоцимная активность плазмы крови. Бактерицидная активность плазмы
крови в контрольных группах свиней колебалась от 82,80±1,44 до
87,21±1,34%, лизоцимная активность – от 44,93±0,21 до 48,72±0,48%. Данные
показатели крови свиней в опытных группах составляли от 93,17±1,24
(р<0,001) до 98,83±1,98 (р<0,001) и от 45,90±0,36 (р<0,001) до 50,64±0,54
(р<0,01) соответственно.
По результатам исследований можно рекомендовать использовать
тимозин-α1
в
свиноводстве
в
условиях
изменяющихся
природно-
климатических и микроклиматических параметров в теплый период года для
повышения уровня защитных сил организма свиней.
4.1.8. Рост и развитие свиней до 100 кг
Физиологически зрелые поросята при рождении в теплый период года
имели: приблизительно одинаковую живую массу во всех группах – от
1,22±0,12 до 1,27±0,14 кг, длину туловища – от 20,69±2,48 до 21,32±1,36 см;
8 хорошо развитых молочных зубов: 4 клыка, 4 латеральных резца и
2 вентральных резца, находящихся в стадии прорезывания; сильное
телосложение – у них отмечался хорошо развитый костяк и мышцы, голова
крупная, шея короткая, грудная клетка широкая и глубокая, ребра крупные, с
относительно широкими межреберными промежутками, спина и поясница
длинные, круп широкий, конечности сильные.
156
С суточного возраста поросятам опытных групп внутримышечно
вводили иммунокорректор тимозин-α1 с целью повышения процессов
формирования защитных сил организма в постнатальном онтогенезе.
Доказано, что использование тимозина-α1 способствовало формированию и
становлению клеточных и гуморальных факторов резистентности и
оказывало влияние на интенсивность роста и развития новорожденных
поросят.
В таблице 24 приведены показатели роста и развития свиней разных
генотипов в постнатальном онтогенезе в теплый период года.
На 5 сутки жизни контрольных поросят крупной белой породы живая
масса составляла 1,72±0,11 кг, породы дюрок – 1,68±0,10 кг, породы
йоркшир – 1,57±0,08 кг, опытные превосходили контрольных по данному
показателю соответственно на 6,97; 6,54; 10,19%. Среднесуточный прирост
массы тела в контрольных группах животных находился в пределах от
85±0,34 до 110±0,61 г, а в опытных – от 128±0,52 (р<0,001) до 145±0,35 г
(р<0,001). В опытных группах животных данный показатель был выражение
у крупной белой породы на 24,13%, дюрок – 25,54%, йоркшир – 33,53%
относительно такового в контроле. Нужно отметить, что новорожденные
поросята испытывали стресс после внутриутробной жизни, поэтому им
необходимо создавать благоприятные условия для адаптации к действию на
организм изменяющихся факторов природно-климатических и микроклиматических условий в зоне обитания. Препарат тимозин-α1 является
биологически активным веществом, который при внутримышечном введении
повышает в организме животных уровень формирования и становления
иммунного ответа, обмен веществ, стимулирует органы кроветворения, что
способствует более интенсивному росту и развитию молодого организма
относительно интактных животных.
Переход поросят от молочной к молочно-растительной форме питания
совпадал с улучшением природно-климатических условий, то есть с
устойчивым переходом емпературы воздуха окружающей среды через +10ºС
157
в сторону повышения, усилением солнечной активности – условия для
развития и жизни поросят в раннем постнатальном онтогенезе были
благоприятными.
У 10-суточных поросят в контрольных группах масса тела составляла
от 2,28±0,14 до 2,44±0,12 кг, а в опытных – от 2,46±0,18 (р<0,05) до 2,69±0,14
кг (р<0,05), отмечалось достоверное увеличение данного показателя в опыте
по сравнению с таковым в контроле.
По результатам исследований нужно отметить, что при переходе
поросят
с
молочно-растительной
среднесуточный
прирост
массы
на
тела
растительную
увеличивался
форму
питания
незначительно
относительно данного показателя поросят 20-суточного возраста. На 30 сутки
масса тела, как в контрольных, так и опытных группах приблизительно
находилась на одинаковом уровне и составляла от 8,36±0,22 до 8,72±0,18 кг.
Масса тела поросят породы дюрок ниже на 1,63%, породы йоркшир – на
4,30% относительно массы тела животных крупной белой породы.
Внутримышечное введение тимозина-α1 30-суточным животным
опытной группы способствовало увеличению массы тела поросят крупной
белой породы на 6,76%, дюрок – 6,17%, йоркшир – 7,17%, относительно
таковой контрольных (значит, относительные величины прироста массы тела
в опытных группах примерно находились на одинаковом уровне).
У 60-суточных поросят крупной белой породы в контрольной группе
величина среднесуточного прироста составила 345±5,4 г, дюрок – 342±5,7 г,
йокшир – 337±5,4 г; в опытной группе соответственно 349±5,1; 346±5,2;
340±5,5 г, то есть исследуемые показатели были достоверно выше
относительно таковых в контроле соответственно на 3,63; 4,7; 3,3%. Данный
возрастной период жизни поросят совпадал с июлем месяцем, который
характеризовался снижением в составе атмосферного воздуха концентрации
кислорода, в животноводческих помещениях отмечалось повышенное
содержание вредных газов и более высокой уровень бактериальной
загрязненности
воздуха.
В
таких
158
природно-климатических
и
микроклиматических условиях животным (для сохранения постоянства
внутренней среды организма) необходимо повысить физиологоиммуный
статус. На 90 сутки жизни свиней отмечали более высокие показатели
среднесуточного прироста массы тела в теплый период года. В контрольных
группах живая масса составляла от 29,5±0,35 до 31,74±0,28 кг, в опытных –
от 30,45±0,30 (Р<0,01) до 32,56±0,31 кг (Р<0,05). Животные в период
доращивания (с 30 до 90 суток) набирали соответствующую массу тела, для
перевода их в цех откорма (морфофизиологические и иммунобиологические
показатели также соответствовали возрасту свиней).
Для откорма использовали комбикорм, приготовленный в самом
хозяйстве в соответствии с рекомендациями Всероссийского института
животноводства. Питательная ценность комбикорма (1 г в 1 кг корма):
кормовые единицы – 1,13; сырой протеин – 146; клетчатка – 63,1; кальций –
10,1; фосфор – 6,9; лизин – 5,2; метионин+цистеин – 5,1; сырой жир – 29,5.
Корм состоял из следующих компонентов (%): ячмень – 51,0; пшеница –
13,0; шрот подсолнечный – 17,0; отруби пшеничные – 16,0; соль поваренная – 0,5; трикальций фосфат – 1,5; премикс П-51-7 – 1,0. Программа
кормления и обеспеченность рациона основными питательными веществами
свиней на откорме рассчитаны на получение 650-750 г ежедневного прироста
массы тела.
У 120-суточных свиней крупной белой породы в контрольной группе
живая масса составила 47,92±0,38 кг, дюрок – 47,66±0,42 кг, йоркшир –
45,13±0,48 кг; в опытной соответственно 42,24±0,33 (Р<0,01), 48,80±0,34
(Р<0,05), 46,61±0,31 кг (Р<0,01). Среднесуточный прирост массы тела
в опытных группах был выше у свиней крупной белой породы на 10,16%,
дюрок – 8,07%, йоркшир – 5,23%, по сравнению с показателями контрольных
групп.
Таблица 24
Динамика роста свиней разных генотипов в теплый период года
Показатели
Группа животных
контроль
опыт
159
КБП
Дюрок
Живая масса‚ кг
Среднесуточный
прирост‚ г
1,28±0,11
1,27±0,14
–
–
Живая масса‚ кг
Среднесуточный
прирост‚ г
1,72±0,11
1,68±0,10
110±0,61
102±0,25
Живая масса‚ кг
Среднесуточный
прирост‚ г
2,44±0,12
Живая масса‚ кг
Среднесуточный
прирост‚ г
КБП
Дюрок
Йоркшир
1,26±0,12
1,24±0,14
1,22±0,12
–
–
–
1,84±0,12*
1,79±0,11*
1,73±0,12*
145±0,35***
137±0,41***
128±0,52***
2,38±0,11
10 суток
2,28±0,14
2,69±0,14**
2,58±0,14**
2,46±0,18**
144±1,31
140±1,56
142±1,32
158±1,17***
146±1,42***
4,10±0,12
3,79±0,14
20 суток
3,25±0,20
4,51±0,15*
4,24±0,17*
4,17±0,14***
166±4,2
141±4,1
166±5,2**
171±5,4**
9,11±0,21*
8,96±0,16*
487±4,5
478±4,9
19,48±0,21*
19,16±0,24*
346±5,2
340±5,5
32,24±0,25*
30,45±0,30*
426±6,1
425±7,6
376±8,3
49,24±0,33**
48,80±0,34*
46,61±0,31**
556±7,5**
552±9,4*
539±9,3*
93,28±0,81***
90,21±0,69***
741±15,3**
727±14,2**
Живая масса‚ кг
Среднесуточный
прирост‚ г
8,72±0,18
8,58±0,16
462±5,2
479±5,3
Живая масса‚ кг
Среднесуточный
прирост‚ г
19,07±0,21
345±5,4
342±5,7
Живая масса‚ кг
Среднесуточный
прирост‚ г
31,74±0,28
31,41±0,32
422±8,4
418±8,2
Йоркшир
1 сутки
1,23±0,12
–
5 суток
1,57±0,08
85±0,34
97±4,8
171±1,24***
182±4,3*
30 суток
8,36±0,22
9,31±0,23*
511±5,1
480±4,7
60 суток
18,86±0,23 18,52±0,20 19,79±0,22**
337±5,4
349±5,1
90 суток
29,5±0,35
32,56±0,31*
366±7,7
120 суток
Живая масса‚ кг
Среднесуточный
прирост‚ г
47,92±0,38
Живая масса‚ кг
Среднесуточный
прирост‚ г
91,21±0,71
539±8,8
727±13,2
47,66±0,42 45,13±0,48
542±8,3
521±8,2
180 суток
90,03±0,65 86,73±0,56 94,35±0,88**
706±12,8
693±12,7
752±12,2**
210 суток
Живая масса‚ кг 110,14±1,08 110,24±1,16 108,18±1,21 117,15±1,32*** 116,77±1,28***
Среднесуточный
631±13,2
674±13,2
715±14,5
760±12,6*
783±12,2**
прирост‚ г
Скороспелость,
192,09
194
199,14
187,5
189,09
Дней
113,23±1,12**
767±14,2**
193,73
Самые высокие показатели прироста живой массы свиней установлены
на 210 сутки их жизни, при этом не было обнаружено больших различий по
живой массе между породами свиней, разводимых в условиях Среднего
Поволжья. В контроле данный показатель составлял от 108,18±1,21 до
110,14±1,08 кг, в опыте – от 113,23±1,12 (р<0,05) до 117,15±1,32 кг (р<0,001).
160
Среднесуточный прирост массы тела на 210 сутки жизни в
контрольных группах составил у свиней крупной белой породы 631±13,2 г,
дюрок – 674±13,2 г, йоркшир – 715±14,5 г, а в опытных группах данный
показатель был выше соответственно на 16,98; 16,17; 6,78% относительно
такового в контроле.
Животные контрольной группы КБП набирали массу тела 100 кг за
192; дюрок – 194; йоркшир – 199,1 суток, опытных соответственно за 187,5;
189; 193,7 суток.
Скорость роста свиней в опытных группах сократилась у крупной
белой породы на 4,59, дюрок – 4,91, йоркшир – 5,41 суток.
Самыми критическими днями в развитии свиней оказались 5, 10 и
период после 30 суток их жизни, плохо развивались и имели слабо
выраженную резистентность животные на 60 сутки жизни. Данные
возрастные периоды характеризовались гибелью поросят и невысокими
показателями среднесуточного прироста живой массы тела (табл. 25).
Таблица 25
Сохранность животных за время откорма в контрольных и опытных группах
Возраст,
Сутки
1
5
10
20
30
60
90
120
180
Сохранность, %
Количество голов свиней в группах
КБП
Дюрок
Йоркшир
КБП
Дюрок
Йоркшир
контрольная группа
опытная группа
30
30
30
30
30
30
30
30
30
30
30
30
28
26
28
28
27
29
27
25
27
28
27
29
27
24
26
27
25
28
26
22
26
27
25
28
25
22
24
27
25
27
25
22
24
27
25
27
25
22
24
27
25
27
83,3
73,3
80
90
83,3
90
Линейные показатели развития животных в возрасте 210 суток
практически находились на одинаковом уровне. На основании определения
основных параметров животных необходимо отметить, что интенсивность
роста
и
развития
климатическими
и
свиней
обусловлена
микроклиматическими
161
изменяющимися
условиями
зоны
природнообитания
животных. Сохранение здоровых и жизнеспособных животных во многом
зависит от напряженности формирования и становления физиологоиммуного
статуса.
По результатам исследований вполне объяснимо то, что использование
иммунокорректора
тимозина-α1
иммунобиологической
способствует
защиты
организма,
повышению
поддержанию
факторов
показателей
постоянства внутренней среды на более высоком уровне и, как следствие,
лучшему росту и развитию организма.
В таблице 26 приведены данные, характеризующие конституциональные параметры свиней разных пород в зависимости от использования
иммунокорректора тимозина-α1 в теплый период года.
Таблица 26
Показатели роста у 210-суточных свиней (n=20)
Показатели
Породы
КБП
Дюрок
Йоркшир
длина туловища, см
обхват груди, см
индекс сбитости, %
контроль
128±1,32
113±1,22
95,7
опыт
122±1,42
118±1,36
96,6
контроль
119±1,36
115±1,40
96,6
опыт
122±1,46
116±1,28
96
контроль
116±1,24
112±1,32
96,5
опыт
120±1,32
116±1,28
96,6
По приведенным данным, необходимо отметить, что рост и развитие
свиней, рожденных в теплый период года, происходит циклично в зависимости от изменяющихся природно-климатических и микроклиматических
условий.
Использование
стимулировать
иммунокорректора
формирование
факторов
тимозина-α1
клеточного
и
позволяет
гуморального
иммунитета, что дает возможность повысить сохранность и жизнеспособность животных на более высоком уровне и получать от свиней
высококачественный продукт питания животного происхождения.
4.2. Становление физиологоиммунного статуса свиней с возрастом
в холодный период года и его коррекция тимозином-α1
162
(2 серия опыта)
Здоровым можно считать животное, дающее оптимальное количество
ожидаемой продукции в ответ на создание ему природой и человеком
благоприятных условий для существования. Однако условия существования
домашних, в том числе сельскохозяйственных животных, могут существенно
меняться в силу различных факторов (естественных и искусственных).
Присущая
животным
способность
адаптироваться
обеспечивает
им
возможность нормально существовать в меняющихся условиях окружающей
среды, удерживать в пределах нормы, типичной для каждого вида, различные
показатели – общеклинические (поведение, отношение к корму, реакция на
окружение), физиологические (температура, пульс, дыхание), биохимические
(константы биологических жидкостей), гематологические, иммунобиологические и др.. Общие взаимоотношения с внешней средой у здоровых
животных не нарушаются, регуляторные системы поддерживают необходимый гомеостаз, что обеспечивает получение нужной продукции – мяса,
молока, шерсти, яиц и сырья для переработки.
Согласно определению, данному Всемирной организацией здравоохранения: «Здоровье – это состояние полного физиологического, психологического и социального благополучия, а не только отсутствие болезней или
физических дефектов». Следовательно, чтобы сохранить биологические,
физиологические, поведенческие особенности доместицированных животных разных видов, обеспечить максимальную продолжительность их
продуктивного периода, необходимо создать животным соответствующие
условия, которые не должны превышать их адаптационных возможностей и
поддерживать гомеостаз организма за счет саморегуляции.
Основные показатели здоровья определяются уровнем физического
развития, функциональным состоянием организма, резервными возможностями
физиологических
систем,
неспецифической
резистентностью,
надежностью иммунобиологической защиты, продуктивностью.
163
Сельскохозяйственные
животные
даже
одного
вида
имеют
неодинаковую устойчивость к воздействию неблагоприятных факторов
окружающей среды. Устойчивость организма зависит от воздействия
изменяющихся факторов внешней среды, кормления, возраста, пола,
упитанности,
наследственности,
конституциональных
особенностей
животного, состояния здоровья и других факторов (В. Калашиков,
В. Левахин, 2004; Ф.Г. Каюмов, М.П. Дубовская, А.В. Кузин, 2006).
Одной из наиболее характерных особенностей всех живых организмов
является способность поддерживать постоянство внутренней среды вопреки
изменяющимся условиям во внешней среде. Даже при очень различных
условиях и в самых разнообразных обстоятельствах физическое состояние и
химический состав жидкостей и тканей тела долго не меняется, даже если
организм находится в среде с очень высокой или низкой температурой.
Однако организм выдерживает самые различные отклонения лишь в
определенном интервале. Когда отклонение превосходит допустимый
предел, приводятся в действие различные восстановительные механизмы.
Пока колебания невелики, они компенсируются небольшими модификациями некоторых жизненных функций, причем до серьезных расстройств дело
не доходит. Такое состояние еще не стресс, а гомеостаз.
Особенно
важно
–
это
поддержание
в
организме
животных
физиологоииммунологического статуса и его коррекция биологически
активными
веществами.
Физиологоиммунологический
статус
является
определяющим при ответе на болезнетворное воздействие изменяющихся
природно-климатических факторов на организм животных в постнатальном
онтогенезе.
4.2.1. Состояние природно-климатических условий в зоне обитания
животных в холодный период года
Важным условием нормального развития животных является гигиена
их выращивания, удовлетворяющая биологическим потребностям организма,
164
прежде всего, зависящая от благоприятных факторов внешней среды,
поэтому состояние здоровья животных необходимо рассматривать строго с
учетом экологических факторов, то есть в соответствии с взаимодействием
между животным организмом и средой, в которой они обитают.
Среднее
Поволжье
характеризуется
умеренно
континентальным
климатом с продолжительным холодным периодом. Особенностями климата
являются температурные контрасты, дефицит влаги, интенсивная ветровая
деятельность, высокая инсоляция, а также значительная изменчивость
метеовеличин в течение холодного периода года.
По среднемноголетним данным холодный период в Самарской области
начинается с 31 октября и длится по 4 апреля, когда температура воздуха
устойчива ниже 0ºС (табл. 27).
Таблица 27
Показатели макроклимата в зоне расположения животноводческого
свинокомплекса за 2006-2008 гг.
Показатели
Ноябрь
Декабрь
10
20
30
10
20
Природно-климатические показатели
Температура воздуха Т на
высоте 2 м над земной
2,5
поверхностью, °С
Ветер на высоте 10-12 м над
4,2
земной поверхностью, м/с
Относительная влажность
воздуха f на высоте 2 м над
80,1
земной поверхностью, %
Атмосферное давление Po, мм 759,2
Содержание O2 (концентрация)
304,0
кислорода в воздухе, г/м3
30
10
Январь
20
30
-2,8
-4,7
-4,1
-8,2
-13,9
-13,1
-9,9
-10,4
4,2
4,0
3,5
4,2
3,7
3,4
5,1
4,4
80,4
82,1
82,9
81,1
77,4
81,6
79,5
77,8
759,7
763,5
764,6
765,6
763,9
770,8
762,2
757,8
308,3
313,8
312,4
319,2
326,0
327,3
318,4
312,9
Окончание табл. 27
Показатели
Температура воздуха Т на
высоте 2 м над земной
поверхностью, °С
Ветер на высоте 10-12 м над
земной поверхностью, м/с
Относительная влажность
воздуха f на высоте 2 м над
земной поверхностью, %
Атмосферное давление Po, мм
Февраль
10
20
30
Природно-климатические показатели
10
Март
20
30
-15,4
-9,9
-7,2
-3,9
-3,3
1,2
3,6
4,0
4,3
4,3
3,2
4,0
77,3
77,3
77,4
76,6
77,4
70,5
762,5
761,3
759,1
758,4
759,5
760,8
165
Содержание O2
(концентрация) кислорода в
воздухе, г/м3
327,1
320,4
318,7
311,3
311,0
306,0
Первые месяцы холодного периода года (ноябрь, частично декабрь)
отличались пасмурными и дождливыми днями, переход температуры от 0 до
-5,0ºС наблюдался в конце ноября. Скорость ветра была невысокой на уровне
3-4 м/с, с понижением температуры воздуха регистрировалось повышение
влажности, так в ноябре она составляла 80,9%, декабре – 80,5%.
Диапазон колебаний атмосферного давления воздуха находился в
пределах 757,8-770,8 мм рт. ст., следствием чего являлось увеличение
содержания кислорода. Наибольшая концентрация кислорода регистрировалась в феврале – 327,1 г/м³.
Из вредных газов, загрязняющих воздушную среду, концентрация
диоксида серы, диоксида азота, оксида углерода в холодный период года
понижена относительно данных показателей теплого периода и не
превышала санитарной нормы (табл. 28).
Таблица 28
Состояние загрязненности атмосферного воздуха в холодный период года
Содержание газа
в воздухе, г/м3 ПДКмр*
SO2
0,5
СO
5
NO2
0,2
10
0,001
1,7
0,05
Ноябрь
20
0,001
2,0
0,03
30
0,003
2,6
0,04
Декабрь
10
20
0,004
0,003
1,5
1,8
0,02
0,03
30
0,002
1,4
0,04
Январь
10
20
30
0,001 0,002 0,001
2,3
1,6
1,8
0,02
0,04
0,02
Окончание табл. 28
Содержание газа
ПДКмр*
в воздухе, г/м3
SO2
0,5
10
0,001
Февраль
20
0,004
30
10
0,001
0,001
Март
20
0,002
СO
5
2,1
1,8
1,5
2,4
1,5
NO2
0,2
0,05
0,03
0,03
0,04
0,04
30
–
–
–
Примечание: *ПДКмр – предельно допустимая максимальная разовая
концентрация химического вещества в воздухе населенных мест, мг/м³. Эта концентрация
при вдыхании в течение 20-30 мин. не должна вызывать рефлекторных реакций в
организме человека и животного.
166
Динамика гелиогеомагнитных показателей в холодный период года
отражена в таблицах 29, 30 и на рисунке 17.
Таблица 29
Показатели солнечной и геомагнитной активности за 2006-2008 гг.
Ноябрь
Декабрь
10
20
30
10
20
Солнечная и геомагнитная активность
Показатели
Поток радиоизлучения на
волне 10,7 см
(частота 2800 МГц)
Усредненный планетарный
Аp-индекс, (nT)
30
10
Январь
20
30
80,5
79,7
72,5
82,8
78,6
79,9
76,8
74,2
74,2
5,3
5,5
8,6
6,5
13,2
6,3
7,5
9,1
7,2
Окончание табл. 29
Показатели
Поток радиоизлучения на
волне 10,7 см
(частота 2800 МГц)
Усредненный планетарный
Аp-индекс, (nT)
10
Февраль
20
30
10
Март
20
30
72,1
71,2
76,9
78,9
72,4
80,3
7,3
9,3
8,0
8,3
11,1
9,6
Таблица 30
Количество пятен на Солнце (число Вольфа) в холодный период года
Sun-spots Sum (холодный период года)
Год
декабрь
январь
февраль
март
2006
10,5
21,4
13,6
15,3
4,9
2007
0,9
1,7
10,1
16,8
10,7
2008
2,9
4,1
0,8
3,3
2,1
Среднее
4,7
16,7
8,1
11,8
5,9
число Вольфа
ноябрь
25
20
15
10
5
0
11
12
1
2
3
месяцы
2006
2007
2008
Рис. 17. Число Вольфа в холодный период года
167
Погодные условия в годы проведения исследований характеризовались
следующим
образом.
Средний
температурный
режим
составлял
–4,5…–15,4ºС. На территории свинокомплекса температура воздуха была с
ноября (–2,8ºС) и до середины марта (–3,3ºС), с преобладанием морозных и
значительно морозных дней. Самым холодным в году считался февраль, в
этом
месяце
минимальная
температура
окружающего
воздуха была
–34,0ºС, средняя температура воздуха –9,9ºС.
Скорость
движения
ветра
имела
волнообразный
характер,
с
амплитудой колебания 1,3-18,0 м/с. В холодный период наблюдалось
максимальное проявление влажности воздуха, атмосферного давления и
содержания кислорода. Относительная влажность повышалась в начале
холодного периода и составляла в среднем 82,9%, в конце февраля влажность
воздуха снижалась до 77,4%. При повышении влажности воздуха,
препятствующей испарению с поверхности тела, тяжело переносится жара и
усиливается действие холода. Влажность воздуха повышается из-за
выпадения атмосферных осадков. Биометеорологические исследования
показали, что сами осадки благоприятно действуют на организм животного:
понижается
смертность,
уменьшается
заболеваемость
животных,
нормализуются физиологические показатели здорового организма.
Атмосферное
давление
строго
пропорционально
концентрации
кислорода в воздухе. В холодный период года наблюдаются резкие перепады
атмосферного давления на 5-13 мм рт. ст. Быстро нарастая, такие перепады
предъявляют повышенные требования к организму животного.
В данный период года наблюдалось значительное повышение
кислорода,
который
концентрации
находился
благоприятно
на
уровне
сказывалось
на
32,0%.
работе
Повышение
его
респираторной,
сердечнососудистой и репродуктивной системе организма.
Однако резкое повышение атмосферного давления и увеличение
концентрации кислорода приводило к повышению спастических реакций у
ослабленного организма.
168
4.2.2. Состояние микроклимата в животноводческих помещениях
в холодный период года
Изменяющиеся
оказывают
параметры
влияние
на
природно-климатических
состояние
микроклимата
условий
животноводческих
помещений. Состояние микроклимата в холодный период года непременно
сказывается на физиологоиммунном статусе животного.
Особенно
важно
животноводческих
поддержание
помещениях
в
оптимального
холодный
период
микроклимата
года,
так
в
как
новорожденные животные особенно чувствительны к температурному
режиму, поскольку в первые дни жизни поросята не обладают терморегуляторной способностью и могут быть подвержены переохлаждению. Важным
моментом является поддержание нормальной влажности, так как высокая
влажность в среде обитания животных в сочетании с низкой нестабильной
температурой может служить предрасполагающим фактором возникновения
внутренних незаразных болезней животных; повышает теплоотдачу и
негативно влияет на приросты живой массы.
В таблице 31 отражены показатели температурно-влажностного
режима в животноводческих помещениях в холодный период года. По
полученным данным, температура воздуха в животноводческих помещениях
находилась в пределах нормы и отвечала зоогигиеническим требованиям.
В помещениях для поросят она колебалась от 18 до 25ºС, данный показатель
воздушной среды поддерживался до 10-суточного возраста. Температурный
режим несколько снижался в помещениях, где содержались поросята
молочной и молочно-растительной формы кормления. Относительная
влажность в помещении на 30 сутки жизни животных в среднем составляла
80%, температура воздуха +11ºС. Такой же температурный режим воздуха
поддерживался в период доращивания поросят.
В
период
откорма
свиней
в
животноводческих
помещениях
температура воздуха составляла от +10 до +15ºС, влажность воздуха – от 80
169
до 83%.
Таблица 31
Температурный и влажностный режим в свинарниках
в холодный период года
Возраст
животных, суток
Температура воздуха в
помещениях, ºС
1
21
18− 25
5
10
20
30
60
90
120
180
210
Относительная влажность,
%
73
70− 76
75
70  80
21
18  25
21
18  25
14
10  16
11
9  13
10
8  14
10
8  14
13
10  15
13
10  16
14
10  16
77
62  82
74
64  84
80
78  84
79
76  83
82
76  88
83
80  86
77
64  84
82
78  88
С возрастом животных в свинарниках повышалась температура и
относительная влажность воздуха. Изменения условий микроклимата, повидимому, связано с физиологическим ростом животных и изменяющимися
природно-климатическими параметрами в зоне обитания свиней. Животные
больше расходуют корма, накапливаются продукты переваривания корма,
тратится много воды и выделяется большое количество влаги в виде
испражнений, выдыхаемого воздуха и испарения влаги с поверхности кожи.
В оценке технологии большое значение имеет контроль за накоплением
диоксида углерода в помещении, по концентрации которого рассчитывается
мощность вентиляции в животноводческих помещениях. Накопление
диоксида углерода в помещениях свыше предельно допустимой верхней
границы указывает на то, что помещение переполнено животными или
несовершенна работа вентиляции.
170
Избыток диоксида углерода в воздушной среде (свыше 0,2%)
помещения ведет к ацидотическому состоянию, понижается усвояемость
корма и увеличивается его расход на единицу прироста живой массы.
Замедление обменных процессов в организме одновременно оказывает
негативное влияние на состояние резистентности животных. Результаты
исследований по определению концентрации диоксида углерода в воздушной
среде
на
различных
технологических
этапах
выращивания
свиней
представлены в таблице 32.
В свинарниках температура воздуха колебалась от +17,5 до +20,7ºС,
относительная влажность – от 70,8 до 88,0%, скорость движения воздуха – от
0,27 до 0,37 м/с, концентрация углекислого газа – от 0,15 до 0,21%, аммиака –
от 14 до 20 мг/м³, то есть основные показатели влажностно-температурного
режима были близки к рекомендуемым нормам ОНТП-2-77 (А. П. Онегов и
др., 1984).
В процессе оценки микроклимата важным показателем является
бактериальная загрязненность воздушной среды в помещениях. По ее
уровню можно
прогнозировать вероятность вспышки инфекционных
болезней, поскольку не исключается возможность наличия инфекционных
агентов в составе регистрируемых микробных колоний. Изложенное явилось
предпосылкой для определения бактериальной загрязненности воздушной
среды в зоне нахождения животных в разные периоды года. Результаты
исследований представлены в таблице 33.
Таблица 32
Концентрация диоксида углерода и аммиака в воздухе свинарников в
холодный период года
Возраст животных, суток
1
Концентрация СО2, %
2
1
0,12
0,10  0,14
5
10
0,12
0,10  0,14
0,14
0,12  0,18
171
Концентрация NН3, мг/м3
3
8
6  10
8
6  10
8
6  10
10
8  12
10
8  12
12
8  12
12
8  12
10
8  12
12
10  14
12
10  14
0,14
0,12  0,18
20
0,20
0,18  0,24
0,20
0,18  0,24
0,18
0,16  0,20
0,20
0,18  0,24
0,22
0,22  0,24
0,22
0,20  0,24
30
60
90
120
180
210
Таблица 33
Бактериальная загрязненность воздушной среды свинарников в холодный
период года, тыс. М.Т./м3
Показатель
Возраст
животных, суток
Значения показателя
1
5
Бактериальная
126,6
130,4
загрязненность
100,4  152,8 100,2  160,6
тыс. М.Т./м3
Возраст
животных, суток
60
90
Бактериальная
130,6
148,4
загрязненность
120,5  140,7 128,4  168,4
тыс. М.Т./м3
Анализируя
данные
таблицы
10
20
30
142,6
120,4  165,2
155,4
140,8  170,5
160,4
140,4  180,4
120
180
210
192,4
183,2− 201,6
200,1
179,6  220,6
190,8
160,6  220,4
33,
необходимо
отметить,
что
бактериальная загрязненность воздушной среды имела тенденцию к
повышению по мере увеличения срока пребывания животных в секциях и
повышения их живой массы.
В
Самарской
области
длительность
периода
с
отрицательной
температурой воздуха составляет 45-50% от календарного года. Период со
среднесуточной температурой -10ºС (и ниже) длится от 100 до 130 дней. При
напольном содержании свиней в помещениях без выгулов в условиях почти
172
полной ограниченности движения создание оптимального микроклимата
приобретает первостепенное значение.
Потенциальная производительность животных из-за неудовлетворительных зоогигиенических условий нередко используется на 20-30%,
сокращается срок жизни животных. Поэтому соблюдение микроклиматических условий в промышленном животноводстве является важнейшим
резервом увеличения производства продуктов высокого качества.
4.2.3. Оценка морфофизиологического состояния разводимых свиней
в холодный период года
Кровь, циркулируя по замкнутой системе сосудов, обеспечивает клетки
органов и тканей организма необходимыми питательными веществами и
выводит продукты метаболизма. Через кровь координируется, регулируется
деятельность
функциональных
систем,
поддерживается
гомеостаз,
характерный для каждого вида животного. Постоянство состава и свойств
крови может нарушаться, что ведет к патологическим изменениям в
организме
(С.И.
Лютинский,
2005).
Расстройства,
возникающие
в
деятельности клеток, органов, тканей, отражаются на системе крови.
Жизнедеятельность организма зависит, прежде всего, от обеспеченности кислородом органов и тканей. Усваивают и транспортируют кислород
специализированные клетки крови – эритроциты. Они же переносят диоксид
углерода, выполняют некоторые другие функции. Эритроцитов в крови
может быть больше или меньше, это определяется соотношением между
образованием клеток в органах эритропоэза и их разрушением, потерей при
кровотечениях, перераспределением, депонированием.
Внутреннее коллоидное содержание эритроцитов на 34% состоит из
гемоглобина
–
уникального
сложного
окрашенного
соединения
–
хромопротеида, в небелковой части которого (геме) имеется двухвалентное
железо, способное образовывать особые непрочные связи с молекулой
173
кислорода. Именно благодаря гемоглобину осуществляется дыхательная
функция эритроцитов.
Физиологическое состояние организма определяется насыщенностью
крови гемоглобином, белком, участвующем в переносе газов в организме,
который содержится в эритроцитах.
Лейкоциты – разнообразные по морфологическим признакам и
функциям клетки сосудистой крови. В организме животных они выполняют
многообразные функции, направленные, прежде всего, на защиту организма
от чужеродного влияния путем фагоцитарной активности, участвует
в формировании гуморального
и клеточного
иммунитета, а также
в восстановительных процессах при тканевом повреждении.
Газообмен между атмосферным воздухом и внутренней средой
организма осуществляют органы дыхания. По частоте и глубине дыхания
определяют физиологическое состояние организма. Доставка кислорода
клеткам органов и тканей животного организма обеспечивает аэробное
окисление
углеводов,
жиров
и
белков.
При
сгорании
субстратов
освобождается энергия, необходимая для жизнедеятельности животных,
поддерживая их продуктивность.
Из вышеописанного следует, что на морфологическое состояние
живого организма оказывают влияние изменяющиеся природно-климатические и микроклиматические условия в зоне обитания животного.
4.2.4. Влияние холодного периода года на физиологическое состояние
организма свиней
Наиболее важными физиологическими показателями, характеризующими изменения, происходящие в
организме, являются: температура тела,
частота дыхания и пульс (табл. 34).
Таблица 34
Физиологические показатели свиней в холодный период года
Группа животных
174
Показатели
1
КБП
2
контрольная
дюрок
йоркшир
3
4
1 сутки
Температура
39,6±0,05 39,7±0,06 39,4±0,06
тела, 0С
Частота
дыхания,
77,5±1,76 77,1±2,03 76,9±1,85
дых. движ./мин
Частота пульса, 186,3±12,0
191,6±11,82 193,4±11,72
уд./мин
5
5 суток
Температура
39,5±0,12 39,6±0,12 39,6±0,18
тела, 0С
Частота
дыхания,
72,2±2,16 27,4±2,13 72,3±1,92
дых. движ./мин
Частота пульса,
184,1±10,8 186,3±11,6 184,4±11,3
уд./мин
10 суток
Температура
39,4±0,12 39,4±0,16 39,5±0,11
тела, 0С
Частота
дыхания,
68,7±0,27 66,8±0,25 66,4±0,24
дых. движ./мин
Частота пульса, 167,5±11,3
166,8±12,01 168,4±11,17
уд./мин
7
20 суток
Температура
39,1±0,17 39,2±0,19 39,5±0,12
тела, 0С
Частота
дыхания,
64,7±0,52 60,5±0,47 62,9±0,34
дых. движ./мин
Частота пульса,
162,1±12,5 161,9±11,7 162,4±11,6
уд./мин
30 суток
Температура
39,1±0,12 39,2±0,15 38,8±0,16
тела, 0С
КБП
5
опытная
дюрок
6
йоркшир
7
39,5±0,04
39,5±0,05
39,6±0,04
76,5±2,12
76,8±2,08
77,2±1,69
185,2±11,12 185,4±11,87 186,1±12,14
39,4±0,14
39,3±0,12
39,5±0,14
71,0±2,14
71,4±2,18
71,4±1,69
182,4±11,2 182,4±11,2 185,4±11,5
39,1±0,10
39,0±0,10
39,2±0,12
64,4±0,20
63,6±0,21
64,8±0,24
164,4±12,28 162,5±11,38 164,1±11,41
38,8±0,16
39,7±0,13
38,8±0,14
56,8±0,58
60,4±0,61
58,6±0,31
160,8±11,3 160,6±12,1 161,2±12,4
38,6±0,12
38,5±0,14
38,7±0,17
Окончание табл. 34
1
2
3
4
5
6
7
Частота
дыхания,
62,3±0,20 60,2±0,22 58,4±0,31 54,3±0,28 55,7±0,32 55,9±0,27
дых. движ./мин
Частота пульса,
157,4±11,6 158,2±11,2 156,3±11,2 146,3±10,2 142,4±12,1 150,3±12,8
уд./мин
60 суток
Температура
38,8±0,18 39,0±0,15 39,1±0,12 38,7±0,11 38,6±0,17 38,6±0,16
тела, 0С
Частота
дыхания,
36,2±0,31 36,2±0,30 37,5±0,28 34,6±0,22 34,5±0,24 35,1±0,26
дых. движ./мин
175
Частота пульса,
135,5±11,5 138,6±10,3 144,4±12,5
уд./мин
90 суток
Температура
38,7±0,17 38,7±0,15 38,8±0,12
тела, 0С
Частота
дыхания,
34,5±0,20 37,8±0,22 34,2±0,18
дых. движ./мин
Частота пульса,
126,8±13,2 128,4±12,5 132,2±11,8
уд./мин
120 суток
Температура
38,6±0,15 38,7±0,18 38,7±0,15
тела, 0С
Частота
дыхания,
33,3±0,18 33,7±0,21 34,1±0,24
дых. движ./мин
Частота пульса,
116,9±12,1 122,4±13,2 120,2±10,9
уд./мин
180 суток
Температура
38,5±0,20 38,6±0,18 38,8±0,16
тела, 0С
Частота
дыхания,
36,4±0,28 36,5±0,28 36,7±0,29
дых. движ./мин
Частота пульса,
116,4±13,5 118,8±18,8 120,4±13,3
уд./мин
210 суток
Температура
38,6±0,15 38,4±0,12 38,6±0,14
тела, 0С
Частота
дыхания,
32,8±0,21 32,6±0,18 32,7±0,17
дых. движ./мин
Частота пульса,
117,0±11,3 117,2±11,8 118,8±12,5
уд./мин
120,4±10,2 126,6±11,3 125,8±12,2
38,4±0,18
38,6±0,17
38,5±0,14
32,5±0,21
32,6±0,18
32,6±0,17
116,5±12,4 118,6±11,9 118,8±12,6
38,5±0,16
38,6±0,17
38,5±0,14
32,5±0,19
32,5±0,18
32,6±0,20
115,8±11,7 115,4±12,4 116,2±12,7
38,3±0,32
38,5±0,26
38,4±0,21
34,6±0,21
36,4±0,26
36,2±0,24
116,2±11,4 114,6±12,4 114,4±12,6
38,5±0,15
38,5±0,16
38,4±0,18
32,5±0,16
32,4±0,15
32,4±0,18
115,7±12,4 116,8±13,1 116,4±12,6
Установлено, что температура тела у новорожденных поросят в первый
день внеутробной жизни находилась в пределах от 39,4±0,06 до 39,7±0,06ºС,
частота дыхания – от 76,5±2,12 до 77,1±1,69 дыхательных движений в
минуту, частота пульса – от 182,2±11,12 до 193,4±11,72 ударов в минуту
(табл. 34). Поросятам опытных групп в день рождения внутримышечно
вводили иммунокорректор тимозин-α1. У животных опытных групп на
5 сутки жизни температура тела составляла от 39,3±0,12 до 39,5±0,14ºС,
частота дыхания – от 71,0±2,14 до 71,4±2,18 дыхательных движений в
176
минуту, частота пульса – от 182,4±11,2 до 185,4±11,5 ударов в минуту, то
есть тимозин-α1 оказывал положительное влияние на физиологическое
состояние поросят опытных групп.
У 10-суточных поросят температура тела в опытных группах
колебалась от 39,1±0,10 до 39,2±0,12ºС, в контрольных – от 39,4±0,12 до
39,5±0,11ºС. Повышенные показатели температуры у животных контрольных
групп, по-видимому, связаны с повышением теплопродукции и теплоотдачи
организма в ответ на воздействие изменяющихся факторов природноклиматических и микроклиматических условий в зоне их обитания.
У
20-суточных
поросят
физиологические
показатели
стабилизировались и составляли в опытных группах: частота дыхания
(от 56,8±0,58 до 60,4±0,61 дых. движ./мин (рис. 18), частота пульса
(от 160,6±12,1 до 161,2±12,4 уд./мин); в контрольных соответственно
(от 60,5±0,47 до 64,7±0,52 дых. движ./мин) и (от 161,9±11,7 до 162,4±11,6
уд./мин).
Отъем поросят от матерей происходил в более холодное время года –
это декабрь месяц, когда организм животных тратит энергию для согревания
собственного тела. Так, у 30-суточных поросят в опытных группах
физиологические показатели более стабильные по сравнению с таковыми
Число ударов в минуту
животных контрольных групп.
80
70
60
50
40
30
1
5
10
20
30
60
Контроль
Опыт
90
120
180
210
Возраст, сутки
177
Рис. 18. Динамика частоты дыхания у свиней крупной белой породы
в холодный период года
Шестидесятые сутки жизни животных совпадал с более морозным
временем года, когда повышена солнечная активность, влажность воздуха,
высокая концентрация кислорода в воздухе, снижается содержание диоксида
серы, диоксида азота, оксида углерода в атмосфере, в животноводческих
помещениях также снижается бактериальная загрязненность воздуха и
концентрация диоксида углерода и аммиака. Однако для поддержания
постоянства внутренней среды организму животных необходимо как можно
больше перерабатывать питательных веществ. По полученным данным
физиологические показатели у 60-суточных поросят в опытных группах
оставались на более высоком уровне по сравнению с таковыми в
контрольных, то есть животные контрольных групп, по-видимому, больше
тратили энергии для согревания и формирования защитных сил организма в
ответ на воздействие вредных факторов внешней среды.
У 90-, 120-, 180-, 210-суточных свиней физиологические показатели
были стабильны, особенно в опытных группах. Межпородные различия
сохранялись в контрольных группах свиней. Частота пульса у 120-суточных
свиней породы дюрок выше на 1,20%, дыхание – 4,70% относительно
таковой свиней крупной белой породы, в опытной группе отличий нет.
У 210-суточных животных во всех группах изучаемые физиологические
показатели оставались примерно на одинаковом уровне.
По результатам изучения возрастных особенностей физиологических
показателей
свиней
надо
отметить,
что
внутримышечное
введение
тимозина-α1 оказывало положительное влияние на организм животных,
способствовало адаптации организма к изменяющимся факторам природноклиматических и микроклиматических условий в холодный период года.
4.2.5. Динамика морфологического состава крови свиней
в холодный период года
178
Постнатальный период развития свиней характеризовался количественными изменениями форменных элементов в крови. В таблице 35 приведены
данные, отражающие возрастные особенности количественных изменений
форменных элементов крови свиней разных генотипов, разводимых в
условиях свинокомплекса ЗАО «СВ-Поволжское» Самарской области.
