промышленного животноводства. Ученые записки Казанского

промышленного
животноводства.
Ученые
ветеринарного института. 1971. т. 109. – с. 3-11.
записки
Казанского
ПРОФЕССОР Х.Г. ГИЗАТУЛЛИН – ОРГАНИЗАТОР ВЕТЕРИНАРНОГО
ДЕЛА В СССР
Никитин И.Н.
Резюме
Педагогическая, научная и организаторская деятельность
профессора Х.Г. Гизатуллина в сфере организации ветеринарного дела в
условиях Казанского ветеринарного института.
PROFESSOR KH.G. GIZATULLIN – AN ORGANIZER OF VETERINARY
BUSINESS IN THE USSR
Nikitin I.N.
Summary
Professor Gizatullin`s pedagogic, scientific and organization work in the field
of veterinary business in the Kazan academy of veterinary medicine was
observed.
УДК619:579.841.93:616-097.636.91
ИММУНОБИОЛОГИЧЕСКИЙ ОТВЕТ МОРСКИХ СВИНОК
НА ВВЕДЕНИЕ ЖИВОЙ ВАКЦИНЫ ИЗ ШТАММА B.abortus 82-Sr.
Авзалов Ф.З.*, Свинцов Р.А*., Фомин А.М**.
Казанская государственная академия ветеринарной медицины*
ФГУ «ФЦТРБ- ВНИВИ»**
Ключевые слова: бруцеллёз, вакцина, штамм, иммуногенез,
антибиотики.
Key word: brutsellez, vaccina, strain,immunogenesis , antibiotics.
Проведение комплекса противобруцеллёзных мер борьбы и
профилактики включает, наряду с вакцинацией, проведение курса
антибиотикотерапии. Однако применение антибиотиков может привести к
резкому угнетению формирования активного иммунитета. В связи с этим
13
становится острой необходимостью проведение поисковых работ по
созданию вариантов вакцинного штамма, устойчивого к антибиотику,
применяемому для лечения бруцеллёза. Поэтому нами проводилась оценка
иммунобиологического ответа организма морских свинок на введение
штамма B.abortus 82-Sr разработанного в ФГУ «ФЦТРБ-НИВИ» г. Казани.
Для проведения опыта было использовано 52 лабораторных
животных, которых разделили на 5 групп. Первую и вторую группы
животных прививали вакциной из штамма 82-Sr, подкожно в область паха в
дозе 1,7 млрд м.к. в объеме 1 мл на фосфатном забуференном
физиологическом растворе хлористого натрия. Третью и четвертую группы
иммунизировали вакциной из штамма 82 в дозе 1 млрд м.к. в объеме 1 мл.
А пятая (6 голов) оставалась интактной, контрольной. Через 2 месяца после
иммунизации животных первой и третьей групп ревакцинировали
соответственно теми же вакцинами и в тех же дозах. Затем всех морских
свинок заразили вирулентной культурой из штамма B.abortus 54 М ВГНКИ
и через месяц провели убой животных.
При микроскопировании препаратов селезёнки от первой группы
вакцинированной и ревакцинированной культурой из штамма 82-Sr с
последующим заражением морских свинок отмечали формирование
довольно многочисленных, крупных по размеру, лимфатических вторичных
фолликулов, многие из которых имели ярко очерченные светлые центры.
Стенки
центральных
артерий
трабекул
были
утолщены,
гомогенизировались, подвергались мукоидному набуханию. В сети
пиронинофильно
окрашенных
ретикулярных
клеток
выявлялись
многочисленные активированные бластные формы лимфоцитов, среди
которых выявлялись средние лимфоциты и плазматические клетки. Вокруг
центральных артерий обнаруживалась компактная зона из густых
скоплений Т-лимфоцитов. В маргинальной зоне пульпы также
обнаруживались многочисленные малые лимфоциты и клетки
плазмоцитарного ряда с различной степенью дифференциации. Венозные
синусы были резко расширены, содержали некоторое количество белковой
массы, среди которой можно было видеть клетки лимфоцитарноплазматического ряда и макрофаги, загруженные гемосидерином.
