выраженным антимикробным действием в отношении ... микробов по сравнению с ихтиолом.

выраженным антимикробным действием в отношении указанных тестмикробов по сравнению с ихтиолом.
ЛИТЕРАТУРА: 1. Порфирьев И.А. Бесплодие высокопрордуктивных
молочных коров. Ж. «Ветеринария», №8, 2009 г. 2. Никитин В.Я.,
Миролюбов М.Г. Ветеринарное акушерство, гинекология и биотехника
размножения. Москва, «Колос», 2000 г., 422 с. 3. Набиев Ф.Г., Ахмадеев
Р.Н. Лекарственные препараты для ветеринарии. Казань, 2000 г. с.114. 4.
Госманов Р.Г. и др. Практикум по ветеринарной микробиологии и
иммунологии. Омск. 2000 г. с.102.
СРАВНИТЕЛЬНОЕ ИЗУЧЕНИЕ АНТИМИКРОБНОЙ АКТИВНОСТИ ИХТИОЛА И
ГЛИОКСАЛЯ
Миннебаев Ш.Г., Юсупова Р.Х.
Резюме
Проведенными
исследованиями
определяли
антимикробную
активность ихтиола и глиоксаля. Установили, что у глиоксаля
антимикробная активность выше, чем у ихтиола в отношении кишечной
палочки (М-17) 32 раза, а в отношении стафилококков (Р-209) и сенной
палочки (П-2) в 64 раза.
COMPARATIVE STUDY OF GLYOXAL AND ICHTHYOL ANTIMICROBIC
ACTIVITY
Minnebayev Sh.G., Yusupova R.Kh.
Summary
Ichthyol and glyoxal antimicrobic activity was determined by conducted
researches. It is established that glyoxal antimicrobic activity is 32 times higher
than of ichthyol in the case of coli bacillus (M-17) and it is 64 times higher. Vin
the case of staphylococcus (P-209) and bacillus subtilis.
УДК 619.611.636:74
ВНУТРИСТВОЛЬНОЕ СТРОЕНИЕ ЭКСТРАОРГАННЫХ
НЕРВОВ МОЧЕПОЛОВОГО КАНАЛА КОТА
Миншагаева Ф.И.- к.в.н, доцент; Ситдиков Р.И. - д.в.н., профессор, зав.кафедрой;
Фролова А.И. – к. в.н., доцент; Шамсутдинова Н.В. – к.в.н., ст.преподаватель
Казанская государственная академия ветеринарной медицины имени Н.Э. Баумана
e-mail: aivar3@mail.ru
Ключевые слова: безмиелиновые волокна, кот, кошачьи,
миелиновые волокна, тазовое сплетение, срамной нерв, каудальное
213
брыжеечное сплетение, нейролеммоциты.
Keywords: bezmielinovye fiber cat, feline, myelin fibres, pelvic рlexus,
pudendal nerve, kaudalnoe bryzeecnoe plexus, nejrolemmocity.
Целью наших исследований было изучение внутриствольного
строения экстраорганных нервов мочеполового канала кота.
Объектом исследований служили трупы взрослых (половозрелых)
котов в возрасте от 1 года до 5-ти лет в количестве 5 голов, полученные из
клиники КГАВМ.
Для решения поставленной задачи нами использованы методы
обычного и тонкого анатомического препарирования под падающей
каплей воды, распучкования и разволокнения, предложенные академиком
В.П.Воробьевым (1925).
Препараты перед исследованием фиксировались в 2% растворе
формалина в течение 24-48 часов.
Изучение препаратов показало, что нервы, иннервирующие
мочеполовой канал, многопучковые и имеют смешанный состав нервных
волокон.
Все изученные нами нервы состоят из миелиновых и безмиелиновых
нервных волокон, но количество нервных волокон каждой группы и
присутствие самих групп в разных нервах неодинаково (рис.1). В строении
каждого нерва имеются свои характерные для него особенности.
Рис.1. Состав нервных волокон экстраорганных нервов мочеполового
канала кота.
214
К видовым отличиям строения нервных волокон относятся: форма и
размеры диаметров поперечного сечения, ширина насечек Лантермана,
наличие или отсутствие перехватов Ранвье и размеры расстояний между
ними; ширина осевого цилиндра; отношение к краскам и другие
особенности их морфологии; на безмиелиновых нервных волокнах –
размеры и форма ядер шванновских клеток, а также расстояния между
ними и диаметр поперечного сечения.
Сложное пучковое строение имеют подчревные нервы. Количество
нервных пучков в нервных стволах, подходящих к мочеполовому каналу
кота, равно от 12 до 15.
Нервы, отходящие от симпатического ствола поясничного отдела,
каудального брыжеечного узла, срамные и тазовые нервы являются
типичными многопучковыми нервами (8-14, 9-13, 6-10, 10-15).