Таблица 35
Количественные изменения форменных элементов крови свиней
в холодный период года
Возраст,
сутки
КБП
1
контроль
2
опыт
3
1
8,86±0,11
8,12±0,21
5
10
20
30
60
90
120
180
210
7,21±0,11
13,02±0,29
12,11±0,18
8,30±0,21
6,06±0,20
6,44±0,14
6,88±0,21
6,91±0,20
7,06±0,18
7,94±0,21**
13,96±0,26*
12,89±0,22**
9,14±0,21**
6,94±0,22**
6,91±0,18*
7,69±0,22**
7,18±0,21
7,65±0,27
1
5
10
20
80,96±0,98
53,14±1,01
46,08±0,74
96,21±0,71
81,24±1,06
56,15±1,15*
48,25±0,82*
98,85±1,09*
Группа животных
дюрок
контроль
опыт
4
5
12
Эритроциты, 10 /л
8,35±0,24
8,26±0,16
7,16±0,12
7,84±0,24**
12,64±0,21 13,39±0,22*
12,04±0,14 12,64±0,18**
8,12±0,21 9,06±0,18***
5,04±0,26 6,78±0,27***
6,21±0,21
6,77±0,18*
6,54±0,24
7,13±0,16*
6,59±0,26
7,27±0,18*
7,02±0,22
7,85±0,19**
Гемоглобин, г/л
80,36±0,78
80,44±0,81
53,02±1,08 56,08±1,12*
45,15±1,04 47,58±0,59*
94,60±1,06 97,82±0,87*
йоркшир
контроль
опыт
6
7
8,47±0,21
8,36±0,18
7,14±0,11
12,10±0,27
11,67±0,26
7,86±0,26
5,73±0,12
6,18±0,28
6,12±0,21
6,89±0,28
7,01±0,23
7,61±0,21*
13,22±0,33**
12,12±0,22*
8,57±0,13*
6,64±0,14***
6,95±0,23*
7,05±0,22**
7,95±0,21**
7,56±0,28
80,77±0,69
53,02±1,03
45,05±0,61
95,31±1,17
80,54±0,74
56,04±1,21*
46,97±0,75*
96,42±0,95
Окончание табл. 35
1
2
3
30
60
95,61±1,25
100,31±2,01
98,97±1,14*
105,68±2,11
94,34±0,82 97,25±1,18* 93,37±1,37
100,09±2,15 105,14±1,31* 100,02±2,04
97,24±1,24*
104,81±1,32*
90
120
104,61±1,41 108,94±1,54*
103,03±2,07 107,78±1,39*
104,11±2,12 108,65±1,26 103,17±2,18
102,07±1,71 107,61±2,21* 101,67±1,89
108,53±1,31*
106,81±1,52*
180
210
103,36±2,31
105,12±2,17
103,06±2,18
105,10±1,96
102,85±2,21
104,12±1,64
105,44±1,86
107,31±1,77
5,11±0,11
5,13±0,10
5,02±0,12
5,31±0,14
106,33±1,69
109,13±1,48
1
5,10±0,13
5,12±0,18
5
5,05±0,12
5,46±0,14*
4
5
105,56±2,24
108,71±2,31
Лейкоциты, 109/л
5,11±0,19
5,12±0,12
5,02±0,12
179
5,37±0,11*
6
7
10
20
5,12±0,12
5,36±0,14
5,47±0,14*
5,82±0,12**
5,05±0,14
5,26±0,19
5,39±0,12*
5,83±0,17*
5,01±0,12
5,14±0,11
5,32±0,10*
5,65±0,15*
30
60
8,04±0,14
13,14±0,29
8,98±0,12***
13,87±0,21*
7,82±0,21
13,06±0,22
8,42±0,28
13,68±0,13*
7,61±0,18
12,86±0,18
8,32±0,21**
13,42±0,21*
90
120
12,61±0,17
12,14±0,21
13,15±0,21*
12,95±0,20**
12,42±0,21
12,05±0,24
13,09±0,23*
12,68±0,21*
12,14±0,18
11,98±0,19
13,08±0,31**
12,45±0,14*
180
210
12,64±0,24
13,64±0,26
13,35±0,21*
14,14±0,16
12,24±0,18
13,20±0,16
13,18±0,26**
14,04±0,24**
12,12±0,16
13,18±0,20
12,95±0,22**
14,13±0,31**
Установлено, что количество эритроцитов в крови новорожденных
поросят во всех группах находилось примерно на одинаковом уровне и
составляло от 8,12±0,16·1012/л до 8,86±0,11·1012/л. Пятый день жизни поросят
в постнатальном онтогенезе характеризовался снижением данного показателя
во всех группах, у контрольных животных крупной белой породы число
эритроцитов было 18,23%, породы дюрок – 9,64%, породы йоркшир – 14,26%
относительно аналогичных показателей суточных поросят. В опытной группе
снижение числа эритроцитов составило у животных крупной белой породы
5,45%, дюрок – 5,09%, йоркшир – 8,98%.
По
результатам
исследований
новорожденным поросятам опытных
необходимо
групп
отметить,
внутримышечно
что
вводили
иммунокорректор тимозин-α1 и это способствовало сохранению числа
эритроцитов в крови и повышению жизнеспособности животных в новых
условиях постнатального онтогенеза в холодный период года.
У 10-суточных поросят, то есть в период молочной формы кормления,
во всех исследуемых группах происходило увеличение числа эритроцитов
крови – от 12,10±0,17·1012/л до 13,96±0,26·1012/л (р<0,05), однако данный
показатель у поросят опытных групп был выше относительно такового
180
контрольных. В конце молочно-растительной формы кормления отмечалось
повторное снижение количества эритроцитов – от
7,86±0,26·1012/л до
9,14±0,21·1012/л (р<0,01). У 30-суточных поросят крупной белой породы
опытной группы данный показатель был выше на 9,2%, дюрок – 10,36%,
йоркшир – 8,29%, чем у контрольных животных такого же возраста.
Использование иммунокорректора тимозин-α1 при выращивании молодняка
свиней в холодный период года позволило сохранить число эритроцитов
в крови поросят на более высоком уровне, что необходимо для поддержания
обмена веществ в организме и повышения жизнеспособности свиней в ответ
на
воздействие
изменяющихся
факторов
природно-климатических
и микроклиматических условий в зоне обитания животных (рис. 19).
Рис. 19. Количественные изменения эритроцитов в крови свиней разных генотипов
в холодный период года
К 60-суточному возрасту поросята как контрольных, так и опытных
групп адаптировались к условиям жизни в холодный период года, так в
контрольной группе крупной белой породы количество эритроцитов в крови
составляло 6,06±0,20·1012/л, в опытной – 6,94±0,22·1012/л (р<0,01), то есть
число эритроцитов в крови опытных свиней было достоверно выше на
12,69%. В контрольной группе поросят породы дюрок данный показатель
составлял 5,84±0,26·1012/л, йоркшир – 5,73±0,12·1012/л, а в опытной группе
соответственно был выше на 13,87 (р<0,001) и 13,71% (р<0,001).
Природно-климатические и микроклиматические условия являются
более благоприятными для растущего организма, что характеризуется
снижением в воздухе концентрации вредных газов, повышением солнечной
активности и концентрации кислорода, а также снижением бактериальной
загрязненности воздуха в животноводческих помещениях.
Количество эритроцитов в крови 90-суточных свиней приблизительно
сохранялось на уровне 60-суточных и в контрольных группах находилось
в пределах от 6,18±0,28·1012/л до 6,44±0,14·1012/л, а в опытных –
от 6,77±0,18·1012/л (р<0,05) до 6,95±0,23·1012/л (р<0,05).
181
В таблице 35 приведены данные по количественному изменению числа
эритроцитов в крови свиней в постнатальном онтогенезе в холодный период
года.
У 120-суточных свиней в крови число эритроцитов снижалось по
сравнению
с
аналогичным
показателем
90-суточных
животных
как
контрольных, так и опытных групп. В крови 120-суточных контрольных
свиней крупной белой породы количество эритроцитов было ниже на 1,02%,
дюрок – 1,96%, йоркшир – 1,46% относительно таковых показателей
животных в возрасте 90 суток, приблизительно на такое же количество ниже
число эритроцитов в крови опытных свиней. У 180- и 120-суточных
животных (во всех исследуемых группах) уровень эритроцитов имел
примерно одинаковое значение. На 210 сутки жизни свиней отмечалось
увеличение количества красных клеток крови, так в контрольных группах
число эритроцитов составляло от 7,01±0,23·1012/л до 7,06±0,18·1012/л, а в
опытных – от 7,56±0,28·1012/л до 7,85±0,19·1012/л (р<0,05).
Степень насыщенности крови гемоглобином отражена в таблице 34.
Из приведенных данных (по результатам исследований) видно, что
концентрация гемоглобина в крови в день рождения поросят находилась в
пределах от 80,36±0,78 до 80,96±0,98 г/л.
У
5-суточных
животных
происходило
снижение концентрации
гемоглобина в крови во всех исследуемых группах и в контроле было от
53,02±1,03 до 53,14±1,01 г/л, а в опыте – от 56,04±1,21 г/л (р<0,05) до
56,15±1,15 г/л (р<0,05). Внутримышечное введение поросятам препарата
тимозин-α1 способствовало поддержанию концентрации гемоглобина на
более высоком уровне, так у опытных животных крупной белой породы
данный показатель был выше на 5,35%, дюрок – 5,55%, йоркшир – 5,39%
относительно аналогичного контрольных. Увеличение уровня гемоглобина в
крови
5-суточных
поросят
сопровождалось
повышенным
числом
эритроцитов в опытных группах животных. Снижение концентрации
гемоглобина отмечалось у 10-суточных поросят и составляло в крови
182
контрольных животных от 45,05±0,61 до 46,08±0,74 г/л. В крови животных
опытных групп концентрация гемоглобина была выше у крупной белой
породы на 4,5%, дюрок – 5,11%, йоркшир – 4,09%, относительно таковой
контрольных. С переходом поросят на молочно-растительную форму
питания в крови
повышался уровень гемоглобина и составлял у 20-
дсуточных животных контрольных групп от 94,60±1,06 до 96,21±0,71 г/л,
опытных – от 96,42±0,95 до 98,85±1,09 г/л (р<0,05). Приблизительно на таком
же уровне находился данный показатель в крови 30-суточных поросят.
Концентрация гемоглобина в крови животных повышалась в период их
доращивания, что совпадало с более благоприятными природно-климатическими и микроклиматическими условиями. У 90-суточных свиней контрольных групп данный показатель составлял по крупной белой породе
104,61±1,41 г/л, дюрок – 104,11±2,12 г/л, йоркшир – 103,17±2,18 г/л,
в
опытных группах был выше соответственно на 4,11; 5,12; 7,19%.
Концентрация гемоглобина в крови у 120- и 180-суточных свиней примерно
соответствовала аналогичным показателям 90-суточных животных. Возраст
свиней
120
и
180
суток
совпадал
с
некоторыми
изменениями
природно-климатических условий в сторону повышения влажности воздуха и
скорости ветра, удлинением продолжительности светового дня и некоторым
повышением содержания
диоксида углерода, аммиака и бактериальной
загрязненности воздуха свинарников.
Двестидесятые сутки жизни свиней совпадали с периодом повышения
температуры воздуха окружающей среды – апрель месяц, то есть время
наступления теплого периода года. Изменяющиеся параметры природноклиматических условий, по-видимому, требуют и изменения адаптационных
показателей животных к условиям обитания. Установлено, что у 210суточных свиней в крови концентрация гемоглобина в контрольных группах
была от 104,12±1,64 до 105,12±2,17 г/л, опытных – от 107,31±1,77 до
109,13±1,48 г/л, то есть животные, которые к основному рациону получали
дополнительно иммунокорректор тимозин-α1 обладали более высокими
183
адаптационными способностями, что выражалось интенсивным синтезом
дыхательного белка – гемоглобина.
В таблице 35 приведены данные по количественному изменению
лейкоцитов в крови свиней разных генотипов в холодный период года.
Рис. 20. Динамика лейкоцитов в крови свиней крупной белой породы
Из приведенных данных следует, что в день рождения поросят в крови
количество лейкоцитов находилось в пределах от 5,10±0,13·10 9/л до
5,13±0,10·109/л. На 5 сутки жизни отмечено небольшое увеличение данного
показателя, однако число лейкоцитов в опытных группах было выше
у крупной белой породы на 7,51%, дюрок – 6,52%, йоркшир – 5,47%
относительно такового в контрольных. На внутримышечное введение
иммунокорректора наиболее чувствительными были поросята крупной белой
породы и невысокий ответ наблюдался у породы йоркшир. С переходом
животных на молочную форму кормления (возраст 10 суток) отмечалось
небольшое увеличение количества лейкоцитов в крови поросят опытных
групп и уменьшение – в контрольных. Однако при смене рациона на
молочно-растительную форму кормления происходило увеличение числа
лейкоцитов в крови контрольных и опытных групп животных. У 30-суточных
поросят крупной белой породы в контрольных группах данный показатель
составлял
8,04±0,14·109/л,
дюрок
–
7,82±0,21·109/л,
йоркшир
–
7,61±0,18·109/л, в опытных группах отмечено его достоверное увеличение
соответственно
на
4,47;
7,13;
8,54%
184
относительно
аналогичного
в
контрольных. По-видимому, адаптация животных, завезенных из Западных
стран, к природно-климатическим условиям Среднего Поволжья сопровождалась повышением в крови числа лейкоцитов, по сравнению с данным
показателем у местных свиней крупной белой породы (рис. 20).
Наивысшее содержание лейкоцитов в крови отмечено у 60-суточных
свиней. В крови контрольных групп их количество составляло от
12,86±0,18·109/л до 13,14±0,29·109/л, в опытных – от 13,42±0,21·109/л до
13,87±0,21·109/л (р<0,05).
В период перевода свиней на откорм (90 суток) происходило
небольшое снижение числа лейкоцитов в крови. В контрольных группах – от
12,14±0,18·109/л до 12,61±0,17·109/л, а в опытных группах количество белых
клеток крови было выше – от 13,08±0,31·109/л до 13,15±0,21·109/л (р<0,05).
Со сменой холодного периода года на теплый совпадал 210-суточный
возраст свиней, что оказывало влияние на физиологоиммунное состояние
организма, который реагировал увеличением числа лейкоцитов в крови. Так,
в контрольных группах количество лейкоцитов было от 13,18±0,20·10 9/л до
13,64±0,26·109/л, опытных – от 14,04±0,24·109/л до 14,14±0,16·109/л (р<0,01).
По результатам определения количественного содержания красной и
белой крови исследуемых групп свиней надо отметить, что процессы
увеличения
и
уменьшения
количества
эритроцитов
и
лейкоцитов
происходили циклично: снижение числа клеток крови в период молочного
питания; повышение числа клеток крови – в ответ организма на менее
благоприятные природно-климатические и микроклиматические условия.
Лейкоцитарная формула крови наиболее конкретно отражает
физиологическое состояние животных на воздействие изменяющихся
факторов природно-климатических и микроклиматических условий в зоне
обитания животных (табл. 36).
В лейкограмме новорожденных животных преобладающими клетками
являлись лимфоциты – от 78,05±1,32 до 79,48±1,52%, нейтрофилы – от
14,52±1,42 до 15,97±1,38%, эозинофилы – от 3,45±0,09 до 3,84±0,11%,
185
базофилы – от 1,08±0,11 до 1,33±0,06%, моноциты – от 0,81±0,03 до
1,33±0,07%. Данные показатели характеризовали физиологически развитых
поросят в 1 сутки жизни в постнатальном онтогенезе. По количественному
содержанию
лимфоцитов
межпородные
различия
незначительны.
У 5-суточных поросят контрольных и опытных групп в лейкограмме
отмечались существенные различия, что выражалось снижением числа
лимфоцитов и увеличением числа нейтрофилов в крови. В таблице 36
приведены
результаты
количественного
содержания
зернистых
и
незернистых лейкоцитов. Внутримышечное введение с суточного возраста
поросятам опытных групп тимозина-α1 вызвало увеличение лимфоцитов в
крови 5-суточных животных. Число лимфоцитов у крупной белой породы –
76,88±1,06% (р<0,05), дюрок – 76,61±1,15% (р<0,05), йоркшир – 76,38±1,13%
(р<0,05). Число сегментоядерных нейтрофилов в опытных группах поросят
крупной белой породы составляло 11,63±1,12%, дюрок – 11,25% (р<0,05),
йоркшир – 11,77±1,15% (р<0,05), в то время как количество эозинофилов
уменьшалось и в крови поросят крупной белой породы было 3,34±0,27%
(р<0,001), относительно аналогичных показателей контрольных групп.
У 10-суточных поросят крупной белой породы в крови число
базофилов снижалось в контрольной
группе на 19,34% относительно
5-суточных и составляло 1,46±0,42%. Число лимфоцитов было 61,66±0,78%,
нейтрофилов – 31,06%, эозинофилов – 4,31±0,17%, моноцитов – 1,51±0,46%,
аналогичные изменения происходили в крови других групп свиней.
У 30-суточных поросят в лейкограмме соотношение количества
зернистых и незернистых лейкоцитов примерно составляло 1:1, такое
соотношение свидетельствовало о физиологическом здоровье животных.
Использование иммунокорректора тимозин-α1 способствовало нормализации
количественного соотношения форменных элементов крови, повышению
защитных сил организма в ответ на воздействие вредных факторов внешней
среды в зоне обитания животных.
Таблица 36
186
Лейкограмма свиней разных генотипов в холодный период года
Показатели, %
1
КБП
Дюрок
Йоркшир
КБП
контроль
2
3
Дюрок
Йоркшир
опыт
4
5
6
7
1 сутки
Базофилы
1,21±0,21
1,02±0,09
1,12±0,11
1,33±0,06
1,08±0,11
1,14±0,17
Эозинофилы
3,84±0,11
3,45±0,09
3,63±0,12
3,63±0,17
3,53±0,07
3,71±0,21
Ю. нейтрофилы
0,74±0,08
0,93±0,02
0,83±0,04
0,72±0,07
0,91±0,01
0,79±0,03
П. нейтрофилы
2,31±0,13
2,43±0,13
2,62±0,14
2,64±0,12
2,47±0,16
2,64±0,09
С. нейтрофилы
11,61±1,51 12,61±2,36 11,42±1,32
11,22±3,21
11,32±2,41
11,45±1,29
Лимфоциты
79,48±1,52 78,23±1,32 79,26±1,32
79,52±1,26
78,05±1,32
79,13±1,12
Моноциты
0,81±0,03
0,94±0,05
1,31±0,09
1,14±0,07
1,33±0,07
1,12±0,06
5 суток
Базофилы
1,81±0,04
1,63±0,07
1,72±0,09
1,84±0,04
1,74±0,06
1,31±0,05***
Эозинофилы
4,23±0,31
4,13±0,32
4,42±0,21
3,34±0,27***
4,26±0,31
4,51±0,17
Ю. нейтрофилы
1,32±0,09
1,84±0,18
1,63±0,17
1,72±0,26
1,61±0,15
1,41±0,14
П. нейтрофилы
3,44±0,17
3,41±0,31
3,23±0,26
3,35±0,26
3,32±0,12
3,36±0,24
С. нейтрофилы
14,48±1,05 14,72±1,42 14,74±1,86
11,63±1,12
11,25±1,06*
11,77±1,15*
Лимфоциты
73,04±1,32 72,95±1,32 73,05±1,21
76,88±1,06*
76,61±1,15*
76,38±1,13*
Моноциты
1,18±0,04
1,24±0,06
1,21±0,06
1,26±0,05
1,30±0,36
1,25±0,21
1,52±0,28
1,32±0,07
1,21±0,09
10 суток
Базофилы
1,46±0,42
1,30±0,35
1,43±0,34
Продолжение табл. 36
1
2
3
4
5
6
7
Эозинофилы
4,31±0,17
4,85±0,28
4,65±0,18
4,57±0,24
4,83±0,32
4,76±0,30
Ю. нейтрофилы
2,45±0,35
2,60±0,35
2,65±0,34
2,35±0,28
2,53±0,34
2,25±0,22
П. нейтрофилы
5,16±0,34
5,95±0,34
5,89±0,41
5,25±0,44
5,85±0,28
5,99±0,51
С. нейтрофилы
23,45±1,04 21,65±0,63 21,57±0,85
21,15±0,54*
20,33±0,27*
20,03±0,61*
Лимфоциты
61,66±0,78 61,74±0,52 62,20±2,12
63,58±0,62*
63,47±0,67*
63,69±0,54*
Моноциты
1,51±0,46
1,80±0,22
1,84±0,26
1,76±0,36
1,91±0,19
1,61±0,27
20 суток
Базофилы
1,81±0,26
1,89±0,11
1,84±0,13
Эозинофилы
4,02±0,31
3,98±0,12
3,84±0,36
Ю. нейтрофилы
2,65±0,08
2,92±0,22
2,86±0,07
2,43±0,12
2,33±0,11*
2,14±0,15***
П. нейтрофилы
7,37±0,12
7,84±0,52
7,72±0,14
6,53±0,32
6,49±0,41*
7,13±0,24*
С. нейтрофилы
25,74±1,05 25,04±0,61 26,91±1,05
27,37±1,04
27,05±0,77*
28,12±0,81
Лимфоциты
56,16±1,28 55,58±1,03 54,37±1,21
58,96±0,66*
58,16±0,64*
57,64±1,02*
Моноциты
2,25±0,19
1,18±0,13*** 2,06±0,12*** 1,28±0,09***
2,75±0,11
2,46±0,14
187
1,49±0,13
1,35±0,09*** 1,35±0,05**
2,44±0,27*** 2,56±0,14*** 2,34±0,31**
30 суток
Базофилы
1,78±0,14
1,86±0,12
1,64±0,14
1,61±0,15
1,74 ±0,26
1,68±0,18
Эозинофилы
3,42±0,28
3,61±0,24
3,42±0,24
3,31±0,23
3,48±0,22
3,56±0,18
Ю. нейтрофилы
0,84±0,06
0,96±0,04
0,91±0,04
0,96±0,06
1,02±0,06
0,76±0,04
П. нейтрофилы
7,46±0,28
7,88±0,34
8,18±0,26
7,54±0,40
8,21±0,36
8,12±0,44
С. нейтрофилы
30,71±0,94 29,92±0,78 30,65±1,04
28,01±1,01*
27,11±1,12*
27,20±1,26*
Лимфоциты
54,02±1,08 53,51±1,34 53,59±1,36
56,92±0,98*
56,98±1,08*
57,12±1,12*
Моноциты
1,65±0,36
1,65±0,28
1,46±0,28
1,56±0,26
1,66±0,24
1,61±0,24
60 суток
Базофилы
0,69±0,01
0,71±0,02
0,64±0,06
0,59±0,05*
0,66±0,03
0,65±0,05
Эозинофилы
5,55±0,35
4,85±0,18
5,31±0,08
4,46±0,21**
4,70±0,28
4,12±0,21***
Ю. нейтрофилы
2,01±0,11
2,13±0,20
1,55±0,05
1,14±0,04***
2,61±0,12*
1,10±0,11**
П. нейтрофилы
8,46±1,05
8,96±1,24
8,51±1,18
8,81±0,34
8,40±1,06
9,06±1,32
С. нейтрофилы
33,90±2,03 33,72±1,92 33,54±2,04
31,90±1,15
30,76±1,84
32,51±2,03
Лимфоциты
45,56±1,57 45,77±1,14 45,95±1,15
50,12±1,60**
49,06±1,55*
49,34±1,27*
Моноциты
3,84±0,16
3,03±0,17***
3,78±0,07
3,23±0,17***
4,03±0,21
4,50±0,18
90 суток
Базофилы
0,78±0,06
0,72±0,06
1,03±0,04
0,66±0,04
0,65±0,07
0,88±0,03
Эозинофилы
4,44±0,13
4,55±0,12
4,15±0,14
4,21±0,13
4,04±0,10***
3,97±0,15
Ю. нейтрофилы
1,13±0,06
1,19±0,04
1,18±0,06
1,11±0,09
1,13±0,02
1,09±0,04
П. нейтрофилы
8,95±0,24
9,23±1,14
8,86±1,32
8,81±0,18
8,95±0,25
8,75±1,12
Окончание табл. 36
1
2
3
4
5
6
7
32,80±1,11
32,09±1,14*
С. нейтрофилы
35,23±1,02 34,94±1,06 35,24±1,06
32,03±1,24*
Лимфоциты
45,82±1,16 45,51±1,02 44,99±1,13
50,08±1,14** 49,33±1,04** 49,61±1,23**
Моноциты
3,66±0,12
3,10±0,16**
3,88±0,18
4,55±0,23
3,10±0,12*** 3,61±0,14***
120 суток
Базофилы
0,80±0,05
0,78±0,06
1,06±0,04
0,61±0,04**
0,68±0,05
0,97±0,05
Эозинофилы
4,22±0,19
4,13±1,06
4,15±0,17
3,98±0,15
3,90±0,18
3,23±1,12
Ю. нейтрофилы
1,15±0,18
1,15±0,17
1,14±0,04
1,16±0,11
1,14±0,07
1,13±0,08
П. нейтрофилы
8,77±1,64
8,95±1,19
8,83±1,12
8,60±0,81
8,75±1,06
8,69±1,16
С. нейтрофилы
34,26±0,82 34,20±0,73 34,97±1,06
32,10±0,56*
32,06±0,76*
32,48±0,72*
Лимфоциты
47,17±1,13 46,88±1,08 46,50±1,24
50,37±1,14*
50,03±1,17*
50,66±1,37
Моноциты
3,64±0,17
3,18±0,03**
3,44±0,03*
2,84±0,02*
3,91±0,19
3,35±0,21
180 суток
Базофилы
1,04±0,13
1,01±0,15
1,01±0,15
0,80±0,16
1,19±0,19
1,10±0,18
Эозинофилы
5,22±0,26
5,53±0,16
5,32±0,18
5,48±0,21
5,35±0,18
5,55±0,14
188
Ю. нейтрофилы
0,94±0,05
0,72±0,04
0,72±0,11
1,04±0,04
0,91±0,06**
0,97±0,06*
П. нейтрофилы
7,29±0,32
8,14±0,34
8,78±0,14
8,22±0,24*
8,19±0,16
7,96±0,54
С. нейтрофилы
34,78±0,64 34,58±1,26 34,42±1,01
32,05±1,11*
31,15±0,75* 31,13±0,74**
Лимфоциты
47,06±1,06 46,44±1,04 46,18±1,04
49,95±1,02*
49,57±1,16* 49,54±0,82**
Моноциты
3,67±0,28
2,46±0,24***
3,64±0,21
3,75±0,24
3,58±0,16
3,57±0,26
210 суток
Базофилы
0,85±0,26
0,71±0,44
0,63±0,36
0,91±0,27
0,75±0,32
0,73±0,28
Эозинофилы
5,56±0,47
5,45±0,67
4,69±0,64
4,83±0,30
4,78±0,35
4,54±0,51
Ю. нейтрофилы
0,92±0,14
0,83±0,16
0,51±0,13
0,74±0,11
1,18±0,14
1,12±0,17**
П. нейтрофилы
8,61±0,32
8,43±0,28
8,83±0,21
7,63±0,28*
7,63±0,28*
7,85±0,31**
С. нейтрофилы
38,74±0,67 39,94±1,07 39,92±1,04
35,83±1,06*
Лимфоциты
42,32±1,02 41,84±1,02 41,72±0,62
46,85±1,05** 45,81±1,06** 45,32±1,01**
Моноциты
3,00±0,19
В
контрольных
2,80±0,33
3,70±0,21
3,21±0,26
36,73±0,56** 37,43±1,03*
3,12±0,36
3,01±0,31
группах свиней в период доращивания (возраст
60 суток) в крови лимфоциты находились в пределах от 45,56±1,57 до
45,95±1,15%, в опытных группах данный показатель был выше – от
49,06±1,55 (р<0,05) до 50,12±1,60% (р<0,01). Число моноцитов в крови
60-суточных животных крупной белой породы уменьшалось и составляло
в контроле 3,84±0,16, а в опыте – 3,03±0,17% (р<0,001), такие же изменения
происходили у свиней породы дюрок и йоркшир.
Внутримышечное введение тимозина-α1 животным согласно разработанной схеме, приведенной в методике работы, способствовало формированию и становлению защитных сил организма в ответ на воздействие
неблагоприятных факторов окружающей среды.
На 90 сутки жизни свиней в постнатальном онтогенезе соотношение
клеточных форм в лейкограмме мало изменялось и находилось примерно на
одинаковом уровне до 120-суточного возраста. В конце холодного периода
года, когда температура воздуха повышалась, увеличивалась концентрация
вредных газов, происходило увеличение в крови числа эозинофилов.
У 180-суточных животных в опытных и контрольных группах данный
показатель находился в пределах от 5,22±0,26 до 5,55±0,14%, в то время как у
189
120-суточных был от 3,90±0,18 до 4,22±0,19%, то есть с изменением
природно-климатических и микроклиматических параметров (от благоприятных
к
менее
благоприятным
условиям)
происходило
увеличение
количества эозинофилов – клеток способных нейтрализовать токсические
соединения в организме животных.
В лейкограмме 210-суточных свиней наблюдалось снижение числа
лимфоцитов и повышение числа нейтрофилов, но данные показатели
находились в пределах физиологической нормы, характерной для здорового
организма животных. Некоторое увеличение числа нейтрофилов, как
основных микрофагов, по-видимому, связано не только с формированием
клеточной формы защиты, но и с более полным усвоением питательных
веществ корма.
4.2.6. Становление биохимического состава крови свиней
в холодный период года
Изменяющиеся факторы природно-климатических и микроклиматических условий в зоне обитания свиней в холодный период года влияют на
биохимические показатели крови. Формирование, рост и развитие организма
в
постнатальном
онтогенезе
сопровождается
количественными
и качественными изменениями концентрации общего белка и его фракций
и
минеральных
веществ.
Соотношение
отдельных
фракций
белка
и минеральных веществ отражают темп роста и развития организма
и характеризуют степень защитных сил организма.
Применение
иммунокорректоров
в
свиноводстве
способствует
поддержанию иммунитета на более высоком уровне в ответ на воздействие
вредных факторов внешней среды, повышает обмен веществ и стимулирует
рост и развитие животных.
4.2.6.1. Динамика концентрации общего белка и его фракций
у свиней разных генотипов в холодный период года
190
Установлено, что у суточных поросят во всех группах концентрация
общего белка в крови находилась на одинаковом уровне в пределах от
58,64±1,11 до 58,82±1,61 г/л, межпородные различия незначительны
(табл. 37). Альбуминовая фракция в крови поросят исследуемых групп
составляла от 48,78±1,05 до 49,41±1,02; глобулиновая – от 50,70±0,47 до
51,11±0,77%.
Внутриутробное
развитие
плодов
свиней
происходило
благополучно, что характеризовалось правильным соотношением альбуминовой и глобулиновой фракций белков в плазме крови и свидетельствовало о
нормальном физиологическом развитии новорожденных поросят. На 5 сутки
жизни свиней концентрация общего белка и его фракций резко возросла во
всех группах животных, в контроле у крупной белой породы составила
75,21±0,56 г/л, дюрок – 75,04±0,75 г/л, йоркшир – 74,34±1,15 г/л, в опытных
группах была выше соответственно на 3,38; 3,47; 3,15% относительно
таковой в контрольных. В плазме крови 5-суточных поросят значительно
снизилась
концентрация
альбуминов
по
сравнению
с
аналогичным
показателем у суточных животных, в плазме крови животных контрольных
групп (от 27,61±1,76 до 27,82±0,19%), в опытных группах (от 26,91±0,28
(Р<0,01) до 27,78±1,32%). Уровень глобулинов в плазме крови контрольных
групп поросят был повышен и находился в пределах от 71,05 до 72,39%, а в
опытных – от 72,22 до 73,09%. Среди глобулиновых фракций преобладающим
белком
являлся
α-глобулин
(от
26,87±0,24
до
28,74±0,48%).
Концентрация γ-глобулинов значительно повысилась в крови 5-суточных
поросят по сравнению с таковой суточных животных, процент повышения
γ-глобулина составил у поросят контрольной группы крупной белой породы
37,75%, дюрок – 35,94%, йоркшир – 33,20%. Количество γ-глобулина в крови
5-суточных поросят опытных групп был выше у крупной белой породы на
3,61%, дюрок – 2,96%, йоркшир – 4,96% относительно аналогичного
показателя контрольных животных, значит внутримышечное введение
тимозина-α1 повышало концентрацию γ-глобулина от 2,96 до 4,96% в
зависимости от породных особенностей животных.
191
Таблица 37
Динамика общего белка и его фракций у свиней разных генотипов
в холодный период года
Показатели
КБП
Дюрок
Йоркшир
КБП
контроль
1
2
3
Дюрок
Йоркшир
опыт
4
5
6
7
1 сутки
Общий белок‚ г/л
58,82±1,61
58,64±1,11
58,74±1,31
58,91±1,35
58,79±1,55
58,85±1,66
Альбумины‚ %
48,78±1,05
48,89±1,01
49,30±1,12
49,02±1,13
48,94±1,34
49,41±1,02
α-глобулины‚ %
21,82±0,78
21,83±0,85
21,11±0,56
21,10±0,54
21,18±1,05
21,19±0,48
β-глобулины‚ %
16,67±0,33
16,74±0,71
16,47±0,36
17,09±0,55
17,11±0,63
16,54±0,74
γ -глобулины‚ %
12,73±0,22
12,54±0,16
13,12±0,17
12,79±0,18
12,77±0,21
12,86±0,22
5 суток
Общий белок‚ г/л
75,21±0,56
75,04±0,73
74,34±1,15
77,84±1,16*
77,73±1,03*
76,75±0,43*
Альбумины‚ %
27,82±0,19
28,05±0,27
27,61±1,76
26,91±0,28**
27,22±0,24*
27,78±0,32
α-глобулины‚ %
27,60±0,53
28,43±0,44
28,22±0,37
27,48±0,39
28,74±0,48
26,87±0,24**
β-глобулины‚ %
24,13±0,37
23,93±0,28
24,53±0,34
24,42±0,37
23,87±0,73
24,64±0,28
γ-глобулины‚ %
20,45±0,26
19,59±0,20
19,64±0,25
21,19±0,24*
20,17±0,22*
20,71±0,18***
10 суток
Общий белок‚ г/л
72,31±0,43
71,52±0,50
71,67±0,54
73,78±0,54*
73,79±1,04*
73,81±0,49**
Альбумины‚ %
32,91±0,34
33,62±0,18
33,81±0,46
31,58±0,40**
33,54±0,24
32,24±0,29**
α-глобулины‚ %
27,19±0,24
27,97±0,25
28,20±0,44
27,89±0,61
27,06±0,25**
27,76±0,34
β-глобулины‚ %
18,42±0,34
17,82±0,37
17,64±0,64
18,44±0,74
18,26±0,49
18,29±0,36
γ-глобулины‚ %
21,48±0,16
20,59±0,17
20,35±0,27
22,09±0,23*
21,14±0,21*
21,71±0,2***
Продолжение табл. 37
1
2
3
4
5
6
7
20 суток
Общий белок‚ г/л
55,21±0,51
54,50±0,47
54,34±0,54
56,64±0,48*
56,12±0,41**
55,87±0,28*
Альбумины‚ %
34,50±0,73
34,27±0,40
34,61±0,18
33,95±0,24
33,94±0,46
33,87±0,70
α-глобулины‚ %
25,12±0,76
25,84±0,56
25,61±0,28
25,85±0,41
26,18±0,73
26,66±0,38*
β-глобулины‚ %
21,94±0,25
21,83±0,25
21,24±1,21
20,68±0,27*** 20,6±0,21***
20,26±0,74
γ-глобулины‚ %
18,44±0,16
18,06±0,17
18,54±0,17
19,52±0,36** 19,28±0,16***
19,21±0,23*
30 суток
Общий белок‚ г/л
60,91±0,56
60,25±0,54
60,04±0,44
62,64±0,65*
62,23±0,57*
61,72±0,46**
Альбумины‚ %
42,42±0,77
41,28±0,74
40,94±0,57
43,55±0,74
42,11±0,46
41,87±0,38
α-глобулины‚ %
23,88±0,41
24,43±0,21
26,94±0,86
β-глобулины‚ %
19,35±0,24
21,12±0,31
18,56±0,64
γ -глобулины‚ %
14,35±0,28
13,17±0,18
13,56±0,21
20,47±0,27*** 23,55±0,26**
20,17±0,54
20,06±0,33
24,19±0,32**
19,36±0,12**
15,81±0,41** 14,28±0,24*** 14,58±0,22***
60 суток
Общий белок‚ г/л
51,17±0,45
51,21±0,14
50,25±0,26
192
52,35±0,32*
52,20±0,42*
52,29±0,45***
Альбумины‚ %
47,33±0,30
47,24±0,19
47,59±0,32
48,35±0,61
48,19±0,43*
48,74±0,35*
α-глобулины‚ %
20,74±0,29
20,54±0,41
20,82±0,24
21,66±0,20**
21,61±0,17*
21,73±0,31*
β-глобулины‚ %
15,41±0,20
15,65±0,23
15,98±0,33
12,51±0,51*** 12,64±0,29*** 12,73±0,18***
γ-глобулины‚ %
16,52±0,37
16,57±0,21
15,61±0,12
17,48±0,18*
17,56±0,42*
16,80±0,23***
90 суток
Общий белок‚ г/л
62,04±0,53
61,15±0,54
60,33±0,38
63,86±0,75*
62,82±0,64*
61,94±0,72
Альбумины‚ %
45,63±0,64
44,18±0,46
43,60±0,64
43,12±0,45**
43,20±0,39
42,52±0,34
α-глобулины‚ %
24,24±0,32
27,57±0,34
27,24±0,24
24,51±0,24
β-глобулины‚ %
13,01±0,18
12,21±0,19
12,12±0,19
14,15±0,31** 14,09±0,18*** 14,02±0,20***
γ-глобулины‚ %
17,12±0,21
17,04±0,22
17,04±0,18
18,22±0,18*** 18,17±0,19*** 18,07±0,20***
24,54±0,32*** 25,39±0,21***
120 суток
Общий белок‚ г/л
61,27±0,51
61,12±0,42
60,74±0,44
62,82±0,37*
62,32±0,35*
62,12±0,26*
Альбумины‚ %
45,04±0,23
45,17±0,13
45,04±0,38
45,84±0,28*
45,62±0,42
44,14±0,47
α-глобулины‚ %
18,71±0,14
19,24±0,22
19,28±0,12
18,18±0,16*
18,56±0,21*
18,37±0,24***
β-глобулины‚ %
16,43±0,44
15,65±0,24
16,26±0,27
15,24±0,37*
15,35±0,34
16,32±0,29**
γ-глобулины‚ %
19,82±0,22
19,94±0,13
19,42±0,19
20,74±0,17*
20,47±0,21
20,17±0,25*
180 суток
Общий белок‚ г/л
63,33±0,44
63,02±0,32
62,99±0,48
65,18±0,36**
64,23±0,47*
65,12±0,52**
Альбумины‚ %
45,43±0,20
45,24±0,17
45,13±0,24
46,39±0,18***
45,44±0,26
45,74±0,32
α-глобулины‚ %
17,17±0,19
18,50±0,24
18,89±0,31
18,23±0,34**
18,93±0,27
18,88±0,45
β-глобулины‚ %
16,91±0,38
16,54±0,34
16,37±0,24
14,13±0,27*** 15,07±0,19*** 15,18±0,30**
γ-глобулины‚ %
19,89±0,41
19,72±0,14
19,61±0,25
21,25±0,15** 20,56±0,2***
20,20±0,21*
210 суток
Общий белок‚ г/л
66,72±0,44
66,65±0,54
66,47±0,61
68,32±0,47*
68,24±0,43*
68,14±0,51*
Альбумины‚ %
38,48±0,36
38,42±0,41
38,19±0,35
39,18±0,31
39,01±0,42
38,75±0,37
Окончание табл. 37
1
2
3
4
5
6
7
α-глобулины‚ %
19,51±0,24
20,21±0,25
29,53±0,28
18,87±0,35
19,18±0,17***
19,88±0,27
β-глобулины‚ %
24,19±0,24
24,06±0,22
24,13±0,35
23,34±0,24**
23,19±0,31*
23,05±0,33*
γ-глобулины‚ %
17,82±0,18
17,31±0,34
17,15±0,18
18,61±0,15*** 18,62±0,40** 18,32±0,31***
На 10 сутки жизни поросят концентрация общего белка в крови
несколько снижалась – от 71,52±0,50 до 72,31±0,43 г/л в контрольных
группах животных и от 73,78±0,54 (р<0,05) до 73,91±0,49 г/л (р<0,01) – в
опытных. Отмечалось повышение в плазме крови концентрации альбуминов,
снижение β-глобулинов и незначительное повышение γ-глобулинов.
На 20 сутки жизни в постнатальном онтогенезе, по-видимому,
происходили наиболее значительные изменения, так как отмечалось резкое
193
снижение концентрации общего белка в крови поросят. Данный показатель в
плазме крови 20-суточных контрольных животных находился в пределах от
54,30±0,54 до 55,21±0,51 г/л, опытных – от 55,87±0,28 (р<0,05) до 56,64±
±0,48 г/л (р<0,05) (рис. 21). Повышалась концентрация альбуминов, но
снижалась величина γ-глобулинов относительно аналогичных показателей
10-суточных животных. Количество γ-глобулинов в плазме крови 20суточных поросят контрольных групп составляет от 18,06±0,17 до
18,54±0,17%, а опытных групп – от 19,21±0,23 (р<0,01) до 19,52±0,36%
(р<0,01).
Тридцатые
сутки
жизни
поросят
в
постнатальном
онтогенезе
характеризовался повышением концентрации общего белка в плазме крови,
так в контрольной группе поросят крупной белой породы количество общего
белка составляло 60,91±0,56 г/л или было выше на 14,29% относительно
данного показателя 20-суточных животных, также повышалось содержание
альбуминов, однако снижалась концентрация γ-глобулинов.
В таблице 37 приведены результаты исследований по количественному
изменению общего белка и его фракций в крови опытных и контрольных
животных в зависимости от их возраста.
Отъем поросят от матерей, как стресс фактор, оказывал влияние на
физиологическое состояние и биохимические показатели крови животных.
Установлено,
что
у
60-суточных
свиней
происходило
уменьшение
концентрации общего белка в плазме крови во всех исследуемых группах,
так уменьшение количества общего белка в контрольной группе поросят
крупной белой породы составляло 16,00%, а в опытной – 16,43%, такая же
тенденция сохранялась и в других группах.
194
Рис. 21. Динамика концентрации общего белка в плазме крови свиней
разных генотипов в холодный период года
С переводом животных на откорм (возраст 90 суток) отмечалось
повышение концентрации общего белка в плазме крови во всех исследуемых
группах, но более высоким количество данного показателя оставалось у
животных в опытных группах (рис. 21). Концентрация общего белка в крови
контрольных групп свиней на 90 сутки жизни составляла от 60,33±0,38 до
62,04±0,55 г/л, в опытных – от 61,94±0,72 до 63,86±0,75 г/л (р<0,05). Из
фракций белков в крови контрольной группы свиней крупной белой породы
альбумины были 45,63±0,64%, α-глобулины – 24,24±0,32%, β-глобулины –
13,01±0,18%, γ-глобулины – 17,12±0,21%,
43,12±0,45%
(р<0,01),
α-глобулины
–
в опытной: альбумины –
24,51±0,24%,
β-глобулины
–
14,15±0,31% (р<0,01), γ-глобулины – 18,22±0,18% (р<0,001), то есть
применение иммунокорректора тимозина-α1 увеличивало количество общего
белка и процентное соотношение альбуминов и глобулинов, что указывает на
более интенсивный рост и развитие опытных животных.
Рис. 22. Динамика γ-глобулина в плазме крови свиней
разных генотипов в холодный период года
У 120-суточных свиней в крови концентрация γ-глобулина увеличивалась относительно таковой 90-суточных и в контрольных группах находилась
в пределах от 19,42±0,19 до 19,82±0,22%, в опытных – от 20,17±0,25 (р<0,05)
до 20,74±0,17% (р<0,05), то есть отмечалось достоверное повышение
концентрации γ-глобулина в крови опытных животных (рис. 22).
195
У 180-суточных свиней наблюдалось увеличение концентрации общего
белка в крови относительно такового показателя 120-суточных и более
равномерное распределение отдельных его фракций в зависимости от
выполняемых функций. Надо отметить, что использование тимозина-α1
способствовало удержанию концентрации общего белка и γ-глобулина, как
белка отвечающего за формирование иммунобиологического статуса, на
более высоком уровне в организме опытных животных по сравнению с
контрольными. Содержание альбуминов в плазме крови 180-суточных
свиней контрольных групп составляло от 45,13±0,24 до 45,43±0,20%,
γ-глобулина – от 19,61±0,25 до 19,89±0,41%; в опытных группах
соответственно – от 45,44±0,26 до 46,39±0,18% (р<0,001), от 20,20±0,21
(р<0,05) до 21,56±0,20% (р<0,001), то есть отмечалось достоверное
повышение уровня альбуминов и γ-глобулина в плазме крови опытных
животных по сравнению с аналогичными показателями контрольных.