Трабекулы были растянуты, гомогенизированы, многие из которых кроме
фибробластов и коллагеновых волокон содержали значительное скопление
плазмоцитов и малых лимфоцитов.
В регионарных, к месту введения антигена лимфоузлах, выявлялось
резкое расширение герменативных центров фолликулов, которые
содержали бластные клетки, лимфоциты, плазмоциты и единичные
макрофаги. В цитоплазме макрофагов обнаруживались обломки
распавшихся
ядер
погибших
клеток.
Мякотные
тяжи
были
гиперплазированы, представлены в основном инфильтратами малых и
средних лимфоцитов, а также плазмоцитами разной степени зрелости.
14
Стенки мелких кровеносных сосудов подвергались мукоидному и
фибриноидному набуханию. Краевые синусы лимфатических узлов были
сдавлены гиперплазированной лимфоидной тканью. В некоторых мозговых
синусах обнаруживали выраженный лимфоцитоз. При этом синусы были
сплошь заполнены обильно скопившимися малыми и средними
лимфоцитами.
В паренхиматозных органах отмечали также выраженную
иммуноморфологическую перестройку. В легких отмечали расширение и
полнокровие сосудов. Утолщение межальвеолярных перегородок за счет
выраженной пролиферации лимфоидно-макрофагальных клеток, которые
особенно выражались в периваскулярной соединительной ткани. В
последних, кроме того местами находили компактно сформированные
лимфофолликулы.
В печени выявляли полнокровие центральных вен и сосудов триад.
Вокруг последних отмечались явления резко выраженной плазморрагии.
Стенки портальных артерий были утолщены за счет их мукоидного
набухания, эндотелий набухший, пролиферировал. Местами наблюдали
умеренное расширение синусоидных пространств, с умеренной
пролиферацией звездчатых ретикулоэндотелиоцитов.
В почках наблюдалось расширение и полнокровие сосудов, во
многих из них наблюдалось набухание и пролиферация эндотелия. В
извитых канальцах отмечались явления зернистой дистрофии эпителия со
слущиванием их в просвет и формированием белковых цилиндров. В
интерстиции органа вокруг сосудов и между канальцами находили
очаговые пролифераты из лимфоидно-гистиоцитарных клеток.
В миокарде кровеносные сосуды были расширены и полнокровны.
Местами в интерстиции, особенно в периваскулярных пространствах,
выявлялись небольшие очаговые скопления, состоящие из лимфоидногистиоцитарных клеток.
В надпочечниках по соотношению корковое вещество значительно
превалировало над мозговым. Наблюдалось расширение границ пучковой и
особенно сетчатой зон. При этом в эпителиальных клетках как
клубочковой, так и пучковой и сетчатой зон выявлялись жировые капельки,
границы и клеточные структуры этих зон были хорошо выражены. В
соединительнотканной основе мозгового вещества выявлялись очаговые
пролифераты, состоящие из лимфоидно-макрофагальных клеток, за счет
чего септы между эпителиальными клетками утолщались, что
свидетельствовало о включении в процесс иммуногенеза даже
надпочечника.
Во второй опытной группе, вакцинированной культурой из этого же
штамма и зараженной без ревакцинации морфологическая картина в
сравнении с предыдущей, была практически однотипной, отличия касались
лишь следующих изменений. В селезенке у животных данной группы
15
обнаруживали многочисленные фолликулы, их центры размножения
базофильно окрашивались и лишь в единичных из них происходило
формирование характерных светлых центров. Стенки центральных артерий
фолликулов были с явлением эндо - и периваскулита. Некоторые их них с
полной облитерацией просвета. Вокруг центральных артерий наблюдалась
достаточно широкая зона из компактно расположенных Т-лимфоцитов.