Поясничный отдел симпатического ствола содержит 5 групп
с
нервных волокон: 1) тонкие безмиелиновые нервные волокна
сигарообразными ядрами нейролеммоцитов составляют до 40% всей массы
ствола; 2) около 45% в них содержится безмиелиновых волокон с
овальными ядрами нейролеммоцитов, диаметром 3-6 мкм. Величина ядер
2,0-5,0х7,0-13,0 мкм; 3) до 12% имеется миелиновых волокон (тонкого и
среднего калибра), большая часть из которых тонкие миелиновые волокна
(диаметр их 2-6 мкм) с частыми насечками миелина и со слабо
выраженными узловыми перехватами 102,0-980,0 мкм; 4) средние
миелиновые волокна с длинными и глубокими перехватами и редкими
безмякотными насечками миелина. Диаметр нервных волокон 8,0-16,0
мкм, расстояние между узловыми перехватами 96,0-130,0 мкм; 5)
безмиелиновых нервных волокон с округлыми и веретенообразными
ядрами нейролеммоцитов встречаются единицы - только до 4%. Эти
волокна очень тонкие, от 0,5 до 4,0 мкм.. Величина округлых ядер – 2,03,0х4,5-6,0 мкм, веретенообразных-2,0-4,0х18,0-26,0 мкм. Расстояние
между ядрами 220,0-350,0 мкм.
Подчревные нервы состоят, в основном, из безмиелиновых нервных
волокон с овальными ядрами нейролеммоцитов, которые составляют около
50%. Тонкие безмиелиновые нервные волокна с сигарообразными ядрами
нейролеммоцитов 10-15%. Примерно 4-6% массы внутренностных нервов
составляют средние и тонкие миелиновые волокна. В отдельных пучках
встречаются до 4% тонких безмиелиновых волокон с округлыми и
веретенообразными ядрами нейролеммоцитов и лишь небольшое
количество (около 3%) маломиелиновых нервных волокон.
Тазовые нервы, в отличие от остальных, содержат 40-55%
миелиновых нервных волокон среднего диаметра. Тонких и средних
миелиновых волокон в этих нервах до 4%. Безмиелиновых нервных
волокон мало. Диаметр безмиелиновых нервных волокон с
215
сигарообразными ядрами от 2,0 до 2,5 мкм и имеют форму толстых сигар
диаметром 1,0-2,5 мкм без ядер и перехватов.
ЛИТЕРАТУРА: 1.Климов, А.Ф. Анатомия домашних животных/
А.Ф. Климов, А.И.Акаевский//С.-Петербург - Москва-Краснодар,2003.1040с.-(Учебники
для
вузов).
2.
Коротковская,О.А.
Макромикроморфология ганглиев тазового сплетения у представителей семейств
собачьих/ О.А. Коротковская, Г.А. Хонин// Аграрный вестник Урала.2008.-№11.-С.50-51. 3. Коротковская,О.А. Морфология ганглиев тазового
сплетения у собак/ О.А. Коротковская//Тр. Кубанского государственного
аграрного университета.-2009.-№1.-С.38-39. 4. Миндубаев, Ю.Х.
Материалы по внутриствольному строению переферических нервов/ Ю.Х.
Миндубаев //Бюлл.Татар.отд-ния Всесоюзн.научн. общества анатомов,
гистологов и эмбриологов. –Казань,1959. Вып.2.-С.64-68. 5. Хонин,Г.А.
Закономерности иннервации органов тазовой полости у пушных зверей
клеточного содержания/ Г.А. Хонин// Колосовское чтение: Сб.науч. тр.VI
Междуеар. Конф. По функциональной нейроморфологии ( 29-31 мая).Спб.,2002.-С.294-295. 6. Хонин,Г.А. Источники образования и особенности
топографии тазового сплетения у пушных зверей семейства собачьих и
куньих/ Г.А. Хонин// Морфология.-2002.-Т.122.-№4.-С.40-44.
ВНУТРИСТВОЛЬНОЕ СТРОЕНИЕ ЭКСТРАОРГАННЫХ
НЕРВОВ МОЧЕПОЛОВОГО КАНАЛА КОТА
Миншагаева Ф.И., Ситдиков Р.И., Фролова А.И., Шамсутдинова Н.В.
Резюме
Было установлено, что все изученные нами экстраорганные нервы
мочеполового канала кота имеют смешанный состав нервных волокон.
INTRATRUNK STRUCTURE OF EXTRAORGAN NERVES OF A MALE CAT
URETHRA
Minshagayeva F.I., Sitdikov R.I., Frolova A.I., Shamsutdinova N.V.
Summary
It was found that all investigated us еkstraorgannye nerves urinary
channel cat have a mixed composition of nerve fibers.
216