Концентрация общего белка повышалась в плазме крови 210-суточных
свиней по сравнению с уровнем общего белка в крови 180-суточных
животных. У свиней 210-суточного возраста контрольной группы крупной
белой породы данный показатель был выше на 5,09%, дюрок – 5,45%,
йоркшир – 5,24%, опытной соответственно на 4,60; 5,88; 4,44% относительно
аналогичных показателей 180-суточных животных. В возрасте 210 суток
относительно показателей 180-суточных животных наблюдалось снижение
концентрации альбуминов – от 38,19±0,35 до 39,01±0,42%, что указывало на
уменьшение белка, отвечающего за рост организма. Также отмечалось
снижение уровня γ-глобулина в крови, что указывало, по-видимому, на то,
что формирование защитных сил организма на воздействие неблагоприятных
факторов внешней среды на организм животных сформировано.
Результаты определения концентрации общего белка и его фракций в
холодный период года дают основание считать, что
изучаемые показатели
изменяются циклично в зависимости от силы воздействия неблагоприятных
факторов внешней среды на организм животных, а также от возрастных
196
особенностей организма свиней в постнатальном онтогенезе и поддаются
коррекции тимозином-α1.
4.2.6.2. Количественные изменения минеральных веществ
и резервной щелочности в крови свиней в холодный период года
Минеральные вещества в организме животных в постнатальном
онтогенезе выполняют две основные функции: структурную и динамическую. Кальций и фосфор образуют опорные структуры в костных
пластинках и находятся в непрерывном обмене с кальцием и фосфором в
крови. Фосфор участвует в синтезе макроэнергетических соединений,
нуклеиновых кислот и коферментов, поддерживает промежуточный обмен
веществ.
В организме суточных поросят контрольной группы общий кальций
составлял у крупной белой породы 3,13±0,04 ммоль/л, породы дюрок –
3,09±0,03 ммоль/л, йоркшир – 3,12±0,03 ммоль/л, в таких же пределах
кальций содержался в крови опытных групп поросят (табл. 38).
На 5 сутки жизни поросят концентрация общего кальция в крови у
поросят контрольных групп снижалась и находилась в пределах от 2,69±0,06
до 2,87±0,05 ммоль/л, однако данный показатель в крови опытных групп был
выше и составлял от 2,95±0,05 (р<0,01) до 3,11±0,05 ммоль/л (р<0,05), то есть
отмечалось достоверное увеличение концентрации кальция в крови
животных которым внутримышечно вводили иммунокорректор тимозин-α1.
На 10 сутки жизни в постнатальном онтогенезе наблюдалось снижение
концентрации общего кальция в крови поросят контрольных и опытных
групп. Так, у поросят крупной белой породы в контрольной группе снижение
количества общего кальция в крови относительно 5-суточных животных
составило 7,85%, породы дюрок – 6,61%, йоркшир – 1,22%. Такая же
тенденция имела место и у 20-, 30-суточных животных, однако в крови
опытных поросят содержание общего кальция значительно превышало
аналогичные показатели контрольных. У 30-суточных контрольных поросят
197
количество общего кальция в крови крупной белой породы составляло
2,45±0,05 ммоль/л, породы дюрок – 2,54±0,03 ммоль/л, йоркшир – 2,33±
±0,1 ммоль/л, данный показатель был выше в крови опытных соответственно
на 8,07; 6,67; 10,49%.
В период растительного кормления (возраст 60 суток) отмечалось
повышение концентрации общего кальция в крови животных контрольных
групп и находилось в пределах от 2,80±0,04 до 2,83±0,07 ммоль/л, опытных –
от 3,05±0,03 до 3,13±0,03 ммоль/л (р<0,001).
Повышение данного показателя установлено у 90- и 120-суточных
свиней. Так уровень общего кальция в крови 90-суточных контрольных
животных крупной белой породы был выше на 11,02%, в опытной группе –
9,90% относительно показателей 60-суточных животных. У 120-суточных
свиней количество общего кальция в контрольной группе крупной белой
породы было выше на 15,07%, в опытной группе – 16,77% относительно
показателей 60-суточных животных.
Уменьшение и повышение концентрации общего кальция в крови
животных объясняется изменениями формы питания в различные возрастные
периоды постнатального онтогенеза, уровнем усвоения питательных веществ
корма, что важно для формирования ответной реакции организма на
изменяющиеся факторы природно-климатических и микроклиматических
условий в зоне обитания свиней в холодный период года.
Таблица 38
Количественные изменения концентрации минеральных веществ и резервной
щелочности в крови свиней разных генотипов в холодный период года
Породы
свиней
Общий
кальций,
ммоль/л
Неорганический
фосфор,
ммоль/л
Резервная
щелочность,
об % СО2
Общий
кальций,
ммоль/л
контроль
1
2
3
Неорганический
Резервная
фосфор,
щелочность,
ммоль/л
об % СО2
опыт
4
5
6
7
1 сутки
КБП
3,13±0,04
1,86±0,07
54,36±0,48
3,11±0,04
1,79±0,04
54,60±0,36
Дюрок
3,09±0,03
1,77±0,05
53,61±0,38
3,08±0,03
1,76±0,04
53,12±0,26
Йоркшир
3,12±0,03
1,79±0,1
54,48±0,46
3,13±0,04
1,78±0,05
54,14±0,34
198
5 суток
КБП
2,87±0,05
1,74±0,07
54,22±0,13
2,99±0,03*
1,88±0,04*
55,06±0,11***
Дюрок
2,76±0,04
1,68±0,03
54,04±0,22
2,95±0,05**
1,86±0,08*
55,01±0,35*
Йоркшир
2,69±0,06
1,66±0,06
54,74±0,15
3,11±0,05*
1,78±0,06
55,68±0,25***
10 суток
КБП
2,64±0,11
1,69±0,09
50,60±0,44
2,91±0,06*
1,93±0,03*
52,65±0,33***
Дюрок
2,58±0,04
1,66±0,05
50,23±0,23
2,91±0,03***
1,85±0,1*
52,38±0,27***
Йоркшир
2,66±0,03
1,62±0,05
50,12±0,13
2,75±0,02*
1,83±0,08*
52,15±0,11***
20 суток
КБП
2,29±0,06
1,76±0,05
47,07±1,02
2,49±0,07*
2,06±0,08*
49,94±1,01*
Дюрок
2,18±0,07
1,82±0,06
45,84±0,51
2,41±0,09*
1,99±0,04*
48,66±1,12*
Йоркшир
2,03±0,08
1,72±0,02
45,26±1,09
2,34±0,1*
1,94±0,03*
47,77±0,54*
30 суток
КБП
2,45±0,05
1,64±0,06
46,35±0,28
2,66±0,04***
1,82±0,05*
47,11±0,14**
Дюрок
2,54±0,03
1,62±0,03
46,12±0,13
2,72±0,06**
1,89±0,05***
45,04±0,27**
Йоркшир
2,33±0,1
1,38±0,02
46,26±0,41
2,61±0,08*
1,64±0,06***
47,53±0,46*
3,13±0,05***
2,02±0,06***
48,43±0,35**
60 суток
КБП
2,83±0,07
1,77±0,03
47,28±0,21
Окончание табл. 38
1
2
3
4
5
6
7
Дюрок
2,81±0,06
1,66±0,11
47,19±0,18
3,10±0,0,5***
2,00±0,07**
48,18±0,42*
Йоркшир
2,80±0,04
1,64±0,07
47,21±0,32
3,05±0,03***
1,97±0,13**
48,04±0,17**
90 суток
КБП
3,15±0,08
2,34±0,08
48,36±0,72
3,44±0,06**
2,56±0,04*
50,89±1,08*
Дюрок
3,22±0,06
2,31±0,08
48,15±0,84
3,39±0,05*
2,53±0,05*
50,51±0,85*
Йоркшир
2,88±0,06
2,31±0,06
47,96±1,06
3,37±0,07***
2,54±0,06**
50,46±0,74*
120 суток
КБП
3,26±0,14
2,34±0,18
51,12±0,92
3,65±0,12*
2,86±0,07**
52,97±0,28*
Дюрок
3,24±0,13
2,29±0,05
50,45±0,55
3,61±0,09**
2,69±0,04***
52,29±0,72*
Йоркшир
3,13±0,12
2,31±0,06
49,65±0,42
3,52±0,05**
2,65±0,05***
52,82±0,84***
180 суток
КБП
3,00±0,06
2,24±0,08
50,33±0,72
3,29±0,06***
2,49±0,04**
52,82±1,04*
Дюрок
2,98±0,04
2,12±0,07
50,14±1,04
3,17±0,04**
2,39±0,11*
52,68±1,04*
Йоркшир
2,89±0,07
1,99±0,10
49,84±0,75
3,11±0,09*
2,34±0,08**
52,54±1,06*
210 суток
КБП
2,89±0,13
1,83±0,05
49,61±0,96
3,19±0,09*
2,25±0,16*
52,42±1,05*
Дюрок
2,84±0,11
1,75±0,08
49,43±1,01
3,21±0,13*
2,24±0,10***
52,24±1,04*
Йоркшир
2,84±0,08
2,05±0,07
49,29±0,79
3,13±0,05**
2,14±0,08***
52,06±1,03*
199
У 180-суточных свиней по мере приближения окончания срока откорма
отмечалось снижение концентрации общего кальция в крови животных
контрольных групп от 2,89±0,07 до 3,00±0,06 ммоль/л, опытных – от
3,11±0,09 (Рр<0,05) до 3,29±0,06 ммоль/л (р<0,001). Из приведенных данных
видно, что наиболее высокое содержание общего кальция отмечалось у
свиней крупной белой породы, низкое – у породы йоркшир.
На 210 сутки жизни в крови свиней концентрация общего кальция
находилась на уровне 5-суточных поросят, такое примерное совпадение, повидимому, связано с уровнем питания. Так, поросята до 5-суточного возраста
питались
молозивом,
а
у 210-суточных
животных
был
полностью
сформирован клеточный и гуморальный иммунитет, они полностью
адаптировались к условиям содержания.
Наиболее важным показателем обмена веществ в организме животных
является неорганический фосфор, количественное изменение которого
зависит от возраста, уровня кормления, условий содержания и от
изменяющихся природно-климатических условий. Холодный период года
(с ноября по март) для новорожденных и молодых животных менее
комфортен, а для взрослых свиней эти условия благоприятны для роста и
развития.
В 1 сутки жизни поросят количественное содержание неорганического
фосфора во всех исследуемых группах находилось на одинаковом уровне от
1,77±0,05 до 1,86±0,07 ммоль/л. Поросятам опытных групп, начиная со дня
рождения, внутримышечно вводили иммунокорректор тимозин-α1. При
определении концентрации неорганического фосфора в крови 5-суточных
животных установили снижение содержания неорганического фосфора в
крови контрольных поросят и увеличение его концентрации у опытных
животных.
Переход на молочно-растительную форму питания характеризовался
небольшим повышением неорганического фосфора в крови от 1,72±0,02 до
1,82±0,06 ммоль/л в контрольной группе, а в опытной – от 1,94±0,03 (р<0,05)
200
до 2,06±0,08 ммоль/л (р<0,05). На 30 сутки жизни контрольных поросят
происходило снижение количества неорганического фосфора – от 1,38±0,02
до 1,64±0,06 ммоль/л, а в опытных группах – от 1,64±0,06 до 1,89±0,05
ммоль/л (р<0,001).
У 60-суточных животных отмечалось повышение концентрации
неорганического фосфора в крови, как в контрольных, так и опытных
группах. Наиболее высокое его количественное содержание установлено у
90-суточных свиней, в контрольной группе крупной белой породы –
2,34±0,08 ммоль/л, в опытной – 2,56±0,04 ммоль/л (р<0,05). Примерно на
таком же уровне данный показатель находился в крови свиней породы дюрок
и йоркшир (рис. 23).
В
крови
опытных
групп
120-суточных
свиней
содержание
неорганического фосфора было выше, чем у 90-суточных и составляло от
2,29±0,05 (р<0,001) до 2,86±0,07 ммоль/л (р<0,01). У 180-суточных животных
отмечалось снижение данного показателя как в контроле, так и опыте
(по сравнению с таковым 120-суточных животных) и в контроле было от
1,99±0,01 до 2,24±0,08 ммоль/л, опыте – от 2,34±0,08 до 2,49±0,04 ммоль/л
ммоль/л
(р<0,01) (рис. 23).
2,9
2,7
2,5
2,3
2,1
1,9
1,7
1,5
1
5
10
20
30
60
90
120
180
210
Возраст, сутки
Контроль
Опыт
Рис. 23. Динамика содержания неорганического фосфора в крови свиней крупной
белой породы в холодный период года
В таблице 38 приведены результаты определения концентрации
неорганического фосфора в крови свиней. По полученным данным
201
концентрация неорганического фосфора в крови животных изменялась в
зависимости от возраста, уровня кормления, а также от природноклиматических и микроклиматических условий зоны обитания животных.
Из таблицы 38 видно, что с возрастом происходит волнообразное
изменение концентрации неорганического фосфора и общего кальция в
крови животных, но количественное соотношение данных показателей всегда
находилось в пределах физиологической нормы (2:1 с небольшими
колебаниями).
Показатель резервной щелочности характеризовал степень нейтрализации в организме образующихся кислот в процессе обмена веществ. Данный
показатель в плазме крови суточных поросят находился в пределах от
53,12±0,26 до 54,60±0,36 об%СО2. У 5-суточных поросят во всех исследуемых группах
резервная щелочность имела приблизительно одинаковое
значение, но несколько выше была в крови опытных животных. Так как
опытным свиньям внутримышечно вводили белковый препарат иммунокорректор тимозин-α1, то это повысило обмен веществ в организме поросят, что
привело к повышению резервной щелочности в крови животных.
В период молочной и молочно-растительной формы кормления
поросят обмен резервной щелочности примерно находился на одном уровне.
Так, у 30-суточных животных крупной белой породы контрольной группы
количество резервной щелочности составляло 46,35±0,28 об%СО2, в опытной
группе – 47,11±0,14 об%СО2 (р<0,01), на таком же уровне данный показатель
находился и в других группах.
Резервная щелочность повышалась в организме животных в период
откорма, по-видимому, это связано с количеством и качеством поедаемых
животными кормов.
Установлено, что у 120-суточных свиней в контрольной группе
исследуемый показатель был от 49,65±0,42 до 52,12±0,92 об%СО 2, а в
опытной – от 52,29±0,72 (р<0,05) до 52,97±0,28 об%СО2 (р<0,05) приблизительно на таком же уровне щелочной резерв находился в организме
202
180-суточных свиней. У 210-суточных животных в крови резервная
щелочность несколько уменьшалась и составляла от 49,43±1,01 до 52,42±1,05
об%СО2 (р<0,05).
Резервная щелочность в организме животных отражает уровень обмена
веществ и физиологическое состояние здорового организма, способного
нейтрализовать
кислоты,
образующиеся
в
результате
нарушения
окислительно-восстановительных реакций не только химическим составом
рациона кормов, но и изменяющимися факторами природно-климатических и
микроклиматических условий.
4.2.7. Изменение ферментативной системы свиней разных генотипов
в холодный период года
Каждый живой организм представляет собой (по сути дела) огромный
катализатор. Он извлекает энергию из превращения субстрата, т.е. пищи, в
продукты расщепления. Основная реакция идет слева направо в зеленых
растениях и справа налево – у животных.
6СО2 + 6Н2О + энергия
С6Н12О6 + 6О2
Ферменты – специфические белки, наделенные каталитическими
свойствами, не расходуются в процессах реакции, поэтому их достаточно в
малых концентрациях. В связи с этим в организме существует огромная
диспропорция между массой фермента и массой субстрата, на который
действует данный фермент (С.Ю. Зайцев, Ю.В. Конопатов, 2004).
Холодный период года оказывает непосредственное влияние на
процессы теплообразования и теплоотдачи, это требует повышенного уровня
обмена веществ в организме животных. Интенсивность обмена веществ в
организме свиней изменяется с возрастом, что вызывает изменение
ферментов переаминирования и щелочной фосфатазы в плазме крови.
В таблице 39 представлены результаты исследований количественного
изменения активности ферментов переаминирования (АсАТ и АлАТ),
щелочной фосфатазы в постнатальном онтогенезе и при коррекции
биологически активным веществом тимозином-α1.
203
У поросят, рожденных в начале холодного периода года, активность
ферментов в среднем составляла: АсАТ – 0,20±0,02 ммоль/(чл), АлАТ –
0,22±0,02 ммоль/(чл), щелочная фосфатаза – 204,76±5,86 Е/л. Активность
ферментов плазмы крови повышалась с возрастом животных, так у
5-суточных поросят крупной белой породы АсАТ – 0,31±0,01 ммоль/(чл),
АлАТ – 0,33±0,01 ммоль/(чл), щелочная фосфатаза – 238,8±4,34 Е/л, а в
опытной группе данные показатели были соответственно выше на 13,52;
13,16; 6,39% относительно таковых в контроле.
Активность
растительный
ферментов
периоды
повышалась
питания
в
поросят.
молочный
У
и
молочно-
30-суточных
поросят
контрольной группы крупной белой породы в плазме крови АсАТ составляла
0,54±0,02 ммоль/(чл), породы дюрок – 0,53±0,02 ммоль/(чл), породы
йоркшир – 0,49±0,02 ммоль/(чл), то есть межпородные различия активности
АсАт невысокие, хотя данный показатель ниже у дюрок на 1,86%, йоркшир –
9,26% относительно аналогичного показателя крупной белой породы. В
опытной группе животных крупной белой породы активность АсАТ – 0,61±
±0,02 ммоль/(чл) (р<0,05), дюрок – 0,59±0,01 ммоль/(чл) (р<0,01), йоркшир –
0,57±0,03 ммоль/(чл) (р<0,05), значит внутримышечное введение тимозинаα1 способствовало повышению активности АсАТ в крови поросят
соответственно на 12,96; 11,32; 16,31% по сравнению с таковой в контроле.
Таблица 39
Возрастная динамика ферментов крови свиней
разных генотипов в холодный период года
Показатели
КБП
Дюрок
Йоркшир
КБП
контрольная группа
1
2
3
Дюрок
Йоркшир
опытная группа
4
5
6
7
1 сутки
АсАТ‚ ммоль/(чл)
0,21±0,02
0,20±0,01
0,20±0,03
0,22±0,02
0,21±0,04
0,20±0,02
АлАТ‚ ммоль/(чл)
0,24±0,01
0,22±0,02
0,23±0,02
0,23±0,03
0,22±0,01
0,21±0,03
Щелочная
фосфатаза‚ Е/л
203,1±5,61
200,3±5,86
201,5±6,05
209,5±5,34
207,4±5,78
206,8±6,18
0,37±0,02*
0,36±0,01*
0,34±0,02
5 суток
АсАТ‚ ммоль/(чл)
0,32±0,01
0,31±0,02
0,31±0,01
204
АлАТ‚ ммоль/(чл)
0,33±0,01
0,31±0,02
0,30±0,01
0,38±0,02*
0,37±0,02*
0,35±0,02*
Щелочная
фосфатаза‚ Е/л
238,8±4,34
236,1±4,16
232,8±4,11
255,1±5,25*
248,1±4,01*
244,8±4,24*
10 суток
АсАТ‚ ммоль/(чл)
0,38±0,02
0,37±0,02
0,36±0,01
0,46±0,02**
0,44±0,02*
0,42±0,02**
АлАТ‚ ммоль/(чл)
0,39±0,01
0,37±0,02
0,35±0,01
0,45±0,02*
0,43±0,02*
0,41±0,02**
Щелочная
фосфатаза‚ Е/л
275,4±6,31
273,4±6,15
271,8±6,24
296,4±6,18*
292,2±6,08*
290,9±6,12*
20 суток
АсАТ‚ ммоль/(чл)
0,56±0,03
0,54±0,01
0,53±0,02
0,63±0,02*
0,61±0,03*
0,59±0,01*
АлАТ‚ ммоль/(чл)
0,50±0,02
0,48±0,05
0,47±0,02
0,56±0,02*
0,55±0,02*
0,54±0,02*
Щелочная
фосфатаза‚ Е/л
392,6±6,15
385,7±6,09
382,2±6,17
418,8±6,12**
406,5±7,04*
399,7±6,04*
30 суток
АсАТ‚ ммоль/(чл)
0,54±0,02
0,53±0,02
0,49±0,02
0,61±0,02*
0,59±0,01**
0,57±0,03*
АлАТ‚ ммоль/(чл)
0,48±0,02
0,45±0,02
0,46±0,04
0,55±0,02*
0,53±0,03*
0,51±0,04
Щелочная
фосфатаза‚ Е/л
371,2±6,15
365,9±5,53
362,1±5,85
389,7±6,24*
382,4±6,18*
388,2±7,05**
60 суток
АсАТ‚ ммоль/(чл)
0,71±0,03
0,68±0,02
0,66±0,02
0,81±0,03*
0,78±0,03**
0,75±0,02**
АлАТ‚ ммоль/(чл)
0,75±0,04
0,72±0,03
0,70±0,04
0,85±0,02*
0,82±0,02**
0,79±0,02*
Окончание табл. 39
1
Щелочная
фосфатаза‚ Е/л
2
3
4
5
76,33±1,56
75,25±1,31
73,24±1,12
81,51±1,15**
6
7
80,48±1,43** 79,36±1,24***
90 суток
АсАТ, ммоль/(чл)
0,69±0,04
0,65±0,03
0,63±0,02
0,80±0,02*
0,79±0,04**
0,77±0,05**
АлАТ‚ ммоль/(чл)
0,61±0,02
0,58±0,03
0,57±0,04
0,77±0,03***
0,75±0,04***
0,69±0,02**
Щелочная
фосфатаза‚ Е/л
70,68±0,61
70,12±0,82
69,54±0,74
76,21±1,05*** 74,27±0,85*** 73,64±0,69**
120 суток
АсАТ‚ ммоль/(чл)
0,60±0,03
0,58±0,02
0,57±0,03
0,71±0,02**
0,68±0,03**
0,65±0,02*
АлАТ‚ ммоль/(чл)
0,56±0,03
0,54±0,02
0,52±0,02
0,65±0,02*
0,62±0,02**
0,64±0,02**
Щелочная
фосфатаза‚ Е/л
59,32±1,31
57,56±1,69
55,21±0,87
68,45±0,96*** 65,14±1,16*** 63,67±1,20***
180 суток
АсАТ‚ ммоль/(чл)
0,62±0,02
0,60±0,02
0,58±0,03
0,70±0,03*
0,67±0,02*
0,65±0,02*
АлАТ‚ ммоль/(чл)
0,60±0,04
0,59±0,02
0,56±0,02
0,69±0,02*
0,65±0,01**
0,64±0,02**
Щелочная
фосфатаза‚ Е/л
44,59±1,14
42,13±1,07
41,54±1,12
48,03±0,78*
46,39±1,08**
44,87±0,86*
210 суток
АсАТ‚ ммоль/(чл)
0,60±0,02
0,58±0,02
0,56±0,02
0,66±0,02*
0,63±0,01*
0,63±0,02*
АлАТ‚ ммоль/(чл)
0,62±0,01
0,61±0,02
0,58±0,01
0,68±0,02**
0,67±0,02*
0,65±0,03*
205
Щелочная
фосфатаза‚ Е/л
41,79±1,02
40,34±0,76
39,15±0,75
44,72±0,94*
43,31±0,77**
41,76±1,06*
Наиболее высокие показатели активности ферментов переаминирования отмечены у 60-суточных поросят, когда животные полностью
переходили на растительные корма, так в крови поросят контрольной группы
крупной белой породы АсАТ составляла 0,71±0,03 ммоль/(чл), породы дюрок
– 0,68±0,02 ммоль/(чл), породы йоркшир – 0,66±0,02 ммоль/(чл), а в опытной
группе – 0,81±0,05 (р<0,01); 0,78±0,03 (Р<0,01); 0,75±0,02 ммоль/(чл) (р<0,01)
соответственно. Активность фермента АлАТ приблизительно находилась на
том же уровне, что и АсАТ. Щелочная фосфатаза у 60-суточных свиней резко
уменьшалась и у контрольных животных крупной белой породы была
76,33±1,76 Е/л.
Активность ферментов переаминирования стабилизировалась в период
откорма и затем наблюдалось некоторое снижение изучаемых показателей во
всех
исследуемых
группах
животных.
Так,
у
90-суточных
свиней
контрольной группы крупной белой породы АсАТ – 0,69±0,04 ммоль/(чл),
АлАТ – 0,61±0,02 ммоль/(чл), щелочная фосфатаза – 70,68±0,61 Е/л,
межпородные различия выражены незначительно. В опытной группе 90суточных свиней активность АсАТ находилась на уровне 0,80±0,02
ммоль/(чл) (р<0,05), АлАТ – 0,77±0,03 ммоль/(чл) (р<0,05), щелочная
ммоль/(чл)
фосфатаза – 74,27±0,85 Е/л (р<0,001).
0,9
0,8
0,7
0,6
0,5
0,4
0,3
0,2
0,1
1
5
10
20
30
60
90
120
180
210
Возраст, сутки
Конт роль
Опыт
206
Рис. 24. Динамика активности АсАТ в крови у свиней
крупной белой породы
Можно отметить цикличность изменений активности фермента АсАТ с
возрастом животных (рис. 24). Это объясняется, по-видимому, особенностями формирования ферментного профиля в организме свиней, связанных с
изменением формы кормления и различной интенсивностью усвоения
питательных веществ в зависимости от возраста, а также отражают
адаптацию
поросят
к
изменяющимся
природно-климатическим
и
микроклиматическим условиям Среднего Поволжья.
У 120-, 180- и 210-суточных свиней изучаемые показатели находились
примерно на одинаковом уровне. В контрольной группе 210-суточных
животных в среднем АсАТ была 0,58±0,02 ммоль/(чл), АлАТ – 0,60±
±0,01 ммоль/(чл), щелочная фосфатаза – 40,42 Е/л, а в опытной соответственно 0,64±0,02 ммоль/(чл) (выше на 9,39%); 0,62±0,02 ммоль/(чл)
(выше на 3,04%); 43,26±0,96 Е/л (выше на 6,57%) относительно аналогичных
показателей свиней контрольных групп.
На основании результатов исследований по определению активности
ферментов переаминирования и щелочной фосфатазы необходимо отметить,
что активность ферментов в плазме крови животных отражает интенсивность
обмена веществ в организме и их адаптацию в изменяющихся природноклиматических и микроклиматических условиях окружающей среды.
Использование иммунокорректора тимозин-α1 в процессе выращивания
свиней способствует увеличению активности ферментов в конце откорма от
3,04 до 9,39%, что свидетельствует о более высоком уровне защитной
реакции организма на воздействие окружающей среды в холодный период
года (табл. 39).
4.2.8. Становление клеточных факторов резистентности свиней
в холодный период года
207
Природно-климатические условия холодного периода года характеризовались следующими показателями: температура атмосферного воздуха
колебалась от –4,5ºС…–15,4ºС; скорость движения воздуха – 1,3-18,0 м/с;
относительная влажность воздуха
– 77,3-82,9%; атмосферное давление –
757,8-770,8 мм рт. ст.; концентрация кислорода – 312,4-327,3 г/м³,
концентрация вредных газов минимальная: SO2 – 0,001-0,004 г/м³ (ПДК 0,5),
CO – 1,5-2,4 г/м³ (ПДК 5), NO2 – 0,02-0,04 г/м³ (ПДК 0,2); число Вольфа – 2,24,1 Sun-spots; поток радиоизлучения на длине волны 10,7 см (частота
2800 МГц) – 71,2-82,8; Ар-индекс – 6,5-13,2 nT. Температура воздуха в
животноводческих помещениях составляла от 14,0 до 16,0ºС на откорме;
относительная влажность воздуха – 73,0-82,0%; концентрация СО2 – 0,080,20%, NH3 – 8-10 мг/м³; бактериальная загрязненность воздушной среды
находилась в пределах 130-167 тыс. М.Т./м³.
По
результатам
исследований
природно-климатических
и
микроклиматических условий в зоне обитания животных необходимо
отметить,
что
изменяющиеся
факторы
холодного
периода
менее
благоприятны для новорожденных и поросят молодого возраста по
сравнению с теплым периодом, но в большинстве случаев комфортны для
свиней, так как отмечается высокая концентрация кислорода и низкое
содержание вредных газов, благоприятные гелиогеофизические показатели.
Из вышесказанного следует, что изменяющиеся природно-климатические и
микроклиматические
условия,
несомненно,
оказывают
влияние
на
формирование и становление клеточных показателей резистентности свиней
в постнатальном онтогенезе.
Одним из факторов в формировании клеточной формы защиты
организма
является
(активированные
фагоцитоз.
моноциты,
В
фагоцитозе
циркулирующие
в
кроме
макрофагов
крови,
гистиоциты
соединительной ткани, купферовские клетки, легочные, плевральные и
перитонеальные макрофаги) принимают самое активное участие система
полимофно-ядерных лейкоцитов (нейтрофилы, базофилы и эозинофилы).
208
Результаты фагоцитарной активности лейкоцитов в крови исследуемых
групп животных приведены в таблицах 40, 41.
Таблица 40
Фагоцитарная активность лейкоцитов крови свиней контрольных групп в
постнатальном онтогенезе в холодный период года
Показатели
Порода
животных
фагоцитарная
активность
лейкоцитов, %
фагоцитарный
индекс,
микробных тел
фагоцитарная
емкость,
микробных тел
фагоцитарное
число,
микробных тел
1
2
3
4
5
1 сутки
КБП
12,66±0,17
1,46±0,12
13964±1098
1,06±1,16
Дюрок
12,14±0,13
1,64±0,28
13636±1024
1,22±0,18
Йоркшир
11,78±0,26
1,56±0,24
13546±1066
1,24±0,19
5 суток
КБП
15,60±0,12
1,63±0,12
13863±1028
1,04±0,18
Дюрок
15,31±0,17
1,56±0,24
13796±1096
1,16±0,16
Йоркшир
14,52±0,21
1,60±0,24
13830±1048
1,21±0,18
Окончание табл. 40
1
2
3
4
5
10 суток
КБП
17,98±0,42
1,84±0,22
15844±1924
1,32±0,16
Дюрок
17,39±0,27
1,64±0,13
16456±1724
1,22±0,18
Йоркшир
17,68±0,43
1,65±0,16
17736±1844
1,53±0,19
20 суток
КБП
20,05±0,24
2,94±0,34
21656±2356
1,56±0,26
Дюрок
19,67±0,21
3,24±0,28
20654±2146
1,40±0,18
Йоркшир
19,15±0,31
3,48±0,36
21636±2340
1,86±0,12
30 суток
КБП
21,47±0,31
3,64±0,36
23468±2546
2,12±0,34
Дюрок
19,71±0,26
3,82±0,28
21646±2617
1,65±0,24
Йоркшир
20,32±0,14
3,16±0,12
23546±2636
2,14±0,36
60 суток
КБП
34,13±0,43
4,08±0,22
24386±2036
2,18±0,34
Дюрок
33,28±0,33
3,86±0,32
22656±2124
1,16±0,24
209
Йоркшир
33,81±0,45
4,12±0,24
23654±2617
2,16±0,36
90 суток
КБП
42,60±0,25
4,36±0,42
26457±3040
2,24±0,16
Дюрок
41,07±0,75
3,90±0,36
27246±3140
1,86±0,28
Йоркшир
41,68±0,16
4,20±0,46
26764±2946
2,12±0,40
120 суток
КБП
48,95±0,31
4,14±0,29
25640±2760
2,12±0,34
Дюрок
47,61±0,45
4,24±0,34
26390±2796
1,96±0,26
Йоркшир
47,05±0,27
4,36±0,46
26741±3216
1,43±0,16
180 суток
КБП
49,87±0,31
4,18±0,12
26236±3164
1,82±0,16
Дюрок
48,71±0,28
4,32±0,14
25607±2244
2,14±0,18
Йоркшир
48,08±0,31
4,56±0,18
27448±3426
2,16±0,22
210 суток
КБП
47,11±0,24
4,12±0,32
25627±2094
1,28±0,16
Дюрок
45,18±0,31
4,22±0,18
24367±2156
1,18±0,18
Йоркшир
44,75±0,41
4,11±0,24
24264±2086
1,24±0,16
Таблица 41
Фагоцитарная активность лейкоцитов крови свиней, стимулированных
тимозином-α1 в холодный период года
Показатели
Порода
животных
фагоцитарная
активность
лейкоцитов, %
фагоцитарный
индекс,
микробных тел
фагоцитарная
емкость,
микробных тел
фагоцитарное
число,
микробных тел
1
2
3
4
5
1 сутки
КБП
12,57±0,55
1,42±0,12
13846±1062
1,06±0,16
Дюрок
12,21±0,21
1,46±0,14
13796±1036
1,12±0,18
Йоркшир
12,01±0,32
1,54±0,22
13816±1048
1,21±0,17
5 суток
КБП
16,12±0,15**
1,68±0,22
13869±1041
1,14±0,22
Дюрок
15,87±0,22*
1,58±0,24
13846±1086
1,17±0,18
Йоркшир
15,01±0,13*
1,62±0,22
13919±1067
1,24±0,312
15966±1824
1,38±0,16
10 суток
КБП
19,31±0,24**
1,86±0,24
210
Дюрок
18,69±0,37**
1,72±0,14
16518±1684
1,42±0,22
Йоркшир
19,06±0,25**
1,70±0,16
17618±1848
1,56±0,20
20 суток
КБП
22,17±0,31***
2,96±0,36
21856±2368
1,62±0,28
Дюрок
21,56±0,22***
3,32±0,29
20724±2156
1,44±0,26
Йоркшир
20,91±0,21***
3,48±0,38
21846±2356
1,86±0,12
30 суток
КБП
Дюрок
Йоркшир
22,26±0,24*
3,84±0,36
23526±2548
2,14±0,36
20,92±0,22***
3,86±0,28
21946±2596
1,76±0,26
21,37±0,47*
3,24±0,14
23687±2586
2,26±0,38
60 суток
КБП
37,86±0,56***
4,12±0,24
24486±2124
2,18±0,34
Дюрок
35,80±0,41***
3,94±0,34
22666±2164
1,18±0,24
Йоркшир
36,88±0,28***
4,14±0,24
23834±2486
2,18±0,38
90 суток
КБП
46,95±0,14***
4,38±0,42
26486±3086
2,30±0,21
Дюрок
44,72±0,61***
3,96±0,38
28146±3136
2,16±0,32
Йоркшир
42,81±0,74***
4,24±0,48
27124±2966
2,18±,42
Окончание табл. 41
1
2
3
4
5
120 суток
КБП
51,31±0,24***
4,24±0,32
25840±2860
2,24±0,36
Дюрок
50,18±0,58***
4,36±0,34
26264±2724
1,92±0,32
Йоркшир
49,54±0,41***
4,42±0,48
22832±2864
1,62±0,18
180 суток
КБП
51,12±0,29***
4,24±0,14
26436±3216
1,96±0,22
Дюрок
50,33±0,34***
4,42±0,16
26686±2624
2,18±0,20
Йоркшир
49,51±0,18***
4,62±0,18
27644±3208
2,18±0,20
210 суток
КБП
49,34±0,48***
4,22±0,32
25828±2126
1,46±0,18
Дюрок
48,61±0,51***
4,24±0,16
25616±2446
1,22±0,20
Йоркшир
46,34±0,26**
4,30±0,34
25814±2182
1,32±0,24
Установлено, что у суточных поросят фагоцитарная активность
лейкоцитов как в контрольных, так и опытных группах находилась
211
в пределах от 11,78±0,26 до 12,66±0,17%, то есть межпородные различия
были незначительны. Поросятам опытных групп, начиная с суточного
возраста, вводили иммунокорректор тимозин-α1 с целью установления
влияния данного препарата на клеточные формы резистентности у свиней
в постнатальном онтогенезе.
У
5-суточных
поросят
фагоцитарная
активность
лейкоцитов
повышалась и составляла в контроле у крупной белой породы 15,60±0,12%,
опыте – 16,12±0,15% (р<0,01), разница регистрировалась на уровне 3,27%,
отсюда следует, что использование тимозина-α1 способствовало формированию клеточной формы резистентности молодняка свиней на более высоком
уровне.
У
10-суточных
контрольных
поросят
фагоцитарная
активность
лейкоцитов была выше относительно таковой 5-суточных животных
крупной белой породы на 13,24%, дюрок – 11,97%, йоркшир – 16,07%,
в опытных группах соответственно на 16,58; 14,87; 17,08%.
На 20 сутки жизни в контрольных группах животных происходило
повышение фагоцитарной активности относительно аналогичного показателя
10-суточных поросят и уровень фагоцитарной активности находился в
пределах от 19,15±0,31 до 20,05±0,24%, фагоцитарный индекс – от 2,94±0,34
до 3,48±0,36 микробных тел, фагоцитарное число – от 1,56±0,26 до 1,86±0,12
микробных тел. В опытных группах животных на 20 сутки жизни
фагоцитарная
активность
лейкоцитов
–
от
20,91±0,21
(р<0,01)
до
22,17±0,31% (р<0,01), фагоцитарный индекс – от 2,96±0,36 до 3,32±0,29
микробных тел, фагоцитарное число – от 1,44±0,26 до 1,62±0,28 микробных
тел.
На 30 сутки жизни в контрольных группах поросят фагоцитарная
активность лейкоцитов была выше, чем у 20-суточных поросят, у крупной
белой породы на 3,55%, дюрок – 5,79%, йоркшир – 5,16%.
У 60-суточных животных фагоцитарная активность лейкоцитов резко
возрастала и была в контроле от 33,28±0,33 до 34,13±0,43%, а в опыте – от
212
35,80±0,28 до 37,86±0,56% (р<0,001), данный показатель в опытной группе
свиней крупной белой породы был выше на 21,69% относительно такового
контрольной, такое же увеличение фагоцитарной активности лейкоцитов
наблюдалось в других исследуемых группах. Фагоцитарная активность
лейкоцитов с 90- по 210-суточный возраст свиней находилась во всех
исследуемых группах примерно на одинаковом уровне (рис. 25).
У 180-суточных животных контрольных групп отмечалась наивысшая
фагоцитарная активность лейкоцитов – от 48,08±0,31 до 49,87±0,31%, а в
опытных группах – от 49,51±0,18% (р<0,001) до 51,12±0,29% (р<0,001). Было
замечено незначительное уменьшение фагоцитарной активности лейкоцитов
у 210-суточных свиней и у животных крупной белой породы исследуемый
показатель составлял 47,11±0,24% в контроле и 49,34±0,48% (р<0,001) –
в опыте.
%
55
50
45
40
35
30
25
20
15
10
1
5
10
20
30
60
90
120
180
210
Возраст, сутки
Конт роль
Опыт
Рис. 25. Динамика фагоцитарной активности лейкоцитов крови свиней
крупной белой породы в холодный период года
Из рисунка 25 видно, что фагоцитарная активность лейкоцитов как
контрольных, так и опытных групп свиней
в постнатальном онтогенезе
повышалась равномерно с возрастом, только к концу откорма животных
происходило снижение данного показателя в крови животных. Становление
клеточного фактора резистентности организма животного тесно связано с
воздействием
на
организм
изменяющихся
213
условий
внешней
среды,
кормления, природно-климатических и микроклиматических условий в зоне
обитания животных. Фагоцитарная активность лейкоцитов под влиянием
иммунокорректора тимозина-α1 повышалась, это значит, что препарат
положительно влиял на динамику клеточной защиты организма животных.
Количественные изменения Т-лимфоцитов у свиней разных
генотипов в холодный период года и при коррекции тимозином-α1.
Клеточный иммунитет связан с образованием специфических клеток,
реагирующих с антигеном посредством связывания и последующего
разрушения. Иммунная система опосредована клетками – цитотоксическими
Т-лимфоцитами и Т-хелперами. Цитотоксические Т-лимфоциты непосредственно контактируют с чужеродными клетками и разрушают их, а
Т-хелперы вырабатывают биологически активные вещества – цитокины,
активирующие макрофаги. Т-клеточная система состоит из следующих
субпопуляций: Т-хелперы, цитотоксические или Т-киллеры, а также
Т-клетки, участвующие в реакции замедленной гиперчувствительности и
связанные с нею иммунологической реакцией. Т-клетки связывают антиген,
если они ассоциированы с расположенными на поверхности клеток
определенными антигенными структурами, которые называются комплексом
гистосовместимости.