Венозные синусы красной пульпы умеренно депонировались кровью,
расширялись, содержали значительное количество клеток лимфоидноплазмоцитарного ряда и макрофагов. Одновременно с этим отмечалось
некоторое огрубение ретикулярной основы стромы органа. Просмотр и
сравнительный анализ препаратов селезенки показал, что процессы,
характеризующие интенсивность иммуногенеза в данной группе животных,
были менее выражены, чем в первой.
В лимфоузлах данной группы животных фолликулы имели
расширенные светлые центры, которые были представлены бластными,
митотически делящимися клетками и единичными средними и малыми
лимфоцитами.
В
перифолликулярной
зоне
отмечались
густо
расположенные лимфоциты. Мякотные тяжи были в состоянии
гиперплазии. В корковой зоне органа содержались, в основном, малые и
средние лимфоциты, а в мозговом слое – значительное количество
плазмоцитов разной степени зрелости. Эндотелиальные клетки артериол и
посткапиллярных венул пролиферировали. Подкапсулярные синусы были
почти не заметны из-за сдавливания их гиперплазированной лимфоидной
тканью. По ходу капсул, местами на значительном протяжении,
обнаруживалась зона распада лимфоцитов, с образованием густого
скопления частиц хроматина ядер погибших клеток. В гистологических
срезах печени, легких, почках, миокарде отмечалась сходная с предыдущей
группой картина. С той лишь разницей, что в печени наблюдалась более
выраженная пролиферация звездчатых ретикулоэндотелиоцитов, а
клеточная пролиферация в интерстиции была менее выражена. В лёгких в
отличие от предыдущей группы отмечалось то, что вокруг бронхов в
межуточной соединительной ткани органа происходило формирование
небольших по размеру эпителиоидноклеточных гранулем, без некроза
клеток, и отсутствовали компактно сформированные лимфофолликулы. В
почках
структурные изменения, выражающие гломерулонефрит и
дистрофию канальцев, проявлялись в меньшей степени. В миокарде
сосудистые и дистрофические процессы слабо проявлялись, а
пролиферация со стороны лимфоидно-макрофагальных клеток не
обнаруживалась.
В надпочечниках выявляли более резкое расширение сетчатой зоны
коркового вещества. Клубочковая зона также выглядела более
расширенной, на этом фоне отмечалось сужение границ пучковой зоны.
Кроме того наблюдалось явление отека стромы в сетчатой зоне коркового
16
вещества, местами с образованием кистоподобных образований,
заполненных секретом, которые порой достигали значительных размеров.
Для
установления
иммуногенных
качеств
стрептомицинрезистентной вакцины из штамма 82-Sr и определения уровня
естественной резистентности организма у подопытных животных, нами
использовался лизосомально-катионный тест (ЛКТ).
В селезёнке у животных первой группы число ЛКБ составляло 1,7 ±
0,03, со средним цитохимическим показателем (СЦП) 2,9 ± 0,08, что по
сравнению с интактными животными выше ЛКТ в 2,1 раза, а СЦП в 2,2
раза. Во второй группе количество ЛКТ в селезёнке было на уровне 1,69 ±
0,04, а СЦП 2,4 ± 0,02. В третьей и четвёртой группах отмечали
незначительное снижение этих показателей по сравнению с двумя
предыдущими с достижением уровня, ЛКТ 1,6 ± 0,03 и 1,6 ±0,04, а СЦП 2,2
± 0,06 и 2,7 ± 0,4 соответственно.
В лимфатических узлах отмечалось увеличение количества КБ
относительно к показателям у интактных животных в 2,0 - 2,4 раза, СЦП с
2,2 до 2,6раза. При сравнении групп между собой количество КБ и СЦ
показатель значительных различий не имели, что говорит о стабильности
антигенных свойств вакцин из штаммов 82-Sr и 82, как при вакцинации,
так и при ревакцинации подопытных животных.
В сердце, почках и печени значения ЛКТ и СЦП имели такую же
закономерность, как и в лимфоидных органах, только с более низким
уровнем показателей.