Таблица 42
Количественные изменения Т-лимфоцитов в крови свиней
разных генотипов в холодный период года
Показатели,
109/л, %
КБП
1
2
Дюрок
Йоркшир
КБП
контроль
Дюрок
Йоркшир
опыт
3
4
5
6
7
1 сутки
Лейкоциты, 109/л
5,10±0,13
5,11±0,19
5,11±0,11
5,12±0,18
5,12±0,12
5,13±0,10
Лимфоциты, 109/л
%
4,05±0,11
79,48±1,52
3,99±0,07
78,23±1,32
4,05±0,10
79,26±1,32
4,07±0,12
79,52±1,26
3,99±0,09
78,05±1,32
4,06±0,12
79,13±1,12
ТЕ-РОК, 109/л
%
2,65±0,12
65,43±1,12
2,52±0,12
63,15±1,09
2,68±0,19
66,17±0,98
2,58±0,09
63,39±1,21
2,59±0,19
64,91±1,18
2,69±0,17
66,26±1,07
5 суток
Лейкоциты, 10 /л
5,05±0,12
5,02±0,12
5,02±0,12
5,46±0,14*
5,37±0,11*
5,31±0,14
Лимфоциты, 109/л
%
3,69±0,08
73,04±1,32
3,66±0,09
72,95±1,32
3,66±0,10
73,05±1,21
4,19±0,12
76,88±1,06*
4,11±0,14
76,61±1,15*
4,12±0,16
76,38±1,13*
9
214
ТЕ-РОК, 109/л
%
2,44±0,12
66,12±0,95
2,42±0,10
66,12±0,88
2,38±0,12
65,02±1,06
2,84±0,11**
67,78±1,12
2,79±0,14*
67,88±0,78
2,77±0,09*
67,27±0,96
10 суток
Лейкоциты, 10 /л
5,12±0,12
5,05±0,14
5,01±0,12
5,47±0,14*
5,39±0,12*
5,32±0,10*
Лимфоциты, 109/л
%
3,15±0,17
61,66±0,78
3,11±0,12
61,74±0,52
3,11±0,11
62,20±2,12
3,47±0,13
63,58±0,62*
3,42±0,11
63,47±0,67*
3,38±0,10
63,69±0,54*
ТЕ-РОК, 109/л
%
2,45±0,17
77,78±1,47
2,36±0,18
75,88±1,84
2,31±0,14
74,27±1,45
2,93±0,17*
84,43±1,64
2,84±0,12*
83,04±1,71
2,79±0,18*
82,54±1,56
9
20 суток
Лейкоциты, 109/л
5,36±0,14
5,26±0,19
5,14±0,11
5,82±0,12**
5,83±0,17*
5,65±0,15*
9
Лимфоциты, 10 /л
%
3,01±0,09
56,16±1,28
2,92±0,07
55,58±1,03
2,79±0,07
54,37±1,21
3,43±0,11
58,96±0,66*
3,39±0,14
58,16±0,64*
3,25±0,15
57,64±1,02*
ТЕ-РОК, 109/л
%
2,37±0,12
78,73±2,18
2,29±0,12
78,42±2,11
2,24±0,14
80,28±1,91
2,80±0,18*
81,63±1,86
2,74±0,14*
80,83±1,75
2,71±0,16*
83,38±2,09
30 суток
Лейкоциты, 109/л
8,04±0,14
7,82±0,21
7,61±0,18
8,98±0,12***
8,42±0,28
8,32±0,21**
9
Лимфоциты, 10 /л
%
4,34±0,18
54,02±1,08
4,18±0,21
53,51±1,34
4,08±0,16
53,59±1,36
5,11±0,20
56,92±0,98*
4,79±0,19
56,98±1,08*
4,75±0,20
57,12±1,12*
ТЕ-РОК, 109/л
%
2,29±0,17
52,76±1,18
2,22±0,17
53,11±1,04
2,29±0,19
56,13±1,06
2,77±0,17*
54,21±1,14
2,69±0,11**
56,16±1,17
2,88±0,19*
60,63±1,01
Окончание табл. 42
1
2
3
4
5
6
7
60 суток
Лейкоциты, 10 /л
13,14±0,29
13,06±0,22
12,86±0,18
13,87±0,21*
13,68±0,13*
13,42±0,21*
9
Лимфоциты, 10 /л
%
5,98±0,12
45,56±1,57
5,97±0,11
45,77±1,14
5,91±0,14
45,95±1,15
6,95±0,08
50,12±1,60**
6,71±0,10
49,06±1,55*
6,62±0,12
49,34±1,27*
ТЕ-РОК, 109/л
%
3,31±0,21
55,35±1,34
3,16±0,24
52,93±1,41
3,08±0,18
52,11±1,51
4,12±0,24**
59,28±1,28
4,08±0,19**
60,80±1,61
3,97±0,22**
59,96±1,32
13,09±0,23* 13,08±0,31**
9
90 суток
Лейкоциты, 10 /л
12,61±0,17
12,42±0,21
12,14±0,18
13,15±0,21*
Лимфоциты, 109/л
%
5,77±0,14
45,82±1,16
5,65±0,11
45,51±1,02
5,46±0,12
44,99±1,13
6,58±0,16
6,45±0,15
6,48±0,11
50,08±1,14** 49,33±1,04** 49,61±1,23**
ТЕ-РОК, 109/л
%
4,06±0,18
70,36±1,80
3,95±0,17
69,91±1,74
3,92±0,12
71,79±1,65
9
4,63±0,17*
70,36±1,91
4,38±0,13*
67,42±1,36
4,38±0,09*
67,59±1,62
120 суток
Лейкоциты, 109/л
12,14±0,21
12,05±0,24
11,98±0,19
12,95±0,20**
12,68±0,21*
12,45±0,14*
Лимфоциты, 109/л
%
5,73±0,12
47,17±1,13
5,64±0,09
46,88±1,08
5,57±0,14
46,50±1,24
6,52±0,15
50,37±1,14*
6,34±0,18
50,03±1,17*
6,31±0,13
50,66±1,37
ТЕ-РОК, 109/л
%
3,86±0,17
67,36±1,67
3,68±0,11
65,24±1,16
3,56±0,18
63,91±2,23
4,39±0,18*
67,33±1,78
4,31±0,14*** 4,38±0,15***
68,71±1,22
69,41±1,31
180 суток
Лейкоциты, 109/л
12,64±0,24
12,24±0,18
12,12±0,16
13,35±0,21*
13,18±0,26** 12,95±0,22**
Лимфоциты, 10 /л
%
5,94±0,14
47,06±1,06
5,68±0,12
46,44±1,04
5,59±0,12
46,18±1,04
6,67±0,11
49,95±1,02*
6,53±0,17
6,41±0,13
49,57±1,16* 49,54±0,82**
9
215
ТЕ-РОК, 109/л
%
4,12±0,15
69,36±2,62
4,04±0,13
71,12±2,14
3,98±0,15
71,19±2,55
4,74±0,18**
71,06±2,56
4,65±0,13*** 4,52±0,12**
71,21±2,61
70,51±2,34
14,14±0,16
14,04±0,24** 14,13±0,31**
210 суток
Лейкоциты, 10 /л
13,64±0,26
13,20±0,16
13,18±0,20
Лимфоциты, 109/л
%
5,77±0,14
42,32±1,02
5,52±0,10
41,84±1,02
5,49±0,08
41,72±0,62
6,62±0,09
6,43±0,10
6,40±0,14
46,85±1,05** 45,81±1,06** 45,32±1,01**
ТЕ-РОК, 109/л
%
4,27±0,18
74,00±2,19
4,12±0,20
74,63±2,15
4,02±0,21
73,22±2,26
5,08±0,14***
76,74±2,18
9
4,87±0,18** 4,78±0,11***
75,74±2,17
74,68±2,23
В процессе исследований установлено, что у суточных поросят из всего
количества лейкоцитов в крови лимфоциты составляли от 3,99±0,09 до
4,07±0,12·109/л, а число ТЕ-РОК находилось в пределах от 2,52±0,12 до
2,95±0,09·109/л (от 65,43±1,12 до 66,26±1,07%), то есть количественное
содержание Т-лимфоцитов вполне отражало здоровое физиологическое
состояние животных, обладающих достаточными защитными силами
организма для ответа на воздействие вредных факторов.
Поросятам опытных групп внутримышечно вводили иммунокорректор
тимозин-α1,
как
препарат,
оказывающий
стимулирующее
действие
на количественный и качественный состав Т-лимфоцитов в организме
животных.
Установлено, что у 5-суточных поросят снижалось число лейкоцитов,
лимфоцитов в контрольных группах животных, но повышалось в крови
поросят опытных групп по сравнению с таковыми показателями суточных
животных. У 5-суточных поросят в контрольных группах снижалось
содержание ТЕ-РОК клеток – от 2,38±0,12 до 2,44±0,12·109/л, а в крови
поросят опытных групп – от 2,77±0,09 до 2,84±0,11·109/л (р<0,05), или от
67,27±0,96 до 67,88±0,78% от количества лимфоцитов.
Исследования
тимозин-α1
дают
способствует
основания
считать,
стимулированию
что
синтеза
иммунокорректор
Т-лимфоцитов
в
организме животных.
На 10 сутки жизни контрольных поросят число ТЕ-РОК клеток
значительно увеличилось и составляло в крови крупной белой породы
77,78±1,47% из числа лимфоцитов, а в опытной группе – 84,43±1,64%, то
216
есть было выше на 7,88% относительно показателя контрольной группы.
Количество ТЕ-РОК клеток у 20-суточных опытных поросят находилось в
пределах от 2,71±0,16·109/л до 2,8±0,18·109/л, что выше крупной белой
породы на 18,14%, дюрок – 19,6%, йоркшир – 20,1% относительно
показателей контрольных животных. По результатам исследований, нужно
отметить, что поросята с суточного возраста и по 20 сутки жизни
испытывали стресс на воздействие нежелательных факторов внешней среды,
что сопровождалось формированием клеточных форм защиты организма,
поэтому использование тимозина-α1 при выращивании поросят молозивной,
молочной и молочно-растительной форм питания позволяло стимулировать
образование Т-лимфоцитов как одного из главных факторов клеточной
защиты организма (табл. 42).
У
30-суточных
поросят
отмечалось
значительное
увеличение
количества лейкоцитов, среди них лимфоциты в контрольных группах
животных составляли от 4,08±0,18 до 4,38±0,18·109/л, а в опытных – от
4,75±0,20·109/л (Р<0,05) до 5,11±0,20·109/л (р<0,05), из числа лимфоцитов
ТЕ-РОК
клетки
составляли
в
контрольных
группах
животных
от
2,22±0,17·109/л до 2,29±0,17·109/л, а в опытных – от 2,69±0,11·109/л (р<0,01)
до 2,88±0,19·109/л (р<0,05), значит относительная величина ТЕ-РОК клеток
под действием тимозина-α1 увеличивалась в опытных группах животных. На
30 сутки жизни свиней число ТЕ-РОК клеток в крови крупной белой породы
было ниже в контрольной группе на 33,03%, в опытной группе – на 33,60%
при сравнении с соответствующими данными 20-суточных поросят.
У 90-суточных поросят отмечаются наивысшие показатели по
содержанию в крови ТЕ-РОК клеток относительно всех остальных возрастов
в контроле – от 69,91±1,74 до 71,79±1,65%, а в опыте – от 67,59±1,62 до
70,36±1,91%.
Свиньи 90-суточного возраста контрольных и опытных групп, повидимому, были вполне адаптированы к условиям кормления, содержания и
217
изменяющимся факторам природно-климатических и микроклиматических
условий в зоне их обитания.
У 120-суточных животных контрольных групп число ТЕ-РОК было
ниже у крупной белой породы на 4,27%, дюрок – 6,69%, йоркшир – 10,98%, а
в опытных группах у крупной белой породы ниже на 4,31%, а пород дюрок и
йоркшир выше на 1,88 и 2,63% соответственно, по сравнению с таковыми
данными
90-суточных
свиней.
Снижение
числа
ТЕ-РОК
клеток
в
абсолютных и относительных единицах измерения наблюдалось в период,
когда
регистрировались
низкие
температуры
атмосферного
воздуха,
отмечалась высокая концентрация кислорода, высокая солнечная радиация,
низкое содержание вредных газов, как в окружающей среде, так и в
животноводческих помещениях.
По результатам исследований можно утверждать, что для животных
пород дюрок и йоркшир (мало адаптированных к природно-климатическим
условиям
Среднего
Поволжья)
использование
тимозина-α1
является
приоритетным по сравнению с таковым для местных свиней крупной белой
породы.
Рис. 26. Количественные изменения Т-лимфоцитов в крови свиней
в постнатальном онтогенезе
Из рисунка 26 видно распределение Т-лимфоцитов в крови свиней
местной крупной белой породы и породы дюрок, завезенной из Западных
218
стран с климатом отличным от Среднего Поволжья. График характеризует
стимулирующее влияние тимозина-α1 на количественные
изменения
Т-лимфоцитов в зависимости от возраста свиней и от изменяющихся
природно-климатических
условий
в
зоне
обитания
животных.
По
результатам исследований можно сделать вывод, что клеточные факторы
резистентности свиней в постнатальном онтогенезе изменяются циклично в
зависимости от возраста, но у опытных свиней показатели по содержанию
Т-лимфоцитов выше.
4.2.9. Становление гуморальной резистентности свиней
в постнатальном онтогенезе в холодный период года
Гуморальный иммунитет связан с образованием антител. Антигенраспознающие рецепторы В-лимфоцитов представляют
собой молекулы
иммуноглобулинов.
соответствующим
При
связывании
антигена
с
рецептором и под влиянием цитокинов, вырабатываемых моноцитами,
макрофагами и Т-лимфоцитами, происходит активация В-лимфоцитов
в лимфатических узлах в плазматические клетки. Часть активированных Влимфоцитов превращается в клетки памяти, которые обеспечивают более
быстрый и эффективный иммунный ответ при повторном контакте с
антигеном. В-лимфоциты – клетки, специализирующиеся на синтезе
иммуноглобулинов,
специфических
белков
с
антигенсвязывающими
свойствами, обеспечивающих гуморальный иммунный ответ.
Иммуноглобулины
по
функциям
бывают:
IgG
–
основные
иммуноглобулины плазмы крови. Обладают максимальной способностью
проникать в ткани;
исключением
IgМ – иммуноглобулины, проникающие в ткани за
плаценты,
вызывающие
разрушение
микроорганизмов,
бактерий, гемолиз, обеспечивают первую линию защиты организма; IgА –
иммуноглобулины, находящиеся в секрете слизистых оболочек (стенки
кишечника
новорожденных
посредством
специального
механизма
обеспечивают переход IgА в кровь), молозиве (основной иммуноглобулин) и
219
в крови; IgD – иммуноглобулин, находящийся на мембранах; IgЕ –
иммуноглобулин, фиксированный на мембранах тучных клеток и базофилов.
С учетом вышеописанного были изучены гуморальные факторы
резистентности свиней в постнатальном онтогенезе в возрастном аспекте в
холодный период года.
Содержание свиней в условиях промышленной технологии не всегда
обеспечивает возможность полностью раскрыть генетический потенциал
продуктивности, заложенный в животном. В этом ракурсе занимает особое
положение знание возрастных особенностей формирования и становления
гуморальных
факторов
резистентности
животных
под
влиянием
изменяющихся факторов внешней среды. Основной цифровой материал
результатов исследований отражен в таблице 43.
Установлено, что у суточных поросят во всех исследованных группах
содержание В-лимфоцитов составляло от 0,38±0,03·109/л до 0,45±0,02·109/л
или от 9,35±0,18 до 11,06±0,17% от общего количества лимфоцитов;
концентрация
IgМ
находилась
приблизительно
на
одинаковом
уровне – от 1,57 до 1,65 г/л, IgG – от 33,70±1,06 г/л, IgА – от 1,10±0,04 до
1,13±0,06
г/л.
Приведенные
данные
соответствуют
показателям
физиологически развитых новорожденных поросят. С целью стимулирования
гуморальных факторов резистентности животных опытных групп, начиная с
суточного возраста, вводили иммунокорректор тимозин-α1.
Таблица 43
Динамика В-лимфоцитов и иммуноглобулинов в крови свиней
разных генотипов в холодный период года
Показатели
1
КБП
Дюрок
Йоркшир
КБП
контрольная группа
2
3
Дюрок
Йоркшир
опытная группа
4
5
6
7
1 сутки
В-лимфоциты:
ТЕ-РОК, 109/л,
%
0,44±0,03
10,86±0,18
0,39±0,05
9,77±0,17
0,38±0,02
9,38±0,15
0,45±0,02
11,06±0,17
0,44±0,04
11,02±0,16
0,38±0,03
9,35±0,18
Ig M, г/л
1,65±0,05
1,61±0,02
1,57±0,09
1,63±0,07
1,60±0,08
1,60±0,06
Ig G, г/л
34,04±1,11
33,85±1,21
33,61±1,17
34,01±1,14
33,91±1,08
33,70±1,06
Ig A, г/л
1,12±0,08
1,12±0,05
1,12±0,09
1,15±0,06
1,10±0,04
1,13±0,06
5 суток
220
В-лимфоциты:
ТЕ-РОК, 109/л,
%
0,41±0,02
11,11±0,21
0,40±0,01
10,92±0,20
0,40±0,01
10,92±0,18
0,47±0,02*
11,22±0,15
0,47±0,02**
11,44±0,17
0,45±0,02*
9,89±0,16
Ig M, г/л
1,32±0,04
1,21±0,05
1,11±0,10
1,44±0,04
1,38±0,08
1,19±0,07
Ig G, г/л
32,81±1,13
32,04±1,01
31,88±1,18
36,09±1,12*
35,75±1,13*
35,56±1,22*
Ig A, г/л
1,06±0,05
1,02±0,04
0,95±0,03
1,32±0,06***
1,20±0,05**
1,05±0,04*
10 суток
В-лимфоциты:
ТЕ-РОК, 109/л,
%
0,48±0,03
15,13±0,21
0,46±0,02
14,70±0,22
0,45±0,02
14,47±0,20
0,57±0,02*
16,43±0,22
0,56±0,04*
16,37±0,23
0,54±0,03*
15,97±0,21
Ig M, г/л
2,12±0,03
2,04±0,04
1,94±0,04
2,21±0,03
2,14±0,04
2,03±0,03
Ig G, г/л
23,75±1,01
23,54±1,03
22,33±1,04
26,65±1,02*
26,52±1,12*
25,96±1,03*
Ig A, г/л
2,18±0,04
2,13±0,04
2,06±0,02
2,36±0,03***
2,32±0,05**
2,24±0,05***
20 суток
В-лимфоциты:
ТЕ-РОК, 109/л,
%
0,53±0,04
17,61±0,24
0,51±0,03
17,46±0,23
0,50±0,03
17,92±0,22
0,64±0,02*
18,65±0,21
0,60±0,02*
17,69±0,23
0,58±0,02*
17,85±0,24
Ig M, г/л
3,03±0,03
2,71±0,08
2,56±0,12
3,12±0,08
3,08±0,12*
2,71±0,11
Ig G, г/л
7,16±0,24
7,04±0,20
6,58±0,22
7,89±0,21*
7,69±0,24*
7,25±0,26***
Ig A, г/л
1,45±0,06
1,27±0,09
1,13±0,05
1,74±0,07**
1,61±0,08**
1,44±0,07***
Окончание табл. 43
1
2
3
4
5
6
7
30 суток
В-лимфоциты:
ТЕ-РОК, 109/л,
%
0,61±0,03
14,05±0,21
0,58±0,05
13,87±0,18
0,53±0,05
12,99±0,20
0,76±0,04**
14,87±0,19
0,73±0,03**
15,24±0,21
0,71±0,06*
14,95±0,24
Ig M, г/л
3,08±0,09
3,02±0,05
2,82±0,10
3,20±0,12
3,16±0,08
3,06±0,11
Ig G, г/л
7,31±0,34
7,15±0,21
6,47±0,21
8,23±0,32**
8,12±0,25**
7,88±0,23***
Ig A, г/л
1,63±0,03
1,47±0,04
1,24±0,05
1,81±0,04***
1,72±0,05***
1,46±0,05**
60 суток
В-лимфоциты:
ТЕ-РОК, 109/л,
%
0,97±0,06
16,22±0,24
0,94±0,07
15,74±0,22
0,87±0,05
14,72±0,25
1,19±0,06**
17,12±0,24
1,12±0,04*
16,69±0,23
1,03±0,03**
15,56±0,24
Ig M, г/л
4,12±0,11
4,06±0,12
3,87±0,13
4,22±0,11
4,13±0,09
3,92±0,08
Ig G, г/л
16,64±0,32
16,47±0,36
16,25±0,27
17,91±0,35**
17,83±0,25**
17,68±0,38**
Ig A, г/л
1,61±0,10
1,53±0,11
1,31±0,08
2,02±0,10**
1,98±0,13**
1,73±0,09***
90 суток
В-лимфоциты:
ТЕ-РОК, 109/л,
%
1,03±0,02
17,85±0,24
0,96±0,04
16,99±0,25
0,92±0,05
16,84±0,24
1,12±0,03*
17,02±0,26
1,11±0,03**
16,54±0,27
1,09±0,03**
16,46±0,25
Ig M, г/л
4,24±0,08
4,08±0,10
3,95±0,12
4,28±0,05
4,18±0,06
4,05±0,06
221
Ig G, г/л
17,61±0,32
17,29±0,35
17,12±0,33
19,27±0,32*** 19,12±0,23***
18,27±0,27*
Ig A, г/л
1,77±0,05
1,65±0,07
1,54±0,08
2,05±0,07***
1,97±0,06***
1,84±0,04***
120 суток
В-лимфоциты:
ТЕ-РОК, 109/л,
%
1,07±0,05
18,67±0,25
1,05±0,05
18,62±0,26
0,97±0,03
17,41±0,22
1,21±0,05*
18,56±0,21
1,19±0,04*
18,77±0,24
1,16±0,06**
18,38±0,25
Ig M, г/л
4,35±0,05
4,12±0,08
4,04±0,08
4,41±0,06
4,22±0,11
4,17±0,12
Ig G, г/л
19,24±0,21
19,16±0,25
19,05±0,24
Ig A, г/л
1,85±0,05
1,73±0,07
1,65±0,06
21,67±0,22*** 21,43±0,28*** 21,29±0,24***
2,07±0,10*
2,02±0,05***
1,91±0,12*
180 суток
В-лимфоциты:
ТЕ-РОК, 109/л,
%
1,12±0,03
18,85±0,25
1,08±0,03
19,01±0,26
1,03±0,04
18,43±0,24
1,22±0,03*
18,29±0,23
1,20±0,04*
18,38±0,24
1,18±0,03**
18,41±0,25
Ig M, г/л
6,12±0,10
5,82±0,11
5,70±0,12
6,24±0,08
6,01±0,07
5,96±0,11
Ig G, г/л
24,92±0,35
24,71±0,33
24,56±0,35
26,31±0,34**
26,18±0,32**
25,87±0,31**
Ig A, г/л
2,11±0,04
1,95±0,06
1,61±0,08
2,64±0,08***
2,23±0,09**
2,09±0,06***
210 суток
В-лимфоциты:
ТЕ-РОК, 109/л,
%
1,10±0,02
19,93±0,26
1,10±0,03
19,92±0,21
1,07±0,03
19,48±0,20
1,19±0,03*
17,97±0,22
1,18±0,02*
18,35±0,21
1,17±0,04*
18,28±0,24
Ig M, г/л
5,08±0,08
4,82±0,11
4,67±0,08
5,17±0,10
5,04±0,10
4,89±0,12
Ig G, г/л
21,54±0,26
21,25±0,24
21,16±0,31
23,18±0,30*** 22,84±0,27*** 22,61±0,28***
Ig A, г/л
2,10±0,03
1,91±0,04
1,73±0,04
2,34±0,05***
2,12±0,06**
2,02±0,07***
На 5 сутки жизни число В-лимфоцитов повышалось в крови поросят и
составляло в контрольной группе от 10,92±0,18 до 11,11±0,21%, в опытной
данный показатель был выше и находился в пределах от 9,89±0,16 до
11,44±0,17%. При этом у 5-суточных поросят породы дюрок опытной группы
число В-лимфоцитов было выше на 4,8% относительно такового показателя
контрольной.
Концентрация IgМ в крови 5-суточных поросят достоверно снижалась,
по сравнению с таковой суточных животных, в контроле составляла от
1,11±0,10 до 1,32±0,04 г/л, в опыте – от 1,29±0,07 (р<0,05) до 1,54±0,04 г/л
(р<0,01). Уровень IgG снизился в контрольной группе и повысился в опыте
относительно показателей суточных животных и находился в пределах от
35,56±1,22 (р<0,05) до 36,09±1,2 г/л (р<0,05) в группах животных,
получающих иммунокорректор тимозин-α1. В опытных группах поросят
222
количество IgА было увеличено относительно аналогичного показателя
контрольных и составляло от 1,05±0,04 (р<0,05) до 1,32±0,06 г/л (р<0,01).
Внутримышечное
введение
тимозина-α1
поросятам
позволило
повысить число В-лимфоцитов и концентрацию иммуноглобулинов в крови
животных, то есть жизнеспособность 5-суточных поросят в опытных группах
была выше по сравнению с контрольными группами.
В 10-суточном возрасте количество В-лимфоцитов в крови поросят
повысилось относительно показателей 5-суточных животных в контрольных
группах крупной белой породы на 26,57%, породы дюрок – 25,72%, йоркшир
– 24,54%, а в опытных соответственно на 31,72; 30,12; 38,08%. Концентрация
IgМ в контрольной группе поросят находилась в пределах от 1,94±0,04 до
2,12±0,03 г/л, а в опытных – от 2,08±0,03 (р<0,01) до 2,31±0,03 г/л (р<0,001).
Концентрация IgG снизилась по контрольной группе поросят на 28,97%, а в
опытной группе – на 25,46% относительно показателей 5-суточных
животных. Уровень IgА повысился в контрольных
группах и в среднем
составил 2,12 г/л, в опытных – 2,34 г/л.
У животных 10-суточного возраста отмечалось увеличение числа
В-лимфоцитов и увеличение концентрации IgМ, IgА, уменьшение IgG.
Изменение концентрации гуморальных факторов резистентности, повидимому, связано со сменой молозивной на молочную формы питания, а
также влиянием на молодой организм изменяющихся факторов внешней
среды в зоне обитания животных.
В период молочно-растительной формы питания поросят отмечалось
увеличение числа В-лимфоцитов и повышение концентрации иммуноглобулинов в плазме крови. Так, у 30-суточных поросят крупной белой породы в
контрольной группе число В-лимфоцитов составляло 0,53±0,04·109/л,
концентрация IgМ – 3,03±0,03 г/л, IgG – 7,16±0,24 г/л, IgА – 1,45±0,06 г/л, а в
опытной группы данные показатели были соответственно выше на 27,40;
5,32; 6,53; 12,66%.
223
У 60-суточных поросят отмечалось увеличение числа В-лимфоцитов в
крови во всех исследуемых группах относительно показателей 30-суточных
животных. В контрольной группе 60-суточных свиней число В-лимфоцитов
в среднем составляло 0,92±0,06·109/л, а в опытной – 1,11±0,04·109/л (р<0,01),
то есть было выше на 17,12%. Результаты исследований свидетельствуют о
том, что использование тимозина-α1 при выращивании свиней эффективно
повышает гуморальные факторы защиты организма от неблагоприятных
факторов внешней среды. С переводом животных на растительную форму
питания (90 суток) в крови отмечалось повышение числа В-лимфоцитов, так
у свиней крупной белой породы в контрольных группах данный показатель
составлял
1,03±0,02·109/л,
дюрок
–
0,96±0,04·109/л,
йоркшир
–
0,92±0,05·109/л, а в опытной был выше соответственно на 8,04; 13,52; 15,60%
(рис. 27). Увеличение числа В-лимфоцитов в крови свиней привело к
повышению концентрации иммуноглобулинов, так количество IgМ в крови
контрольных поросят крупной белой породы составляло 4,24±0,08 г/л, а в
опытной группе – 4,58±0,05 г/л (р<0,001), было выше на 7,26%.
Концентрация IgG и IgА в крови животных контрольных и опытных групп
изменялась аналогично показателям свиней 90-суточного возраста. Анализ
рисунков 27 и 28 дает основание считать, что концентрация IgМ (рис. 28)
в организме животных находится в прямой зависимости от числа
В-лимфоцитов в крови свиней (иммунокорректор тимозин-α1 положительно
влияет на содержание факторов гуморальной защиты организма).
224
Рис. 27. Динамика В-лимфоцитов в крови свиней крупной белой породы и дюрок
г/л
7
6
5
4
3
2
1
1
5
10
20
30
60
90
120
180
210
Возраст, сутки
КБП к
КБП о
Дюрок к
Дюрок о
Рис. 28. Динамика IgМ в крови свиней крупной белой породы и дюрок
Конец холодного периода года отличался повышением температуры
воздуха окружающей среды, а также изменением микроклимата
в
животноводческих помещениях на менее комфортные для состояния
животных: в частности отмечалось повышение бактериальной загрязненности воздуха. Так, у 180-суточных свиней наблюдалось повышение
концентрации иммуноглобулинов как в контрольной, так и опытных группах
относительно животных 120-суточного возраста. В крови 180-суточных
свиней крупной белой породы контрольной группы концентрация IgМ –
6,12±0,10 г/л, IgG – 25,29±0,35 г/л, IgА – 2,11±0,04 г/л, в опытных группах
данные показатели были выше соответственно на 6,54±0,08 (р<0,001);
26,31±0,34; 2,64±0,08 г/л (р<0,001).
225
В крови 210-суточных животных количество В-лимфоцитов оставалось
примерно на таком же уровне, содержание иммуноглобулинов несколько
снижалось относительно аналогичных показателей животных в возрасте 180
суток.
Свиньи
в
210-суточном
возрасте
хорошо
адаптированы
к
изменяющимся природно-климатическим и микроклиматическим условиям,
о чем свидетельствует стабилизация показателей гуморальных факторов
иммунной системы.
При оценке гуморальных факторов резистентности важное значение
имеют
бактерицидная
Бактерицидная
и
активность,
лизоцимная
активность
характеризующая
плазмы
состояние
крови.
естественной
резистентности, отражает все суммарные противомикробные процессы,
происходящие в организме, – величина не постоянная, она изменяется от
условий содержания, кормления и природно-климатических параметров в
зоне обитания животных.
Лизоцим – это белок молекула которого состоит из 129 аминокислотных остатков. Противомикробное действие лизоцима объясняется тем, что он
нарушает мукополисахаридную структуру бактериальной стенки. Высокое
содержание лизоцима в слезах, слюне, легких и селезенке, по-видимому,
связано с защитной функцией против микробов. Таким образом, лизоцим
отвечает за иммунобиологическую реактивность организма свиней, играет
большую роль в предупреждении и в благоприятном исходе инфекционного
процесса.
Цифровой
материал
по
результатам
исследований
приведен
в таблице 44.
Таблица 44
Динамика бактерицидной и лизоцимной активности плазмы крови
свиней в постнатальном онтогенезе в холодный период года
Породы
животных
1
Бактерицидная
активность, %
Лизоцимная
активность, %
Бактерицидная
активность, %
контроль
2
опыт
3
226
4
Лизоцимная
активность,
%
5
1 сутки
КБП
12,07±0,34
–
12,32±0,45
–
Дюрок
10,78±0,74
–
10,69±0,81
–
Йоркшир
10,98±0,54
–
11,14±0,64
–
5 суток
КБП
15,78±0,28
5,91±0,14
17,05±0,16***
6,42±0,17*
Дюрок
15,68±0,11
5,33±0,13
16,87±0,43***
5,81±0,13**
Йоркшир
14,56±0,24
4,89±0,16
16,13±0,27***
5,37±0,16*
10 суток
КБП
23,14±0,23
6,69±0,11
23,91±0,27*
7,20±0,15**
Дюрок
22,50±0,24
6,37±0,14
23,17±0,21*
6,74±0,12*
Йоркшир
20,68±0,24
6,19±0,10
21,74±0,16***
6,73±0,17***
20 суток
КБП
27,15±0,21
7,21±0,14
28,41±0,28***
7,57±0,11*
Дюрок
27,10±0,37
6,92±0,12
28,35±0,24**
7,65±0,18***
Йоркшир
26,31±0,32
6,69±0,17
27,62±0,25***
7,31±0,21**
30 суток
КБП
31,46±0,26
8,08±0,14
32,55±0,22**
8,54±0,13*
Дюрок
30,46±0,34
7,22±0,18
31,52±0,21**
7,75±0,12*
Йоркшир
29,93±0,36
7,18±0,14
30,86±0,21*
7,67±0,16*
60 суток
КБП
79,46±0,69
32,24±0,24
81,84±0,31***
34,56±0,44***
Дюрок
77,90±0,41
32,06±0,26
79,28±0,46*
33,65±0,29***
Йоркшир
76,92±0,31
30,79±0,24
78,33±0,42*
32,61±0,26***
90 суток
КБП
72,56±1,24
34,41±0,46
78,71±1,63***
36,92±0,20***
Дюрок
71,13±1,14
33,62±0,23
76,69±1,17***
35,84±0,54***
Йоркшир
69,80±1,13
31,45±0,27
72,14±1,42**
32,76±0,18**
Окончание табл. 44
1
2
3
4
5
120 суток
КБП
81,22±1,26
39,45±0,43
88,36±1,14***
41,12±0,34***
Дюрок
80,17±1,16
38,18±0,35
84,54±1,19**
40,61±0,28***
Йоркшир
79,34±1,24
38,06±0,21
81,31±1,04*
39,65±0,35***
180 суток
227
КБП
82,11±1,31
41,34±0,24
90,46±1,24***
43,13±0,31***
Дюрок
80,42±1,16
40,92±0,37
88,05±1,28***
42,34±0,28**
Йоркшир
79,31±1,21
40,24±0,28
85,42±1,12***
41,56±0,24***
210 суток
КБП
85,34±2,11
46,61±0,48
90,11±1,24***
48,85±0,31***
Дюрок
81,08±1,13
43,12±0,24
87,68±1,32***
44,47±0,34**
Йоркшир
80,12±1,24
42,26±0,32
86,61±1,21***
43,11±0,24*
Бактериальная активность плазмы крови суточных животных как в
контрольных, так и опытных группах находилась на одинаковом уровне и
составляла у поросят крупной белой породы 12,07±0,34%, породы дюрок –
10,78±0,74%, породы йоркшир – 10,98±0,54%.
У 5-суточных поросят данный показатель в контроле находился в
пределах от 14,56±0,24 до 15,78±0,28%, в опыте – от 16,13±0,27 (р<0,001) до
17,05±0,16% (р<0,001); лизоцимная активность плазмы крови в контрольных
группах поросят составляла от 4,89±0,16 до 5,91±0,14%, в опытных – от
5,37±0,16 (р<0,05) до 6,42±0,17% (р<0,05). По результатам исследований
необходимо отметить, что внутримышечное введение иммунокорректора
тимозина-α1
суточным
поросятам
опытных
групп
способствовало
повышению бактериальной и лизоцимной активности плазмы крови
относительно аналогичных показателей контрольных животных.
У 10-суточных поросят крупной белой породы контрольной группы
бактериальная активность плазмы крови была выше на 23,17%, дюрок –
30,32%, йоркшир – 29,60% по сравнению с бактериальной активностью
плазмы крови 5-суточных. Лизоцимная активность в плазме крови
10-суточных поросят контрольной группы находилась в пределах от
6,19±0,10 до 6,69±0,11%, в опытной – от 6,73±0,17 (р<0,001) до 7,20±0,15%
(р<0,01).
Бактерицидная и лизоцимная активность плазмы крови с возрастом
поросят повышалась. У 20-суточных животных в контрольной группе
бактерицидная активность составляла от 26,31±0,32 до 27,15±0,21%,
228
лизоцимная активность – от 6,69±0,17 до 7,21±0,14 %, в опытных группах
поросят крупной белой породы бактерицидная и лизоцимная активность
была выше соответственно на 4,64; 4,61; 4,98% и 5,00; 10,54; 9,27%.
У
30-суточных
животных
контрольных
групп
бактерицидная
и лизоцим-ная активность плазмы крови была выше на 12,29 и 7,35%,
опытных – 11,13 и 5,89% соответственно относительно аналогичных
показателей 20-суточных животных.
Переход животных на растительную форму питания совпадал с
декабрем и январем месяцами холодного периода года, когда в организме
животных
У
значительно
60-суточных
изменялись
поросят
показатели
бактериальная
гуморальной
активность
защиты.
плазмы
крови
в контрольных группах находилась в пределах от 76,92±0,31 до 79,46±0,69%,
в опытных – от 78,33±0,42 (р<0,05) до 81,89±0,31% (р<0,001), лизоцимная
активность плазмы в крови в контрольный группы крупной белой породы
составляла 34,41±0,46%, породы дюрок – 33,62%, йоркшир – 31,45±0,27%,
в опытной была выше соответственно на 6,80; 6,20; 4,00% относительно
таковой контрольных животных.
У 120-суточных свиней бактерицидная активность в плазме крови
повышалась и составляла в контрольных группах от 79,34±1,24 до
81,22±1,26%, в опытных – от 81,31±1,04 (р<0,05) до 88,36±1,14% (р<0,001).
Лизоцимная активность в опытной группе – от 39,63±0,35 (р<0,001) до
(р<0,001),
41,12±0,34%
показателя
в
то
зависимости
есть
от
отмечается
достоверное
изменяющихся
факторов
повышение
природно-
климатических и микроклиматических условий в зоне обитания животных
(рис. 29).
229
%
100
90
80
70
60
50
40
30
20
10
1
5
10
20
30
60
90
120
180
210
Возраст, сутки
Контроль
Опыт
Рис. 29. Динамика бактерицидной активности плазмы крови свиней крупной белой
породы в холодный период года
У
180-суточных
свиней
наблюдали
повышение
активности
гуморальных факторов резистентности организма и они сохранялись
примерно на одном уровне до 210-суточного возраста. У 210-суточных
свиней крупной белой породы бактерицидная активность плазмы крови
составляла 85,34±2,11%, породы дюрок – 81,08±1,13%, йоркшир –
80,12±1,24%, данный показатель был выше у опытных соответственно на
5,29; 7,53; 7,50%. Лизоцимная активность в контрольных группах свиней в
среднем составляла 43,99%, в опытных – 45,47% (разница была достоверна).
По результатам исследований необходимо отметить, что с ростом и
развитием животных совершенствуется механизм защиты организма, это
обусловлено неразрывной связью живого организма с окружающей средой
обитания. На бактерицидную и лизоцимную активность плазмы крови
свиней в постнатальном онтогенезе положительно влияет иммунокорректор
тимозин-α1, повышая иммунобиологическую реактивность организма.
4.2.10. Интенсивность роста и развития свиней в постнатальном
онтогенезе в холодный период года
С целью изучения влияния на рост и развитие свиней в постнатальном
онтогенезе в холодный период года было сформировано 6 групп свиней
230
согласно схеме. В таблице 45 приведены данные, отражающие рост живой
массы тела свиней контрольных и опытных групп в холодный период года.
Поросята во всех группах были физиологически зрелые и имели живую
массу от 1,17±0,17 до 1,22±0,11 кг, длину туловища – от 20,58±1,36 до
21,24±1,12 см, имели сильное телосложение, хорошо выраженный сосательный и защитно-приспособительный рефлексы. Поросятам опытных групп
внутримышечно вводили иммунокорректор тимозин-α1, который, как
белковый препарат, по-видимому, обладает не только строго специфическим
действием, но и общим стимулирующим действием на физиологическое
состояние различных систем и органов животных, в частности на рост и
развитие свиней в постнатальном онтогенезе.
Таблица 45
Динамика роста свиней разных генотипов в холодный период года
Группа животных
Показатели
контрольная
КБП
2
дюрок
3
Живая масса‚ кг
Среднесуточный
прирост‚ г
1,20±0,12
опытная
КБП
5
дюрок
6
йоркшир
7
1,18±0,14
йоркшир
4
1 сутки
1,17±0,17
1,22±0,11
1,20±0,17
1,21±0,12
–
–
–
–
–
–
Живая масса‚ кг
Среднесуточный
прирост‚ г
1,50±0,13
1,47±0,09
5 суток
1,45±0,08
1,81±0,10*
1,58±0,07**
1,62±0,07*
75±0,44
73±0,36
70±0,51
147±0,40***
95±0,52***
102±0,53***
Живая масса‚ кг
Среднесуточный
прирост‚ г
2,14±0,11
2,06±0,11
10 суток
2,01±0,12
2,56±0,12**
2,24±0,13*
2,25±0,14*
128±1,19
118±1,21
112±1,17
165±1,18***
133±1,24**
126±1,31*
Живая масса‚ кг
Среднесуточный
прирост‚ г
3,75±0,17
3,87±0,14
20 дней
3,32±0,11
4,21±0,12**
4,10±0,15***
3,65±0,18**
161±4,6
181±4,4
185±5,2***
186±5,0*
140±4,1***
Живая масса‚ кг
Среднесуточный
прирост‚ г
8,42±0,16
8,17±0,12
9,05±0,15**
8,53±0,11*
8,45±0,13*
467±5,5
430±5,6
478±5,2
487±5,8*
443±6,4*
480±6,1*
Живая масса‚ кг
18,41±0,24
17,83±0,27
60 суток
16,84±0,31
19,17±0,30*
18,66±0,28*
18,08±0,32**
1
Среднесуточный
прирост‚ г
2
3
4
5
6
7
333±6,3
322±5,2
291±5,5
337±5,6
338±5,7**
321±5,1***
27,24±0,36
90 суток
26,17±0,32
31,16±0,34**
29,14±0,32***
27,46±0,35**
313±8,1
311±8,2
399±9,4***
349±7,9***
313±9,1**
1
109±3,5
30 суток
8,10±0,12
Окончание табл. 45
Живая масса‚ кг 29,55±0,41
Среднесуточный
3371±8,8
прирост‚ г
231
Живая масса‚ кг 45,15±0,48
Среднесуточный
520±9,4
прирост‚ г
44,43±0,42
Живая масса‚ кг 90,08±0,49
Среднесуточный
748±12,5
прирост‚ г
87,34±0,69
573±8,7
517±11,9
Живая масса‚ кг 110,08±1,18 108,32±1,14
Среднесуточный
666±14,5
699±12,3
прирост‚ г
Скороспелость
193,2
197,7
до 100 кг, дней
120 дней
43,25±0,51 47,21±0,42***
569±8,8
535±8,6*
180 суток
85,13±0,51
92,42±0,65**
698±12,1
753±11,8
46,22±0,55**
45,08±0,47**
569±8,6*
587±9,3*
90,27±0,54***
88,65±0,62***
734±12,7***
726±10,6***
210 суток
106,36±1,31 114,27±1,28* 114,15±1,25*** 111,14±1,11**
707±13,5
728±12,4**
796±13,2***
750±12,1**
201,3
190
193,2
195,6
У 5-суточных поросят в контрольных группах живая масса находилась
в пределах от 1,45±0,08 до 1,50±0,13 кг, в опытных – от 1,58±0,07 (р<0,001)
до 1,81±0,10 кг (р<0,05), то есть среднесуточный прирост живой массы
составлял в контрольных группах в среднем 72,7 г, в опытных группах –
в среднем 114,6 г.
У 10-суточных контрольных животных крупной белой породы живая
масса тела была 2,14±0,11 кг, породы дюрок – 2,06±0,11, породы йоркшир –
2,01±0,12 кг, в опытных соответственно выше на 16,40; 8,04; 10,66%
относительно показателей контрольной группы, значит использование
тимозина-α1 при выращивании животных до 10-суточного возраста
позволяет увеличить массу тела растущего молодняка свиней до 11,7%.
Интенсивный рост и развитие молодняка происходило в период
молочной и молочно-растительной формы питания, так у 20-суточных
поросят живая масса составляла в контрольных группах от 3,32±0,11 до
3,87±0,17 кг, в опытных – от 3,65±0,18 (р<0,01) до 4,21±0,12 кг (р<0,001). К
моменту отъема поросят от матерей в 30-суточном возрасте живая масса в
контрольных группах находилась в пределах от 8,10±0,12 до 8,42± 0,16 кг, в
опытных – от 8,45±0,13 (р<0,05) до 9,05±0,15 кг (р<0,0 1). Поросята к отъему
от матерей были физиологически развиты, имели хорошо сформированные
клеточные и гуморальные факторы защиты организма.
В 60-суточном возрасте исследуемый показатель у контрольных
поросят породы йоркшир составлял 16,84±0,31 кг, в опыте – 18,08±0,32 кг
232
(р<0,01),
достоверное
повышение
массы
тела
опытных
животных
относительно контрольных отмечалось и у пород крупной белой и дюрок.
У 180-суточных животных живая масса свиней крупной белой породы
была 90,08±0,49, дюрок – 87,34±0,69 кг, йоркшир – 85,13±0,51 кг, в опытных
данный показатель выше соответственно на 2,54; 3,25; 3,98%. Использование
тимозина-α1 при выращивании свиней, особенно в период откорма,
значительно повышает массу тела животного, по сравнению с контрольными.
У 210-суточных свиней живая масса тела в контрольных группах
составляла от 106,36±1,31 до 110,08±1,18 кг, в опытных – от 111,14±1,11
(р<0,05) до 114,15±1,25 кг (р<0,01).
Линейные показатели развития животных с момента рождения и до
210-суточного возраста находились на одинаковом уровне, но имелись
небольшие межпородные различия (табл. 46). Рост и развитие животных во
многом зависели не только от уровня кормления, но и от изменяющихся
факторов природно-климатических и микроклиматических условий в зимний
период года. Сохранность поголовья свиней в постнатальном онтогенезе
также зависела от природно-климатических и микроклиматических условий.
Таблица 46
Показатели линейных размеров у 210-суточных свиней разных пород
в холодный период года
Породы
КБП
Дюрок
Йоркшир
Показатели
длина туловища, см
обхват груди, см
индекс сбитости, %
контроль
118±1,42
113±1,18
95,7
опыт
контроль
124±1,32
118±1,22
95,2
118±1,28
122±1,34
116±1,36
120±1,28
114±1,20
118±1,16
112±1,14
115±1,12
96,6
опыт
контроль
опыт
95
96,5
95,8
Длина туловища свиней в контрольных группах составляла от 116 до
118 см, в опытных – от 120 до 124 см, индекс сбитости – от 95,2 до 96,6%, то
есть рост и развитие свиней с возрастом происходили равномерно.
Таблица 47
Динамика сохранности свиней в постнатальном развитии
233
в холодный период года
Породы свиней
Возраст,
суток
КБП
дюрок
йоркшир
КБП
контроль
дюрок
йоршир
опыт
1
2
3
4
5
6
7
1
30
30
30
30
30
30
5
30
30
30
30
30
30
10
28
28
28
30
29
30
20
28
27
28
29
28
29
30
27
26
27
29
28
28
60
26
25
26
29
27
28
90
26
24
25
28
26
28
120
26
24
25
28
26
28
180
26
24
25
28
26
28
210
26
24
25
28
26
28
Сохранность,
%
86,6
80
83,3
93,3
86,6
93,3
Сохранность свиней в холодный период года как в контрольных, так и
опытных группах выше относительно теплого периода года (табл. 47).
Критическими моментами в постнатальном развитии поросят остаются 10, 30
и 60 сутки жизни, так как происходит смена формы питания. Переход от
молозивной к молочной, и затем на растительную форму питания, повидимому, связан с перестройкой физиологоиммуного статуса поросят. На
10, 30 и 60 сутки жизни животных происходит естественный отбор и более
слабые погибают.
Холодный период года для организма свиней более комфортный,
отсюда и показатели сохранности выше относительно теплого.
В контрольной группе сохранность свиней КБП составляет 86,6%,
дюрок – 80,0%, йоркшир – 83,3%, а в опытных группах данный показатель
выше и у КБП находится на уровне 93,3%, дюрок – 86,6%, йоркшир – 93,3%.
Использование иммунокорректора тимозина-α1 при выращивании свиней в
холодный период года позволяет повысить сохранность свиней крупной
234
белой породы на 7,19%, дюрок – 7,63%, йоркшир – 10,72% относительно
контроля.
Иммунокорректор тимозин-α1 при систематическом использовании
повышает уровень формирования и становления показателей резистентности
в организме свиней в ответ на воздействие нежелательных факторов
природно-климатических и микроклиматических условий в зоне их
обитания.
Линейные размеры свиней на 210 сутки жизни во всех исследуемых
группах резких отличий не имеют, однако длина туловища и обхват груди у
животных опытных групп превышали показатели контрольных групп. Это
указывает на то, что свиньи в опытных группах более полно усваивают
питательные вещества корма и физиологически более крепкие. Реакция
организма свиней в опытных группах была адекватная на воздействие
изменяющихся факторов внешней среды.
По
результатам
своевременное
и
исследований
целенаправленное
необходимо
использование
отметить,
что
иммунокорректора
тимозина-α1 в свиноводстве стимулирует формирование и становление
факторов резистентности организма, что повышает стрессоустойчивость
животных на воздействие вредных факторов внешней среды.
4.2.11. Динамика поверхностного натяжения сыворотки крови свиней
КБП в холодный период года
Для составления тензиограммы плазмы крови свиней, содержащихся в
условиях
изменяющихся
параметров
гелиогеофизических,
природно-
климатических и микроклиматических факторов в холодный период года
составлены таблицы 48 и 49, в которых отражены количественные изменения
биохимического состава плазмы крови в зависимости от возраста свиней
контрольных и опытных групп.
Таблица 48
235
Динамика биохимического состава плазмы крови свиней КБП контрольной
группы в холодный период года (n=25)
Общий
белок,
г/л
Альбумины,
г/л
Глобулины,
г/л
JgM,
г/л
JgG,
г/л
JgA,
г/л
Общий Неорг.
Са,
Р,
ммоль/л ммоль/л
1 сутки
58,82
±0,61
28,69
±0,20
30,12
±0,77
1,65
±0,05
34,04
±1,11
1,12
±0,08
АсАТ,
ммоль/
(чл)
АлАТ,
ммоль/
(чл)
Щелоч.
фосфат.,
Е/л
3,13
±0,04
1,86
±0,07
0,21
±0,02
0,24
±0,01
203,1
±5,61
2,87
±0,05
1,74
±0,07
0,32
±0,01
0,33
±0,01
238,8
±4,34
2,64
±0,11
1,69
±0,09
0,38
±0,02
0,39
±0,01
275,4
±6,31
2,29
±0,06
1,76
±0,05
0,56
±0,03
0,50
±0,02
392,6
±6,15
2,45
±0,05
1,64
±0,06
0,54
±0,02
0,48
±0,02
371,2
±6,15
2,83
±0,07
1,77
±0,03
0,71
±0,03
0,75
±0,04
76,33
±1,56
3,15
±0,08
2,34
±0,08
0,69
±0,04
0,61
±0,02
70,68
±0,61
3,26
±0,14
2,34
±0,18
0,60
±0,03
0,56
±0,03
59,32
±1,31
3,00
±0,06
2,24
±0,08
0,62
±0,02
0,60
±0,04
44,59
±1,14
2,89
±0,13
1,83
±0,05
0,60
±0,02
0,62
±0,01
41,72
±1,02
5 суток
72,21
±0,56
20,08
±0,19
52,12
±0,38
1,32
±0,04
32,81
±1,13
72,31
±0,43
23,79
±0,34
48,51
±0,24
2,12
±0,03
23,75
±1,01
55,21
±0,51
19,04
±0,73
36,16
±0,39
3,03
±0,03
7,16
±0,24
60,91
±0,56
25,83
±0,77
35,07
±0,28
3,08
±0,09
7,31
±0,34
51,71
±0,45
24,48
±0,30
27,19
±0,23
4,12
±0,11
16,64
±0,32
62,04
±0,53
28,30
±0,64
33,75
±0,26
4,24
±0,08
17,61
±0,32
61,27
±0,51
27,59
±0,23
33,67
±0,26
4,35
±0,05
19,24
±0,21
1,06
±0,05
10 суток
2,18
±0,04
20 суток
1,45
±0,06
30 суток
1,63
±0,03
60 суток
1,61
±0,10
90 суток
1,77
±0,05
120 суток
1,85
±0,05
180 суток
63,33
±0,44
28,77
±0,20
34,55
±0,32
6,12
±0,10
24,92
±0,35
66,72
±0,44
25,67
±0,36
41,04
±0,22
5,08
±0,08
21,54
±0,26
2,11
±0,04
210 суток
2,10
±0,03
Таблица 49
Динамика биохимического состава плазмы крови опытных свиней КБП
в холодный период года (n=25)
Общий
белок,
г/л
1
Альбумины,
г/л
2
Глобулины,
г/л
3
JgM,
г/л
JgG,
г/л
4
5
58,91
±0,52
28,87
±0,26
30,03
±0,42
1,63
±0,07
34,01
±1,14
Общий
Са,
ммоль/л
6
7
1 сутки
Неорг.
Р,
ммоль/л
8
АсАТ,
ммоль/
(чл)
9
АлАТ,
ммоль/
(чл)
10
Щелоч.
фосфат.,
Е/л
11
3,11
±0,04
1,79
±0,04
0,22
±0,02
0,23
±0,03
209,5
±5,34
77,84 20,74 56,91 1,44 36,09
1,32
2,99
±0,66* ±0,28** ±0,33** ±0,04 ±1,12* ±0,06** ±0,03*
1,88
±0,04*
0,37
±0,02*
0,38
±0,02*
255,1
±5,25*
JgA,
г/л
1,15
±0,06
5 суток
Окончание табл. 49
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
10 суток
73,78 23,29 50,48 2,21 26,65
2,36
2,91
±0,54* ±0,40** ±0,52* ±0,03 ±1,02* ±0,03*** ±0,06*
20 суток
236
1,93
0,46
0,45
±0,03* ±0,02** ±0,02*
296,4
±6,18*
56,64
±0,48*
19,22
±0,24
37,41 3,12
7,89
1,74
2,49
±0,34* ±0,08 ±0,21* ±0,07** ±0,07*
2,06
±0,08*
0,63
±0,02*
0,56
±0,02*
418,8
±6,12*
62,64 27,27 35,37 3,20
8,23
1,81
2,66
1,82
±0,65* ±0,27* ±0,29* ±0,12 ±0,32** ±0,04*** ±0,04*** ±0,05*
0,61
±0,02*
0,55
±0,02*
389,7
±6,24*
0,81
±0,03*
0,85
±0,02*
81,51
±1,15*
30 суток
60 суток
52,35 25,31 27,03 4,22± 17,91
2,02
3,13
2,02
±0,32* ±0,21* ±0,29* 0,11 ±0,35** ±0,10** ±0,05*** ±0,06*
90 суток
63,86 27,53 36,32 4,28± 19,27
2,05
3,44
±0,75* ±0,45* ±0,73** 0,05 ±0,32***±0,07*** ±0,06**
2,56
±0,04*
0,80
0,77
76,21
±0,02* ±0,03*** ±1,05***
120 суток
62,82 28,79 34,04 4,41 21,67
2,07
±0,37* ±0,28* ±0,23* ±0,06 ±0,22*** ±0,10*
3,65
±0,12*
2,86
0,71
0,65
68,45
±0,07** ±0,02** ±0,02* ±0,96***
180 суток
65,18 30,23
±0,36** ±0,20*
34,95
±0,32
6,24 26,31
2,64
3,29
2,49
0,70
±0,08 ±0,34** ±0,08*** ±0,06*** ±0,04** ±0,03*
0,69
±0,02*
48,03
±0,78*
68,32 26,76
±0,47* ±0,31*
41,55
±0,24
5,17 23,18
2,34
3,19
±0,10 ±0,30***±0,05*** ±0,09*
0,66
0,68
±0,02* ±0,02**
44,72
±0,94*
210 суток
Примечание:
*р<0,05;
**р<0,01;
2,25
±0,16*
***р<0,001
–
относительно контрольных
животных.
При
анализе
таблиц
48
и
49
необходимо
отметить,
что
внутримышечное введение тимозина-α1 поросятам опытных групп с первого
дня жизни в постнатальном онтогенезе привело к достоверному повышению
(р<0,05) концентрации общего белка и его фракций, иммуноглобулина,
минеральных веществ, активности ферментов переаминирования и щелочной
фосфатазы. С возрастом животных опытных групп наиболее интенсивное и
достоверное повышение концентрации JgA и общего кальция. У 30-суточных
поросят в контрольной группе концентрация JgA составляет 1,63±0,03 г/л,
общего кальция 2,45±0,05 ммоль/л, а в опытной группе соответственно
1,81±0,04 г/л (р<0,01) и 2,66±0,04 ммоль/л (р<0,01). У 90- и 210-суточных
свиней в опытных группах также выше концентрация иммуноглобулинов и
минеральных веществ в плазме крови свиней, относительно контрольных
групп.
По результатам исследований (табл. 48 и 49), необходимо отметить,
что изменения концентрации биохимических соединений в плазме крови
свиней
происходит
циклично
в
зависимости
от
возраста
и
гелиогеофизических, климатических и микроклиматических параметров в
237
зоне
обитания
свиней,
коррелируются
внутримышечным
введением
тимозина-α1, что находит отражение в динамике ПН плазмы крови.
В таблице 50 и 51 приведены результаты определения ДПН плазмы
крови свиней КБП в холодный период года в зависимости от их возраста.
Таблица 50
Параметры ДПН сыворотки крови свиней КБП
контрольной группы (M±m; n=25)
λ0
мН-1с-1/2
5,74± 0,41
λ1
мН-1с-1/2
11,69 ±0,14
67,52± 0,12
Параметры ДПН
σ2
σ3
мН/м
мН/м
64,42 ±0,64 58,43 ±0,22•••
62,92 ±0,17 54,41 ±0,32•••
4,64± 0,08
10,42± 1,18
Возраст
животных,
суток
1
σ0
мН/м
65,81± 0,31
σ1
мН/м
65,12 ±0,22
5
68,44 ±0,64***
10
68,88± 0,22***
68,48 ±0,14
69,98 ±0,16
58,78 ±0,34•••
4,72± 0,09
5,83± 0,16
20
68,26± 1,21***
68,22±1,11
62,48± 0,14
53,12± 0,36•••
5,46 ±0,38
8,86± 0,28
30
69,43 ±1,32***
69,72 ±1,30
67,48 ±1,14
60,68± 1,22•••
5,34±0,24
8,64 ±0,26
60
70,56 ±0,42***
70,36 ±0,62
67,48± 0,44
60,28± 0,62•••
4,68 ±0,18
5,45± 0,30
90
70,86 ±0,44***
70,56 ±0,34
65,96± 0,52
60,12± 0,63•••
4,79± 0,24
5,46± 0,31
120
69,42± 0,40***
69,66± 0,52
65,64± 0,28
61,42± 0,64•••
4,92 ±0,36
4,64± 0,32
180
69,89± 0,68***
69,86 ±0,54
66,82 ±0,48
61,52±0,32•••
3,56 ±0,14
5,22± 0,14
210
70,1± 0,82***
70,2± 0,42
65,14± 0,28
61,72± 0,38•••
4,24 ±0,36
5,18± 0,12
Примечание: *р<0,05; **р<0,01; ***р<0,001 – относительно суточных поросят,
•р<0,05; ••р<0,01; •••р<0,001 – относительно σ0.
Таблица 51
Параметры ДПН сыворотки крови свиней КБП
опытной группы (M±m; n=25)
λ0
мН-1с-1/2
5,90±0,61
λ1
мН-1с-1/2
12,40±1,20
68,66±0,12
Параметры ДПН
σ2
σ3
мН/м
мН/м
64,40±0,60
58,80±0,80•••
63,90±0,50
54,60±0,80•••
5,70±0,80
10,30±1,10
69,86±0,14***
69,73±0,18
65,41±0,17
59,80±0,30•••
4,78±0,09
5,93±0,18
20
69,30±1,20***
69,00±1,10
63,27±0,19
54,60±1,40•••
5,80±0,60
9,00±1,30
30
70,20±1,30***
70,40±1,31
68,26±1,20
62,40±1,22•••
5,40±0,20
8,90±0,16
60
71,30±0,50***
71,00±0,60
66,40±0,40
61,00±0,60•••
4,8±0,10
5,50±0,30
90
71,90±0,40***
71,90±0,50
66,80±0,50
61,40±0,53•••
4,90±0,30
5,50±0,20
120
Возраст
животных,
суток
1
σ0
мН/м
65,80±0,32
σ1
мН/м
65,80±0,32
5
68,6±0,30***
10
70,40±0,42***
70,40±0,50
65,80±1,21
62,10±0,70•••
5,60±0,20
4,00±0,30
180
70,70±0,80***
70,60±0,80
67,30±0,70
62,10±0,50•••
3,40±0,12
5,60±0,30
210
70,20±0,80***
70,20±0,46
66,40±0,60
62,20±0,50•••
4,40±0,42
5,20±0,40
Примечание тоже, что в таблице 50.
Проведенные исследования выявили закономерные изменения ДПН
сыворотки крови свиней в постнатальном онтогенезе.
У суточных поросят наблюдается наиболее низкие значения всех
показателей ДПН. У 5-суточных поросят ДПН сыворотки крови σ0
238
повышается на 3,85%, при коротком времени существования и составляет
68,44±0,64 мН/м, σ1 на 2,64%, при среднем времени существования жизни
поверхности σ2=62,92±0,17 мН/м, то есть ДПН сыворотки снижается на
2,33%, а при больших временах существования поверхности и составляет
σ3=54,41±0,32 или ниже на 6,89%.
В фазу молочного питания у поросят ДПН сыворотки крови короткого
времени существования повышается, так как в крови 10-суточных поросят в
контрольной группе повышается концентрация общего белка на 0,64%,
альбуминов – на 10,42%, а концентрация глобулинов снижается на 6,93%,
относительно 5-суточных животных, то есть ДПН сыворотки крови по
времени существования во многом зависит от концентрации в крови
пластических белков, отражающих интенсивность роста и развития молодого
организма.
У 30-суточных поросят в сыворотке крови отмечается повышение ДПН
среднего времени существования и σ2 составляет 68,26±1,20 мН/м, а в
больших временах существования σ3 – 62,40±1,20 мН/м. Значения λ0 у
поросят всех возрастов колеблется в пределах (5,9±0,05 – 5,40±0,20 мН-1с-1/2)
и (12,40±1,20 – 5,93±0,18 мН-1с-1/2), при этом наивысшее значение λ0
наблюдается у суточных поросят.
Снижение концентрации глобулинов в сыворотке крови у поросятсосунов молочной фазы питания свидетельствует о том, что поросята
обладают достаточно высокими показателями факторов резистентности на
воздействие изменяющихся вредных факторов природно-климатических
условий на организм.
Из данных таблиц 50 и 51 видно, что для всех возрастных групп
значения ПН при увеличении времени существования поверхности от t→0 c
(σ0) до t=0.02 c (σ1) изменяются на 0-0,4%.
При средних временах существования поверхности значения ПН (σ2)
для поросят в возрасте 5 суток снижаются на 6,9%, в 10-, 60- и 120-суточном
239
возрасте – на 6,2-6,5%, в 20-суточном – на 8,3%, в 210-суточном – на 4,7%,
относительно суточных животных.
Значения ПН (σ3) при больших временах существования поверхности
для суточных поросят составляет 58,8±0,8 мН/м, у 5-суточных животных
показатель снижается на 8,2%, в период доращивания и откорма свиней ПН
(σ3) увеличивается на 6,12%, относительно суточных данных.
При коротких временах существования поверхности значения ПН
(σ1 и σ0) с возрастом изменяются в переделах ошибки измерений от 1,6 до
4,8%. У поросят с возрастом значения ПН при средних временах
существования (σ2) поверхности увеличиваются на 6,3%, лишь в возрасте
20 суток наблюдается небольшое снижение ПН на 3,3%. При больших
временах существования поверхности ПН (σ3) с возрастом возрастают на
13,7%, при этом в возрасте 20 суток наблюдается снижение значений ПН на
8,7%. В то же время для животных в возрасте 210 суток σ3 изменяется в
пределах ошибки.
Минимальные значения угла наклона начального участка кривой (λ0)
наблюдались у свиней в возрасте 210 суток.
Максимальные
углы
наклона
конечного
участка
кривой
(λ1)
фиксируются для поросят в 5- и 20-суточном возрасте, минимальные –
в 120-суточном возрасте. Для остальных возрастных групп значения углов
наклона изменяются незначительно в пределах ошибки измерений.
240
σ, мН/м
75
70
65
60
55
50
0,01
0,1
1
1 опыт
1 контроль
30 опыт
30 контроль
90 опыт
90 контроль
10
t, c
Рис. 30. Тензиограмма сыворотки крови контрольных и опытных поросят КБП
Установлено, что тензиограмма плазмы крови свиней всех групп
характеризуется снижением ПН при увеличении времени «существования»
поверхности (рис. 30). Тензиограмма плазмы крови свиней контрольных и
опытных групп имеет свои отличия, связанные с различной концентрацией
биохимического состава крови. В плазме крови свиней опытных групп более
высокая концентрация общего белка и его фракций, иммуноглобулинов и
минеральных веществ (табл. 48, 49), что находит отражение в тензиограмме.
Определение тензиограммы плазмы крови позволяет за короткое время
лабораторных исследований крови установить физиологоиммунный статус
животных, а также установить темпы роста, развития организма и
продуктивность животных в зависимости от их обитания в условиях
изменяющихся гелиогеофизических и климатических параметров.
241
Корреляционный анализ между параметрами ДПН и
биохимическими показателями сыворотки крови свиней КБП в
холодный период года
Таблица 52
Коэффициенты корреляции между параметрами ДПН и биохимическими
показателями сыворотки крови свиней КБП контрольной группы
Периоды
1
1-30 сутки
60-90 сутки
120-210 сутки
1-30 сутки
60-90 сутки
120-210 сутки
1-30 сутки
60-90 сутки
120-210 сутки
1-30 сутки
60-90 сутки
120-210 сутки
1-30 сутки
60-90 сутки
120-210 сутки
1-30 сутки
60-90 сутки
120-210 сутки
1-30 сутки
60-90 сутки
120-210 сутки
периоды
1-30 сутки
60-90 сутки
120-210 сутки
1-30 сутки
60-90 сутки
120-210 сутки
1-30 сутки
60-90 сутки
120-210 сутки
σ0
2
σ1
3
Общий белок
–0,36
–0,36
+1
+1
+0,94
+0,94
Альбумины
–0,47
–0,47
+1
+1
–0,43
–0,43
Глобулины
–0,48
–0,48
+1
+1
+0,81
+0,81
JgМ
–0,49
–0,49
+1
+1
–0,27
–0,27
JgG
–0,6
–0,6
+1
+1
–0,26
–0,26
JgA
–0,56
–0,56
+1
+1
+1
+1
Общий кальций
–0,84
–0,84
+1
+1
–1
–1
Неорганический фосфор
σ0
σ1
–0,96
–0,96
+1
+1
–0,98
–0,98
АсАТ
+0,73
+0,73
–1
–1
–0,22
–0,22
АлАТ
+0,77
+0,77
–1
–1
+1
+1
242
σ2
4
σ3
5
–0,42
–1
–0,42
–0,09
–1
+1
–0,44
–1
+0,93
+0,84
–1
–0,75
–0,16
–1
–0,65
–0,28
–1
+0,98
–0,17
–1
+0,75
–0,13
–1
–0,23
–0,1
–1
+0,76
–0,02
–1
–0,22
+0,86
–1
–0,26
–0,43
–1
+0,73
–0,13
–1
–0,06
–0,16
–1
–0,91
σ2
–0,57
–1
–0,59
σ3
–0,35
–1
–0,99
–0,06
+1
+0,96
–0,11
+1
–0,19
–0,12
+1
–1
–0,11
+1
+1
Окончание табл. 52
1
2
3
4
5
Щелочная фосфатаза
1-30 сутки
–0,64
–0,64
–0,01
–0,11
60-90 сутки
–1
–1
+1
+1
120-210 сутки
–0,87
–0,87
–0,42
–0,61
Примечание: при r<0,3 корреляционная зависимость между признаками считается
слабой, при r =0,3-0,7 – средней, при r>0,7 – сильной.
Таблица 53
Коэффициенты корреляции между параметрами ДПН и биохимическими
показателями сыворотки крови свиней КБП опытной группы
Периоды
1
1-30 сутки
60-90 сутки
120-210 сутки
1-30 сутки
60-90 сутки
120-210 сутки
1-30 сутки
60-90 сутки
120-210 сутки
1-30 сутки
60-90 сутки
120-210 сутки
1-30 сутки
60-90 сутки
120-210 сутки
1-30 сутки
60-90 сутки
120-210 сутки
1-30 сутки
60-90 сутки
120-210 сутки
1-30 сутки
60-90 сутки
120-210 сутки
1-30 сутки
60-90 сутки
σ0
2
σ1
3
Общий белок
–0,27
–0,27
+1
+1
–0,47
–0,47
Альбумины
–0,43
–0,43
+0,75
+0,75
+0,98
+0,98
Глобулины
–0,39
–0,39
+1
+1
–0,73
–0,73
JgМ
–0,65
–0,65
+1
+1
–0,67
–0,67
JgG
–0,62
–0,62
+1
+1
+0,76
+0,76
JgA
+0,78
+0,78
+1
+1
–0,62
–0,62
Общий кальций
–0,61
–0,61
+1
+1
–0,2
–0,2
Неорганический фосфор
–0,03
–0,03
+1
+1
–0,29
–0,29
АсАТ
+0,86
+0,86
–1
–1
243
σ2
4
σ3
5
–0,26
+1,01
–0,47
–0,28
+1
+0,89
–0,45
+0,89
–0,51
+0,76
+0,86
–0,53
–0,39
+0,95
–0,72
–0,4
+0,98
+0,99
–0,44
+1
+1
–0,3
+1,01
–0,1
–0,62
+1
+1
–0,63
+1
–0,2
–0,35
+1
+1,01
–0,37
+1
–0,03
–0,02
+1
–0,66
–0,17
+1
–0,67
–0,43
+1
–0,5
–0,68
+1
–0,81
–0,33
–1
–0,08
–1
Окончание табл. 53
1
120-210 сутки
3
+0,76
АлАТ
1-30 сутки
+0,9
+0,9
60-90 сутки
–1
–1
120-210 сутки
–0,35
–0,35
Щелочная фосфатаза
1-30 сутки
–0,42
–0,42
60-90 сутки
–1
–1
120-210 сутки
–0,01
–0,01
Примечание тоже, что в таблице 52
Таким
образом,
2
+0,76
между
параметрами
4
–0,08
5
–0,98
–0,33
–1
+0,92
–0,07
–1
–0,28
–0,36
–1
–0,72
–0,37
–1
–0,61
ДНП
и
биохимическими
показателями сыворотками крови прослеживается четкая взаимосвязь, что
подтверждается большим числом достоверных корреляционных связей
между ними, отличающимися по силе и типу. На параметры σ0 и
контрольных
свиней
наибольшее
влияние оказывают общий
σ1
белок,
альбумины, JgA, неорганический фосфор, опытных свиней – альбумины,
JgG, неорганический фосфор; на σ2 в контрольных животных JgG, JgА, АсАТ
и опытных животных – общий белок, альбумины, JgG, JgА, JgМ; на σ3 обеих
исследуемых групп – общий белок, альбумины.
4.3. Сравнительный анализ показателей ФБИС свиней, выращенных
в теплый и холодный периоды года
Сравнительный анализ результатов определения физиологических,
морфофизиологических, биохимических и иммунологических показателей
крови чистопородных свиней в теплый и холодный период года в условиях
Среднего Поволжья позволил выявить ряд существенных особенностей
в становлении и развитии ФБИС животных в постнатальном онтогенезе.
У новорожденных поросят температура тела в теплый период года
в среднем по породам составляла 38,7±0,06˚С, в холодный период –
39,5±0,04˚С или выше на 0,8˚С; частота дыхания и частота пульса
одинаковые – 76,5±0,25 дых. движ./мин, 188,1±11,3 уд./мин соответственно.
У поросят-сосунов температура тела в теплый период была ниже на 0,6˚С,
244
частота дыхания – на 10,5%, частота пульса – на 2,5%, относительно
показателей в холодный. У свиней на доращивании в теплый период
температура тела находилась в пределах 38,8±0,03˚С, в холодный –
38,9±0,02˚С; частота дыхания в холодный период выше на 3,9%; частота
пульса – на 9%, чем в теплый период. Живая масса свиней в 210-суточном
возрасте в теплый период
составляла 109,52±1,16 кг, в холодный –
108,25±1,21 кг. Среднесуточный прирост в холодный период выше на 3%,
сохранность животных выше на 5%, относительно показателей теплого
периода.
У
новорожденных
поросят
содержание
эритроцитов
в
крови
в холодный период составляло – 8,49±0,18·1012/л или было меньше на 0,8%,
чем в теплый. У 10-суточных животных в теплый период число эритроцитов
находилось на уровне 13,51±0,27·1012/л, в холодный – 12,56±0,28·1012/л или
меньше на 6,2% (р<0,01). В 30-суточном возрасте поросят количество
эритроцитов в крови в теплый период года было выше на 3% по сравнению с
холодным. У свиней на доращивании в теплый и холодный период число
эритроцитов было одинаковым и находилось на уровне 6,23±0,34·1012/л.
Количество гемоглобина в теплый период года в крови поросят-сосунов
находилось на уровне 75,69±0,58 г/л, в холодный – 73,79±0,62 г/л или ниже
на 2,5% (р<0,05), чем в теплый период. У свиней на доращивании
содержание гемоглобина в крови в теплый период года составляло
103,56±1,09 г/л, в холодный – 102,05±1,22 г/л или ниже на 1,4%. Содержание
лейкоцитов в крови 1-суточных поросят в теплый и холодный периоды года
находилось на одинаковом уровне 5,12±0,12·109/л. В 30-суточном возрасте
свиней число лейкоцитов в крови в теплый период выше на 1,07% чем в
холодный. У свиней на доращивании число клеток белой крови в теплый
период
года
находится
на
уровне
12,93±0,3·109/л,
в
холодный
–
12,27±0,18·109/л или меньше на 5,1% (р<0,05).
Содержание общего белка в сыворотке крови
поросят-сосунов в
теплый период года составляло 67,08±0,58 г/л, в холодный – 64,1±0,62 г/л
245
или ниже на 4,4% (р<0,01). У свиней на откорме в теплый период содержание
общего белка находилось в пределах 69,46±0,68 г/л, в холодный – 63,58±
±0,42 г/л или ниже на 8,5% (р<0,05). Содержание γ-глобулина в кров
поросят-сосунов в теплый период года составляло 25,33±0,25 г/л, в холодный
26,68±0,21 г/л или выше на 5,1% (р<0,001). Количество γ-глобулина в крови
свиней на откорме в теплый период было 27,30±0,21, в холодный –
29,91±0,26 г/л или выше на 8,7% (р<0,001).
Содержание общего кальция в теплый период года в крови поросятсосунов составляло 2,73±0,04 ммоль/л, в холодный – 2,57±0,05 ммоль/л или
ниже на 5,8% (р<0,05), чем в теплый период. У свиней на откорме
количество общего кальция в крови в теплый период года находилось на
уровне 3,11±0,05 ммоль/л, в холодный – 3,01±0,05 ммоль/л или ниже на 3,2%.
Содержание неорганического фосфора в теплый период года в крови
поросят-сосунов находилось на уровне 1,67±0,05 ммоль/л, в холодный –
1,69±0,04 ммоль/л или выше на 1,2%; у свиней на откорме в теплый период –
2,17±0,11 ммоль/л, в холодный – 2,87±0,07 ммоль/л или выше на 24%
(р<0,001), чем в теплый. Показатель резервной щелочности в крови поросятсосунов составлял 48,23±0,34 об%СО2, в холодный – 47,07±1,02 об%СО2 или
ниже на 2,4%; у свиней на откорме в теплое время – 52,08±0,61 об%СО2,
в холодное – 49,61±0,54 об%СО2 или ниже на 4,7% (р<0,01), относительно
теплого периода.
Активность АсАТ в плазме крови поросят-сосунов в теплый период
года находилась в пределах 0,41±0,02 ммоль/(чл), в холодный – 0,35±
±0,02 ммоль/(чл) или ниже на 14% (р<0,05); у свиней на откорме в теплый
период – 0,65±0,02 ммоль/(чл), в холодный – 0,58±0,02 ммоль/(чл), что ниже
на 12% (р<0,05) относительно показателей
теплого периода. Щелочная
фосфатаза в плазме крови поросят-сосунов в теплый период составляла
303,5±5,87 Е/л, в холодный – 286,1±4,75 Е/л или ниже на 6% (р<0,05);
у свиней на откорме в теплый – 50,09±0,81 Е/л, в холодный – 46,84±0,72 Е/л
или ниже на 7% (р<0,01), чем в теплый.
246
Фагоцитарная активность лейкоцитов новорожденных поросят в теплый
период года находилась на уровне 12,81±0,24%, в холодный – 11,78±0,31%
или ниже на 8% (р<0,01). У свиней на доращивании фагоцитарная активность
лейкоцитов в теплый период составляла 38,36±0,36%, в холодный –
43,95±0,51% или выше на 13% (р<0,001); у животных на откорме в теплый
период – 48,62±0,28%, в холодный – 50,24±0,47% или выше на 3,2% (р<0,01).
Число Т-лимфоцитов в крови поросят-сосунов в теплый период находилось
на уровне 2,33±0,12·109/л, в холодный – 2,39±0,11·109/л или выше на 2,5%.
У свиней на доращивании количество Т-клеток в теплый период составляло
3,88±0,13·109/л, в холодный – 3,42±0,12·109/л или ниже на 11% (р<0,05);
у животных на откорме в теплый период – 4,32±0,10·109/л, в холодный –
3,95±0,13·109/л или ниже на 8,6% (р<0,05).
Число В-лимфоцитов в теплый период года в крови поросят-сосунов
составляло 0,52±0,01·109/л, в холодный – 0,44±0,03·109/л или ниже на 15%
(р<0,05) по сравнению с таковым в теплый период. У свиней на откорме в
теплый период года количество В-лимфоцитов находилось на уровне
1,10±0,07·109/л,
в
холодный
–
1,06±0,04·109/л
или
ниже
на
4%.
Бактерицидная активность плазмы крови у поросят-сосунов в теплый период
составляла 31,80±0,38%, в холодный – 30,61±0,34% или ниже на 7% (р<0,05).
У свиней на доращивании в теплый период бактерицидная активность
составляла 79,82±0,51%, в холодный – 78,07±0,62% (р<0,05) или ниже на 2%;
у свиней на откорме в теплый период – 84,80±0,67%, в холодный –
82,18±0,56% или ниже на 3% (р<0,01) по сравнению с теплым. Лизоцимная
активность обнаруживается в плазме крови 5-суточных поросят в теплый
период года и составляет 4,35±0,18%; в холодный – 5,37±0,17% или выше на
18% (р<0,001). У 210-суточных свиней в теплый период года данный
показатель составляет 45,99±0,34%, в холодный – 43,78±0,48% или ниже на
5% (р<0,001).
247
5. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
Научные
сведения
в
области
физиологоиммунологического,
биологического и биохимического статуса свиней разных генотипов в
постнатальном онтогенезе до сих пор нельзя считать полными. Исследования
особенностей физиологии, биохимии и иммунологии свиней продолжают
проводиться не систематически и по частным поводам. В связи с этим
возрастает необходимость изучения различных систем организма свиней в
постнатальном онтогенезе (Лысов В.Ф., 1977).
Научно обоснованный поиск оптимальных условий содержания и
кормления свиней в различные фазы постнатального периода развития под
влиянием изменяющихся факторов природно-климатических и микроклиматических условий, а также эффективных методов профилактики и коррекции
различных состояний свиней должны опираться на всесторонние знания
морфофункциональных, биохимических и иммунологических особенностей
организма животных (Лысов В.Ф. и др., 1996; Максимов В.И. и др., 2008;
Комлацкий В.И., 2005).
Особенности развития определяются наследственностью, которая
регулируется лишь в том случае, если на каждом этапе развития организма
будут обеспечены специфичные и обязательные условия среды. При
возникновении различных отклонений условий среды от оптимума,
требующихся для свиней, может либо усилиться адаптация их организма,
либо возникнуть отклонение от гомеостаза. Наиболее уязвимы свиньи в фазу
новорожденности, которая является одним из важнейших этапов онтогенеза,
когда
происходит
приспособление
организма
к
внеутробному
существованию. Именно в эту фазу происходит становление всех органов и
систем с адекватной активацией генетической программы живого существа
под действием внешней среды с последующим становлением всех
физиологоиммунных функций.
248
Одной из систем, связующих воедино все функции организма
животного в постнатальном онтогенезе, является система клеточных и
гуморальных факторов резистентности. От своевременной активации
клеточных и гуморальных факторов резистентности, особенно в фазу
раннего постнатального развития, во многом зависит формирование и
становление в последующие этапы защитных сил организма в ответ на
воздействие неблагоприятных факторов внешней среды.
Важным шагом вперед в биологии и физиологии животных явилось
введение в практику различных подходов к восстановлению нарушенного
хода различных процессов при их отклонении от физиологического
состояния у животных (Гурьянов А., 2006). При этом применение известных
средств и приемов коррекции резистентности у свиней в постнатальном
онтогенезе, не всегда приводит к достаточному эффекту формирования
защитных сил организма в ответ на воздействие неблагоприятных факторов
природно-климатических и микроклиматических условий в различные
периоды года. Успех или не успех коррекции зависит в значительной степени
от динамики клеточных и гуморальных факторов резистентности у животных
в постнатальном онтогенезе.
Важным моментом развития свиней является то, в какое время
происходит развитие организма, то есть в теплый или холодный период года.
Гелиогеофизические, климатические и микроклиматические условия
в теплый и холодный периоды года
Среднее
Поволжье
характеризуется
умеренно
континентальным
климатом с жарким летом и продолжительной зимой. Деление времени года
на 4 сезона, видимо, не всегда адекватно отражает ситуацию, так как
природно-климатические условия в течение одного сезона изменяются
множество раз, а это оказывает влияние на условия микроклимата в
животноводческих
помещениях
в
зоне
физиологический статус организма животного.
249
обитания
свиней
и
на
С учетом вышеописанного в соответствии с методикой Федеральной
службы
по
гидрометеорологии
и
мониторингу
окружающей
среды
продолжительность времени года разделили на два периода: 1 – теплое время
года, 2 – холодное время года. Переход теплого времени года на холодное
устанавливают с переходом среднесуточной температуры воздуха через 0ºС.
В зоне расположения ЗАО «СВ-Поволжское» Самарской области
условно к теплому периоду года отнесли природно-климатические явления с
1 апреля по 31 октября (214 дней), холодный период с 1 ноября по 31 марта
(151 день).
В результате исследований установлено, что в теплый период 2009 г.
максимальные температуры (+32,5ºС, +36,9ºС) отмечены в традиционно
летние месяцы (июнь, июль, август). Самым теплым месяцем был июнь со
средней температурой +22,4ºС, в то время, как среднее многолетнего
значение 18,7ºС. Количество осадков за год составило 400,8 мм, что
достаточно близко к норме (410,0 мм) или 97,8% от нормы. Большое
количество осадков наблюдалось в марте, августе и октябре, значительно
меньше нормы – мае и июне.
Влажность воздуха составляла от 48,7 до 78,5%; атмосферное давление
755,4-760,8 мм рт. ст.; концентрация кислорода 277,2-304,1 г/м³; средняя
скорость движения воздуха 3,9 м/с с преобладанием северного и северновосточного направления. Более «ветряными» отмечены
май и июнь.
Содержание вредных газов повышалось до предельного уровня: концентрация SО2 в атмосферном воздухе – от 0,002 до 0,009 г/м³, СО – от 1,2 до
2,9 г/м³, NO2 – от 0,03-0,15 г/м3; количество солнечных пятен – 0,5-3,4
Sun-spots; поток радиоизлучения на волне 10,7 см (частота 2800 МГц) – от
69,4 до 77,8; планетарный Ар-индекс – от 5,1 до 11,6 nТ.
В животноводческих помещениях влажность воздуха находилась в
пределах 60,0-70,0%; температура воздуха +16,0…+19,0°С; концентрация
СО2 – 0,08-0,24%, NH3 – 6-14 мг/м³; бактериальная загрязнённость воздушной
среды – 130,2-202,0-270,0 тыс. М.Т./м³. Показатели гелиогеофизических,
250
климатических
и
микроклиматических
условий
в
животноводческих
помещениях были менее комфортными в теплый периодом года, что,
несомненно, повлияло на физиологоиммунный статус организма животных.
В таблице 54 приведены изменения температуры воздуха в зоне
расположения свинокомплекса ЗАО «СВ-Поволжское».
Таблица 54
Среднемесячная и среднегодовая температура воздуха, С
0
Показатели
Год
d, гПа
2009
Средняя
месячная
Средняя
температура многолетняя
воздуха
Отклонение
2009
Максимальная
температура Абсолютный
воздуха
максимум
2009
Минимальная Абсолютный
температура
минимум
воздуха
Среднее
многолетнее
14
12
10
8
6
4
2
0
1
2
3
-2,5
4
4,7
5
15,1
Месяцы
6
7
22,4 21,7
8
18,6
9
15,4
10
7,1
11
-0,3
12
-9,9
Среднее
за год
5,9
-13,7 -13,1 -7,0
4,7
14,1
18,7
20,7
18,8
12,3
4,3
-3,9
-10,6
3,8
1
2
-11,9 -9,4
1,8
0,0
3,8
-1,1
4,5
17,1
0,0
27,6
1,0
28,8
3,7
36,9
1,0
34,0
-0,2
32,5
3,1
30
2,8
21,4
3,6
7
0,7
4,7
2,1
36,9
4,0
3,0
13,0
32,0
33,0
38,0
40
39
37,0
27,0
16,0
6,0
40,0
-25,3 -20,8 -16,0 -5,5
0,9
7,3
8,5
6,6
-0,3
-5,3
-7,1
-32,8
-32,8
-46,0 -52,0 -32,0 -26,0 -6,0-
-2,0
3,0
0,0
-8,0 -21,0 -39,0 -42,0
-46,0
-31,0 -31,0 -24,0 -11,0 -1,0
4,0
8,0
5,0
-1,0
-31,0
3
4
5
6
7
8
-8,0
9
-20,0 -29,0
10
11
12
Месяцы
Рис. 31. Годовой ход дефицита влажности воздуха в 2009 г.
В процессе исследований установлено, что в день рождения поросят
общие физиологические, гематологические, биохимические и иммунологические показатели не имели резких отличий (не зависимо от периода года).
Показатели результатов исследований дополняются и согласуются с
данными исследований Кузнецова А.И. (2002) и рекомендуются для
использования
в
качестве
физиологических,
гематологических
биохимических параметров при оценке здоровья животных.
251
и
Полученные данные свидетельствуют о том, что теплый период года –
менее комфортное время для роста и развития новорожденных поросят.
Использование тимозина-α1 стимулирует выработку в организме животных
клеточных и гуморальных факторов резистентности, а также способствует
более полному усвоению питательных веществ корма, что выражается
изменениями показателей роста и развития животных в зависимости от
возраста.
Установлено, что в теплый период года количество эритроцитов в
крови у поросят находилось на высоком уровне в день рождения, уменьшалось в конце молозивного периода, повышаясь в молочно-растительный
период и вновь уменьшаясь в период доращивания и откорма. У взрослых
свиней контрольных групп (с 90 по 210 сутки) данный показатель составлял
от 6,12±0,34 до 7,11±0,25·1012/л, у животных, получавших инъекции
тимозинома-α1, был выше от 3,32 до 4,05%. Концентрация гемоглобина
находилась на низком уровне в крови поросят-сосунов и повышалась при
переходе на растительное кормление. В контрольной группе свиней (с 60 по
210
сутки)
КБП
количество
гемоглобина
в
среднем
составляло
106,64±1,64·г/л, а в опытной было выше на 10,08% относительно такового в
контроле. Содержание лейкоцитов в крови поросят КБП в период кормления
материнским молоком (с 1 по 30 сутки) было невысоким и составляло
5,39±0,23·1012/л, в опытной группе – 5,84±0,19·109/л или выше на 7,71%
относительно данного показателя в контроле. Примерно в таких же пределах
находились гематологические показатели у свиней породы дюрок и йоркшир.
По
результатам
исследований
необходимо
отметить,
что
изменяющиеся условия кормления, содержания и климатические условия
влияют на гематологические показатели. Использование тимозин-α1 при
выращивании свиней позволяет повысить морфологические показатели
крови до 7,71% (р<0,05), что способствует повышению защитных сил
организма животных в ответ на воздействие факторов внешней среды.
252
В периоды молозивной, молочной и молочно-растительной формы
кормления (с 1 по 30 сутки) число лимфоцитов в контрольной группе КБП
находилось в пределах от 59,61±1,14 до 79,79±1,61% от всего количества
лейкоцитов. Адаптация новорожденных животных к условиям внеутробной
жизни сопровождалась постепенным снижением числа лимфоцитов крови. В
периоды доращивания и откорма свиней (с 60 по 210 сутки) в крови
контрольных поросят КБП уменьшалось число лимфоцитов, составляя в
среднем 47,66±1,06%. Важным моментом являлось изменение количества
зернистых форм лейкоцитов, их число у поросят в период кормления
материнским молоком составляло от 20,21±0,32 до 40,39±0,25%, а в периоды
доращивания и откорма
иммунокорректора
– 52,34±0,67%. Внутримышечное введение
тимозина-α1
способствовало
повышению
числа
лимфоцитов у поросят-сосунов в среднем на 4,31% (р<0,05), в период
доращивания и откорма животных – на 2,02% (р<0,01). В зависимости от
возраста изменялось число эозинофилов и нейтрофилов в крови свиней. По
представленным данным теплый период года был менее комфортным для
свиней (особенно в период откорма): в крови происходило увеличение
количества эозинофилов – клеток крови, отвечающих за нейтрализацию
токсических веществ, поступающих в организм из вне, а также отмечалось
повышение процессов формирования и становления клеточных факторов
резистентности организма.
В лейкоформуле крови сохранялись межпородные различия в
постнатальном онтогенезе, но все изученные показатели крови были ниже у
свиней породы дюрок и йоркшир по сравнению с таковыми КБП. Процессы
адаптации
у
свиней,
завезенных
из
Западных
стран
в
условиях
резкоконтинентального климата Среднего Поволжья, видимо, требуют
регулярной
селекционной
работы,
направленной
на
повышение
их
физиологоиммунного статуса.
Результаты биохимических исследований свидетельствуют о том, что у
поросят-сосунов
различных
генотипов
253
концентрация
общего
белка
в контрольных группах в среднем составляла 67,08±0,56 г/л, в опытных −
68,73±0,64 г/л (р<0,05), или была выше на 2,41%. Концентрация γ-глобулина
в контрольных группах находилась в пределах 25,70±0,28 г/л, в опытных –
26,18±0,23 г/л или была выше на 2% относительно данного показателя в
контроле. Количество γ-глобулина увеличивалось с момента рождения
поросят до 10-суточного возраста и уменьшалось у 20- и 30-суточных
животных, однако концентрация γ-глобулина была выше в крови опытных
групп животных по сравнению с таковой у контрольных. Так, у 10-суточных
поросят контрольной группы в крови количество γ-глобулина в среднем
16,48±0,17 г/л, а в опытных группах – 17,50±0,14 г/л (р<0,05) или выше на
5,8%, в период откорма в контрольных группах концентрация общего белка
составляла 69,49±0,67 г/л, в опытных – 71,44±0,64 г/л (р<0,05) или была
выше на 2,8%.
Количественные изменения концентрации общего белка и его фракций
в крови свиней в постнатальном онтогенезе свидетельствуют об интенсивности роста и развития свиней до 210-суточного возраста. Изменение
соотношения отдельных фракций белков указывает на то, как важно
организму
адаптироваться
к
изменяющимся
гелиогеофизическим
и
климатическим условиям окружающей среды. По результатам исследований
необходимо отметить, что внутримышечное введение иммунокорректора
свиньям повышает формирование защитных сил организма опытных групп
животных
относительно
контрольных.
Полученные
в
ходе
опытов
результаты согласуются с показателями исследований Г.И. Боряева (1997),
А.В. Близнецова (2001).