После заражения подопытных животных показатели ЛКТ и СЦП в
органах изменились в сторону их понижения. Так в селезёнке количество
ЛКТ снизилось до 1,5 ± 0,04, СЦП до 2,3 ± 0,01 в первой группе, до 1,3 ±
0,02 и 2,1 ± 0,02 во второй, в третьей ЛКТ до 1,6 ± 0,04, а СЦП до 1,9 ±
0,03, в четвёртой ЛКТ до 1,5 ± 0,03, а СЦП до 2,4 ± 0,06.
Результаты этих показателей в селезёнке у животных пятой группы
составили ЛКТ 1,6 ± 0,03 и СЦП 2,5 ± 0,04.
В лимфатических узлах отмечалась та же динамика ЛКТ и СЦП, что
и в селезёнке, то есть устойчивое снижение показателей зараженных
животных в сравнении с вакцинированными и ревакцинированными, но не
инфицированными группами. В пятой группе эти показатели равнялись 2,5
± 0,06 СЦП и 1,6 ± 0,04 ЛКТ, что по отношению к фоновым показателям у
животных в 2,09 раза выше у СЦП и 2,16 раза у ЛКТ.
Заключение. Таким образом вакцинный штамм B.abortus 82-Sr
обладает достаточно выраженной иммуногенной активностью способной
вызвать полноценную иммуноморфологическую перестройку в организме
привитых
лабораторных
животных
проецируемую
лимфоидногиперпластической и макрофагально-клеточной реакциями, а также
повышением уровня ЛКТ и СЦП свидетельствующих о чёткой
положительной динамике в этом направлении.
17
ЛИТЕРАТУРА:
1.
Гулюкин
М.И.
Эффективность
вакцинопрофилактики бруцеллеза животных в России / М.И. Гулюкин,
М.П. Альбертян, М.И. Искандаров, А.И. Федоров, В.Н. Боровой, С.В.
Канальцев // Ветеринария. – 2008 -№9. – 7с. 2.Идрисов Г.З.
Иммуноморфологическое изучение органов и тканей крупного рогатого
скота, привитого бруцеллезными вакцинами из штаммов 82 и 19 / Г.З.
Идрисов, К.М. Салмаков // Ученые записки КВИ. – 1975 –Т.119. – С. 134142. 3.Уразов Т.Н. Изучение иммуногенеза и иммуногенных свойств новых
вакцинных штаммов бруцелл на морских свинках / Т.Н. Уразов, Т.Н.
Сафина, А.М. Фомин, К.М. Салмаков // Ветеринарный врач. – 2006 - № 1. –
С. 13-17.
ИММУНОБИОЛОГИЧЕСКИЙ ОТВЕТ МОРСКИХ СВИНОК НА ВВЕДЕНИЕ
ЖИВОЙ ВАКЦИНЫ ИЗ ШТАММА B.abortus 82-Sr.
Авзалов Ф.З., Свинцов Р.А., Фомин А.М.
Резюме
Иммуноморфологическими и цитохимическими исследованиями на
52 морских свинках осуществлена оценка иммунобиологического ответа
организма на введение живой противобруцеллёзной вакцины из штамма 82
– Sr.
IMMUNOBIOLOGICESKI ANSWER MARINE PIGS ON INTRODUCTION
ALIVE VACCINE FROM STRAIN B.abortus 82-Sr
Avzalov F.Z., Svintsov R.A., Fomin A.M.
Summary
Immunomorfologi and by citochemical researches on 52 marine pigs is
carried out the assessment of immunobiologi answer organism on introduction
alive against brucellosis vaccine from strain 82 - Sr.
УДК 619:579+578.826.2:614.28
ИЗУЧЕНИЕ АНТИБАКТЕРИАЛЬНЫХ И
ПРОТИВОГРИБКОВЫХ СВОЙСТВ ПРЕПАРАТА «РОКСАЦИН»
Алимов А.М., Амирова Л.О., Амиров Д.Р.
Казанская государственная академия ветеринарной медицины
Ключевые слова: препарат «Роксацин», бактерицидные свойства,
бактериостатические свойства, фунгистатические свойства.
18