Минеральный состав крови и резервная щелочность с возрастом
животных в постнатальном онтогенезе в количественном отношении
изменяются
циклично.
Высокая
концентрация
общего
кальция
и
неорганического фосфора отмечена в крови поросят до 10-суточного
возраста, снижение данного показателя наблюдалось в конце молочного
периода питания. С переходом на растительную форму питания и с
254
повышением температуры воздуха в окружающей среде количество
минеральных
веществ
в
крови
животных
повышалось.
Наивысшая
концентрация общего кальция в крови была отмечена у 120-суточных
поросят КБП контрольной группы – 3,55±0,06 ммоль/л, неорганического
фосфора – 2,47±0,11 ммоль/л, опытной: общий кальций – 3,86±0,13 ммоль/л
(р<0,05), неорганического фосфора – 2,93±0,15 ммоль/л (р<0,01), то есть
было соответственно выше на 8,03 и 15,84% относительно данных
показателей
контроля,
при
этом
соотношение
общего
кальция
и
неорганического фосфора находилось в пределах физиологической нормы
1:2 или 1:1,5.
Резервная щелочность в крови животных с возрастом изменялась
незначительно и составляла от 44,61±0,54 до 54,59±0,22 об% СО2.
Ферментный профиль в организме животных, отражающий состояние
обмена веществ, с момента рождения и до 210-суточного возраста свиней
повышался равномерно с небольшими колебаниями. Активность фермента
АсАТ в подсосный период развития поросят (с 1 по 30 сутки) в контрольных
группах КБП, дюрок и йоркшир находилась в пределах от 0,23±0,01 до
0,67±0,02 ммоль/(чл). В опытных группах животных данный показатель был
выше и составлял в крови поросят КБП от 0,24±0,02 до 0,75±
±0,03 ммоль/(чл) (р<0,05). Активность фермента АлАТ в контрольных
группах
30-суточных
поросят
составляла
от
0,26±0,04
до
0,56±
±0,04 ммоль/(чл), а в опытных – от 0,25±0,05 до 0,65±0,02 ммоль/(чл)
(р<0,05), то есть была выше на 13,85% относительно таковой в контроле. Эти
изменения можно объяснить более полным усвоением питательных веществ
корма,
интенсивным
ростом
и
развитием
поросят
опытных
групп
относительно контрольных. Межпородные различия выражены незначительно, но показатели активности ферментов несколько ниже у животных
породы дюрок и йоркшир относительно данных показателей КБП.
В период доращивания и откорма животных активность ферментов
переаминирования была выше, чем в крови поросят 30-суточного возраста.
255
Наиболее высокие показатели отмечены у 60-суточных свиней, при этом в
контрольной группе КБП АсАТ составляла 0,72±0,03 ммоль/(чл), в опытной
– 0,85±0,03 ммоль/(чл) (р<0,001), то есть была выше на 15,3% относительно
данного показателя в контроле. Активность фермента АлАТ крови 60суточных
поросят
контрольной
группы
КБП
составляла
0,74±
±0,04 ммоль/(чл), в опытной группе – 0,85±0,03 ммоль/(чл) (р<0,01), то есть
была выше на 12,95% относительно таковой в контроле. Примерно в таких
же
пропорциях
изменялись
количественные
показатели
ферментов
переаминирования в крови поросят породы дюрок и йоркшир. Результаты
исследований не противоречат данным, полученным Ивановым Г.И. и др.
(1998), установленным в процессе изучения обмена веществ в организме
свиней при добавлении в рацион трепелов Первомайского месторождения.
По результатам исследований необходимо отметить, что активность
ферментов переаминирования АсАТ и АлАТ со сменой формы кормления, в
зависимости от гелиогеофизических, климатических условий повышается
или снижается, что отражается на физиологоиммунном статусе организма
свиней в теплый период года.
Формирование и становление клеточных и гуморальных факторов
резистентности свиней разных генотипов в теплый период года
Фагоцитарная активность лейкоцитов поросят характеризуется тем,
что в первые пять дней внеутробной жизни не наблюдается резких
межпородных различий и в среднем данный показатель находится в пределах
от 12,75±0,12 до 14,56±0,34%. В период молочно-растительной формы
кормления отмечалось повышение фагоцитарной активности лейкоцитов,
которая в 30-суточном возрасте животных КБП в контрольной группе
составляла 24,74±0,28%, а в опытной была выше на 8,34%, относительно
таковой в контроле. Исследования свидетельствуют о том, что использование
иммунокорректора тимозина-α1 при выращивании поросят в молочный
период кормления позволяет повысить фагоцитарную активность лейкоцитов
256
в организме животных в ответ на воздействие вредных факторов внешней
среды.
Период доращивания свиней характеризуется повышением фагоцитарной активности лейкоцитов в контрольных и опытных группах животных,
так в контроле у 90-суточных свиней данный показатель в среднем составлял
46,54±0,25%, в опыте – 47,44±0,23% (р<0,05). Период доращивания и
откорма свиней совпадает со временем высокого стояния температуры
атмосферного воздуха, низкой концентрацией кислорода, в отличие от
среднегодовых показателей, что приводит к ухудшению показателей
микроклимата в животноводческих помещениях. Неблагоприятные условия
внешней среды требуют повышенного уровня защитных сил организма.
С 120- и до 210-суточного возраста свиней фагоцитарная активность
лейкоцитов в крови стабилизировалась и находилась приблизительно на
одинаковом уровне. У 180-суточных свиней в контрольной группе КБП
фагоцитарная активность лейкоцитов составляла 50,31±0,34%, дюрок –
47,92±0,34%, йоркшир – 46,81±0,25%, данный показатель был выше в
опытных группах соответственно на 1,6; 2,5 (р<0,05); 1,3% относительно
такового в контроле.
На основании результатов исследований нужно отметить, что
использование тимозина-α1 в процессе выращивания свиней в изменяющихся условиях внешней среды в теплый период года позволяет поддержать
уровень факторов клеточной защиты организма на более высоком уровне по
сравнению с контрольными животными. Это особенно важно при содержании свиней, завезенных из Западных стран, которые недостаточно полно
адаптированы к условиям Среднего Поволжья.
Из клеточных показателей защиты организма, большое значение имеет
количественное и качественное содержание Т-лимфоцитов. Внутримышечное введение поросятам тимозина-α1 с первых суток позволило повысить
число Т-лимфоцитов (в среднем) в крови контрольных групп 5-суточных
животных до 14,95%, опытных – до 16,42% относительно суточных
257
показателей. В последующие возрастные периоды жизни в опытных группах
поросят сохранялось более высокое содержание в крови Т-лимфоцитов по
сравнению с таковым у контрольных животных, при этом межпородные
различия по количественному содержанию в крови Т-лимфоцитов были
выражены
не
значительно.
Необходимо
отметить,
что
количество
лимфоцитов повышается при переходе поросят на растительную форму
кормления, а также при действии на организм животных неблагоприятных
факторов внешней среды, то есть полученные результаты согласуются с
данными исследований Г.К. Волкова (1990), В.Г. Галактионова (2005) и
значительно дополняют и расширяют результаты исследований В.Г. Квачева
(1991), И.М. Карпуть (2000).
При взаимодействие Т- и В-клеток образуются плазматические клетки
(В.С. Григорьев, В.И. Максимов, 2007) секретирующие IgМ, а затем и
иммуноглобулины других классов (IgG, IgА, IgЕ). Число В-лимфоцитов в
крови суточных животных находилось в пределах от 0,47±0,03 до
0,51±0,02·109/л или до 11,75±0,16% от общего числа лимфоцитов крови.
Концентрация IgG была от 33,05±1,19 до 34,31±1,12 г/л, IgМ – от 1,62±0,04
до 1,85±0,04 г/л, IgА – от 1,15±0,04 до 1,18±004 г/л, то есть результаты
опытов позволяют считать, что поросята рождаются с сформированной
гуморальной
иммунной
иммунокорректора
системой.
тимозина-α1
Внутримышечное
позволило
повысить
введение
концентрацию
иммуноглобулинов в плазме крови опытных животных, однако в 5-суточном
возрасте число В-лимфоцитов и концентрация защитных белков ниже, чем
таковые у суточных поросят.
Переход поросят на молочную, молочно-
растительную формы питания и постепенная адаптация к условиям внешней
среды в постнатальном онтогенезе сопровождается повышением в плазме
крови животных гуморальных факторов защиты организма. Результаты
исследований согласуются с показателями научных опытов Т.М. Галеева,
А.М. Алимова, Р.М. Ахмадеева (2008).
258
Изменяющиеся гелиогеофизические и климатические условия в зоне
обитания свиней, смена рациона сопровождались изменениями в возрастной
динамике факторов резистентности. Так, на 60 сутки жизни число
В-лимфоцитов в крови контрольных групп животных в среднем составляло
1,01·109/л, IgМ – 4,14 г/л, IgG – 16,81 г/л, а в опытных группах количество Влимфоцитов было выше на 19,84 (Р<0,01)%, IgМ – 4,9%, IgА – 12,2%
(р<0,05), IgG – 6,7% (р<0,05), то есть систематическое использование
иммунокорректора тимозина-α1 позволяло поддерживать гуморальные
факторы иммунной системы на более высоком уровне. Возраст 90 и
180 суток совпадал с менее комфортными природно-климатическими
условиями для организма свиней: высокая температура атмосферного
воздуха, низкое содержание кислорода, высокая концентрация вредных
газов, как следствие высокий уровень бактериальной загрязненности
свинарников, все это вызывало повышение гуморальных факторов защиты
организма. У 180-суточных контрольных свиней КБП число В-лимфоцитов
составляло 1,18±0,05·109/л, концентрация IgМ – 5,54±0,16 г/л, IgG –
25,12±0,34 г/л, IgА – 2,34±0,06 г/л, в опытной группе данные показатели
были соответственно выше относительно контроля на 12,1% (р<0,05); 10,0%
(р<0,01); 2,7% (р<0,05); 16,6% (р<0,001). У 210-суточных свиней отмечалось
незначительное снижение рассматриваемых показателей.
Из гуморальных факторов естественной резистентности важными
являются также бактерицидная и лизоцимная активность плазмы крови.
В первый день жизни животных в постнатальном онтогенезе не удалось
зафиксировать
лизоцимной
активности,
бактерицидная
активность
находилась в пределах от 10,56±0,24 до 12,11±0,21%. На 5 сутки жизни
поросят лизоцимная активность плазмы крови в контрольной группе
животных была от 4,17±0,17 до 4,66±0,18%.
Результаты данных таблицы 55 указывают, что бактерицидная и
лизоцимная активность плазмы крови животных контрольных и опытных
групп повышается с возрастом, однако наиболее интенсивное повышение
259
бактерицидной активности плазмы крови наблюдается при смене рациона
кормления и во время изменений гелиогеофизических, климатических и
микроклиматических условий в теплый период года.
Таблица 55
Средние показатели бактерицидной и лизоцимной активности
плазмы крови свиней в теплый период года
Периоды онтогенеза
Показатели
Группа
растительный
молочноживотных молозивный молочный растительный
доращивания
откорма
1-5 суток
5-10 суток
10-30 суток 30-90 суток 90-210 суток
Бактерицидная контроль
активность,
опыт
%
Лизоцимная
активность,
%
контроль
опыт
Применение
13,19±0,25
21,57±0,25
30,30±0,38
79,58±0,64
85,62±1,41
13,88±0,19* 22,56±0,19** 32,11±0,37** 82,41±0,60** 93,99±1,29***
4,35±0,18
6,12±0,12
5,27±0,18*** 6,69±0,15*
7,61±0,17
33,56±0,36
42,51±0,36
8,37±0,16** 36,74±0,36*** 44,17±0,41**
иммуностимулирующих
препаратов,
в
частности
тимозина-α1, при выращивании свиней является одним из необходимых
условий, повышающих формирование защитных сил организма в менее
комфортные периоды жизни животных.
Холодный период года 2008-2009 гг. продолжался с 10 декабря 2008 г.
по 27 марта 2009 (среднемноголетние – с 31 октября по 4 апреля), что
меньше обычного на 48 дней. Теплый период года наступил в 2009 г.
27 марта с переходом среднедневной температуры через 0ºС, это на 8 дней
раньше среднемноголетних сроков. Осенний переход через +10ºС среднесуточной температуры в сторону понижения зафиксирован 30 сентября, что
также позже среднемноголетних сроков на 7 дней. Температурный режим
октября, ноября и декабря 2008 г. был повышенный, погода в эти месяцы
была теплее среднемноголетних результатов от 0,7 до 3,6ºС. Средняя
температура воздуха декабря
-9,9ºС (норма -10,6ºС). Преобладающими
(в среднем) за холодный период являлись ветра восточного направления.
Днями высокого атмосферного давления (выше 775 мм) отмечены 21
февраля, 8 и 14 ноября, 7 и 8 декабря. Сильные морозы с температурой
260
воздуха ниже -20ºС, при незначительном снежном покрове (высотой не более
10 см) отмечались в декабре в течение 7 дней, при норме 5,4 дня по
среднемноголетним показателям.
Природно-климатические
условия
в
холодный
период
года
характеризовались следующими показателями: температура атмосферного
воздуха находилась в пределах –4,1…–16,8°С; скорость движения воздуха
3,5-5,1 м/с; относительная влажность воздуха 77,3-82,9%; атмосферное
давление 758,4-770,8 мм рт.ст.; концентрация кислорода – 312,4-327,3 г/м³;
концентрация газов минимальна: SО2 – 0,001-0,004 г/м³, СО – 1,5-2,4 г/м3,
NO2 – 0,02-0,04 г/м3; число Вольфа – 2,2-4,1 Sun-spots, поток радиоизлучений на длине волны 10,7 см (частота 2800 МГц) – 71,2-82,8, Ар-индекс –
5,3-13,2 nT. Температура воздуха в животноводческих
помещениях
колебалась от +14,0 до +17,3оС, относительная влажность воздуха 73,082,0%, концентрация СО2 – 0,08-0,20%, концентрация аммиака – 8-10 мг/м3,
бактериальная
загрязненность
воздушной
среды
в
помещениях
130-220,4 тыс. М.Т./м3.
Изменяющиеся
гелиогеофизические
и
климатические
условия,
несомненно, влияют на состояние микроклимата в свинарниках, а эти
параметры – на животных. Климатические условия в холодный период года
характеризовались высокой концентрацией кислорода и низким содержанием
вредных газов в атмосферном воздухе, низкой бактериальной загрязненностью в свинарниках и более комфортным микроклиматом в животноводческих помещениях.
Физиологическое состояние новорожденных поросят в холодный
период года регистрировалось стабильными показателями температуры тела
39,55±0,05ºС, частоты дыхания – 78,86±1,81 дыхательных движений в
минуту, частоты пульса
–
188,0±11,77
ударов в минуту. Данные
физиологические показатели находятся приблизительно на одинаковом
уровне до отъема поросят от матерей, то есть поросята в период совместной
жизни со свиноматками мало тратят энергии на согревание. Однако
261
возрастные
особенности
характеризовались
постепенным
снижением
частоты дыхания и пульса, так у 30-суточных поросят частота дыхания в
среднем составляла 57,8±0,27 дыхательных движений, частота пульса –
148,8±11,51 ударов в минуту.
В период доращивания поросят (с 30 до 90 сутки) температура тела
несколько снижалась – 38,08±0,13ºС, частота дыхания – 34,40±0,19
дыхательных движений в минуту, частота пульса – 123,5±12,3 ударов в
минуту. Данный возраст животных совпадал с более холодными месяцами
года (ноябрь и декабрь). У свиней на откорме физиологические показатели
были примерно одинаковыми, так у 210-суточных свиней КБП температура
тела 38,6±0,15ºС, частота пульса – 117,0±11,3 ударов в минуту, частота
дыхания
–
32,8±0,21
дыхательных
движений
в
минуту.
Общие
физиологические показатели у свиней в холодный период года находились на
более стабильном уровне, что свидетельствует о комфортных климатических
и микроклиматических условиях в зоне обитания животных. Количественные
и качественные изменения форменных элементов в крови свиней в холодный
период года характеризовались тем, что число эритроцитов в крови
5-суточных
поросят
контрольных
групп
составляло
в
среднем
7,17±0,11·1012/л, опытных – 7,79±0,22·1012/л, то есть внутримышечное
введение
животным
опытных
групп
тимозина-α1
способствовало
повышению числа эритроцитов на 7,96%, что свидетельствует о более
интенсивном обмене веществ в организме. Число эритроцитов в крови
поросят
резко
повышалось
в
период
молочно-растительной
формы
кормления и в среднем у свиней КБП составляло 12,36±0,12·1012/л. В период
доращивания данный показатель снижался и составлял у 90-суточных
контрольных животных КБП 6,44±0,14·1012/л, опытных – 6,91±0,18·1012/л, на
таком же уровне число эритроцитов находилось у свиней пород дюрок и
йоркшир. В крови откормочных свиней разных пород не отмечалось
значительных изменений количества эритроцитов, однако в группах, где
262
использовали тимозин-α1, на протяжении всего опыта данный показатель
всегда оставался на более высоком уровне физиологической нормы.
Концентрация гемоглобина находилась на высоком уровне в крови
суточных поросят и в среднем составляла 80,72 г/л, затем снижалась на
34,37% (5 сутки). С переходом животных на растительную форму кормления
(60 суток), совпадающим с наиболее холодным месяцем года январем,
концентрация гемоглобина повышалась и в среднем составляла 100,14±
±2,04 г/л в крови свиней контрольных групп, опытных – 105,27±1,58 г/л или
была выше на 5,12% относительно таковой в контроле. Число лейкоцитов в
крови контрольных поросят КБП до 20-суточного возраста находилось в
пределах от 5,10±0,13 до 5,36±0,14·109/л, а опытных – от 5,12±0,18 до
5,82±0,12·1012/л (р<0,01). В 60-суточном возрасте свиней, при переходе на
растительное
увеличивалось
кормление,
и
в
число
зернистых
контрольных
группах
лейкоцитов
(в
среднем)
значительно
составляло
13,02±0,23·109/л, в опытных – 13,65±0,25·109/л.
Число лейкоцитов находилось на высоком уровне у свиней при
растительной форме кормления. Количественные изменения лейкоцитов в
крови происходили циклично, по-видимому, это связано со сменой рационов
кормления и с климатическими условиями в зоне обитания животных.
Количественные изменения форменных элементов крови в постнатальном онтогенезе отражают физиологическое состояние организма животных,
при помощи иммунокорректора тимозина-α1 можно повысить уровень
клеточных элементов крови в организме свиней.
Число лимфоцитов на высоком уровне находилось до 5-суточного
возраста от 73,04±1,32 до 76,88±1,06% от общего числа лейкоцитов. Затем
наблюдалось уменьшение числа лимфоцитов в крови поросят в молочной и
молочно-растительной форме кормления и у 30-суточных контрольных
животных КБП находилось на уровне 54,02±1,08%, у опытных – 56,92±0,98%
(р<0,05), отмечались небольшие различия в показателях лейкоформулы у
свиней пород дюрок и йоркшир, относительно КБП. В периоды доращивания
263
и откорма в крови число зернистых и незернистых лейкоцитов (во всех
исследуемых группах) составляло 1,2:1, что соответствует физиологической
норме.
При изучении лейкоформулы крови поросят контрольных и опытных
групп в холодный период года, отмечено, что происходящие изменения
связаны с типами кормления в различные возрастные этапы жизни в
постнатальном онтогенезе и влиянием изменяющихся гелиогеофизических,
климатических и микроклиматических условий.
Биохимические
показатели
крови
свиней
в
количественном
и
качественном составе изменяются в зависимости от возраста, кормления,
природно-климатических и микроклиматических условий окружающей
среды. При систематическом целенаправленном применении иммуностимуляторов, в частности тимозина-α1, можно корректировать состояние
естественной резистентности организма. Концентрация общего белка в крови
меняется циклично, так его уровень у суточных поросят был низкий и
составлял в среднем 58,82±1,60 г/л, резко повышался у 5-суточных до
76,15±0,84 г/л и затем вновь уменьшался на 20 сутки жизни до уровня
новорожденных животных. С 90- по 210-суточный возраст свиней
количество общего белка в контрольных группах устанавливалось на уровне
от 60,33±0,38 до 66,72±0,44 г/л, в опытных – от 61,94±0,72 до 68,32 г/л
(р<0,01).
Внутримышечное
введение
тимозина-α1
способствовало
повышению концентрации общего белка в крови животных на 9,3-9,6%.
Результаты исследований по изменению концентрации общего белка и
его фракций в крови животных согласуются с исследованиями Н.А. Поповой
(1987), В.Н. Кокрякова (1990, 2006), И.М. Карпуть (1997, 2000).
Концентрация γ-глобулина у 5-суточных контрольных поросят КБП
составила 15,38±0,16 г/л, опытных – 16,49±0,14 г/л. У 90-суточных свиней
контрольной группы КБП количество γ-глобулина –10,62±0,11 г/л, опытной –
11,63±0,18 г/л (р<0,001).
264
Полученные результаты свидетельствуют о том, что в опытных
группах на достоверную величину изменяется концентрация общего белка
и отдельных его фракций в постнатальном онтогенезе под влиянием
тимозина-α1.
При изучении возрастных особенностей минерального состава плазмы
крови свиней в холодный период года установлено, что наивысшая
концентрация общего кальция в крови суточных поросят КБП – 3,13±
±0,04 ммоль/л, неорганического фосфора – 1,86±0,07 ммоль/л, затем количество минеральных веществ снижается и в 30-суточном возрасте содержание общего кальция находится на уровне 2,55±0,21 ммоль/л, неорганического фосфора – 1,66±0,05 ммоль/л. С переходом животных на растительную форму кормления, и в период установления более холодной погоды
концентрация минеральных веществ в организме повышается. У 90-суточных
свиней КБП в контрольной группе количество общего кальция в крови
находилось на уровне 3,15±0,08 ммоль/л, неорганического фосфора – 2,34±
±0,08 ммоль/л, в опытной соответственно 3,44±0,06 (р<0,01) и 2,56±
±0,04 ммоль/л (р<0,05). В последующие возрастные периоды концентрация
минеральных веществ находилась примерно на таком же уровне.
Процессы формирования и становления факторов резистентности
организма животных более полно характеризует динамика клеточных и
гуморальных показателей в изменяющихся гелиогеофизических, климатических и микроклиматических условий в зоне обитания животных.
В процессе исследований установлено, что фагоцитарная активность
лейкоцитов находилась на самом низком уровне у новорожденных поросят и
составляла от 11,78±0,26 до 12,66±0,17%, а на 5 сутки жизни животного
показатель повышался у контрольных поросят КБП до 15,60±0,12%, у
опытных – 16,12±0,15% (р<0,01). Установлено, что с возрастом свиней
фагоцитарная активность лейкоцитов повышалась, что отражает процессы
формирования клеточных факторов резистентности организма. Особенно
резко увеличивался данный показатель в период растительной формы
265
кормления, так у 90-суточных свиней КБП контрольной группы составлял
42,60±0,25%, опытной – 46,95±0,14% (р<0,001) то есть был выше на 9,27%
относительного такового в контроле. На таком же уровне показатели
сохраняются и в последующие возрастные периоды. Важно отметить, что
внутримышечное
введение
иммунокорректора
тимозина-α1
позволяет
поддержать фагоцитарную активность лейкоцитов в критические моменты
жизни свиней, особенно при смене кормления с молочно-растительного на
растительное.
Одним из показателей формирования клеточных факторов иммунитета
в организме животных является количественное изменение Т-лимфоцитов в
различные возрастные периоды в постнатальном онтогенезе.
В процессе исследований установлено, что у суточных поросят КБП
число Т-клеток составляло 2,65±0,12·109/л или 65,43±1,12% от общего числа
лимфоцитов. На 5 сутки жизни число лимфоцитов в контрольной группе
КБП находилось в пределах 73,04±1,32%, Т-лимфоцитов – 2,44±0,12·109/л, а
в опытной группе количество Т-лимфоцитов – 2,84±0,11·109/л (р<0,01) или
было выше на 14,09% относительно такового в контроле. В молочный и
молочно-растительный период кормления количество Т-лимфоцитов изменялось циклично, их число было выше в крови 10-, 20-суточных поросят,
уменьшалось в крови 30-суточных и составляло 52,71±1,18% в контрольных
группах, 54,21±1,14% – в опытных (рис. 32).
Рис. 32. Возрастная динамика Т-лимфоцитов в крови свиней крупной белой породы
в холодный период года
266
С переходом на растительную форму кормления происходило увеличение количества лейкоцитов, лимфоцитов и Т-клеток в крови животных.
На 60 сутки жизни число Т-лимфоцитов в крови контрольных поросят
КБП составляло 3,31±0,21·109/л, а опытных – 4,12±0,24·109/л (р<0,01),
примерно на таком же уровне данный показатель находился у поросят пород
дюрок и йоркшир. На 90 сутки жизни показатели стабилизировались до
210-суточного возраста. У 210-суточных контрольных животных КБП число
Т-клеток составляло 4,27±0,18·109/л, дюрок – 4,12±0,20·109/л, йоркшир –
4,02±0,21·109/л, в опытных
группах
данный
показатель был выше
соответственно 15,94; 15,40; 15,89%.
Использование иммунокорректора при выращивании свиней позволяет
повысить клеточные факторы резистентности организма, что особенно
необходимо в подсосный период и период доращивания свиней. Данные по
параметрам клеточного иммунитета, приведенные выше, свидетельствует о
физиологическом здоровье животных в постнатальном онтогенезе.
Гуморальные факторы иммунитета связаны с количественными
изменениями В-лимфоцитов и иммуноглобулинов в плазме крови животных.
Данные параметры определяют физиологическое состояние организма и
адаптационные возможности животных в изменяющихся гелиогеофизических, климатических и микроклиматических условиях в зоне обитания
свиней. В таблице 56 приведена динамика средних количественных параметров В-лимфоцитов и иммуноглобулинов в крови свиней в постнатальном
онтогенезе в холодный период года.
Анализ таблицы 56 свидетельствует о том, что возрастные изменения
В-лимфоцитов сопровождаются количественными изменениями иммуноглобулинов в крови свиней. Применение иммунокорректора при выращивании
свиней в холодный период года позволило повысить концентрацию
иммуноглобулинов в плазме крови опытных животных относительно
контрольных. Свиньи породы дюрок и йоркшир более чувствительны к
изменяющимся факторам природно-климатических и микроклиматических
267
условий, а эти изменения влияли на выработку иммуноглобулинов,
являющуюся ответной реакцией организма на воздействие вредных факторов
внешней среды в зоне обитания свиней.
Таблица 56
Средние показатели В-лимфоцитов и иммуноглобулинов в крови свиней
в холодный период года
Периоды онтогенеза
Показатели
Группа
животных
растительный
молозивный
1-5 суток
молочный
5-10 суток
молочнорастительный
10-30 суток
доращивания
30-90 суток
откорма
90-210 суток
В-лимфоциты, контроль
109/л
опыт
0,40±0,02
0,46±0,02
0,54±0,03
0,94±0,04
1,06±0,03
0,44±0,02*
0,55±0,03*
0,67±0,03**
1,11±0,03**
1,18±0,03*
контроль
1,41±0,05
2,06±0,03
2,77±0,07
4,05±0,09
4,96±0,09
опыт
1,52±0,06*
2,21±0,03**
3,23±0,10**
4,44±0,07**
5,36±0,09**
контроль
33,03±1,13
23,20±1,02
7,06±0,23
16,89±0,32
23,06±0,28
опыт
34,33±1,12
24,61±0,74
7,56±0,27*
17,59±0,30**
23,82±0,28***
контроль
1,06±0,05
2,12±0,03
1,36±0,05
1,59±0,08
1,84±0,05
опыт
1,15±0,05**
2,30±0,04**
1,63±0,06**
1,92±0,11***
2,13±0,07***
IgМ, г/л
IgG, г/л
IgА, г/л
Бактерицидная и лизоцимная активность плазмы крови контрольных и
опытных животных повышается с возрастом. Низкий уровень бактерицидной
активность плазмы крови отмечался у суточных поросят, в последующие
возрастные периоды данный показатель повышался. У контрольных поросят
КБП на 30 сутки жизни бактерицидная активность находилась в пределах
31,46±0,26%, лизоцимная – 8,08±0,14%, у опытных – 32,53±0,22 (р<0,01) и
8,54±0,13% (р<0,01) соответственно, то есть данные показатели были выше
на 3,29 и 5,91% относительно таковых в контроле. У 60-суточных животных
бактерицидная активность крови повышалась в 2 и более раза, лизоцимная
активность – 4,5 раза по сравнению с показателями 30-суточных поросят.
В последующие возрастные периоды жизни свиней данные показатели
увеличивались не значительно, так у 210-суточных свиней бактерицидная
активность в плазме крови составляла в среднем 82,18±1,49%, лизоцимная –
44,00±0,34%, а в опытных группах данные показатели были выше на 6,76%
(р<0,001) и 10,39% (р<0,001). Соотношение бактерицидной и лизоцимной
активности в плазме крови 1,86:1.
268
Структурно-функциональное
онтогенезе
сопровождается
развитие
изменениями
свиней
в
постнатальном
физиолого-биохимического
статуса, что влияет на динамику параметров ДПН сыворотки крови и
подтверждается большим числом достоверных корреляционных связей
между биохимическими показателями и параметрами ДПН, отличающимися
по силе и типу.
Таким образом, у свиней, выращенных в холодный период года ФБИС
статус выше по сравнению со свиньями, выращенными в теплый период
года,
и
их
можно
рекомендовать использовать
родительского стада.
269
для
формирования
ВЫВОДЫ
1. Формирование ФБИС свиней при промышленной технологии
содержания в постнатальном онтогенезе под влиянием гелиогеофизических и
климатических факторов в теплый и холодный периоды года сопровождается
качественными и количественными изменениями факторов клеточного и
гуморального иммунитета, морфофизиологического и биохимического
состава крови, что свидетельствует об их участии в процессах адаптации
животных.
2. Гелиогеофизические и климатические условия различные в теплый и
холодный периоды года. В зоне Среднего Поволжья, для свиней при
промышленной технологии содержания данные условия менее комфортные в
теплый период – с 1 апреля по 31 октября (214 суток) и характеризуются:
относительно высокими температурой воздуха и содержанием вредных газов
(SО2, СО, NO2); низкими скоростью движения и относительной влажностью
воздуха, концентрацией кислорода, атмосферным давлением, показателями
солнечной и геомагнитной активности (числа Вольфа, потока радиоизлучения, планетарного Ар-индекса);
комфортные в холодной период –
с 1 ноября по 31 марта (151 сутки) и характеризуются: относительно низкой
температурой атмосферного воздуха, минимальной концентрацией вредных
газов (SО2, СО, NO2), высокими скоростью движения и относительной
влажностью воздуха, атмосферным давлением, концентрацией кислорода,
показателями солнечной и геомагнитной активности.
3. Количественный и качественный морфофизиологический состав
крови свиней при промышленной технологии содержания в постнатальном
онтогенезе в течение года изменяется в зависимости от его периода: теплый
или холодный, гелиогеофизических и климатических условий в зоне
обитания и возраста животных.
Максимальное число эритроцитов в холодный период года отмечается
в крови 10-суточных поросят и находится в среднем по породам в пределах
270
12,56±0,28·1012/л; в теплый период года – 13,31±0,27·1012/л; минимальное – в
крови 60-суточных (5,96±0,24·109/л и 6,00±0,27·1012/л соответственно).
Минимальное число лейкоцитов регистрируется у подсосных поросят: в
теплый период года – 5,58±0,11·109/л, в холодный 6,53±0,13·109/л (р<0,001);
максимальное
–
у
животных
на
доращивании:
13,18±0,27·109/л
и
12,64±0,23·109/л соответственно. В лейкоформуле крови 1-суточных поросят
в теплый период года отмечается максимальное число лимфоцитов –
79,14±1,36%; в 210-суточном возрасте минимальное – 47,35±1,28%; в
холодный период года – 78,99±1,38 (р<0,001) и 41,96±0,88% (р<0,001)
соответственно.
4. Концентрация общего белка и его фракций в плазме крови свиней
изменяется циклично в зависимости от периода года. Так, максимальная
концентрация общего белка в крови в теплый и холодный периоды года
отмечается у 5-суточных поросят и в среднем по породам составляет
75,62±0,63 г/л и 74,86±0,81 г/л соответственно; минимальная – у 90-суточных
животных: 54,37±0,52 г/л и 61,17±0,48 г/л (р<0,001) соответственно.
5. Концентрация минеральных веществ в крови (ммоль/л) поросятсосунов в теплый период года минимальная: общий кальций в среднем по
породам составляет 2,91±0,05; неорганический фосфор – 1,53±0,12; в
холодный период – 2,29±0,06 (р<0,001) и 1,38±0,03 соответственно. В теплый
период года максимальная концентрация общего кальция отмечается у
свиней на откорме – 3,11±0,06 ммоль/л, неорганического фосфора –
2,16±0,14 ммоль/л; в холодный период – 3,01±0,15 и 2,10±0,18 ммоль/л
соответственно.
6. Становление ФБИС чистопородных свиней разных пород в
постнатальном онтогенезе в течение года сопровождается изменениями
активности ферментов переаминирования и
щелочной
фосфатазы в
зависимости от гелиогеофизических и климатических условий в теплый и
холодный периоды года, возраста животных.
271
Минимальная активность ферментов переаминирования отмечается в
крови 1- и 5-суточных поросят в теплый и холодный периоды года,
максимальная активность – в крови 60-суточных поросят; щелочной
фосфатазы – максимальная у поросят до 30-суточного возраста, минимальная
у свиней на доращивании и откорме.
7. Развитие свиней разных генотипов в постнатальном онтогенезе
сопровождается
показателей
повышением/снижением
неспецифической
клеточных
резистентности
в
или
гуморальных
зависимости
от
гелиогеофизических и климатических условий в теплый и холодный периоды
года, возраста животных.
В теплый период года минимальная фагоцитарная активность
лейкоцитов отмечается у 5-суточных животных – 14,34±0,28%, максимальная
у 120-суточных – 49,23±0,55%; в холодный период года – 14,14±0,16 и
47,87±0,34% (р<0,05) соответственно.
Минимальное число Т-лимфоцитов в теплый период года отмечается в
крови поросят до 10-суточного возраста и в среднем по породам составляет
2,26±0,15·109/л, в холодный – 2,41±0,12·109/л; максимальное у 210-суточных
свиней – 4,36±0,24·109/л и 4,13±0,20·109/л соответственно.
Минимальное число В-лимфоцитов в теплый период года отмечается в
крови поросят-сосунов и в среднем по породам составляет 0,50±0,02·109/л, в
холодный – 0,40±0,01·109/л; максимальное у 180-суточных свиней –
1,11±0,06·109/л и 1,07±0,03·109/л соответственно.
Минимальное количество IgМ и IgА в теплый и холодный периоды
года отмечается в плазме крови 5-суточных поросят, максимальное у 180суточных свиней; максимальное количество IgG – в плазме крови 1-суточных
поросят, минимальное у 180-суточных свиней
Бактерицидная и лизоцимная активность плазмы крови в теплый и
холодный периоды года минимальная у 5-суточных поросят, максимальная у
210-суточных животных.
272
8. Свиньи крупной белой породы более адаптированы к условиям зоны
Среднего Поволжья, чем животные породы дюрок и йоркшир.
9. Иммунокорректор тимозин-α1 оказывает влияние на формирование
и становление ФБИС организма свиней в процессе их роста и влияния
разных гелиогеофизических и климатических факторов:
– в теплый период года повышается количество эритроцитов в среднем по
породам на 4,1%, гемоглобина – 10,1 (р<0,05), лейкоцитов – 7,7 (р<0,05),
лимфоцитов – 4,31 (р<0,05), Т-лимфоцитов – 15,1 (р<0,01), концентрация
общего белка – 2,8, альбумина – 1,6, γ-глобулинов – 3,6, активность
ферментов переаминирования – 10,3 (р<0,01), фагоцитарная активность
лейкоцитов – 14,1 (р<0,01), бактерицидная активность – 8,6 (р<0,05),
лизоцимная активность – 10,2 (р<0,05), количество В-лимфоцитов – 13,4
(р<0,05), IgМ – 3,7, IgG – 8,2 (р<0,05), IgА – 13,8% (р<0,01);
– в холодный период года увеличивается содержание эритроцитов в крови
свиней на 15,1% (р<0,05), гемоглобина – 3,8, лейкоцитов – 5,8 (р<0,05), числа
лимфоцитов – 7,5 (р<0,05), Т-лимфоцитов – 15,9 (р<0,01), концентрация
общего белка – 3,2, альбумина – 1,9, γ-глобулина – 5,3 (р<0,05), активность
ферментов переаминирования – 14,29 (р<0,01), фагоцитарная активность
лейкоцитов – 9,3 (р<0,05), бактерицидная активность – 7,5 (р<0,05),
лизоцимная активность – 8,4 (р<0,05), количество В-лимфоцитов – 11,5
(р<0,01), IgМ – 9,73 (р<0,05), IgG – 9,95 (р<0,05), IgА – 10,30% (р<0,05).
10.
Физиолого-биохимико-иммунологическая
реакция
организма
свиней разного возраста на введение иммунокорректора тимозин-α1 зависит
от их породы. В опытных группах свиней КБП содержание эритроцитов
выше на 8,9 (р<0,05), Д – 15,2 (р<0,01), Й – 11,1 (р<0,01); число лимфоцитов
– 6,12 (р<0,05); 6,51 (р<0,05); 6,94 (р<0,05); концентрация общего белка –
2,62; 2,63; 2,50; количество общего кальция – 7,1 (р<0,05), 9,9 (р<0,05), 9,2
(р<0,05); число Т-лимфоцитов – 14,3 (р<0,01), 12,9 (р<0,01), 18,1 (р<0,001);
число В-лимфоцитов – 10,7 (р<0,05), 15,4 (р<0,01), 16,0 (р<0,01);
фагоцитарная активность лейкоцитов – 5,4 (р<0,05), 4,7, 4,6; бактерицидная
273
активность – 5,4 (р<0,05), 7,4 (р<0,05), 13,3% (р<0,01) относительно
показателей контрольных животных.
Среднесуточный прирост массы тела на 210 сутки жизни в опытных
группах выше у КБП на 16,9 (р<0,01); Д – 16,2 (р<0,01); Й – 6,8% (р<0,05)
относительно такового в контроле. Скорость роста свиней в опытных
группах сократилась у КБП на 4,6 , Д – 4,9, Й – 5,4 суток.
11. Изменения значений параметров динамического поверхностного
натяжения и биохимических показателей плазмы крови свиней КБП в
холодный и теплый периоды года носят взаимосвязанный характер, что
подтверждается корреляционными связями между ними, зависят от возраста
животных и содержания иммунокорректора тимозина-α1.
274
ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
1. Свиней, выращенных в холодный период года, преимущественно
использовать для формирования родительского стада, как животных
имеющих высокий физиологоиммунный статус.
2. Применение иммунокорректора способствует более эффективной
реализации адаптивных механизмов организма свиней к изменяющимся
гелиогеофизическим и климатическим параметрам зоны Среднего Поволжья.
Рекомендуется внутримышечно инъецировать иммунокорректор тимозин-α1
в дозе 0,16 мг на одного поросенка с суточного до 30-суточного возраста 2
раза в неделю; с 31 по 90-е сутки – по 0,8 мг на голову один раз в неделю; с
91 по 210-е сутки – по 1,6 мг на голову один раз в неделю.
3. Результаты исследований рекомендуются к внедрению в условиях
товарных свиноводческих хозяйств различных форм собственности, в целях
более полного использования потенциальных возможностей животных.
275
СВЕДЕНИЯ О ВНЕДРЕНИИ
1. Результаты исследований внедрены в свинокомплексах Самарской
области: ЗАО «СВ-Поволжское» – на 216 тыс. свиней, «Северный ключ» –
на 36 тыс. свиней и ООО «Мясоагропром» – на 25 тыс. свиней.
2. Основные положения, выводы и рекомендации диссертационных
исследований используются в учебном процессе по физиологии‚ биохимии и
свиноводству при овладении специальностями «Ветеринария» и «Зоотехния»
ФГБОУ ВПО Самарской ГСХА, ФГБОУ ВПО Московской ГАВМиБ, ФГБОУ
ВПО Ульяновской ГСХА, ФГБОУ ВПО Чувашской ГСХА, ГБОУ ВПО
«Чувашский государственный педагогический университет».
3. Имеется 2 заявки на патент:
№ 2011108858/15(012773). РФ. Средство для повышения роста и сохранности
молодняка / Молянова Г.В. – заявл. 25.02.2011. – 3 с.: ил.
№
2010149771/13(071934).
РФ.
Природная
минеральная
кормовая
минеральная добавка «Воднит» для свиней / Виниченко Г.В., Молянова Г.В.,
Григорьев В.С. – заявл. 03.12.2010. – 3 с.: ил.
276
ЛИТЕРАТУРА
1.
Абдулаев, Н.Г. Биоорганическая химия зрительного процесса /
Н. Г. Абдулаев, И.Д. Артамонов // Биологические мембраны. – 1984. – Т. 1. –
№8. – С. 775-793.
2.
Аброськин, В.В. О воздействии магнитного поля земли на ранний
онтогенез // Физико-математические и биологические проблемы ЭМП и
ионизация
воздуха:
материалы
Всесоюзного
научно-технического
симпозиума (1975 г.; Ялта). – М.: Наука, 1975. – Т. 2. – С. 78-80.
3.
Адамушкина, Л.Н. Биохимические параметры крови как отражение
патологий / Л.Н. Адамушкина, Н.В. Пименов, В.Е. Адамушкин [и др.] // Сб.
науч. тр. ФГОУ ВПО МГАВМиБ. – М., 2005. – С. 102-104.
4.
Азалиев,
В.И.
Естественная
резистентность
организма
свиней
различных пород и гибридов // Вестник ветеринарии. – 2000. – №2. –
С. 55-56.
5.
Азаубаева, Г.С. Картина крови у животных и птиц. − Курган: Зауралье,
2004. – 168 с.
6.
Айзман, Р.Н. Избранные лекции по возрастной физиологии и
школьной гигиене / Р.Н. Айзман, В.М. Шаргимова. – Новосибирск:
Сибирское университетское издательство, 2002 – 132 с.
7.
Александров, М.Т. Исследование возможностей оптимизации режимов
лазерной терапии / М.Т. Александров, Е.М. Андреев, Л.Л. Резников // Новое
в лазерной медицине и хирургии: материалы международной конференции. –
М., 1991. – С. 227-228.
8.
Алтуханов,
Н.М.
Морфофункциональное
состояние
органов
пищеварения у новорожденных поросят при гипогаммаглобулинемии /
Н.М. Алтуханов, Н.В. Душенин // Ветеринария. – 1989. – №2. – С. 48-49.
9.
Андрианов,
В.В.
Нормальная
физиология:
курс
физиологии
функциональных систем / В.В. Андрианов, В.И. Бадиков, А.В. Котов; под
ред. К.В. Судакова. – М.: Медицинское информационное агентство, 1999. –
277
С. 94-115.
10. Антонов
Б.И.
Лабораторные
исследования
в
ветеринарии
биологические и микологические: справочник / Б.И. Антонов, Т.Ф. Яковлев,
В.И. Дерябин. – М.: Агропромиздат, 1991. – 3-182 с.
11. Антонов,
В.Я.
Лабораторные
исследования
в
ветеринарии
/
В.Я. Антонов, П.Н. Блинова. – М.: Колос, 1974. – 320 с.
12.
Аристархов, В.М. Биологическое действие слабого низкочастотного
импульсного ЭМП / В.М. Аристархов, Л.А. Трузян // Известия АН ССР. –
1978. – №1. – С. 131-135.
13. Афанасьев, В. Оплодотворяемость коров ПЗ "Петровское" при разной
космофизической активности / В. Афанасьев, Н. Соломаха, А. Шитиков,
Н. Лучкина // Зоогигиена, ветеринарная санитария и экология – основы
профилактики заболеваний животных / Московская
государственная
академия ветеринарной медицины и биотехнологии. – М., 2006. – С. 260-262.
14. Ашоф, Л. Лимфатические органы. – М.: Охрана материнства и
младенчества НКЗ, 1928. – С. 52-57.
15. Балагула, Т.В. К вопросу изучения сезонной динамикм бабезиоза
крупного рогатого скота в условиях центрального района Нечерноземья
Российской Федерации / Т.В. Балагула, Ф.И. Василевич // Ветеринарный
врач. – Научно-практический журнал. – Казань, 2009. – №3. – С. 42-43.
16.
Бажов, Г.М. Естественная резистентность свиней разных пород /
Г.М. Бажов, Л.А. Бахирова // Интенсификация селекционного процесса в
свиноводстве: сб. науч. тр. – Персиановка, 1989. – С. 37-41.
17. Бандашевский, Ю.И. Особенности формирования структуры тимуса и
селезенки потомства белых крыс при воздействии пирогенала в период
беременности / Ю.И. Бандашевский, К.Р. Мацюк, И.В. Тарасюк //
Морфология. – 1994. – №4-6. – Т. 106. – С. 9-17.
18. Баранников, В.Д. Экологическая безопасность сельскохозяйственной
продукции / В.Д. Баранников, Н.К. Кириллов. – М.: КолосС, 2006. –
352 с.
278
19. Белишева, Н.К. Зависимость структурных показателей состояния
клеточных культур от вариации ГМП в областях высоких широт /
Н.К. Белишева, А.И. Попов, Д.И. Полявин // Корреляция биологических и
физико-химических процессов с солнечной активностью и другими
факторами
окружающей
среды:
тезисы
докладов
международного
симпозиума. – Пущино, 1993. – 261 с.
20.
Белкина, Н.Н. Оценка уровня неспецифических защитных сил
животного организма с помощью индекса резистентности / Н.Н. Белкина,
А.А. Павлуненко // Вестник с.-х. науки. – 1991. – №8. – С. 141-144.
21.
Белкина, Н.Н. Естественная резистентность свиней степного типа
СЖ-1 в зависимости от возраста и пола / Н.Н. Белкина, В.В. Федюк //
Разведение и селекция свиней на Дону: сб. науч. тр. – Персиановка, 1995. –
С. 23-30.
22. Беловол, А.Н. Клиническая фармакология иммуномодуляторов /
А.Н. Беловол, И. И. Князкова // Здоров'я Украïни: медична газета. – 2008,
декабрь. – 24/1. – С. 39-42.
23. Бернет, Ф Клеточная иммунология / пер. с англ. Л.Б. Меклера,
Е.В. Сидоровой, А.М. Оловкина; под ред. и с пред. проф. А.Е. Гурвича. – М.:
Мир, 1971. – 542 с.
24.
Близнецов,
А.В.
Биологические
и
технологические
аспекты
интенсификации свиноводства. – Уфа, 2001. – 92 с.
25. Блинов Н.И. Ускоренные методы окраски розеткообразующих клеток
периферической крови // Сб. науч. тр. МВА. – 1980. – №117. – С.62-63.
26. Борец, М.С. Возрастные изменения иммунобиологических свойств
крови
поросят
подсосного
возраста
//
Индивидуальное
развитие
сельскохозяйственных животных и формирование их продуктивности. –
Киев, 1966. – С. 12-20.
27.
Бородюк, Н.Р. Закономерности адаптации биологических систем /
Н.Р. Бородюк // Вестник МГУ. Химия. – М., 1991. – 83 с.
28. Бороздин, Э К. Селекция Молочного скота на устойчивость к маститам
279
// Животноводство. – 1982. – №1. – С. 39-41.
29. Боряев,
Г.И.
Влияние
селенсодержащих
соединений
на
иммунобиологические характеристики крови молодняка с.-х. животных и
птицы // агрономия, зоотехния : сб. материалов науч. конф. профес.-препод.,
сост. и спец. с.-х. – №1. – Пенза, 1997. – С. 121-122.
30. Боряев, Г.И. Влияние соединений селена на иммунную функцию
молодняка свиней / Г.И. Боряев, Ю.Н. Федоров, М.Н. Невитов //
Сельскохозяйственная биология.– 2005. – №4. – С. 64-68.
31. Брондз, Б.Д. Молекулярные и клеточные основы иммунологического
распознавания / Б.Д. Брондз, О.В. Рохлин. – М.: Наука, 1987. – 336 с.
32.
Бургу Ю. Гематологические показатели свиней новых мясных
генотипов // Свиноводство. – 2001. – №3. – С. 6-7.
33.
Бурков,
реципиентов
И.А.
при
Иммунобиологическая
трансплантации
реактивность
эмбрионов
/
свиноматок-
И.А.
Бурков,
Т.П. Трубицина // ВНИИ физиологии, биохимии и питания с.-х. животных. –
1989. – Бюл. №2.94. – С. 42-46.
34.
Бухарин, А.А. Лизоцим и его роль в биологии и медицине /
А.А. Бухарин, А.В. Васильев. – Тюмень, 1974. – 2000 с.
35. Василевич,
изменения,
а
Ф.И.
также
Клинико-гематологические
факторы
неспецифического
и
биохимические
иммунитета
при
экспериментальном псороптозе кроликов / Ф.И. Василевич, Е.Г. Боровина //
Ветеринарная медицина. – М., 2009. – №1-2. – С. 28-29.
36.
Васильев, А.В. Влияние органопрепарата ГПС с гемолизата на
иммунологическую реактивность больных бронхопневмонией // ЛВИ. – Л.,
1976. – С. 24-36.
37. Васильева, В.А. Влияние гамма-глобулинов на иммунную систему
поросят, больных криптоспоридиозом // Теоретические и практические
аспекты возникновения и развития болезней животных и защита их здоровья
в современных условиях: материалы Международной конференции /
Воронежский ГСХА. – Воронеж, 2000. – Т. 1. – С. 27-28.
280
38. Вислогузов, А.М. Взаимосвязь содержания общего белка в сыворотке
крови свиноматок в разные периоды физиологического состояния и их
продуктивности // А.М. Вислогузов, Л.А. Есаулова // Диагностика, лечение и
профилактика болезней животных: сб. науч. тр. – Воронеж: ВГАУ, 2004. –
Т. 3. – С. 6-8.
39. Владимирский, Б.М. Влияние солнечной активности на биосферуноосферу / Б.М. Владимирский, Н.А. Темурьянц. – М., 2000. – 200 с.
40. Волжанин, В.И. Прогнозирование молочной продуктивности крупного
рогатого скота по биохимическим показателям крови / В.И. Волжанин,
А.С. Бибикова // Использование интерьерных показателей в селекционноплеменной работе: сб. науч. тр. – М., 1980. – С. 23-24.
41. Волков, Г.К. Зоогигиенические и ветеринарно-санитарное обеспечение
двухфазной системы выращивания свиней / Г.К. Волков, В.А. Андросов //
Ветеринария, 1990. – №5. – С. 20-21.
42. Волков, Г.К. Ветеринарно-гигиеническое обеспечение малых и
семейных ферм личных подворий // Ветеринария. – 1993. – №1. – С. 55-56.
43. Волков, Г.К. Зоогигиена и ветеринарная санитария в промышленном
животноводстве. – М.: Колос, 1987. – С. 146-230.
44. Воронин,
Е.С.
Иммунология
/
Е.С.
Воронин,
А.М.
Петров,
М.М. Серых, Д.А. Дервишев. – М.: Колос-Пресс, 2002. – С. 406.
45. Воронин Е.С. Практикум по клинической диагностике болезней
животных / Е.С. Воронин. – М.: Колос С‚ 2003. – 269 с.
46. Воронцова, Л.А. К вопросу о белковом составе сыворотки крови у
коров Амурской области / Л.А. Воронцова, Н.С. Кухаренко, А.Л. Перетуд //
Болезни с.-х. животных в Забайкалье и на Дальнем востоке. – 1980. –
С. 64-67.
47. Газдиев, И.Д. Молочная продуктивность и качество молока коров
красной степной породы при разной космофизической активности: автореф.
дис. . канд. с.-х. наук: 06.02.04 / РУДН. – М., 2003. – 17 с.
281
48. Галактионов
В.Г.
Эволюционная
иммунология.
–
М.:
ИКЦ‚
2005. – 407 с.
49. Галлеев Т.М. Использование тимолизата и аминоферродекса для
коррекции иммунодефицитных состояний / Т.М. Галлеев, А.М. Алимов,
Р.М. Ахмадеев // Ученые записки КГАВМ. – Казань, 2008. – Т. 192. –
С. 20-21.
50. Галустян, Ш.Д. Строение зобной железы в свете экспериментального
анализа. – АМН СССР, 1949. – 132 с.
51. Георгиевский, В.И. Динамика Т- и В-лимфоцитов в крови свинок в
связи с фазами полового цикла / В.И. Георгиевский, Л.В. Вабышева,
И.А. Бурков // ВНИИ физиологии, биохимии и питания с.-х. животных. –
1984. – Бюл. №1. – С. 54-58.
52. Георгиевский, В.И. К вопросу о морфологии и физиологии вилочковой
железы // Влияние подкармливания цыплят тканью тимуса на их рост:
доклады Московской сельскохозяйственной академии им. К.А. Тимирязева.
– 1963. – В. 65. – С. 147-153.
53. Герасимчук, А.В. Селекция на естественную иммунологическую
реактивность – новый путь в развитии скота: тез. докл. V съезда генетиков и
селекционеров Украины. – Белая церковь, 1986. – Ч. 5. – С. 26.
54. Гневышев, М.И. Гелиофизические основы солнечно-биологических
связей. – В кн.: Влияние геофизических и метеорологических факторов на
жизнедеятельность организма. – Новосибирск, 1978. – С. 15-24.
55. Голиков, А.Н. Адаптация сельскохозяйственных животных. – М.:
Агропромиздат, 1985. – 215 с.
56. Головин, Н.И.
Магнитное поле Земли и здоровье человека /
Н.И. Головин, М.В. Курик, Н.М. Гарнага // Биомедицинские технологии и
радиоэлектроника. – 2002. – №5-6. – С. 41-45.
57. Голубев, Г.В. Влияние микроклимата помещений на продуктивность
свиней: Межд. с.-х. журнал. – 1971. – №1. – С. 58-62.
58. Гофман
В.Р.
Иммунодефицитные
282
состояния
/
В.Р.
Гофман,
Н.М. Калинина, С.А. Кетнинская [и др.]. – СПб.: Фолиант, 2000. – 290 с.
59. Григорьев, Г.К. Естественная резистентность организма свиноматок и
их продуктивность при введении в рацион витаминов Е и С: автореф. дис. …
канд. вет. наук. – Жодино, 1986. – 21 с.
60. Григорьев, В.С. Становление и развитие факторов резистентности
свиней / В.С. Григорьев, В.И. Максимов / Самарская ГСХА. – Самара, 2007. –
226 с.
61. Григорьев, П.Е. Геомагнитная активность и эмбриональное развитие
человека / П.Е. Григорьев, Н.И. Хорсева // Биофизика. – 2001. – Вып. 5. –
С. 919-921.
62. Гриценко, Н.М. Кормление и его влияние на иммунную систему:
доклады ВАСХНИЛ. – 1977. – №1. – С. 140-146.
63. Гуркина, В.Д. Влияние повышенной температуры воздуха на
биохимические показатели сыворотки крови подсосных свиноматок //
Вопросы
зоогигиены,
дератизации
и
санитарной
микробиологии
в
промышленном животноводстве. – 1983. – С. 33-38.
64. Гучь, Ф.А. Методы и основные итоги выведения южного типа
специализированной мясной породы свиней в Молдавской ССР / Ф.А. Гучь,
М.Ф. Гуменный // Вопросы интенсификации племенного свиноводства: сб.
науч. тр. – М., 1989. – С. 37-47.
65. Дейл, М.М.
Руководство по иммунофармакологии / М.М. Дейл,
Дж. К. Формен. – М.: Медицина, 1998. – 332 с.
66. Дементьев, Е. П. Влияние препарата «Биостим» на рост и развитие
цыплят / Е.П. Дементьев, Ю.В. Кириллова / БашНПВЛ: сб. науч. тр. – Уфа,
2002. – С. 82-86.
67. Денисенско, В.Н. Бактериальная активность сыворотки крови /
В.Н. Денисенско, П.А. Емельяненко, М.Н. Тулупова // Ветеринария. – 1976. –
№1. – С. 38.
68. Дергач, Н.А. Гематологические показатели и их связь с возрастом и
скороспелостью миргородских свиней // Пищеварение и обмен веществ у
283
свиней. – М.: Колос, 1971. – С. 291-292.
69. Дмитриенко, В. Методические рекомендации по оценке иммунного
статуса с.-х. животных / В. Дмитриенко, В. Новиков. – Покров, 1990. –
36 с.
70. Долгих, В.Т. Основы иммунопатологии: медицинская книга. –
Нижний Новгород: НГМА, 2000. – С. 3-103.
71. Донник, И.М. Экология и здоровье животных / И.М. Донник,
П.Н. Смирнов. – Екатеринбург: Издательско-редакционное агентство УТК,
2001. – 331 с.
72. Доронин,
А.Ф.
Функциональное
питание
/
А.Ф.
Доронин,
Б.А. Шендеров. – М.: Грант, 2002. – 296 с.
73. Дорофейчук, В.Г. Определение лизоцима нефелометрическим методом
// Лабораторное дело. – 1968. – №1. – С. 28-30.
74. Дорохина, Э.Э. Влияние белково-витаминной добавки на обмен
макроэлементов и гуморальных факторов защиты организма поросятотъемышей:
материалы научно-практической
конференции.
–
Курск:
КГСХА, 1998. – С. 74-76.
75. Дубров, А.П. Геомагнитное поле и жизнь / А.П. Дубров. – Л.:
Гидрометеоиздат, 1979. – С. 175.
76. Евдокимов, Н. Особенности роста и развития свиней цивильской
породы // Свиноводство. – 2006. – С. 10-11.
77. Евнин
Д.Н.
Продукты
катаболизма
иммуноглобулинов
как
неспецифические регуляторы гуморального иммунитета : автореф. дис. д-ра
мед. наук. – М., 1980. – 33 с.
78. Егорова, Т.А. Основы биотехнологии / Т.А. Егорова, С.М. Куликова,
Е.А. Живухина. – М.: Академия, 2003. – 208 с.
79. Емельяненко, П.А. Иммунология животных в период внутриутробного
развития. – М.: Аропромиздат, 1987. – 257 с.
80. Емельяненко П.А. Методологические указания по тестированию
естественной резистентности телят / П.А. Емельяненко, В.Н. Гризлов,
284
В.Н. Денисенко. – М.: МВА‚ 1980. – 64 с.
81. Ермолаев, Ю.И. Статистическое исследование гелиосферных условий,
приводящих
к магнитным бурям / Ю.И. Ермолаев, М.Ю. Ермолаев,
И.Г. Лодкина, Н.С. Николаева // Космические исследования. – 2007. – №1. –
С. 3-11.
82. Жданов, Д.А. Возрастные изменения конструкции лимфатических
узлов и ее значение для движения лимфы и лимфопоэза: тезисы докладов I
конферении
морфологов республик средней Азии и
Казахстана.
–
Сталинобад, 1960. – С. 125-127.
83. Жданов, Д.А. Стратегические изменения лимфатических капилляров,
сосудов
и
узлов:
тезисы
докладов
научной
сессии
по
проблеме
среднесосудистых заболеваний, их предупреждении и лечении. – М., 1962. –
С. 9-11.
84. Зайцев, С.Ю. Метод межфазной тензиометрии для исследования
сыворотки
крови
животных
и
модельных
систем
/
С.Ю.
Зайцев,
В.И. Максимов, Е.Н. Зарудная [и др.] // Высокие технологии, исследования,
промышленность: Сб. трудов девятой международн. научно-практич. конф.:
«Исследование,
разработка
и
применение
высоких
технологий
в
промышленности»; под ред. А.П. Кудинова. – СПб., 2010. – С.114-119.
85. Зарудная, Е.Н Особенности становления показателей динамического
поверхностного натяжения свиноматок с возрастом / Е.Н. Зарудная,
С.Ю. Зайцев, В.И. Максимов // Актуальные проблемы ветеринарии:
сб.науч.тр. – М., 2009. – С.84-87.
86. Земсков, А.М. Комбинированная иммунокоррекция / А.М. Земсков,
А.В. Караулов, В.М. Земсков. – М.: Наука, 1994. – 260 с.
87. Зориков, Ю.В. Морфологический и аминокислотный состав крови у
свиноматок при различных уровнях протеинового питания // Проблемы
межклеточного обмена электролитов, белковоминерального питания и
резистентности животных: материалы научно-практической конф. – Курск:
Изд-во КГСХА, 1998. – С. 24-25.
285
88. Зилбьер, Л. Иммунобиология. – М.: Колос, 1978. – 374 с.
89. Иванов, Г.И. Результаты исследований Чувашского отдела НИВИ
нечернозёмной
зоны
месторождения
в
РФ
по
применению
животноводстве
и
трепелов
ветеринарии
Первомайского
/
Г.И.
Иванов,
Т.Е. Григорьева // Сб.ст. – Чебоксары, 1998. – С. 49-54.
90. Исаченко
Е.Г.
Способ
оценки
резервных
возможностей
иммунокомпетентных клеток // Аллергология и иммунология. – 2006. – №2. –
С. 40-46.
91. Казаков В.Н. Межфазная тензиометрия и реометрия биологических
жидкостей
в
терапевтической
практике
/
В.Н.
Казаков;
под
ред.
А.Ф. Возианова. – Донецк: Мед. Университет, 2000.-296 с.
92. Казначеев,
В.П.
Биоинформационная
функция
естественных
электромагнитных полей / В.П. Казначеев, Л.П. Михайлова. – Новосибирск,
1985.
93. Калашников, В. Мясное скотоводство и пути его развития в России /
В. Калашников, В. Левахин // Молочное и мясное скотоводство. − 2004. −
№6. − С. 2-5.
94. Камскова, Ю.Г. Физиологические основы механики мышечного
сокращения. – Челябинск, 2004. − 262 с.
95. Капитаненко, А.М. Клинический анализ лабораторных исследований /
А. М. Капитаненко, И. И. Дочкин. – М.: Военное изд-во, 1988. – 270 с.
96. Карпуть, И.М. Иммунная реактивность свиней. – Минск: Урожай,
1981. – 65 с.
97. Карелин, А.И. Влияние внешних факторов на общую резистентность и
иммунобиологическую реактивность организма поросят / А.И. Карелин,
В.М. Емельянов. – М., 1974. – С. 12-18.
98. Карелин, А.И. Зоогигиенические мероприятия
в профилактике
инфекционных болезней свиней / А.И. Карелин, Н.Д. Сиротинина. – М.:
МВА, 1992. – 120 с.
286
99. Карелин,
А.И.
Оптимизация
микроклимата
в
маточниках
/
А.И. Карелин, О.А. Филатов // Свиноводство. – 1988. – №5. – С. 35-36.
100. Кармолиев,
Р.Х.
Участие
белков
крови
в
процессе
иммунобиологической адаптации организма // Ветеринария. – 1988. – №1. –
С. 33-34.
101. Карпенко,
Л.Ю.
Влияние
тимогена
на
некоторые
показатели
неспецифической защиты у поросят раннего постнатального периода: сб.
науч. тр. / Ленинградский вет. институт. – 1990. – №107. – С. 35-40.
102. Карпуть, И.М. Иммунная реактивность и устойчивость организма
свиней к заболеваниям // Вет. наука производству. – Минск, 1985. –
Вып. 23. – С. 28-35.
103. Карпуть, И.М. Иммунный статус у поросят: материалы Межд. конф.
посв. 70-летию образования зооинженерного факультета. – Казань, 2000. –
С. 66-69.
104. Карпуть, И.М. Оценка иммуностимуляции // Ветеринарные и
зооинженерные
проблемы
в
животноводстве
и
научно-методическое
обеспечение учебного процесса. – Минск, 1997. – С. 95-98.
105. Кацнельсон, З.С. Гистологическое строение тимуса свиней в поздний
плодный и постнатальный период / З.С. Кацнельсон, Е.М. Ледяева,
В.П. Александрова: сб. работ Ленинградского ветеринарного института. – Л.,
1962. – Вып. 24 – С. 388-395.
106. Каюмов, Ф.Г. Морфологический состав, биохимические показатели
крови и факторы гуморальной защиты бычков казахской белоголовой
породы разных генотипов / Ф.Г. Каюмов, М.П. Дубовская, А.В. Кузин //
Известия Оренбургский ГАУ. – 2006. – №3 (ІІ) – С. 23.
107. Квачев, В.Г. Иммунодефицитные состояния и их коррекция у
сельскохозяйственных
животных
/
В.Г.
Квачев,
А.Ю.
Кассич
//
Сельскохозяйственная биология. – 1991. – №2. – С. 105-114.
108. Кемилева, З. Вилочковая железа. – М.: Медицина, 1984. – С. 10-36.
109. Кетлинский, С.А. Эндогенные иммуномодуляторы / С.А. Кетлинский,
287
А.С. Симбирцев, А.А. Воробьев. – СПб.: Гиппократ, 1992. – 256 c.
110. Киршвинка, Дж. Биогенный магнетит и магниторецепция. Новое о
биомагнетизме. В 2 т. / под ред. Дж. Киршвинка, Д. Джонса, Б. Мак-Фаддена;
пер. с англ. – М., 1989. – 234 с.
111. Коваленко, Я.Р. Влияние факторов внешней среды на резистентность
организма и иммуногенеза / Я.Р. Коваленко, М.А. Сидоров // Вестник
сельскохозяйственной науки. – 1972. – №2. – С. 43-53.
112. Козловский, В.Г. Технология промышленного свиноводства. – 3-е изд.,
перераб. и доп. – М.: Россельхозиздат, 1984. – 334 с.
113. Кокряков,
В.Н.
Катионные
белки
лизосом
нейтрофильных
гранулоцитов при фагоцитозе и воспалении // Вопросы мед. химии. – 1990. –
№6. – С. 13-16.
114. Кокряков, В.Н. Очерки о врожденном иммунитете. – СПб.: Наука,
2006. – С. 202-212.
115. Коломыцев, А.А., Двунаправленное действие гуморальных факторов/
А.А. Коломыцев, В.А. Гаврилов, В.М. Евсеев // Ветеринария. – 1990. – №5. –
С. 24-27.
116. Коляков, Я.Е. Ветеринарная иммунология. – М.: Агропромиздат,
1986. – 219 с.
117. Комаров, И.М. О влиянии переменного действия повышенной
скорости воздуха на поросят-сосунов и поросят-отъемышей / И.М. Комаров,
Ф.Г. Топарков: докл. ВАСХНИЛ. – 1964. – Вып. 8. – С. 36-38.
118. Кононенко, С.И. Биологически активные вещества в кормлении
молодняка свиней:
мат. IX заседания межвузовского координационного
совета по свиноводству и Республ. науч.-произв. конф. – Персиановский:
ДонГАУ, 2000. – 135 с.
119. Копанов, В.И. О биологическом действии на организм гипомагнитной
среды / В.И., Копанов, Г.Д. Ефименко, А.В. Шакула // Известия АН СССР. –
1979. – №3. – C. 342-354. – (Серия «Биологическая»).
288
120. Корольков, Н.Т. Влияние условий выращивания поросят-сосунов на
состояние их естественной резистентности: материалы X заседания межвузовского координационного совета по свиноводству и Республиканской
научно-производственной конференции. – Персиановский: ДонГАУ, 2001. –
С. 140-143.
121. Корытин, С.А. О корреляции изменения численности темных и
светлых соболей с солнечной активностью: сб. научно-технической
информации ВНИИ охотн. хозяйств и звероводства. – 1972. – Т. 36. –
С. 14-22.
122. Крыжановский, Г.Н. Нейроиммунопатология / Г.Н. Крыжановский,
С.В. Мачаева, С.В. Макаров. – М., 1997. – 283 с.
123. Ксенц, С.М. Механизмы адаптации и компенсации физиологических
функций в экстремальных условиях // Труды Зап.-Сиб. объединения
физиологов, биохимиков, фармакологов. – Томск, 1997. – С. 114-115.
124. Куваева, И.Б. Микроэкологические иммунные нарушения у детей /
И.Б. Куваева, К.С. Ладодо. – М.: Медицина, 1991. – 73 с.
125. Кудрявцев, А.А. Реактивность организма животных и воздушная среда
помещений в условиях промышленных комплексов / А.А. Кудрявцев,
Л.А. Кудрявцев // Новое в лечении и профилактике инфекционных болезней
животных. – М.: Колос, 1972. – С. 228-239.
126. Кузнецов, А.И. Влияние стрессовой чувствительности на процент
рождения физиологически незрелых поросят / А.И. Кузнецов, В.Ф. Лысов //
Физиология молодняка с.-х. животных. – Троицк, 2002. – С. 58-59.
127. Кузнецов
А.И.
Особенности
выращивания
незрелых
поросят
/ А.И. Кузнецов, В.Н. Лузин, В.Г. Лукошкина // Уральские Нивы. – 1984. –
С. 50.
128. Кузнецов, А.Ф. Гигиена животных / А.Ф. Кузнецов, М.С. Найденский,
А.А. Шуканов, Б.Л. Белкин. – М., 2001. – 386 с.
129. Куликова, В.А. Тимус и щитовидная железа в период внутриутробного
развития лошади // Труды Вологодского молочного института. – 1967. –
289
Вып. 54. – С. 155-159.
130. Кульберг, А.Я. Молекулярная иммунология. – М.: Высшая школа,
1985. – 226 с.
131. Курцев, Н.В. Некоторые физиологические показатели мясного скота на
фоне сезонных факторов // Тр. института Всесоюзного НИИ мясного
скотоводства. – 1975. – Вып. 18. – С. 149-153.
132. Кухарев, В.А. Естественная резистентность свиней плановых пород
ставропольского края // Вестник ветеринарии. – 2001. – №4. – С. 54-56.
133. Лавина, Н. Эндокринология. – М.: Практика, 1999. – С. 8-11.
134. Лазарева, Д.Н.
Стимулирование
иммунитета
/
Д.Н.
Лазарева,
Е.К. Алехин. – М., 1985. – 255 с.
135. Лакин, Г.Ф. Биометрия. – М.: Высшая школа, 1990. – 352с.
136. Лебедев, К.А. Иммунограмма в клинической практике. Введение
в прикладную иммунологию / К.А. Лебедев, И.Д. Понякина. – М.: Наука,
1990. – 224 с.
137. Леонтьев, Л.Б. Способ защиты здоровья нетелей // Учёные записки
КАГВМ им. Н.Э. Баумана. – Казань, 2006. – Т. 182. – С. 183-188.
138. Лиознер, Л.Д. Регенерация и развитие. – М.: Наука, 1982. – 168 с.
139. Лифшиц, В.М. Медицинские лабораторные анализы: справочник /
В.М. Лифшиц, В.И. Сидельников. – М.: Триада-X‚ 2000. – С. 15-26.
140. Лихачев, Н.Б. Особенности анатомии вилочковой железы и ее
кровеносных сосудов в раннем детском возрасте // Ученые записки
Петразаводского университета. – 1964. – С. 3-7.
141. Лозовой, В.П. Структурно-функциональная организация иммунной
системы / В.П. Лозовой, С.М. Шергин. – Новосибирск, 1981. – 103 с.
142. Лозовой В.П. Методы исследований Т-системы иммунитета в
диагностике вторичных иммунодефицитов при заболеваниях и повреждениях
/ В.П. Лозовой, В.С. Кожевников, И.А. Волчек. – Томск, 1986. – С.4-6.
143. Ломакин, М.С. Иммунологический надзор. – М.: Медицина, 1990. –
63 с.
290
144. Лурия, Е.А. Роль зобной железы в иммунитете / Е.А. Лурия,
А.Я. Фриденштейн // Успехи современной билогии. – 1964. – Т. 57. – С. 268278.
145. Лысов, В.Ф. Физиологические аспекты профилактики и лечения
нарушений структурно-физиологической упорядоченности тканей, органов
организма животных // Труды І съезда ветеринарных врачей Республики
Татарстан. – Казань, 1996. – С. 204-209.
146. Лысов, В.Ф. Особенности функциональных систем и основы этологии
сельскохозяйственных животных / В.Ф. Лысов, В.И. Максимов. – М.:
Агроконсалт, 2003. – 96 с.
147. Лысов, В.Ф. Физиология и этиология животных / В.Ф. Лысов,
Т.В. Ипполитова, В.И. Максимов и др. – М.: КолосС, 2004. – 586 с.
148. Лютинский, С.И. Патологическая физиология сельскохозяйственных
животных. – М.: Колос‚ 2001. – 492.
149. Мазинг, Ю.А. Нейтрофильные гранулоциты и система защиты
организма // Архив патологии. – 1991. – №9. – С. 70-73.
150. Максимов, А.М. Многолетний колебания численности животных, их
причины и прогноз. – Новосибирск: Наука, 1984. – 350 с.
151. Максимов, В.И. О гормональном статусе тканей органов у свиней в
постнатальном онтогенезе // Доклады РАСХН. – 2002. – №4. – С. 502.
152. Максимов, В.И. О гормональном статусе тканей органов у молодняка
крупного рогатого скота и овец // Сельскохозяйственная биология. – 2001. –
№2. – С. 18-20. – (Серия «Биология животных»).
153. Максимов, В.И. Активность ферментов эндометрии свиноматок в
разные стадии полового цикла и при остром серозно-катаральном
эндометрите / В.И. Максимов, Ю.В. Фурман, В.В. Мосягин // Учёные
записки КГАВМ им. Баумана. – Казань, 2008. – Т. 194. – С. 93-98.
154. Маликов,
Д.И.
Связь
изменений
количества
семени
баранов-
производителей с вариацией геомагнетизма // Труды ВНИИ овцеводства и
козоводства. – Ставрополь, 1972. – Т. 1, вып. 32. – С. 225-227.
291
155. Малыжев, В.А. Созревание иммунологической реактивности Т-клеток
под влиянием и Л.С.В. // Физиология иммунного гомеостаза: тез. доклад.
Всесоюзн. симпоз. – Ростов-на-Дону, 1977. – С. 108-109.
156. Мамонтов, С.Г. Роль лимфоидной системы в регуляции клеточного
размножения в тканях мышей / С.Г. Мамонтов, С.М. Кремли // Медиаторы
иммунного ответа в эксперименте и клинике. – М., 1983. – С. 189-191.
157. Маршалл, В.Дж. Клиническая биохимия / В.Дж. Маршалл; пер. с англ.
– М.; СПб.: БИНОМ-Невский Диалект, 2000. – 368 с.
158. Маслянко, Р.П. Формирование В-системы иммунитета у животных //
Сельскохозяйственная биология. – 1987. – №9. – С. 99-104.
159. Медуницин, Н.В. Вакцинология. – М.: Триада-X, 1999. – С. 20-46.
160. Меркурьев, Е. Биометрия в селекции и генотипе сельскохозяйственных
животных. – М.: Колос‚ 1970. – 400 с.
161. Меерсон, Ф.З. Адаптация к стрессорным ситуациям и физическим
нагрузкам / Ф.З. Меерсон, М.Г. Пшенникова. – М.: Медицина, 1988. – 256 с.
162. Мечников, И.И. Об иммунитете. – СПб., 1900. – С. 146-167.
163. Меньшиков, В.В. Лабораторные методы исследований в клинике:
справочник. – М.: Медицина, 1987. – 368 с.
164. Методические рекомендации по исследованию систем микроклимата в
промышленном животноводстве и птицеводстве. – М.: ВИЭСХ., 1977.
165. Минеев, В.Н. Современные представления о JFK-STAT системе как
новой сигнальной системе и ее нарушениях при иммунной патологии /
В.Н. Минеев, Л.Н. Сорокина // Аллергология и иммунология. – 2005. – №4. –
С. 32-36.
166. Минеев, В.Н. Современные представления о JFK-STAT системе как
новой сигнальной системе и ее нарушениях при иммунной патологии /
В.Н. Минеев, Л.Н. Сорокина // Аллергология и иммунология. – 2006. – №1. –
С. 25-29.
167. Мирзаев, Э.Б. О фагоцитарном механизме и иммуногенезе //
Теоретические и практические аспекты возникновения и развития болезней
292
животных и защита их здоровья в современных условиях: матер.
Международной конф. – Воронеж, 2000. – Т.1. – С. 27-28.
168. Мирзаев, Э.Б. Воздействие техногенных факторов на сельскохозяйственных
животных
в
экологически
неблагоприятных
регионах
//
Сельскохозяйственная биология. – М., 2007. – №2. – С. 73-78. – (Серия
«Биология животных»).
169. Мирошниченко,
И.В.
Характеристика
внутритимусных
предшественников Т-лимфоцитов / И.В. Мирошниченко, Н.И. Сорокина,
Н.И. Шарова [и др.] // Иммунология. – 1987. – №6. – С. 26-29.
170. Михайлова, А.А. Регуляторы иммунного ответа // V Всесоюзный
биохимический съезд: тезисы докладов. – М.: Наука, 1985. – Т. 1. – С. 87-88.
171. Морлей, Дж. Руководство по иммунофармакологии. Лимфокины /
Дж. Морлей, Дж. М. Хансон, В.М. Румьянек; пер. с англ.; под ред.
М.М. Дейла, Дж.К. Формсна. – М.: Медицина, 1998. – С. 149-160.
172. Морозов,
В.Г.
Пепдидные
титомиметики
/
В.Г.
Морозов,
В.Х. Хавинсон, В.В. Малинин. – СПб.: Наука, 2000. – 158 с.
173. Мохов, Б.П. Экологическая оценка системы животноводства /
Б.П. Мохов, В.Ф. Красота // Зоотехния. – 1998. – №1. – С. 20-22.
174. Назаренко, Г.И.
Клиническая оценка результатов лабораторных
исследований / Г.И. Назаренко, А.А. Кишкун. – М.: Медицина, 2002. – 544 с.
175. Налетов, Н.А. Патологическая физиология и патологическая анатомия
животных. – М.: Агропромиздат, 1991. – С. 201.
176. Наставление гидрометеорологическим станциям и постам. Вып. 3, ч.1:
Метеорологические наблюдения на станциях. – Л.: Гидрометеоиздат, 1985.
177. Наставление гидрометеорологическим станциям и постам. Вып. 3, ч.2:
Обработка материалов метеорологических наблюдений. – М.: Росгидромет,
2001.
178. Неголюк, Ю.И. Роль геомагнитных бурь в особенностях сезонного
течения внутренних болезней / Ю.И. Неголюк, В.А. Карпин, М.Н. Прокопьев,
Ю.Г. Бурыкин // Экологический вестник Югории. – 2006. – Т. 3, №1-2. –
293
С. 12-22.
179. Немилов, В.А. Реактивность поросят-отъемышей при оптимизации
микроклимата в свинарниках / В.А. Немилов, Е.Н. Сафронов // Болезни ягнят
и поросят: сб. – М., 1989. – С. 95-98.
180. Нечитайло, Е.Е. Гематологические особенности черно-пестрого скота
разных производственных типов / Е.Е. Нечитайло, У.А. Одабашьян // Тр.
Кубанского СХИ. – 1984. – Вып. 239. – С. 73-76.
181. Никитенко, А.М. Роль тимуса в формировании иммунологической
реактивности организма // Сельскохозяйственная биология. – 1987. – №10. –
С. 115-118.
182. Никитин, В.Н. Эндокринная ситуация возраста / Съезд Всесоюзного
физиологического общества им. И.П. Павлова. – Тбилиси; Л.: Наука, 1975. –
Т. 1. – С. 249-250.
183. Никольченко, З.Т. Роль пола в детерминации общей резистентности и
проявление гетерозиса: тез. докл. V съезда ВОГиС. – М., 1987. –
Т. 3. – С. 144-145.
184. Никонова, М.Ф. Модификация мембранного фенотипа тимоцитов при
действии гормонов тимуса и лимфакинов / М.Ф. Никонова, М.Г. Михина,
Н.И. Сорокина и другие // Иммунология. – 1987. – №5. – С. 59-62.
185. Никонова, М.Ф. Фенотипические и функциональные проявления
дифференцировки тимоцитов под влиянием медиаторов иммунной системы /
М.Ф. Никонова, М.Г. Михина, А.А. Ярилин и другие // Иммунология. – 1988.
– №2. – С. 43-47.
186. Новиков, В.В. Основные параметры иммунного статуса клинически
здоровых свиней / В.В. Новиков, В.В. Дмитриенко // Ветеринария. – 1993. –
№2. – С. 22-25.
187. Новицкий, Ю.И. Действие постоянного магнитного поля на растение
// Вестник АН СССР. – 1968. – №9. – С. 92.
188. Ноздрин, Н.Т. Выращивание молодняка свиней: справочник /
Н.Т. Ноздрин, А.Ф. Сагло. – М.: Агропромиздат, 1990. – 235 с.
294
189. Олейник, Е.К. Структурная организация клеток тимуса и этапы
дифференцировки Т-лимфацитов / Е.К. Олейник, М.Г. Анисимов // Вопросы
иммунологии и гематологии: сб. науч. тр. – Петрозаводск, 1990. – С. 3-9.
190. Онегов А.П. Справочник по гигиене сельскохозяйственных животных /
А.П. Онегов, Ю.И. Дударев, М.А. Хабибулов. – М.: Россельхозиздат‚ 1984. –
с. 155.
191. Павлович, А.С. Основы иммунологии. – Минск: Вышэйша школа,
1998. – 115 с.
192. Павлуненко, А.А. Иммунная реактивность поросят северокавказсой
породы / А.А. Павлуненко, С.В. Шаталов // Проблемы и методы
интенсификации свиноводства: сб. науч. тр. – Персиановка, 1990. – С. 29-31.
193. Патент №2111756. Российская Федерация. Средство для повышения
роста и сохранности молодняка / Бороздин Э.К., Амбросьева Е.Д., Агаев Р.Б.
– №96107604/13; заявл. 12.04.1996; опубл. 27.05.1998, Бюл. №22. – 3 с.: ил.
194. Патент №2075972. Российская Федерация. Средство для лечения
желудочно-кишечных болезней молодняка сельскохозяйственных животных
«диацетин» / Ноздрин Г.А., Соколов В.Д. – №93010126/15; заявл. 26.02.1993;
опубл. 27.03.1997, Бюл. №10. – 5 с.: ил.
195. Патент №2104705 А61К35/74.
Российская Федерация. Способ
повышения иммунного статуса у цыплят / Прибыдайло Н. Д., Джанова З. Ф.,
Шорников В.В. – №94031387/13; заявл. 08.08.1994; опубл. 20.02.1998, Бюл.
№ 10. – 4 с.: ил.
196. Перунова, Е.В. Применение селенсодержащих препаратов в практике
животноводства / Г.А. Трифонов, Р.И. Древко // Проблемы животноводства
на современном этапе: мат. науч.-практ. конф. специалистов-животноводов
АПК. – Пенза, 1998. – С. 20-26.
197. Першин, Б.Б. Стресс, вторичные иммунодефициты и заболеваемость. –
М., 1994. – 210 с.
198. Петров, Р.В. Итоги науки и техники / Р.В. Петров, А.А. Михайлова //
Иммунология; ВИНТИ. – Т. 12. – 1983. – 63 с.
295
199. Петров, Р.В. Иммунология. – М.: Медицина, 1987. – 414 с.
200. Петровский, Б.В. Популярная медицинская энциклопедия. – М.,
1984. – С. 254-261.
201. Петрянкин,
Ф.П.
Некоторые
проблемы
использования
цеолитсодержащих трепело: сб. ст. – Чебоксары, 1998. – С. 24-30.
202. Петрянкин,
Ф.П.
Резистентность
и
путь
их
повышения
/
Ф.П. Петрянкин, Н.К. Кириллов. – Чебоксары, 2004. – 169 с.
203. Петрянкин, Ф.П. Резистентность и реактивность организма животных
и пути их повышения / Ф.П. Петрянкин, Н.К. Кириллов / Чувашская
государственная сельскохозяйственная академия. – Чебоксары, 2004. – 123 с.
204. Пивовар, Л.М. Профилактические обработки поросят-сосунов в
промышленном
свиноводстве
//
Новое
в
диагностике,
лечении
и
профилактике болезней молодняка с.-х. животных: сб. науч. тр. – М., 1991. –
С. 69.
205. Пивовар, Л.М. Профилактика заболеваний поросят // Новое в
диагностике, лечении и профилактике молодняка болезней с.-х. животных:
сб. науч. тр. – М., 1991. – С. 52.
206. Пилипенко, М.Е. О клеточном составе вилочковой железы (тимуса)
уток: тезисы докладов Всесоюзной конференции по анатомии, гистологии и
эмбриологии сельскохозяйственных животных / Казанский ветеринарный
институт. – Казань, 1972. – Ч. 2. – С. 18.
207. Пинегин, Б.В. Оценка иммунной системы человека: сложности и
достижения / Б.В. Пинегин, А.Н. Чередеев, Р.М. Хаитов // Вестник
Российской академии мед. наук. – 1999. – №5. – С. 55-56.
208. Пинчен, Б.В. Регуляторные ферменты печени / Б.В. Пинчен,
М.И. Карсонова, А.Г. Калинкович [и др.] // V Всесоюзный биохимический
съезд: тезисы докладов. – М.: Наука, 1985. – Т. 1. – С. 57.
209. Пирагалевский, В.Е. Полиморфоядерный лейкоцит и макрофаг в
реакциях гиперчквствительности: архив патологии. – 1983. – №11. – С. 14-22.
210. Плященко, С.И. Методы повышения продуктивных и защитных
296
функций
организма
технологии
/
С.И.
ремонтных
Плященко,
свинок
В.Т.
в
условиях
Сидоров,
В.А.
промышленной
Медведский
//
Свиноводство, 1991. – С. 16.
211. Поддубный, А.Г. Экологическая топография популяций рыб в
водохранилищах. – Л.: Наука, 1971. – 309 с.
212. Пол, У. Иммунология. В 3 т. / У. Пол, А. Сильверстайн, М. Купер; пер.
с англ. – М.: Мир, 1987. – 346 с.
213. Поликар, А. Физиология и патология лимфоидной системы. – М.:
Медицина, 1965. – С. 183-192.
214. Поляновский,
О.Л.
Поляновский,
О.Л.
А.Г.
Медиаторы
Степченко,
С.М.
лимфатических
Деев
//
V
узлов
/
Всесоюзный
биохимический съезд: тезисы докладов. – М.: Наука, 1985. – Т. 1 – С. 43.
215. Попова, Н.А. Общий уровень иммуноглобулинов у с.-х. животных как
показатель устойчивости к инфекционным болезням / Н.А. Попова,
Е.С. Белоусова, Д.К. Церувадзе: тез. докл. V съезда ВОГиС. – М.,
1987. – Т. 3 – С. 170.
216. Пресман, А. С. Организация биосферы и ее космические связи. – М.:
Гео-СИНТЕГ, 1997. – 240 с.
217. Прести, Д.Е. Навигация птиц, чувствительность к геомагнитному полю
и биогенный магнетит. – В кн.: Биогенный магнетит и магниторецепция.
Новое о биомагнетизме. – М.: Изд-во МИР, 1989. – Т. 2. – С. 233-265.
218. Прогоров,
А.М.
Советский
энциклопедический
словарь
/
А.М. Прогоров, М.С. Гиляров, А.А. Гусев [и др.]. – М., 1985. – С. 1263-1265.
219. Раушенбах, Ю.О. Экогенез домашних животных. – М.: Наука, 1985. –
200 с.
220. Риган, В. Атлас ветеринарной гематологии / В. Риган, Т. Сандерс,
Д. Деникола. – М.: ООО «Аквариум ЛТД», 2000. – С. 136.
221. Ройт, А. Иммунология / А. Ройт, Д.Ж. Бростофф, Д. Мейл; пер. с англ.
– М.: Мир, 2000. – 592 с.
222. Ройт, А. Основы иммунологии / пер. с англ. – М.: Мир, 1991. – 398 с.
297
223. Романов, Е.А. Биологические ветеринарные препараты в России //
Вакцины, сыворотки, диагностикумы: справочник. – Казань, 2005. – 636 с.
224. Романова, А.Ф. Справочник по гематологии / А.Ф. Романова,
Я.И. Ваговская, В.Е Логинский. – Ростов-на-Дону: Феникс‚ 2000. – 379 с.
225. Рузнов, Ш.М. Естественная резистентность организма телят в
условиях комплексов // Ветеринария. – 1989. – №5. – С. 26-28.
226. Русанов А.И. Межфазная тензиометрия / А.И. Русанов, В.А. Прохоров.–
СПб.: Химия, 1994. – 400 с.
227. Санин,
заболеваниях
А.В.
Применение
мелких
иммуномодуляторов
домашних
животных//
при
Российский
вирусных
журнал
ветеринарной медицины. – 2005. – №1. – С. 38-42.
228. Сапин, М.Р. Иммунная система человека / М.Р. Сапин, Л.Е. Этинген. –
М.: Медицина, 1996. – 304 с.
229. Сапин, М.Р. Лимфоидные образования в стенке пищевода человека в
постнатальном онтогенезе / М.Р. Сапин, Л.Н. Плившев // Архив анатомии
гистологии и эмбриологии. – 1986. – №6. – С. 21-27.
230. Сафронов, Б.Н. Основы медицинской иммунологии / Б.Н. Сафронов,
М.Я. Левин, Л.Ю. Орехова. – СПб.: Пик, 1997. – 164 с.
231. Сафронова, В.А. Сезонные особенности морфофизиологического
состояния свиноматок разных генотипов: автореферат дис. … канд. биол.
наук. – Чебоксары, 2009. – 17 с.
232. Свечин, Ю.К. Организация производства свинины на промышленной
основе / Ю.К. Свечин, Л.И. Смирнова, Г.В. Голубев. – М.: Агропромиздат,
1985. – 152 с.
233. Селье, Г. На уровне целого организма. – М.: Наука, 1972. – 123 с.
234. Семененя, И.Н. Феномен жизни в аспекте полевой организации
природы. – Гродно, 1997. – 256 с.
235. Семенюта, А.Т. Зоогигиенические мероприятия направленные на
повышение естественной резистентности организма животных // Бюл. ВИЭВ.
– 1981. – Вып. 44. – С. 63-66.
298
236. Сердюк, Г.Н. Естественная резистентность свиней и методы ее
повышения / Г.Н. Сердюк, О.А. Лозачева // Селекция с.-х. животных на
устойчивость к болезням в условиях промышленной технологии: сб. науч. тр.
– М., 1986. – Вып. 6. – С. 34-38.
237. Сердюк, Г.Н. Иммунобиологический контроль в селекционной
практике // Зоотехния. – 2000. – №10. – С. 8-9.
238. Серебров, В.Ю. Эндокринная функция тимуса / В.Ю. Серебров,
С.Л. Стукачев. – Томск: Изд-во Томского университета, 1993. – 128 с.
239. Сидорчук,
И.И.
Микроорганизмы
кишечника
и
естественная
резистентность поросят / И.И. Сидорчук, И.М. Павлюк, Е.И. Тищенко //
Биологические основы высокой продуктивности сельскохозяйственных
животных: материалы международной конф. (Боровск, 3-7 сентября 1990 г.)
– Боровск, 1991. – Ч. I. – С. 118-126.
240. Симонян,
Г.А.
Ветеринарная
гематология
/
Г.А.
Симонян,
Ф.Ф. Хисамутдинов. – М.: Колос, 1995.
241. Скопичев, В.Г. Физиология животных и этология. – М.: КолосС, 2004.
– 720 с.
242. Скорляков, В.М. Механизм иммунитета в свете современных
достижений науки и вопросы специфической защиты животных в условиях
промышленных комплексов: методические рекомендации / В.М. Скорляков,
С.А. Пигалев. – Саратов, 1986. – 31 с.
243. Скорляков, В.М. Морфологические и функциональная характеристика
состояния специфической и неспецифической устойчивости организма
крупного рогатого скота при межпородном скрещивании: автореф. дис. …
д-ра вет. наук. – Саратов, 1998. – С. 32.
244. Смирнов, А.М. Состояние и перспективы ветеринарной санитарии,
гигиены и экологии / А.М. Смирнов, М.А. Симецкий, Г.А. Таланов //
Ветеринария. – 2001. – №10. – С. 3-6.
245. Смирнов,
механизмы
П.Н.
выхода
Адаптация
на
и
компенсация
иммунореабилитацию
299
как
биологические
сельскохозяйственных
животных / П.Н. Смирнов, В.А. Апалькин, М.А. Амироков, А.Ф. Головач //
Материалы сибирского Международного вет. конгресса. – Новосибирск,
2005. – С. 66-69.
246. Смирнова,
А.М.
Естественная
резистентность
поросят
/
А.М. Смирнова, М.Ф. Васильева // Ветеринария. – 1980. – №3. – С. 55-56.
247. Смирнова, О.В. Определение бактерицидной активности сыворотки
крови методом нефелометрии / О.В. Смирнова [и др.]. // Микробиология. –
1966. – №4. – С.8-11.
248. Соболева,
Т.Н.
Морфология
клеток
крови
в
нормальном
кроветворении / Т.Н. Соболева, Е.Б. Владимирская. – М.: ЮНИМЕД-пресс,
2003. – С. 32.
249. Соколов, В.И. Морфофункциональные основы механизмов гомеостаза
лимфоидной ткани в онтогенезе животных: автореф. дис. … д-ра вет. наук /
В.И. Соколов. – СПб.‚ 1992. – 34 с.
250. Соколов, Е.И. Клиническая иммунология: руководство для врачей /
Е.И. Соколов, П.В. Глан, Т.И. Гришина. – М.: Медицина, 1998. – С. 9-56.
251. Солошенко, Э.Н. Основные принципы рационального применения
иммунотропных средств при комплексном лечении больных распространённых дерматозами и инфекциями, передающимися половым путём //
Дерматология. – Червень, 2003. – №3. – С. 41-46.
252. Степанов В.И. Практикум по свиноводству / В.И. Степанов,
Н.В. Михайлов. – М.: Агропромиздат‚ 1986. – С.17-22.
253. Степанов В.И. Естественная резистентность свиней с различной
стресс-реактивностью // Ветеринария. – 2000. – №7. – С. 37-40.
254. Степанов, В.И. Актуальные проблемы развития свиноводства /
В.И. Степанов, Н.В. Михайлов, А.И. Баранников // Зоотехния. – 1999. – №3. –
С. 22-23.
255. Стефании, Д.В. Клиническая иммунология и иммунопатология
детского возраста / Д.В. Стефании, Ю.Е. Вельтищев. – М.: Медицина, 1996. –
384 с.
300
256. Стржижевский, А.Д. Влияние сильных
магнитных
полей на
полиферативную активность тканей млекопитающих // Межсистемные
взаимодействия при радиационном поражении. Теоретические предпосылки
и модели. – Пущино, 1978. – С. 126-134.
257. Судаков, К.В. Стресс.
Постулаты с позиции общей теории
функциональных систем // Патология, физиология и экспериментальная
терапия. – 1992. – №4. – С. 86-93.
258. Сулейманов,
С.М.
Структурно-функциональные
механизмы
возникновения и развития патологии у молодняка животных // Концепция
экологоадаптационной теории возникновения, развития массовой патологии
и защиты здоровья животных в сельскохозяйственном производстве. – М.,
2000. – С. 20-24.
259. Сухих, Г.Т. Иммунитет и генитальный герпес / Г.Т. Сухих,
Л.В. Ванько, В.И. Кулаков. – Нижний Новгород: НГМА, 1997. – С. 9-34.
260. Темурьянц, Н.А. Сверхнизкочастотные электромагнитные сигналы в
биологическом
мире
/
Н.А.
Темурьянц,
Б.М.
Владимирский,
О.Г. Тишкин. – Киев: Наукова Думка, 1992. – 188 с.
261. Темшенко, Н.Д. Общая резистентность поросят при промышленном
выращивании // Вопросы ветеринарной биологии: сб. науч. тр. – М.: МВА,
1994. – С. 82-84.
262. Тихонов, С.Л. Стресс и качество мяса: монография. – Троицк, 2007. –
148 с.
263. Тихонов, И. Племенное свиноводство России. – М.: Россельхозиздат,
1985. – 254 с.
264. Тихонов, С.Л. Эффективность экстракта крапивы при алиментарной
анемии
поросят
/
С.Л.
Тихонов,
Н.В.
Тихонова,
А.В.
Степанов,
Ф.А. Синагатуллин: мат. сибирского Международного вет. конгресса. –
Новосибирск, 2005. – С. 279-280.
265. Ткачук, М.Г. Тимус в условиях физических нагрузок и воздействия
иммуномодуляторов / М.Г. Ткачук, М.С. Сирадина // Морфология. – 2004. –
301
Т. 126, вып. 4. – С. 122.
266. Топурия, Г.М. Фагоцитарные свойства нейтрофилов крови свиноматок
при применении хитозана / Г.М. Топурия, С.М. Терехова // Современные
проблемы ветеринарной терапии и диагностики болезней животных:
материалы юбилейной межд. научно-прак. конф. вет. терапевтов и
диагностов, посв. 90-летию со дня рождения проф. Кабыша А.А. – Троицк,
2007. – С. 109-110.
267. Тоун, У.Ф. Чувствительность медоносных пчел к магнитному полю /
У.Ф. Тоун, Дж.Л. Гоулд. – В кн.: Биогенный магнетит и магниторецепция.
Новое о биомагнетизме. – М.: Изд-во МИР, 1989. – С. 147-173.
268. Тутов, И.К. Организация и сущность иммунного ответа на экзогенный
антиген // Вестник ветеринарии. – 1997. – №4. – С. 35-41.
269. Уразаев, Н.А. Ветеринарная экология и патология животных:
содержание, значение для решения проблем ветеринарии и животноводства //
Вестник ветеринарии. – 1998. – №8 (2). – С. 3-6.
270. Урбан, В.П. Возрастные особенности показателей неспецифической
защиты поросят / В.П. Урбан, В.В. Рудаков, Л.Ю. Карпенко // Вестник
сельскохозяйственной науки. – 1990. – №4 (403). – С. 73-77.
271. Усенко, В.И. Морфология тимуса в постпубернатном периоде
постнатального онтогенеза // Современные проблемы свиноводства /
Казанская государственная академия ветеринарной медицины им. Н.Э.
Баумана:
матер.
Межд.
науч.
конф.,
посв.
70-летию
образования
зооинженерного факультета. – Казань, 2000. – Т. 1. – С. 285-286.
272. Усенко, В.И. Основы животноводства. Биотехнология производства
сырья и продуктов животноводческого происхождения: учебное пособие. –
Казань, 2005. – 144 с.
273. Федоров,
Ю.Н.
Пренатальная
и
ранняя
постнатальная
иммунокомпетентность свиней // Сельское хозяйство за рубежом. – 1981. –
№10. – С. 44-49.
274. Федоров, Ю.И. Иммунокоррекция: применение и механизм действия
302
иммуномодулирующих препаратов // Ветеринария. – 2005. – №2. – С. 3-6.
275. Федоров, Ю.К. Основы иммунологии и иммунопатологии собак /
Ю.К. Федоров, О.А. Верховский, И.В. Слугин. – М.: Издательскоинформацион-ный центр ООО ИНФОРМ-12, 2000. – 248 с.
276. Федянина, И.А. Влияние «Достима» и кормовой серы на показатели
физиологического статуса телят при низких температурах воздуха /
И.А. Федянина, А.Х. Ибрагимова, А.А. Шуканов // Гигиена, ветсанитария и
экология животноводства: мат. Всерос. науч.-произ. конф. – Чебоксары,
1994. – С. 455-456.
277. Флоренсов, В.А. Кроветворная функция лимфотических узлов в
онтогенезе и эволюции позвоночника // Архив анат. гистол. и эмбриол. –
1966. – Т. 51. – №9. – С. 48-50.
278. Фомичев, Ю.П. Резистентность и интенсивность роста поросят под
влиянием хитозана / Ю.П. Фомичев, Р.Г. Шайдуллина, Ю.Н. Федоров [и др.]
// Сельскохозяйственная биология. – 2004. –№2. – с. 89-94.
279. Фрейдлин, И.С. Иммунная система и ее дефекты: руководство для
врачей. – СПб.,1998. – 113 с.
280. Фрейдлин, И.С. Ключевая позиция макрофагов в цитокиновой
регуляторной сети // Иммунология. – 1995. – №3. – С. 44-48.
281. Фриденштейн,
А.Я.
Клеточные
основы
имунитета
/
А.Я. Фриденштейн, И.Л. Чертков. – М., 1969. – 263 с.
282. Фурдуй,
В.Ф.
Становление
иммунного
статуса
в
раннем
постнатальном онтогенезе у телят // Рос. физиол. журн. им. Сеченова. – СПб.,
2004. – Т. 90, №8. – С. 502-503.
283. Хавинсон, В.Х. Влияние тималина на иммунитет и содержание
противовоспалительных
цитокинов при переломах длинных трубчатых
костей, осложненных остеомиелитом / В.Х. Хавинсон, Ю.А. Витковский,
Б.И. Кузник // Иммунология. – 2001. – №1. – С.22-25.
284. Хазиахметов,
Р.М.
Экологически-ориентированное
управление
структурой и функцией агроэкосистем: автореф. дис. … д-ра биол. наук. –
303
Тольятти, 2002. – 36 с.
285. Хаитов,
Р.М.
Иммунология:
учеб.
пособие
/
Р.М.
Хаитов,
Г.А. Игнатьева, И.Г. Сидорович. – М.: Медицина, 2000. – 429 с.
286. Холодная, Н.Ю. Влияние изменений солнечной активности на
рождаемость в колонии степного сурка // Космос и биосфера. Физические
поля в биологии, медицине и экологии: тезисы докладов Международного
крымского семинара. (1-6 октября 2001 г.; Партенит; Крым). – Украина. –
С. 59-60.
287. Хорсева, Н. И. Индивидуально-ретроспективный анализ гелиогеофизической обстановки в период внутриутробного развития человека /
Н.И. Хорсева, А. А. Конрадов // Человек и электромагнитные поля: тезисы II
Международной конференции. (28 мая – 01 июня 2007 г.). – Саров, 2007. –
С. 56-59.
288. Храбустовский,
иммунитета
И.Ф.
организма
Динамика
коров
показателей
симментальской
неспецифического
породы
//
Проблемы
иммунитета с.-х. животных. – М., 1970. – С. 450-456.
289. Храбустовский И.Ф. Методические рекомендации по определению
естественной резистентности животных в услвоиях интенсивного их
использования / И.Ф. Храбустовский, В.В. Никольский‚ Ю.М. Марков. –
Харьков: Укр. НИИ Экспериментальной ветеринарии. – 1974. – С. 7-18.
290. Царев, В.П. К вопросу о состоянии иммунитета при хронической
пневмонии / В.П. Царев, Н.В. Бородин. – Диагностика и лечение заболеваний
легких. – М., 1980. – Вып. 5. — С. 13-14.
291. Цицишвили,
Г.В.
Природные
цеолиты
/
Г.В.
Цицишвили,
Т.Г. Андроникашвили. – М.: Химия, 1985. – 83 с.
292. Чеботарев, В.Ф. Гормоны тимуса в регуляции иммунного ответа /
В.Ф. Чеботарев, А.В. Антоненко, З.А. Антипова // Биохимия животных и
человека: сб. науч. тр. – М.‚ 1985. – Вып. 9. – С. 3-11.
293. Черекаев, А.В. Мясное скотоводство России // Проблемы развития и
науч. обеспечение АПК Центр. Нечерноземья России. – М., 1997. –
304
С. 337-342.
294. Черников, В.А. Агроэкология / В.А. Черников, Р.М. Алексахин,
А.В. Голубев. – М.: Колос, 2000. – 536 с.
295. Чибисов,
С.М.
Анализ
реакции
сердечнососудистой
системы
космонавтов на воздействие магнитной бури в сравнение с данными
лабораторных исследований / С.М. Чибисов, Т.К. Бреус, К.В. Шебзухов //
Эколого-физиологические проблемы адаптации: материалы Х Международного симпозиума. – М., 2001. – С. 584-586.
296. Чуваев, П.П. О влияние ориентации семян по сторонам света на
скорость их прорастания и характер роста проростков // Физиология
растений. – 1967. – Т. 14, вып. 3. – С. 540-545.
297. Шахбазова,
О.И.
Связь
Биохимических
показателей
крови
с
продуктивностью // Свиноводство. – 1995. – №1. – С. 23-24.
298. Шахов,
А.Г.
Экологические
проблемы
патологии
сельскохозяйственных животных // Экологические проблемы патологии,
фармакологии
и
терапии
животных:
материалы
Международного
координационной конференции. – Воронеж, 1997. – С. 17-20.
299. Шахов, А.Г. Системно-экологическое обоснование защиты животных
от факторных инфекций / А.Г. Шахов, В.С. Бузлама // Концепция экологоадаптационной теории возникновения, развития массовой патологии и
защиты здоровья животных в сельскохозяйственном производстве. – М.,
2000. – С. 34-38.
300. Шидлаускайте, Л.А. Реакции водных животных в электромагнитных
полях // Труды АН Литовской ССР. – Сер. В, Т. 2. – 1973. – C. 127.
301. Шилов, А.В. Физиологическое состояние поросят при разных способах
их
выращивания:
материалы
Всерос.
научно-прак.
конф.,
посв.
75-летию со дня открытия Чувашского государственного с.-х. академии. –
Чебоксары, 2006. – С. 309-312.
302. Шитиков,
A.Ю.
Удой
и
раздой
высокопродуктивных
коров,
записанных в книгу высокопродуктивных коров черно-пестрой породы за
305
1970-1983 гг. при разной солнечной и геомагнитной активности /
A.Ю. Шитиков, И.Д. Газдиев, А.В. Захаров // Вестник Российского
университета дружбы народов. – 2003. – №10. – С. 13-19.
303. Шматов, А.А. Влияние шрота элеутерококка на формирование тимуса
и бурсы цыплят от 20- до 60-дневного возраста / А.А. Шматов,
Т.И. Вахрушева, Т.В. Соловьёва // Вестник КрасГАУ: научно-технический
журнал. – Красноярск, 2002. – №8. – С. 95-97.
304. Шмидт, Р.М. Пути повышения естественной резистентности и
продуктивных качеств черно-пестрого скота / Р.М. Шмидт, В.М. Магдич,
М.А.
Папасюк
//
Биологический
основы
высокопродуктивных
сельскохозяйственных животных : тез. докл. – Боровск, 1990. – Ч. 2. – С. 106107.
305. Шмидт-Ниельсен, К. Физиология животных. Приспособление и
среда. – М.: Мир, 1982. – Т. 1-2. – 416 с.
306. Шубик, В.М. Иммунологическая реактивность юных спортсменов /
В.М. Шубик, М.Я. Левин. – М.: Физкультура и спорт, 1982. – 136 с.
307. Шубин, М. Г. Щелочная фосфатаза лейкоцитов в норме и патологии /
М. Г. Шубин, Б. С. Нагаев. – М.: Медицина, 1980. – 224 с.
308. Шуканов, А.А. Морфофизиологическая реакция организма телят на
воздействие новых иммунокорректоров / А.А. Шуканов, А.В. Панихина. –
Чебоксары, 2005. – 142 с.
309. Шуканов,
Д.А.
К
проблеме
иммунодефицита
и
повышения
резистентности животных / Д.А. Шуканов, Н.К. Кириллов, Ф.П. Нетрянкин //
Изд. нац. акад. наук и искусств Чувашской республики. – 1996. – №4. –
С. 43-53.
310. Шумилов, О.И. Исследование воздействия геомагнитных возмущений
в высоких широтах на внутриутробное состояние плода при помощи
кардиотокографии / О.И. Шумилов, Е.А. Касаткина, А.В. Еникеев,
А.А. Храмов // Биофизика. – 2003. – Вып. 2. – С. 374-379.
311. Шушарин, А.Д. Иммунокорректирующая терапия / А.Д. Шушарин,
306
Н.А. Верещак // Аграрный вестник Урала. – 2007. – №3(39). – С. 27-28.
312. Щербакова, Э.Г. Влияние лизоцима на поверхностные структуры
периотонеальных макрофагов мышей / Э.Г. Щербакова, Э.Л. Соболева,
Г.А. Раступова // Антибиотики. – 1983. – Т. 28. – С. 36-40.
313. Эшмен, Р.Ф. Активация лимфоцитов. В 3-х т. Иммунология / под ред.
У. Пола; пер. с англ. – М.: Мир, 1987. – T. I. – С. 414-469.
314. Юрко, В.М. Резистентность организма и продуктивность молодняка
свиней при различных режимах освещения // Ветеринария. – 1988. –
№2. – С. 28-30.
315. Яковлев‚ Г.М. Перспективы биорегулирующей терапии / Г.М. Яковлев,
В.X. Хавинсон, В.Г. Морозов‚ В.С. Новиков // Клиническая медицина. –
1991. – №5. – С. 19-23.
316. Янченко, В. Недокорм отъёмышей компенсировать невозможно //
Животноводство России. – 2005. – №6. – С. 30-31.
317. Ярилин, А.А. Гуморальный контроль процессов пролиферации,
дифференцировки и гибели клетки в тимусе. Двойной эффект сигналов.
Онтогенез, эволюция, биосфера. – М., 1989. – 123 с.
318. Ярилин, А.А. Структура тимуса и дифференцировка Т-лимфациов /
А.А. Ярилин, В.Г. Пинчук, Ю.А. Гриневич. – Киев: Наукова думка, 1991. –
224 с.
319. Abbas, A Cellular and molecular immunology / A Abbas, A.H. Lichtman,
J.S. Pober; W.B. Saundess Company. – Philadelphia; London; Toronto; Montreal;
Sydney; Tokyo, 1994. – P. 4.
320. Abbas, A.K. Cellular and Molekular Immunology / A.K. Abbas [et al.]. –
2nd ed. – Saunders, 2000.
321. Anderson, J.M. Monocyte, macrophage and foreign body giant cell
interacitions with moleculary engineered surfaces / Anderson J.M., Defife K.,
MeNally A. [et al.] // J. Mater. Sci. Mater. Med. – 1999. – Vol. 10-11. – P. 579588.
322. Andersson, L. Ferst pig gene mapping workshop (PGMI) / L. Andersson,
307
A.L. Archibald, J. Gellin // Animal Genet. – 24, 1993 – P. 205-216.
323. Arpin, C. Generation of memory b cells and plasina cells in vitro / C. Arpin,
J. Dechanet, C. Van Kooten [et al.] // Science. – 1995. – Vol. 268. – P. 720-722.
324. Avram, N. Reactivitate, hemaxlalgica si biochimica in streul de intarcare /
N. Avram, D. Draghici, J. Caraivan // Rev Creterea anim. – 1986. – V. 3b., N12. –
P. 27-32.
325. Bancherean J. Growing human B lymphocytes in the CD 40 system /
J. Bancherean, F. Rousset // Nature. – 1991. – Vol. 353. – P. 678-679.
326. Banchereau, J. Dendritic cells: Controllers of the immune system and a new
promise for immunotherapy / J. Banchereau, S. Paezesny, P. Blanco [et al.] //
Annals of the New York Academy of Sciences. – 2003. – Voc. 987. – P. 180-187.
327. Bazan-Kubik, I. Topographie et morphologie du thymus des mammiferes //
Am. UMCS. – 1991. – Vol. 46. – P. 133-140.
328. Benjamini, E. Immunology, a short course/ Benjamini, E. G. Sunahine,
S. Leskowitz// WILEYLISS, New York, 1996. – 45 p.
329. Berru, M. The role of selenium in thyroid hormone action / M. Berru,
P. Larsen // Endocr. – Rev. 13 – 1992. – P. 121-126.
330. Beutler, B. Section on innate immunity / B. Beutler, J. Hoffmann // Current
Opinion in Immunology. – 2004. – Vol. 16. – P. 1-16.
331. Blalock, JE The syntax of immune-neuroendocrine communication. –
Immunol Today. – 15:504-511. – 1999.
332. Borish, L. Cytokines and chemokines / L. Borish, J.W. Steinke // Journal of
Allergy and Clinical Immunology. – 2003. – Voc. 111. – S. 460-475.
333. Braun, F.A.
A compas directional phenomenal in mud snails and its
relations to magnetism // Biol. Bull. – 1965. – 51. – Р. 135.
334. Brown, W.R. Characterization of the single Ca gene of swine /
W.R. Brown, J.E. Butler. – Mol. Immunobiology, 1994. — №154. – P. 3836-3842.
335. Brown, W.R. The hinge deletion variant of hoseine IgA results from a
mutation at the splice acceptor site in the first Caintron / W.R. Brown,
I. Kacskcovics, J.E. Batler [et al.] // J. Immunology, 1995. – P. 3836-3842.
308
336. Bruunsgaard, H. Aging and proinflammatory cytokines / H. Bruunsgaard,
M. Pederson, B.K. Pederson // Current Opinion in Hematology. – 2001. – Voc. 8.
– P. 131-136.
337. Burne Lacguelyn, A. A novell subpopulations of primed T cells in the
human feyus / A. Burne Lacguelyn, Ana K. Stunkovic, D. Cooper Max //
Immunol. – 1994. – Vol. 152. – №6. – P. 98-106.
338. Cahill, GF Origin, evolution, and role of hormones. In: Endocrinology. –
2nd ed., LJ Degroot, ed. – Saunders; Philadelphia, 1989. – P. 3-5.
339. Campbell, K.S. Signal transduction from the B-cell antigen-receptor //
Current Opinion in Immunology. – 1999. – Voc. 11. – P. 256-264.
340. Carlson, M.S. Effect of lower concentrations of copper proteinate compared
to copper sulfate on nursery pig growth performance / M.S. Carlson, C. Wu,
A. Tsunoda [et al.] // J. Anim. Sci. – 2000, 78 (Suppl. 2): 138 (Abstr.).
341. Case, C.L. Effect of feeding organic and inorganic sources of zinc on
nursery pig growth performance / C.L. Case, M.S. Carlson // J.Anim. Sci. – 2000,
78 (Suppl. 2): (Abstr.).
342. Castillo-Blum, S. Coordination chemistry of some biologically active
ligands / S. Castillo-Blum, N. Barma-Behrens // Coord. Chtm. Rev. – 2000. –
Vol. 196. – №1. – P. 3-30.
343. Cavallo, MG Cytokines and autoimmunity / MG Cavallo, P Rozzilli,
R Thorpe. – Clin Exp Immunol, 1994: 96(1):1-7.
344. Chen, I. Gene rearrangemen and B-cell development // Current opinion
immunology. – 1992. – Vol. 5. – P. 194-206.
345. Cheney, R.T. Subpopulation of lymphocytes in material peripheral blood
during pregnancy / R.T. Cheney, J.J. Reprot // Immunologia. – 1984. – №2. –
P. 111-120.
346. Clarke, A.G. The thymus in pregnancy: the interplay of neural, endocrine
and immune influences / A.G. Clarke, M.D. Kendell // Immunology today. – 1994.
– №1 — P. 545-551.
347. Claus, R. Einflub von Licht, Rasse, Alter und Absamhautigkeit auf
309
Fruchtbarkeit – skriterien von Besamungsebern // Dissertation zur Erlangung des
Doktorgrades der Agrar wissenschaften. – Hohenhein, 1987. – 180 s.
348. Collins, M.D. Probiotics, prebiotics, and synbiotics: approaches for
modulating the microbial ecology of the gut Drozdowska / M.D. Collins,
G.R. Gibson // Am. J. Clin. Nutr. – 1999, 69 (5). – P. 1052-1057.
349. Comsa, J. Thymushormone / Tatsachen und Problem // Med.welt.– 1980. –
V. 31. – P. 533-536.
350. Cooper M.A. Interleukin – Ib costimulates interferon –Y production by
humun natural killtr cells // Eur. J. Immunol. – 2001. – Vol. 31. – P. 762-810.
351. Cutler, R. Pig disease and pig gerery environment // Pig Fermer. – 1984. –
V. 18, №6. – P. 30-31.
352. Dabrowshi, M.P. Rola hormonow grasicy vv wewnatzi pora-grasiczym
dojnze-waniu populacji limfocytow-T // Immunologia polska. – 1991. – №3-4. –
P. 205-212.
353. Desehaux, P. Le thymus, organ endorcinen / Physiol (France), 1980. –
V. 76. – P. 357-371.
354. Elencov, IJ The sympathetic nerve-an integrative interface between two
supersystems: the brain and the immune system / IJ Elencov, RL Wilder, GP
Chrousos, ES Vizi. – Pharmacol Rev 52:595-638, 2000.
355. Ellis, W.S. Evidence for a major gene regulation serum lysozyme activity in
cattle // W.S. Ellis, Z. Tierzucht. – Zuchtungbiol, 1983. – №2. – P. 134-138.
356. Flemming,W. Sch Lussbemerkungen liber die Eell vermehrung in den
lympbciben // Drusen. Arch mikr Anat. – 1885. – Vol. 24. – P. 355-361.
357. Freund, M Cytokines in hemopoesis, oncology and immunology /
M. Freund, H Link, RE Schmidt, K Welte [eds.]. – Berlin : Springer-Verlag, 1994.
– XXVi. – 711 p.
358. Fu, S.M. Winchester R.J., Kunkei H.G. Similur idiotypic specificity for the
membrane JgD and JgD of human B-αymphocytes // J. Immunol. – 1975. – V. 114.
– P. 249-252/
359. Garaves, M.F. T-and B-lymphocytes origins, properties and roles in
310
immune responses/J.J.T.Owen, M.C. Raff //Amsterdam, 1973 P. 316.
360. Garcia-Bareina, M. Expression of cell adhesion molecules on liver
associated lymphocytes and their coanter-vceptors on sinusoidal linind cells in
Patients With bening or malignant liver disease / M. Garcia-Bareina, B. Lukomska,
W. Gawon [et al.] // Am. J. Patol. – 1995. – Vol. 146. – P. 1406-1413.
361. Gershwin, L.J. Immunology and immunopathology of domestik animals /
L.J. Gershwin, S. Krakowka, R.G. Olsen; Mosdy. – St. Louis; Baitimore; Boston;
Chicago; London; Madrid; Philadelphia; Sydney; Toronto, 1995. – 1995 p.
362. Gibson, G.R. Aspects of in vitro and In vivo research approaches directed
toward identifying probiotics and prebiotics for human use / G.R. Gibson, R.J.
Fuller // J. Nutr. – 2000: 130 (2) Suppl. – P. 391-395.
363. Giesemann, M.A. Calcium and phosphorus balance of gilts and mature sows
during gestation and lactation / M.A. Giesemann, A.J. Lewis, and P.S. Miller //
J. Anim. Sci., 1992b. – V. 70 (Suppl. 1). – 69 p. (Abstr.).
364. Gompertz, S. Inflammation-role of the neutrophil and the eosinophil /
S. Gompertz, R.A. Stockley // Semin. Respi. Infect. – 2000. – Vol. 15. – P. 14.
365. Gormann, N.T. Immunology. In texbook of veterinary internal medicine /
N.T. Gormann, S.I. Ettinger, E.C. Feldman // W.B. Saundess Company. –
Philadelphia ; London ; Toronto ; Montreal ; Sydney ; Tokyo, 1995. – Vol. 2. –
P. 341-356.
366. Hata K. Natural killer activity of human live-derived lymphocytes in
various hepatic diseases / K. Hata, D.H. Van Thiel, R.B. Herberman, T.L.
Whiteside // Hepatology. – 1991. – Vol. 14. – P. 495-503.
367. Heberman, R. Natural Cell Mediated immunity Against Tumoss. –
Academic : New York press, 1980. – Р. 204-208.
368. Hein, W.R. Extrathymic self rineval of al and yd T cells / Hein W.R., Duller
J. // Annu. Rept, 1986 / Basel Inst. Immunol. – Basel, 1986. – P. 76.
369. Henkart, P.A. Mechanisms of lymphocyte – mediated cytotoxicity. Annu //
Rev. Immunol. – 1985. – Vol. 3. – P. 31-58.
370. Hess, M.W. Experimental thymectomy. – Berlin : Springer‚ 1968. – Р. 240.
311
371. Holm, F. Gut+ Health and diet // World Food Ingredient. – 2003, February.
– P. 52-55.
372. Holzapfel, W.H. Introduction to pre- and probiotics / W.H. Holzapfel,
U. Shillinger // Food Research International. – 2002. – V. 35. – P. 109-116.
373. Hull, B. Strategies of obligate intracellular parasites for erading host
defences / B. Hull, K. Joiner // Immunology Today. – 1991. – Vol. 12. – P. 12-22.
374. Igaz, P. Cytokines in diseases of the endocrine system / P. Igaz, A. Falus,
E. Glaz, K. Racz. – Cell Biol Int 24:663-668, 2000.
375. Ishibashi, Y. Effects of phagocytosis – stimulating factor on the phaocytic
processes of poiymorphonuclear neutrophies / Y. Ishibashi, T. Yamashita // Infect
and Immun. – 1999. – №1. – P. 825-833.
376. Jain, N.C. Harvey Atlas of veterinary gematology // W.B. Saunders
company. – 2001. – 227 p.
377. Janewey, C.A. Immunobiology. The immun system in health and disease /
P. Travers// Current biology LTD. – Churuchill livingstone : Garland Publishin
Inc., 1996. – 860 p.
378. Jaroskova, L. The development of B-limphocytes and T-heir Reactivety in
pig fetuses / L. Jaroskova, F. Koveru, H. Tlaskolova [et al.] // Adv. Exp.med. Biol.
– 1982. – 19. – P. 25-30.
379. Juiius, M. Distinct roles for CD4 and CD8 as coreceptors in antigen
receptor signaling / M. Juiius, C. Marous, L. Haughol // Immunology Today. –
1993. –Vol. 14 – P. 177-187.
380. Kacskcovics, I. Fiv IgG subclasses identified from a DNA sequences from a
single swine / I. Kacskcovics, J. Sun, J.E. Butler // Immunobiology. – 1994. –
№153. – P. 3565-3573.
381. Karmardt, T. Tolerance and autoimmunity / T. Karmardt, N.A. Mitchison //
New England Journal of Medicine. – 2001. – Voc. 344. – P. 655-664.
382. Kawade, T. The immune responses in CD 40-deficient mice: impaired
immunoglobulin class switching and germinal center formation / Kawabe T., Naka
T., Voshida K. [et al.] // Immunity. – 1994. – Vol. 1. – P. 167-178.
312
383. Kennedy, B.W. Evatulation of genetic change in perfomannce tested pigs in
Canada / B.W. Kennedy [et al.] // Proccedings. World congr on genetics appliend
to liverton production. Lincoin. Nelr. 16.07 – 22.07. – 1986. – №10. – P. 149-154.
384. Kitamura, T. Multimetric cytokine receptors / T. Kitamura, T. Ogorochi,
A. Miyajima. – Trends Endocrinol Metab 5:8-14, 1994.
385. Kovacs, F. Die Rolle der Tierhygiene in der Verhütung Politaktorialer
Krankheiten / F. Kovacs // Berl.u. Münch. Tierärrte. Wschr. – 1978. – Bd. 91. –
№4. – P. 64-68.
386. Landsberger, A. Der Thymus/Thymusfactorn, Thymuspreparate. – Stuttgart;
New York, 1987. — P. 4-20.
387. Leich, H.W. Cood management supporrion genes success // The New. –
1984. – №11. – P. 12-18.
388. Linnermeyer, P.A. A monoclonal antibody 2H12 rcognizes a surface
antigen found on granulated metcial cells in the murine deciduas /
P.A. Linnermeyer, M.S. Hammilton // J. Reprod. Immunol. – 1990. – Vol. 17. –
P. 279-294.
389. Lolas, G.M. The phytic acid-total phosphorus relationship in barley, oats,
soybeans and wheat / G.M. Lolas, N. Palamidis, P. Markakis // Cereal Chem. –
1976. – Vol. 53. – P. 867-871.
390. Lopez, A. GM-CSF, IL-3, IL-5:cross-competition on human haemopoietic
cells / A. Lopez, M. Elliot, I Woodcock // Immunology Today. – 1992. – Vol. 13. –
P. 494-501.
391. Manchini G. Immunochemical guantitaion of antigens by single radial
immunodiffusion
/
Manchini
G.,
Carbonara
A.O.,
Heremans
J.F.
//
Immunochemistry, 2. – 1965. – P.235-254.
392. Malsolm, S. Et al. Localization of human immunoglobulin light chain
variable region genes to the short ams of chromosome 2 by in siti hybridization //
Proc. Nalt. Acad. Sci USA. – 1982. – V. 79. – P. 4957.
393. Marchetti, B. Neuroendocrine-immune interactions in the control of
reproductive
fanction
/
M.F.
Garaves,
313
M.C.
Morale,
N.
Cutuli
//
Neuroendocrinology. – 1990. – Suppl. – P.9.
394. Meyer, T.A. Effect of pharmacological ZnO levels in starter pig diets on
fecal excretion of Zn / T.A. Meyer, M.D. Lindemann, G.L. Cromwell // J. Anim.
Sci., 2000. – V. 78 (Suppl. 1). – P. 776 (Abstr.).
395. Miller I.F. A.P Ymmunological function of the thymus. – London, 1961. –
P. 748-749.
396. Miller I.F. A.P. Role du thymus dans immunite «Guffe of antoimmuite» //
Parse. – 1962. – P. 442-456.
397. Miller, I.F. MNC restriction in celluler cooperation. – In.: Prog. Eds. M.
Fougerean, J Dausset. – New York ; London : Acad. press. 1980. – P. 221-231.
398. Millirgton, G Thymic peptides and neuroendocrineimmune communication
/ G Millirgton, J.C. Buckingham // Journal of endocrinology. – 1992. – Vol. 133. –
№26. – P. 163-168.
399. Moll, I.M. Functional hystology of the neuroendocrine thymus //
Microscopy research and technic. – 1997. – №3. – P. 300-310.
400. Mushel, L.H. Serum bactericidal activity and complement / L.H. Mushel,
S.C. Fong // Biol. Amplif. Sist. Immunol. – J. London, 1977. – №5. – P. 137-158.
401. Natvig, J.B. Human immunoglobulins: Classes, subclasses, genetic variants
and indiotypes / J.B. Natvig, H.G. Kunkei // Abv. Immunol. – 1973. – Vol. 16. –
P. 1-59.
402. Nieuwenhuis, Pa Functional anatomy of geminl centers / D. Opsteiten
Amer. J. Anat. – 1984. – Vol. 170. – P. 421-437.
403. Odle, J. New insights into the utilization of medium-chain triglycerides by
the neonate: observation from a piglet model. – In.: J. Nutr, 1997. – 127(6). –
P. 1061-1067.
404. Okulavegyk, S. Efeltuwose tucju Swein prjy Lastosowanin Toznyoh J.J.
technologic guspaavstwuch inclywiolud. – Zaguoln. Ekon. Volm, 1989. –
P. 93-102.
405. Owen, R.L. In vitro generation of B-system lymphocytes of mouse tetal
liver a mammali an bursa eguivalent / R.L. Owen, M.D. Cooper, M.C. Raff //
314
Natare (J.). – 1974. – №249. – P. 361-363.
406. Ozaki, К Cytokine and cytokine receptor pleiotropy and redundancy /
К. Ozaki, WJ Leonard. – J Biol Chem, 277:29355-29358, 2002.
407. Ozer, H. Strelkauskauskas A. J., Callery R.T. // Cell Immunol. – 1979. –
Vol.45. – №2. − P. 334-343.
408. Pantel, K. The role of lymphoid cells in hematopoietic regulation // I am
Vet. Med. Assoc. – 1993.
409. Parsiow, T.G. Medical Immunology / T.G. Parsiow [et al.]. – 10th ed. –
McGraw-Hill, 2001. – 345 р.
410. Phillips, J.B. Directional and discriminatory responses of salamanders to
weak magnetic fields. In: Animal Migration Navigation and homing / J.B. Phillips,
K. Adler. – Berlin: Springer-Verlag, 1978. – P. 325-333.
411. Porter, P. Functional heterogeneity of the bovine immune system / P. Porter,
J. Amer. – Vetmed. Assos, 1973. – Vol. 163. – P. 789-796.
412. Prussin, C. IgE, mast cells, basophils, and eosinophils / C. Prussin,
D. Metcalfe // Journal of Allergy and Clinical Immunology. – 2003. – Voc. 111. –
S. 486-494.
413. Roberfroid, M.B. Functional foods and the intestine: concepts, strategies
and examples. In : Probiotics, other nutritional factors, and intestinal microflora /
M.B. Roberfroid, L.A. Hanson, R.H. Yolken eds // Nestle Nutrition Workshop
Series. – 1997. – Vol. 42. – P. 203-216.
414. Rulssell, R. The role of T-lymphocytes in inflammation // Proc. Nat. Acad.
Sei USA. – 1994. – Vol. 91. – №8. – P. 79.
415. Sabroe, I. Toll-like receptors in health and disease: Compiex questions
remain / I. Sabroe, R.C. Read, M.K.B. Whyte [et al.] // Journal of Immunology. –
2003. – Voc. 171. – P. 1630-1635.
416. Sampson, A.P. The role of eosinophils and neutrophils in inflammation /
A.P. Sampson // Clin. Exp. Allergy. – 2000. – Vol. 30 (suppl 1). – P. 22.
417. Savino, W. Intrathymic T-cell migration: a combinatorial interplay of
extracellular matrix and chemokines? / W. Savino [et al.] // Trends Immunol. –
315
2002. – Vol. 23. – P. 305.
418. Savino, W. Molecular mechanisms governind thymocyte migration:
combined role of chemokines and extracellular matrix / W. Savino [et al.] // J.
Leukoc. Biol. – 2004. – Vol. 75. – P. 951.
419. Selin, L.K. Section on lymphocyte effector function // Current Opinion in
Immunology. – 2004. – Voc. 16. – P. 257-283.
420. Seljelid, R.A. soluble b-1-3-n-glucan derivative potentiates the cytostatic
and cytolytic capacity of mouse peritoneal macrophages in vitro / R. Seljelid,
J. Bogwald, J. Hoffman, O. Lann // Immunopharmacol. – 1984. – Vol. 7. – №3. –
P. 69-73.
421. Sprent, J. Generation and maintenance of memory T cells / J. Sprent, C.D.
Surh // Current Opinion in Immunology. – 2001. – Voc. 13. – P. 248-254.
422. Stolpe, J. Ticrphysiologiesch grunndlagen oler klimagestaltung in der
Absetyferh elhaltung Nach und oler kalten Jahrsgei // Tiergucht. – 1984 – №10. –
S. 463-464.
423. Sun, J. Sequence analysis of pig swtch μ, Cμ and Cμm / J. Sun, J.E. Butler //
Immunogenetices, 1997. – №46– P. 452-460.
424. Tanaka, R. Effect of administration TOS and B. breve 4006 on the human
fecal flora / R. Tanaka, H. Takayama, M. Morotomi [et al.]. // Bitidobacteria
microflora. – 1983. – Vol. 2. – P. 17-24.
425. Thomson, AM Cytokines handbook. – XI. – London (ect): Acad Press,
1992. – 425 p.
426. von Boehmer, H. T-cell lineage fate: Instructed by receptor signals? /
H. von Boehmer // Current Biology. – 2000. – Voc. 10. – R. 642-645.
427. Wasserman, R.L. Aminoacid seguence of the region of a canine
immunoglobulin H. interprecies homology for the JgM class / R.L. Wasserman,
L.D. Capra // Science. – 1978. – Vol. 200. – P. 1159-1161.
428. Watson, D.L. Ways to reduse mastitis // Milk produser. – 1984. – Vol. 31. –
№5. – P. 16-17.
429. Weiss, A. Section on Lymphocyte activation / A. Weiss, J.C. Cambier //
316
Current Opinion in Immunology. – 2004. – Voc. 16. – P. 285-387.
430. Wekerle, H. Thymic nurce cells. Ia-bearing epithelium involved in
T-tymphocyte differentiation // Ketetson Nature. – 1980. – 283. – P. 402-404.
431. Whiteside, T.L. Characteristics of natural killer cells and lymphokineactivated killer cells / T.L. Whiteside, R.B. Herberman // Theirrole the biology and
treatment of human cancer. – Human Cancer Immunol, 1990. – Vol. 10. – P. 663704.
432. Wiese, T.H. The thymus: oll glang, new perspectives. Domestis Animal //
Endokrinology. – 1988. – P. 109-128.
433. Williams, M.R. Cheneges in IgG2 levels with ade in British Cattle / M.R.
Williams, P. Porter, P. Millar // Res. Vet.Sci. – 1978. – Vol. 25. – №1. – P. 82-85.
434. Wyers, R. Spreading Probiotics // World Food Ingredient. – 2004, March. –
P. 26-27.
317
Приложение
318